הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

מודל Murine של חוט השדרה הצווארי פגיעה לחקר פוסט lesional הנשימה Neuroplasticity

13K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/51235

⸱

28 במאי 2014

 ,  ,  ,  ,  , 
1UFR des sciences de la santé - Simone Veil, Université de Versailles Saint-Quentin-en-Yvelines, 2Service de Physiologie - Explorations fonctionnelles, Hôpital Ambroise Paré, 3Services de Physiologie, Explorations Fonctionnelles, Réanimation Médicale et Centre d'Investigation Clinique et d'Innovation Technologique (Unité Inserm 805), Université de Versailles Saint-Quentin-en-Yvelines

במאמר זה

סיכום

כשל נשימתי הוא הגורם המוביל למוות לאחר פגיעה בחוט השדרה הצווארי. יש מודל לשחזור, לכימות, ואמין טרום קליני בבעלי חיים של כשל נשימה הנגרם על ידי פציעה בצוואר הרחם חלקית יעזור להבין neuroplasticity הנשימה ולא בדרכי הנשימה שלאחר מכן ויאפשר בדיקת אסטרטגיות תיקון משוערת.

תקציר

פגיעה בחוט השדרה הצווארי גורמת שיתוק קבוע, ולעתים קרובות מוביל למצוקה נשימתית. נכון להיום, אין תרופות יעילים פותחו על מנת לשפר / לשפר את כשל נשימתי בעקבות פציעה גבוהה בצוואר הרחם בחוט השדרה (SCI). כאן אנו מציעים מודל טרום קליני Murine של SCI הגבוה ברמת צוואר הרחם 2 (C2) metameric ללמוד neuroplasticity נשימה לאחר lesional המגוון. הטכניקה מורכבת של פגיעה כירורגית חלקית ברמת C2, אשר יניעו hemiparalysis של הסרעפת עקב deafferentation של motoneurons הסרעפת ממרכזי הנשימה נמצאים בגזע המוח. הצד הנגדי של הפגיעה נותר בשלמותה ומאפשר השחזור של בעלי החיים. שלא כמו SCIs האחר המשפיע על התפקוד של תנועה (ובבית החזה ברמה המותני), תפקוד מערכת הנשימה אינו דורש מוטיבציה של בעלי חיים וכימות של הגירעון / השחזור ניתן לבצע (סרעפת והקלטת עצב הסרעפת בקלותים, אוורור בכל גוף). דגם C2 SCI טרום קליני זהו מודל טרום קליני רב עוצמה, שימושי ואמין ללמוד אירועי neuroplasticity נשימה ונשימה שאינן שונים ברמות שונות (מולקולריות לפיזיולוגיה) ולבחון אסטרטגיות טיפוליות המשוערת מגוונות אשר עשוי לשפר את הנשימה ב חולי SCI.

מבוא

טראומת חוט השדרה היא פגיעה שכיחה שנצפתה באוכלוסייה האנושית במקרים דרמטיים, כגון שיתוק קבוע. עם זאת, חומרת הפגיעה תלויה ברמה וההיקף של הטראומה הראשונית. כשל נשימתי הוא הגורם המוביל לתמותה בעקבות פציעה עליונה צוואר הרחם בחוט השדרה (SCI) 1. נכון לעכשיו, הטיפול הטיפולי היחיד הוא למקם את המטופל במסגרת סיוע נשימתית. מאז ניתן להיגמל כמה מטופלים מהסיוע נשימתית 2, עקב החלמה ספונטנית שמתרחשת עם עיכוב שלאחר lesional, את הצורך לפתח תרופות לא פולשנית חדשניות חדשות הוא 3 דחופים. עובדה שיש בדגם טרום קליני סטנדרטי טוב כדי לחקור את ההשפעה של SCI צוואר הרחם על אי ספיקה נשימתית, ולכן, כדי ללמוד את היישום של אסטרטגיות טיפוליות המשוערת, היא חיונית.

במאמר טכני זה, אנו מתארים o מודל עכברי טרום קליני ספציפיליקוי בדרכי הנשימה הנגרם על ידי f צוואר הרחם SCI חלקי ברמת C2. מודל זה משמש כיום על ידי מספר מעבדות ברחבי העולם (לביקורות: 4-13). עם זאת, הבדלים קלים בהליך כירורגים ניתן להבחין בין החוקרים השונים ליצירת מודל זה בפרט צוואר הרחם פציעה עכברי. ההשפעה של SCI C2 על תפוקת הנשימה תוארה לראשונה בשנת 1895 ידי 14 פורטר. Hemisection צוואר הרחם גורם deafferentation של motoneurons הסרעפת מהכונן המרכזי שלהם (הממוקם בrVRG בגזע המוח, איור 1 א) בצד ipsilateral של פציעה, מה שמוביל לפעילות שקטה הסרעפת עצב ושיתוק הסרעפת שלאחר מכן. הצד הנגדי נותר בשלמותה ומאפשר לבעלי החיים לשרוד. שלא כמו SCI שונה הממוקם בקטע של עמוד השדרה תחתון (לדוגמא פגיעה contusive ברמת C4 15), על שלמות גרעין motoneuron הסרעפת בצד השני נשמרה. לאחר cervפציעת C2 iCal, כמה פעילות ספונטנית ניתן להבחין בצד ipsilateral (הסרעפת והסרעפת) בשל הפעלה של מסלולים הסינפטי שקטים הנגדי שחצו את קו האמצע של עמוד השדרה בC3-C6 רמה המגזרי (מסלולי הסרעפת חצו, CPP, איור 1) . ההפעלה של CPP, שהוא, בהגדרה, hemisection C2 בשילוב עם phrenicotomy נגדי שיגרום להתאוששות עצב ipsilateral חלקית הסרעפת, יכולה להתרחש משעות עד שבועות לאחר פציעה 16-18. ההשפעה חיובית האמיתית של מסלול CPP זה על התאוששות הנשימה מוגבלת 19 וחקירה והמשך טיפול צריכה להיות שפותחו כדי לשפר את סדר הגודל של שיקום ספונטני 3.

פרוטוקול זה מספק סוג רב עוצמה של מודל עכברי טרום קליני ללמוד פלסטיות לאחר lesional נשימה ברמות שונות (פיזיולוגיה נשימה מmotoneurons מראש וסרעפת, interneurons, מולקולרי וcellular, תנועה של הגפיים הקדמיים לדוגמא) וכן כמודל לבדיקת אסטרטגיות טיפוליות פולשנית ולא פולשנית שנועדו לשפר את הנשימה והתאוששות של תנועה בעקבות פציעת C2 חלקית בחוט השדרה הצווארי.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

פרוטוקול זה אושר על ידי ועדת האתיקה של כיסא RBUCE-UP של אקסלנס (אוניברסיטת פריז Sud, הסכם מענק מס 246,556) ואוניברסיטת דה ורסאי Saint-Quentin-en-איוולין.

1. הכנת מכשירי ניתוח עיקור

  1. נקה את מכשירי ניתוח עם חומר ניקוי במעבדה.
  2. החיטוי המכשירים לפני הניתוח.
  3. בפגישה כירורגי, לעקר את הכלים על ידי הצבת הטיפים במעקר חרוז חם 10 דקות ב 180 C ° בין 2 ניתוחים.

2. הכנת הסמים

  1. להכין 2 x 1 מיליליטר מזרקים לתרופות קוקטייל תרופות לפני הרדמה ואחרי ניתוח.
  2. על פי משקליו של העכברוש, להכין מזרק עם סמים טרום הרדמה: Carprofen (5 מ"ג / קילוגרם), עצירות (50 מיקרוגרם / קילוגרם), Baytril (5 מ"ג / קילוגרם) וDexmedetomidine (0.5 מ"ג / קילוגרם). השלם את נפח 1 מיליליטר עם אצבעות Lactated.
  3. הכן בעוד מזרק ההיפוך לתרופות טרום הרדמה: Atipamezole (500 מיקרוגרם / קילוגרם).

3. הרדמה של העכברוש

  1. לנהל תת עורי לבעל החיים את הפתרון של תרופות טרום הרדמה מתוארת בשלב 2.2. לאחר מכן, הכניס את בעל החיים לכלוב ולחכות עד שהאפקט המרגיע מופיע.
  2. מניחים את החולדה לתא סגור התמלא isoflurane 5% ב100% O 2, ולהמתין עד שקצב הנשימה מואט (בסביבות 30 שניות). לאחר מכן, הוצא את העכברוש מהחדר ומניח אותו על שולחן אינטובציה.

4. Orotracheal אינטובציה

  1. שכבי על הגב של בעלי החיים שלו, ולאחר מכן לאבטח את הראש על ידי הצבת רצועה הצמודה לשיניים הקדמיות שלו לשולחן.
  2. עם סיבים אופטיים אור, להאיר את חלל בית החזה. ואז, במקום ראי גרון (או מנהג עשה אחת, Jou et al. 20 לפרטים נוספים) בפיו של בעל החיים. דמיינו את מיתרי קול.
  3. החליקדואר ולמקם את מדריך orotracheal לתוך קנה הנשימה (בין מיתרי קול). חלק את צינור orotracheal (16 גודל קטטר G) על המדריך.
  4. הסר את המדריך ולבדוק עם מראה בגרון ממוקם בקצה של צינור orotracheal לנוכחות של לחות, המאשר את המיקום המתאים של הצינור בקנה הנשימה ולא בוושט.
  5. לחבר את הצינור להנשמת מכרסמים (683 הנשמה מכרסם, הרווארד Apparatus) ולהתאים את הריכוז של isoflurane עד 2% (ב100% O 2).
  6. לאבטח את צינור orotracheal עם פלסטר.

5. ניתוח בעמוד השדרה

  1. מניחים את החיה בעמדה פחסו הגחון על צלחת ניתוח מחוממת, עם האף מצביע על 90 זווית ° למנתח. לשמור על טמפרטורת הגוף סביב 37.5 מעלות צלזיוס לאורך כל הניתוח.
  2. לגלח את השיער עם קוצץ בין scapulas ולהסיר את השיער עם גזה.
  3. נקה את העור עם בטאדין, אז עם 7אלכוהול: 0%. חזור 3x שלב זה.
  4. קמצוץ הבוהן מתבצע לפני תחילת הניתוח כדי להבטיח עומק הרדמה מתאים.   לאחר מכן, לבצע rostro-caudally חתך בעור לרוחב עם מספריים בין scapulas.
  5. חותכים את rostro-caudally השרירים acromiotrapezius ידי ביצוע הגיד כדי למנוע דימום. ואז לנתק את שריר המעוין כדי לגשת לשרירי spinalis (המקיפים את החוליה).
  6. לחזור בו השרירים spinalis מC1 לחולית C3. החוליה C2 היא אחד עם apophysis בולט.
  7. נקה את השרירים סביב החלק הגבי של החוליה באמצעות צמר גפן סטרילי.
  8. מתחיל להסיר בזהירות את apophysis של C2 עם rongeur. לאחר מכן, המשך בקפדנות עד לחוט השדרה הגבי חשוף. ודא laminectomy שהוא laminectomy חמים הגבי. תשומת לב לדורה שמקיפה את חוט השדרה, ועורקים בקרבת אזור זה.
  9. עם # 55 מלקחיים, לנתח rostro-caudally הדורה יחד C2, הבאה תמשיך רוחבית בכל צד מקורי ואת הזנב.
  10. ספוג את הנוזל השדרתי.
  11. הפוך סעיף לרוחב מתחת לשורש מספר גב צוואר הרחם 2 עם microscissors. ודא עם אזמל מיקרו כי היקף הנגע הוא קרוב מספיק כדי להגיע לקו האמצע של חוט השדרה (ראה איור 2 א לתצוגת גב של הפציעה). אם לא, אז קיצוץ נוסף יכול להיעשות כדי להשלים את הפציעה. במקרה של דימום, השתמש צמר גפן סטרילי. היזהר שלא ללכת לצד הנגדי, אחרת, בעלי החיים לא יתאוששו מהפציעה ולא יהיו לי כשל נשימתי.
  12. תפר את השרירים כשכבת מגן ולתפור בחזרה את העור. יש לנקות את הפצע עם גזה סטרילית פולידין רווי.
  13. כיבוי מכשיר האדים isoflurane ולהזריק תרופות ההיפוך (Atipamezole [500 מיקרוגרם / קילוגרם, IM]), בדוק את טמפרטורת הגוף.
  14. כאשר החיה מתחילה לנשום נגד ההנשמה,נתק את הצינור לקנה הנשימה ממכונת ההנשמה, ולאחר מכן להסיר את צינור orotracheal. מניחים את החיה בכלוב מחומם להתאוששות.

6. טיפול לאחר ניתוח

לאחר ניתוח, בעלי החיים נמצאים תחת פיקוח רציף על מנת להבטיח את הסביבה הטובה ביותר האפשרית עבור התאוששות. אנטיביוטיקה (Baytril, 5 מ"ג / קילוגרם), אנטי דלקתי (Carprofen, 5 מ"ג / קילוגרם) ועצירות ניתנות (50 מיקרוגרם / קילוגרם) תרופות בכל שעות 12 עבור 2 הימים הראשונים שלאחר הניתוח כדי למנוע זיהומים ולהפחית את ההתרחשות כאב שלאחר ניתוח. יש חולדות כרצונך גישה למזון רך ומים (או מים הצמיגית ליום שלאחר הניתוח 1). נוזלים תת עורי ניתן להשתמש בם על מנת למנוע התייבשות בימים שלאחר ניתוח כמה הראשונים. משקל הגוף וצריכת המזון נמצאים תחת פיקוח יומיומי. הסביבה שלהם היא מועשרת לאורך כל הניסוי ופעם לאחר הפציעה (דיור כפול, אבובים בכלובים שלהם).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

היקף פגיעה

ההצלחה והשחזור של מודל ניסויי מסוים זה תלויים בניסיונו של כל מניפולטור / מנתח. הכמות הבאה של התאוששות בדרכי הנשימה (הסרעפת פעילות עצבית ופעילות סרעפת) בעקבות פציעת C2 היא בקורלציה עם ventrolateral נותר חסכה חומר לבן 21. מאז הפציעה היא "עבודת יד" ודורשת קצת תרגול מהמנתח, המידה של כל פציעה יש להיבדק על ידי טכניקות היסטולוגית (קיבעון של הרקמה עם paraformaldehyde 4%, ח...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

קשיים טכניים של ביצוע C2 הפגיעה הדגם

המודל העכברי פציעת C2 הוא כלי מעניין ללמוד neuroplasticity פוסט lesional בדרכי הנשימה. עם זאת, את הצעדים הדרושים כדי לייצר מודל לשחזור ואמין הם רבים וכל אחד יכול להשפיע על התוצאה של המחקר. לדוגמא, במהלך תהליך אינטובציה, טיפול קיצוני הוא שיש לנקוט משנת הצינור orotracheal יכול לייצר דלקת של קנה הנשימה, מה שעלול להוביל לסיבוכים שונים כגון כשל נשימה חסימתית, בנוסף...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

החוקרים מצהירים כי אין להם אינטרסים כלכליים מתחרים.

תודות

עבודה זו נתמכת על ידי מימון מתכנית המסגרת השביעית של האיחוד האירופי (FP7/2007-2013) תחת הסכם מענק מס 246,556 (RBUCE-UP פרויקט האירופי), HandiMedEx שהוקצה על ידי הקהל הצרפתי השקעות הדירקטוריון. מרסל Bonay נתמכה על ידי Chancellerie des Universités דה פריז (רגליים Poix), Fonds דה Dotation משוכלל ונדיר en סנטה Respiratoire, וסיוע ד 'מרכז Respiratoire במגורי ד' איל דה פראנס (CARDIF)

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
<חזק>חיה
זכר ספראג דולי עכברושג'נוויר225-250 גרם
<חזק>מכשירים כירורגיים
>סטודנט דומונט #5 מלקחייםכלי מדע עדין91150-20
מלקחיים דפוס סטנדרטי לסטודנטיםכלי מדע עדין91100-12
מיו-סטיל מספרייםמדע עדין14013-15
מספריים קפיצים מעוקלים לסטודנטיםמדע עדין91500-09
מספריים קפיצים ישרים - 8 מ"מ להביםכלי מדע עדין15025-10ישר קהה/בוטה
פרידמן פירסון רונגורכלי מדע עדין16121-14
סכין חיתוךכלימדע עדין10055-12מחזיק
מחט אולסן-הגרכלי מדע עדין12002-14משונן
, Weitlaner-Locktite Retractorכלי מדע עדין17012-112x3
תפרים כירורגיים נספגים קהיםCentravetBYO001גודל תפר 4-0
<חזק>ציודחם
חרוז חרוז סטריליזרמדע עדין כלי18000-45
קטטר CentravetCAT18816 G
חוט מדריך
מראה גרוןCentravetMIR011
טבעות חלבCentravetRIN020
מזרקCentravet
מחטCentravet
O2אוויר נוזליI1001M20R2A001
683 מכרסם T מאוורר 115/230Vמכשיר הרווארד55-0000
וופורייזר עצמאיWPIEZ-155
מיטה מחוממת בקו דקWPIEZ-211
מיכל אווירWPIEZ-258
<חזק>תרופות
קרפרופןסנטרבט
רימדילסנטרבטRIM011
בופרנורפיןסנטרבטBUP001
BaytrilCentravetBAY001
DexmedetomidineCentravetDEX010
AtipamezoleCentravetANT201
תמיסתבטדיןCentravetVET002
IsofluraneCentravetVET066
כלי כלי מעוקלת - ישר , לרינגוסקופ

מקורות

  1. Frankel, H. L., et al. Long-term survival in spinal cord injury: a fifty year investigation. Spinal Cord. 36, 266-274 (1998).
  2. Ramer, M. S., Harper, G. P., Bradbury, E. J. Progress in spinal cord research - a refined strategy for the International Spinal Research Trust. Spinal Cord. 38, 449-472 (2000).
  3. Zimmer, M. B., Nantwi, K., Goshgarian, H. G. Effect of spinal cord injury on the respiratory system: basic research and current clinical treatment options. J Spinal Cord Med. 30, 319-330 (2007).
  4. Mantilla, C. B., Sieck, G. C. Neuromuscular adaptations to respiratory muscle inactivity. Respir Physiol Neurobiol. 169, 133-140 (2009).
  5. Goshgarian, H. G. The crossed phrenic phenomenon and recovery of function following spinal cord injury. Respir Physiol Neurobiol. 169, 85-93 (2009).
  6. Nantwi, K. D. Recovery of respiratory activity after C2 hemisection (C2HS): involvement of adenosinergic mechanisms. Respir Physiol Neurobiol. 169, 102-114 (2009).
  7. Sandhu, M. S., et al. Respiratory recovery following high cervical hemisection. Respir Physiol Neurobiol. 169, 94-101 (2009).
  8. Lane, M. A., Lee, K. Z., Fuller, D. D., Reier, P. J. Spinal circuitry and respiratory recovery following spinal cord injury. Respir Physiol Neurobiol. 169, 123-132 (2009).
  9. Seeds, N. W., Akison, L., Minor, K. Role of plasminogen activator in spinal cord remodeling after spinal cord injury. Respir Physiol Neurobiol. 169, 141-149 (2009).
  10. Alilain, W. J., Horn, K. P., Hu, H., Dick, T. E., Silver, J. Functional regeneration of respiratory pathways after spinal cord injury. Nature. 475, 196-200 (2011).
  11. Vinit, S. Cervical spinal cord injuries and respiratory insufficiency: a revolutionary treatment. Med Sci (Paris. 28, 33-36 (2012).
  12. Kastner, A., Gauthier, P. Are rodents an appropriate pre-clinical model for treating spinal cord injury? Examples from the respiratory system). Exp Neurol. 213, 249-256 (2008).
  13. Vinit, S., Lovett-Barr, M. R., Mitchell, G. S. Intermittent hypoxia induces functional recovery following cervical spinal injury. Physiol Neurobiol. 169, 210-217 (2009).
  14. Porter, W. T. The Path of the Respiratory Impulse from the Bulb to the Phrenic Nuclei. J Physiol. 17, 455-485 Forthcoming.
  15. Nicaise, C., et al. Phrenic motor neuron degeneration compromises phrenic axonal circuitry and diaphragm activity in a unilateral cervical contusion model of spinal cord injury. Exp Neurol. 235, 539-552 (2012).
  16. Goshgarian, H. G. The crossed phrenic phenomenon: a model for plasticity in the respiratory pathways following spinal cord injury. J Appl Physiol. 94, 795-810 (2003).
  17. Vinit, S., Gauthier, P., Stamegna, J. C., Kastner, A. High cervical lateral spinal cord injury results in long-term ipsilateral hemidiaphragm paralysis. J Neurotrauma. 23, 1137-1146 (2006).
  18. Fuller, D. D., Johnson, S. M., Johnson, R. A., Mitchell, G. S. Chronic cervical spinal sensory denervation reveals ineffective spinal pathways to phrenic motoneurons in the rat. Neurosci Lett. 323, 25-28 (2002).
  19. Dougherty, B. J., Lee, K. Z., Lane, M. A., Reier, P. J., Fuller, D. D. Contribution of the spontaneous crossed-phrenic phenomenon to inspiratory tidal volume in spontaneously breathing rats. J Appl Physiol. 112, 96-105 (2012).
  20. Jou, I. M., et al. Simplified rat intubation using a new oropharyngeal intubation wedge. J Appl Physiol. 89, 1766-1770 (2000).
  21. Fuller, D. D., et al. Graded unilateral cervical spinal cord injury and respiratory motor recovery. Respir Physiol Neurobiol. 165, 245-253 (2009).
  22. Vinit, S., Windelborn, J. A., Mitchell, G. S. Lipopolysaccharide attenuates phrenic long-term facilitation following acute intermittent hypoxia. Respir Physiol Neurobiol. 176, 130-135 (2011).
  23. Ahmad, F., Wang, M. Y., Levi, A. D. Hypothermia for Acute Spinal Cord Injury-A Review. World Neurosurg. , (2013).
  24. Lovett-Barr, M. R., et al. Repetitive intermittent hypoxia induces respiratory and somatic motor recovery after chronic cervical spinal injury. J Neurosci. 32, 3591-3600 (2012).
  25. Minor, K. H., Akison, L. K., Goshgarian, H. G., Seeds, N. W. Spinal cord injury-induced plasticity in the mouse--the crossed phrenic phenomenon. Exp Neurol. 200, 486-495 (2006).
  26. Baussart, B., Stamegna, J. C., Polentes, J., Tadie, M., Gauthier, P. A new model of upper cervical spinal contusion inducing a persistent unilateral diaphragmatic deficit in the adult rat. Neurobiol Dis. 22, 562-574 (2006).
  27. Golder, F. J., et al. Breathing patterns after mid-cervical spinal contusion in rats. Exp Neurol. 231, 97-103 (2011).
  28. Lane, M. A., et al. Respiratory function following bilateral mid-cervical contusion injury in the adult rat. Exp Neurol. 235, 197-210 (2012).
  29. Vinit, S., et al. Axotomized bulbospinal neurons express c-Jun after cervical spinal cord injury. Neuroreport. 16, 1535-1539 (2005).
  30. Guenther, C. H., Windelborn, J. A., Tubon, T. C., Yin, J. C., Mitchell, G. S. Increased atypical PKC expression and activity in the phrenic motor nucleus following cervical spinal injury. Exp Neurol. 234, 513-520 (2012).
  31. Mantilla, C. B., Gransee, H. M., Zhan, W. Z., Sieck, G. C. Motoneuron BDNF/TrkB signaling enhances functional recovery after cervical spinal cord injury. Exp Neurol. 247, 101-109 (2013).
  32. Vinit, S., Darlot, F., Aoulaiche, H., Boulenguez, P., Kastner, A. Distinct expression of c-Jun and HSP27 in axotomized and spared bulbospinal neurons after cervical spinal cord injury. J Mol Neurosci. 45, 119-133 (2011).
  33. Windelborn, J. A., Mitchell, G. S. Glial activation in the spinal ventral horn caudal to cervical injury. Respir Physiol Neurobiol. 180, 61-68 (2012).
  34. Vinit, S., Stamegna, J. C., Boulenguez, P., Gauthier, P., Kastner, A. Restorative respiratory pathways after partial cervical spinal cord injury: role of ipsilateral phrenic afferents. Eur J Neurosci. 25, 3551-3560 (2007).
  35. Dougherty, B. J., et al. Recovery of inspiratory intercostal muscle activity following high cervical hemisection. Respir Physiol Neurobiol. 183, 186-192 (2012).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

C2
מודל Murine של חוט השדרה הצווארי פגיעה לחקר פוסט lesional הנשימה Neuroplasticity
צרו קשר
המליצו לספרייה

פרטיות

תנאי שימוש

מדיניות

זכויות יוצרים © 2026 MyJoVE Corporation. כל הזכויות שמורות.