Method Article

פיתוח במבחנה מערכת מודל לחקר האינטראקציה של Equus Caballus IgE עם קולטן גבוה הזיקה שלה FcεRI

DOI:

10.3791/52222

November 1st, 2014

In This Article

Summary

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

המחקר הנוכחי מתאר את הפיתוח והיישומים של מערכת בדיקה מהונדסת גנטית המבוססת על טרנספקציה של תאי לוקמיה בזופילית של חולדות עם הגן FcεRIα של הסוסים. תאים שעברו טרנספטציה מבטאים קולטן פונקציונלי שבו ניתן להפעיל את שחרור המתווכים של התגובה האלרגית על ידי IgE ואנטיגן.

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

האינטראקציה של IgE עם קולטן ה-Fc בעל הזיקה הגבוהה שלו (FcεRI) ואחריו אתגר אנטיגני היא המסלול העיקרי בתגובות אלרגיות בתיווך IgE. כתוצאה מקשירת הזיקה הגבוהה בין IgE ל-FcεRI, יחד עם הייצור המתמשך של IgE על ידי תאי B, אלרגיות נמשכות בדרך כלל לאורך כל החיים, כאשר כרגע אין תרופה קבועה זמינה. סוסים, במיוחד סוסי מירוץ, שבדרך כלל מולדים, הם מין של יונקים המועדים מאוד להתפתחות תגובות רגישות יתר, שעלולות להשפיע באופן רציני על ביצועיהם. תגובות פיזיולוגיות לרגישות אלרגית בסוסים משקפות את זו שנצפתה בבני אדם ובכלבים. במאמר זה אנו מתארים את התפתחותה של מערכת בדיקה באתרה להערכה כמותית של שחרור מתווכים של התגובה האלרגית הנוגעת למערכת הסוסים. לשם כך, הגן המקודד לסוס FcεRIα הועבר והתבטא על פני השטח של תאי לוקמיה של חולדות (RBL-2H3.1). תוצר הגן של שרשרת α הסוסים הטרנספטנטית יצר קומפלקס קולטנים פונקציונלי עם שרשראות β ו-γ של חולדה אנדוגנית 1. מערכת הבדיקה שהתקבלה אפשרה הערכה של כמות המתווך המופרש מתאי RBL-2H3.1 שעברו טרנספטציה של סוסים FcεRIα בעקבות רגישות עם IgE של סוסים ואתגר אנטיגני באמצעות שחרור β-hexosaminidase כקריאה 2, 3. שחרור מתווך הגיע לשיא של 36.68% ±-4.88% ב-100 ננוגרם מ"ל-1 של אנטיגן. בדיקה זו שונתה ממבחנים קודמים ששימשו לחקר תגובות אלרגיות של בני אדם וכלבים 4, 5. הראינו גם שלסוג זה של מערכת בדיקה יש יישומים מרובים לפיתוח כלי אבחון והערכת בטיחות של אסטרטגיות התערבות טיפוליות פוטנציאליות במחלות אלרגיות 6, 2, 3.

Introduction

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

אלרגיה ידועה כבר אלף שנים. טיפול באסתמה תואר בטקסט הרפואי המצרי העתיק המכונה פפירוס אברס (~ לפנה"ס 1550) ודן בתרופות צמחיות לטיפול בזה 7.

אלרגיה היום מסווגת כתגובה רגישות יתר מהסוג I, שבו סוג T התא עוזר 2 (TH 2) הזרוע של מערכת החיסון מנווטת את הייצור של נוגדני אימונוגלובולין E (IgE) בתגובה לאנטיגנים סביבתיים הנקראים אלרגנים. אלה הם חומרים מגוונים שאינטראקציה בדרך כלל עם תאים במערכת החיסונית ולהמריץ את הסינתזה והפרשה של ציטוקינים פרו-דלקתיים, כולל interleukin-4 וinterleukin-13 8, 9 כאל חלקיקים בחלקיקי עשן סיגריות או דיזל אשר משפרות סינתזת IgE 10.

העלייה בגילויים אלרגיים במדינות מתועשות ב -50 השנים האחרונות, שיוחסה לשילוב של ההשפעהמזהמים סביבתיים ומגמה לסביבה יותר מחוטא, המשלבים להעביר את התגובה החיסונית כלפי פרופיל שלט על ידי TH 2 ציטוקינים, כפי שהוצע על ידי "היגיינה השערה '11.

כפי שצוין לעיל, בני האדם אינם יונקים רק נגוע באלרגיה. יש לציין סוסים וכלבים גם יכולים לפתח תגובות אלרגיות קלאסיות ומחקר על ידי 12 הראה כי, כמו אצל בני אדם, אלרגיה לסוסים מיוחסת לגורמים גנטיים וסביבתיים. כתוצאה מכך, בעלי החיים הללו מהווים מודל טוב ללימוד יחסי הגומלין בין גורמים הגנטיים וסביבתיים של אלרגיה, ההתקדמות שלה מרגישות למחלה, ואסטרטגיות התערבות אפשריות פעם אחת ביטויים קליניים שהגדרתם ב

בשנת 1887, Stömmer היה האדם הראשון שתאר את הדמיון בין האדם ואסטמה סוסי 13, ההשפעה של היסטמין על מערכת לב וכלי דם הסוסים היאדומה מאוד לזו של בני אדם 14. סוסים הם גם אבן הפינה של התעשייה מרוצי הסוסים, שהוא בשווי $ 72000000000 עם מחזור הימורים של 115 מליארד דולרים בשנה 15.

רוב סוסי מרוץ העכשוויים הם צאצאים של המספר הקטן של סוסים ערביים הגזעיים על ידי ליידי אן בלאנט מהשינה 1878 ואילך. סוסי מרוץ מודרניים בדרך כלל ממולדים כדי לבחור ליכולות ביצועים. הם נוטים להפרעות גנטיות, שאחד מהם היא הרגישות שלהם להר תגובות אלרגיות. יש להם גם 1000 פעמים רמות גבוהות יותר IgE בסרום יותר אפילו בני האדם 16 ביותר אלרגי קשה. תגובות אלרגיות סוסים בדרך כלל באות לידי ביטוי כרגישות יתר עקיצת חרק (IBH) 17, 18. תוצאות IBH בדלקת עור כתוצאה מעקיצות חרקים מהוות בסוג Culicoides. צורה נוספת של מחלה אלרגית סוסים היא חסימות בדרכי נשימה חוזרות ונשנות (Rao), זה באו לידי ביטוי בבריאות ובדרכי הנשימה. הוא מאופיין על ידי צפצופים ומעבדהנשימה כבדה. לשכה לביקורת מתרחשת בדרך כלל בתגובה לעצב נבגים, ורמות IgE לאלרגן ספציפי גבוהות נרשמו בסוסים שסבלו מלשכה לביקורת במחקר אחד 19 למרות שחקירה עוד לא אישרה 20 זה.

מחקרים על אלרגיה לסוסים סובבים סביב הניסיון בניטור ונטרול IgE סוסים על ידי פיתוח נוגדנים נגד סוסים IgE חד שבטיים (מבז) 21, 22. יתר על כן המחקר של 23 דן בייצור של תחומים תאיים של α של גבוהה-זיקת קולט Fc הסוסים קולט שרשרת (FcεRIα) בניסיון לזהות ולכמת בסרום סוסי IgE. במחקר נלווה על ידי 24 Ledin דן בגישה חדשה שמטרתה לנטרל IgE בסרום על ידי תחול במערכת החיסון בimmunogen עצמי שאינם עצמי /. כל המחקרים הללו, עם זאת, היו חסרים assay יעיל על מנת לבחון את הבטיחות ויעילות של הפרוטוקולים שלהם. במאמר זה, אנחנו עכשיו נציג נתונים כאלה sys assayTEM החלים על המחקר של אסטרטגיות אבחון וטיפול רלוונטיות למערכת הסוסים, שבו שחרור β-hexosaminidase, כמדד לdegranulation מתווך תא, הוערך על תאי RBL-2H3.1 להביע FcεRIα סוסים. פרוטוקול זה מבוסס על פרסומים קודמים 25, 4, 5, 2, 3 המתארים את ההנדסה של תאי RBL transfected עם הגן המקודד את תחום מחייב IgE של קולט גבוה הזיקה לIgE ממינים שונים. הפרוטוקול מסביר כיצד לבצע assay שחרור β-hexosaminidase, שתוצאותיה מוצגות כממוצע ± סטיית תקן של ניסויים בשלושה עותקים.

Assay השחרור היה ראשון שפותח על ידי Siraganian והוק 25 ללמוד אלרגיה אנושית. קבוצת המעבדה בראשותו של ד"ר ראובן Siraganian גם פיתחה את קו תא RBL. תאי RBL אלו פותחו להביע FcεRIα האדם והפרוטוקול פורסם על ידי 4. החלק האחרוןשל assay הגיע עם הפיתוח של פלסמיד PSV בנייר על ידי נויברגר 26 אשר תאר את הייצור של נוגדני IgE על ידי שיבוט גן השרשרת הכבד שלו במורד הזרם של גן עכברי לאזור משתנה IgE שמכוון את hapten 4-הידרוקסי-3 -nitro-phenacetyl (NP), הנוגדן כימרי וכתוצאה מכך היה פונקציונלי מלא. היכולת לפתח כל IgE מיקוד אותו hapten, גם בעת שיבוט לקולטן שלו על פני השטח של תאי RBL הביאו סטנדרטיזציה של assay שהופך אותו פרוטוקול שימושי כדי למדוד את degranulation של תאי זופילים.

Assay עושה יש יתרונות וחסרונות. היתרונות של assay הוא ההסתגלות שלה לשימוש בכל מערכת יונקים, המעבדה שלנו ובכך השתמשה בו כדי לבדוק את degranulation במערכות אנושיות, כלבים וסוסים, וזה הוא בר השגה רק על ידי סינתזת IgE של האורגניזם ושיבוט לקולטן שלו על פני השטח של תאי RBL.

מצד השני,החסרונות של assay הוא שתאי RBL רגישים מאוד לשינויים תרמיים, מכאניים וPH, מה שהופך אותם לתת וריאציה של רמות degranulation בתוך אותו assay. הוא כך מומלץ בחום שהמבחנים תמיד חוזרים על עצמם בtriplicates ולאחר מכן ממוצע שנלקח מהם. יתר על כן, תאי RBL נוטים להעביר לפנוטיפ שאינו משחרר אם הם נשארים בתרבית רקמה לזמנים ממושכים (> 10 שבועות) 27, מה שהופך את התחזוקה שלהם מסורבלת. הם גם נוטים לזיהומים על ידי חיידקי mycoplasma, שאינם גלויים לעין מיקרוסקופ אור ולא לשנות את המורפולוגיה של התא, אך בצורה קיצונית ישנו את רמות degranulation. כך בדיקות mycoplasma רגילות יש צורך.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1) הכנה של קו נייד:

  1. פיתוח קו תא RBL-2H3.1 להביע α FcεRI סוסים:
    1. באמצעות שימוש בטכניקות תרבית רקמה בסיסיות לשורות תאי monolayer, transfect תאי RBL-2H3.1 הורים באמצעות פלסמיד pEE6, נושא את גן סוס FcεRIα (GenBank: Y18204.1) 28. הוסף 2 מיקרוגרם μl -1 של פלסמיד דנ"א 0.8 מיליליטר של תאים בצפיפות של 1.2 x10 7 מיליליטר תאים -1. Electroporate התאים ב 250 V 960 μF באמצעות electrocuvette 0.4 סנטימטר ואז דגירה מייד על קרח למשך 10 דקות.
    2. בחר את התאים שהשתנו באמצעות מדיה המכילה 0.4 גרם של סולפט G418 geneticin, אז למיין תאי חיים שנותרו באמצעות FACS על ידי תיוגם עם נוגדני IgE ניאון. השתמש בRBL-2H3.1 וכתוצאה מכך להביע את שורת תאי FcεRIα סוסים לחקירה 2, 3.
  2. רגישות נוגדן פרה-assay:
    1. -1 מיליליטר 5x10 5 תא.
    2. הוסף את IgE המעניינים את התאים מושעים לריכוז סופי של 1 מיליליטר -1 ng, אז צלחת של תאים 100 μl לצלחת גם 96 בטורים 1-6 ו לדגור על 37 ° C + 5% CO 2 + 90% לחות היחסית במשך 16 שעות. לאחר זמן הדגירה, ולפני ביצוע assay השחרור, לבדוק את הבארות תחת מיקרוסקופ לconfluency היטב ודבקות תא.

2) השחרור Assay:

  1. שטיפת התאים:
    1. חיץ שחרור חם (25 צינורות מ"מ, 120 נתרן כלורי מ"מ, 5 מ"מ כלוריד האשלגן, 0.04 מגנזיום כלוריד מ"מ, וסידן כלורי 1 מ"מ) בשעה 37 ° C כדי לאפשר לשטיפת תאים עדינה.
    2. שטוף תאים על ידי מצליף את הצלחת להסיר תקשורת סלולארי והוספת 100 μl חם, 37 מעלות צלזיוס, חיץ שחרור. חזור פעמיים.
  2. אתגר אנטיגן:
    1. הכן דילול סדרתי של אנטיגן (ניפ-HSA או DNP-HSA) של 0 מיליליטר ng -1, 0.1 מיליליטר ng ml -1, 1 ננוגרם -1, 10 מיליליטר ng -1, 100 מיליליטר ng -1, 1,000 מיליליטר ng -1, 10,000 מיליליטר ng -1 במאגר שחרור וחם על 37 מעלות צלזיוס.
    2. לאחר לשטוף התא השני, לבטל את התקשורת והוחלף בפתרוני אנטיגן 100 μl. ודא שיש לי בארות באותה השורה (A1-6 לדוגמא) את אותו ריכוז אנטיגן הוסיף להם.
    3. הגדר את בקרה שלילית בשורה על ידי הוספת 0 אנטיגן -1 מיליליטר ng. להוסיף ריכוז אנטיגן הגדלת את השורות (BG) ואחריו חיץ Triton-X (5% Triton X-100) בתאי H שורה לlyse התאים לשמש כביקורת חיובית. לדגור על 37 מעלות צלזיוס למשך 20 דקות, כדי לאפשר לתאים לשחרר מתווכים שלה.
  3. הגדרת בקרות ופרט:
    1. לאחר הדגירה, להעביר 50 μl של supernatant תא למחצית השנייה של הצלחת (בארות A1-6 לבארות A7-12, וכו '). מחק את 50 μl הנותר של supernatant ולהחליף עם 50 μl של חיץ Triton-X כדי לאפשר המדידה של כמות מתווכים שפורסמו בכל טוב בטורים 7-12 כאחוז מהמתווכים הכולל בתוך התאים בעמודה 1-6 .
  4. סובסטרט:
  5. הוסף 50 μl של מצע β-hexosaminidase (50 4 nitrophenyl-N-אצטיל-β-D-glucosaminide הערוך DMSO המדולל עד 2 מ"מ-ידי הוספתו למאגר ציטראט 0.2 M חומצת לימון ו -0.2 M נתרן אצטט, pH מ"מ 4.5) לכל הבארות לאפשרה ההמרה של המצע עד 4 nitrophenol-ידי אנזים β-hexosaminidase. דגירה הצלחות על 37 מעלות צלזיוס למשך 2 שעות.

figure-protocol-1

  1. הפסקת התגובה:
    1. לעצור את התגובה על ידי חיץ הוספת 150 μl טריס (1 M טריס- HCl, pH 9) לכל אחד גם pH הגבוה של החיץ מפסיק את התגובה והופך את 4 nitrophenol-לצבע צהוב.
  2. קריאה וניתוח התוצאות:
    1. קראו את הצלחת באמצעות ספקטרופוטומטר צלחת ב 405 ננומטר כדי למדוד את הספיגה של הצבע הצהוב. מחושב אחוז β-hexosaminidase שוחרר תוך שימוש בנוסחא הבאה:

figure-protocol-2

  1. ליישם את הנוסחה הזאת היטב כל אחד, לאחר שממוצע נלקח לכל שורה. A1 ו- A7 מייצגים את המיקום של הבארות בצלחת גם 96. לשרטט גרף של אחוז שחרור β-hexosaminidase (מתאים לסך שחרור מתווך) אגאיאנטיגן NST ריכוז 2, 3.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

תאי RBL-2H3.1 הורים ואלה transfected עם גן קולט FcεRIα הסוסים היו רגישים ראשון עם העכבר IgE אנטי DNP-HSA וקראו תיגר עם אנטיגן DNP-HSA. עכבר IgE נקשר לקולטן החולדה אנדוגני בשני שורות התאים ובכך פועל כשליטה על מנת לבחון את כדאיות השחרור של שני שורות התאים לשחרר מתווכים (איור 1). זוהי בדיקה חשובה וצריכה להתבצע באופן שגרתי מאז על מעבר מורחב (> 10 שבועות) בתרבית תאים, תאי RBL-2H3.1 להיסחף לכיוון פנוטיפ שאינו מפריש 27. התאים הוריים נתמכים שחרור מתווך שיא ש...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

לסיכום תוצאות מחקר זה הראו שכאשר תאי RBL-2H3.1 להביע FcεRIα סוסים הם רגישים עם IgE סוסים ולערער על ידי אנטיגן, הם נותנים שחרור מתווך שיא של 36.68% ± 4.88% מהסכום הכולל של מתווך בתוך תאים, בהשוואה לRBL-2H3.1 תאי הורים לא מביעים FcεRIα סוסים.

כך assay זה מספק כלי שימושי לחקירה ולימוד תגובות אלרגיות סוסים במבחנה. שלו מאפשר קביעת כמות המתווך שפורסם על ידי תאים של תא פיטום / שושלת זופילים ובכך ניתן לצפות לקיד...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

המחברים מצהירים כי אין להם אינטרסים פיננסיים מתחרים במאמר זה.

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

המחברים מודים לד"ר לינדה פרטרידג' על מתן ייעוץ ומתקני מעבדה.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
RBL-2H3.1 מבטא סוסים Fcε RIα--מיוצר במעבדה
Equine IgE anti NIP-HSA--מיוצר במעבדה
96 Well PlateSigmaCLS3595-Multi
Channel PipetteAnachem--
IncubatorGalaxy R-
-4Hydroxy-5-iodo-3-nitrophenylacetic acidCambridge Research BiochemicalsN-1070-1NIP-OH הוצמד עם אלבומין בסרום אנושי כדי ליצור NIP-HSA במעבדה
דיניטרופניל מצומד לסרום אנושי אלבומיןסיגמאA6661בקיצור DNP-HSA
ספקטרופוטומטר צלחתAnthos Labtec HT2-
צינורותSigmaP1851-נתרן
כלוריסיגמאS7653-אשלגן
כלוריסיגמאP9333-מגנזיום
כלורידסיגמאM2670-סידן
כלורידסיגמאC1016-טריטון
x100סיגמא
N-אצטיל-ובטא;-D-גלוקוזמינידסיגמאN9376תמיסת מלאי הנקראת &בטא;-הקסוזמינידאז היה 50 מ"מ שהוכן ב-DMSO
דימתיל סולפוקסידסיגמאD2650-חומצת
לימוןסיגמא
251275-נתרן אצטטסיגמאS7670-tris
סיגמאT5941-
X100-4-ניטרופניל

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Taudou, G., et al. Expression of the Alpha Chain of Human FcεRI in Transfected Rat Basophilic Leukemia Cells: Functional Activation after Sensitization with Human Mite-Specific IgE. Int Arch Allergy Immunol. 100 (4), 344-350 (1993).
  2. Sabban, S. Development of an in Vitro Model System for Studying the Interaction of EquuscaballusIgE with Its High-Affinity FcεRI Receptor. , The University of Sheffield. Sheffield. (2011).
  3. Sabban, S., Ye, H., Helm, B. A. Development of an in Vitro Model System for Studying the Interaction of EquuscaballusIgE with Its High-Affinity Receptor FcεRI. Vet ImmunolImmunopathol. 153 (1-2), 6-10 (2013).
  4. Wilson, A. P. M., Pullar, C. E., Camp, A. M., Helm, B. A. Human IgE mediates stimulus secretion coupling in rat basophilic leukemia cells transfected with the a chain of the human high-affinity receptor. Eur J Immunol. 23, 240-244 (1993).
  5. Hunter, M. J., Vratimos, A. P., Housden, J. E. M., Helm, B. A. Generation of canine-human Fc IgE chimeric antibodies for the determination of the canine IgE domain of interaction with FcεRIα. MolImmunol. 45 (8), 2262-2268 (2008).
  6. Rashid, A., et al. Review: Diagnostic and therapeutic applications of rat basophilic leukemia cells. MolImmunol. 52 (3-4), 224-228 (2012).
  7. Cohen, S. G. Asthma in antiquity: the Ebers Papyrus. Allergy Proc. 13 (3), 147-154 (1992).
  8. Dudler, T., et al. A link between catalytic activity, IgE-independent mast cell activation, and allergenicity of bee venom phospholipase A2. J. Immunol. 155, 2605-2613 (1995).
  9. Machado, D. C., Horton, D., Harrop, R., Peachell, P. T., Helm, B. A. Potential allergens stimulate the release of mediators of the allergic response from cells of mast cell lineage in the absence of sensitization with antigen-specific IgE. Eur J Immunol. 26 (12), 2972-2980 (1996).
  10. Smyth, L. J., et al. Assessment of the molecular basis of pro-allergenic effects of cigarette smoke. Environ Sci Technol. 34 (7), 1370-1374 (2000).
  11. Okada, H., Kuhn, C., Feillet, H., Bach, J. F. The 'hygiene hypothesis' for autoimmune and allergic diseases: an update. ClinExpImmunol. 160 (1), 1-9 (2010).
  12. Eder, C., et al. Influence of environmental and genetic factors on allergen-specific immunoglobulin-E levels in sera from Lipizzan horses. Equine Vet J. 33 (7), 714-720 (2001).
  13. Cook, W. R., Rossdale, P. D. The syndrome of 'Broken Wind' in the horse. Proceedings of the Royal Society of Medicine. 56, 972-977 (1963).
  14. Eyre, P., Lewis, A. J. Acute systemic anaphylaxis in the horse. Br. J. Pharmacol. 48 (3), 426-437 (1973).
  15. Bruggink, M. Global betting stable, but some countries suffer recession. , International Federation of Horseracing Authorities. Available from: http://www.horseracingintfed.com/Default.asp?section=Resources&area=0&story=664 (2009).
  16. Wagner, B. IgE in horses: occurrence in health and disease. Vet ImmunolImmunopathol. 132 (1), 21-23 (2009).
  17. Hellberg, W., et al. Equine insect bite hypersensitivity: immunoblot analysis of IgE and IgG subclass responses to Culicoidesnubeculosus salivary gland extract. Vet. Immunol. Immunopathol. 113 (1-2), 99-112 (2006).
  18. Schaffartzik, A., et al. Equine insect bite hypersensitivity: what do we know. Vet ImmunolImmunopathol. 147 (3-4), 113-126 (2012).
  19. Künzle, F., et al. IgE-bearing cells in bronchoalveolar lavage fluid and allergen-specific IgE levels in sera from RAO-affected horses. J Vet Med A PhysiolPatholClin Med. 54 (1), 40-47 (2007).
  20. Tahon, L., et al. In vitro allergy tests compared to intradermal testing in horses with recurrent airway obstruction. Vet ImmunolImmunopathol. (1-2), 85-93 (2009).
  21. Wagner, B., Radbruch, A., Rohwer, J., Leibold, W. Monoclonal anti-equine IgE antibodies with specificity for different epitopes on the immunoglobulin heavy chain of native IgE. Vet ImmunolImmunopathol. 92 (1-2), 45-60 (2003).
  22. Wilson, A. D., Harwood, L., Torsteinsdottir, S., Marti, E. Production of monoclonal antibodies specific for native equine IgE and their application to monitor total serum IgE responses in Icelandic and non-Icelandic horses with insect bite dermal hypersensitivity. Vet ImmunolImmunopathol. 112 (3-4), 156-170 (2006).
  23. McAleese, S. M., et al. Cloning and expression of the extra-cellular part of the alpha chain of the equine high-affinity IgE receptor and its use in the detection of IgE. Vet ImmunolImmunopathol. 110 (1-2), 187-191 (2006).
  24. Ledin, A., et al. Generation of therapeutic antibody responses against IgE in dogs, an animal species with exceptionally high plasma IgE levels. Vaccine. 24 (1), 66-74 (2006).
  25. Siraganian, R. P., Hook, W. A. Histamine release and assay methods for the study of human allergy. Manual of Clinical Immunology. , American Society for Microbiology. Washington, D. C. (1980).
  26. Neuberger, M. S., et al. A hapten-specific chimaericIgE antibody with human physiological effector function. Nature. 314 (6008), 268-270 (1985).
  27. Bingham, B. R., Monk, P. N., Helm, B. A. Defective Protein Phosphorylation and Ca2+ Mobilization in a low secreting variant of the rat basophilic leukemia cell line. The Journal of Biological Chemistry. 269 (30), 19300-19306 (1994).
  28. McAleese, S. M., Halliwell, R. E., Miller, H. R. Cloning and sequencing of the horse and sheep high-affinity IgE receptor alpha chain cDNA. Immunogenetics. 1 (51), 878-881 (2000).
  29. Hongtu, Y. Study of the structure/function relationship in canine and human IgE as the basis for the development of rational therapeutic intervention strategies in allergic disease. , The University of Sheffield. (2010).
  30. Sabban, S., et al. Towards a pan-anti-allergy vaccine. JIBTVA. 2 (2), 15-27 (2013).
  31. Moran, G., Burgos, R., Araya, O., Folch, H. In vitro bioassay to detect reaginic antibodies from the serum of horses affected with recurrent airway obstruction. Vet Res Commun. 34, 91-99 (2010).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Equine IgEFc RI ReceptorRat Basophil Leukemia CellsMediator Release AssayBeta Hexosaminidase ReleaseAntigenic ChallengeAllergic ResponseIn Vitro ModelEquine AllergyRBL 2H3 1 Cells

Related Articles