מאמר שיטה

שימוש בelectroretinogram כדי להעריך את התפקוד ברשתית מכרסמים וההשפעות המגנות של האיבר המרוחק איסכמי אכשור קד

DOI:

10.3791/52658

⸱

9 ביוני 2015

 , 
1Discipline of Physiology and Bosch Institute, Sydney Medical School, University of Sydney

במאמר זה

סיכום

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

האלקטרורטינוגרמה (ERG) היא פוטנציאל חשמלי שנוצר על ידי הרשתית בתגובה לאור. מאמר זה מתאר כיצד להשתמש ב-ERG כדי להעריך את תפקוד הרשתית, בחולדות מותאמות לחושך, וכיצד ניתן להשתמש בו כדי להעריך התערבות נוירו-פרוטקטיבית, במקרה הנוכחי התניה איסכמית מרחוק.

תקציר

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ה-ERG הוא הסכום של כל פעילות הרשתית. ה-ERG מוקלט בדרך כלל מהקרנית, המשמשת כאנטנה שאוספת ומסכמת אותות מהרשתית. ה-ERG הוא מדד רגיש לשינויים בתפקוד הרשתית שהם פאן-רשתית, אך פחות יעיל לאיתור נזק המוגבל לאזור קטן של הרשתית. בעבודה הנוכחית אנו מתארים כיצד להקליט את ה-ERG 'הבזק', שהוא הפוטנציאל שנוצר כאשר הרשתית נחשפת להבזק אור קצר. אנו מתארים שיטות של הרדמה, מידריאזיס וניהול הקרנית במהלך ההקלטה; כיצד לשמור על הרשתית חשוכה מותאמת; חומרי אלקטרודה ומיקום; הטווח והכיול של אנרגיית הגירוי; רישום פרמטרים וחילוץ נתונים. אנו מתארים גם שיטה להשראת איסכמיה בגפה אחת, וכיצד להשתמש ב-ERG כדי להעריך את ההשפעות של איסכמיה מרוחקת זו מהרשתית על תפקוד הרשתית לאחר נזק לאור. מתואר פרוטוקול שני הבזקים המאפשר בידוד של הרכיב מונע החרוט של ה-ERG המותאם לחושך, ובכך את ההפרדה של רכיבי המוט והחרוט. מכיוון שניתן לתעד אותו בטכניקות זעיר פולשניות, נעשה שימוש נרחב ב-ERG במחקרים על הפיזיולוגיה, הפרמקולוגיה והטוקסיקולוגיה של הרשתית. אנו מתארים דוגמה אחת לתועלת זו, שבה נעשה שימוש ב-ERG כדי להעריך את תפקוד הרשתית שנפגעה מאור, עם ובלי התערבות נוירו-פרוטקטיבית; התניה מוקדמת על ידי איסכמיה מרחוק.

מבוא

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ERG הוא פוטנציאל חשמלי שנוצר על ידי הרשתית בתגובה לאור, ונרשם מפני הקרנית של העין. כאשר תנאים של הקלטה מנוהלים בקפידה, ERG ניתן להשתמש במגוון דרכים כדי להעריך את תפקוד רשתית. כאן אנו תיארנו כיצד להקליט את 'הבזק ERG', את הפוטנציאל שנוצר כאשר הרשתית חשופה לבזק קצר, בהיר מוצג ברקע Ganzfeld. Ganzfeld מפזר את אור homogenously והבזק של אור מגיע לכל הרשתית כ אחיד. אם הרשתית כהה מותאמת לפני ההקלטה, וכהה ההסתגלות נשמר כחיה מוכנה להקלטה, ERG הושג מופק על ידי שני קולטני האור המוט וחרוט.

יש פלאש ERG הכהה מותאמת גל אופייני, שכבר נותח בשתי דרכים. ראשון, מוקדם ומאוחרת רכיבים של צורת גל ERG כבר להבחין, וקשורים לרצף של נוירוןהפעלת אל ברשתית. הרכיב הראשון הוא קצר חביון פוטנציאל הולך שלילי, הגל (איור 1). זה ואחריו פוטנציאל הולך חיובי, נקרא ב-הגל. שלב העלייה של ב-גל תערוכות תנודות, שנחשבים רכיב נפרד (פוטנציאלי oscillatory או Ops). הגל נחשב שיופקו על ידי קולטני אור, ב-הגל על ידי תאים של שכבת הגרעין הפנימית, וOps על ידי תאי amacrine 1.

בהתבסס על כוח הגירוי, תגובות להבזקים מאוד עמומים כינו את תגובת סף scotopic אפשרית. תגובת סף scotopic הוא הבין שיופקו מתאי הגנגליון ברשתית 2-4. שנית, ניתן להפריד פלאש ERG על ידי הסתגלות אור, או על ידי פרוטוקול שני פלאש מתואר להלן, למרכיבי rod- ומונע קונוס. בתנאי photopic, הגל הוא לא להבחין בחולדות, כי אוכלוסיית קונוס היא נמוכה, אבל Ops וב-גל הואברור 5. בפרימטים, רשתיות שיש אוכלוסיות חרוט גבוהות, שני rod- ומסלולי cone- ליצור גל לזיהוי 6.

שני מדדים שימושיים לעתים קרובות מופקים פלאש ERG הם אמפליטודות של a- וB-גלים, נמדדה כמו באיור 1, עם תגובות אופייניות הבזק מוצגות באיור 2. כאשר אוכלוסיית קולטי האור מצטמצמת, לדוגמא על ידי חשיפה למזיקה בהיר אור, כל הרכיבים של ERG מופחתים. התערבויות neuroprotective, כגון מרוחק נפשית מראש איסכמי (RIP), יכולות להיות מאומתות על ידי השמירה על אמפליטודות של a- וB-גלים (איור 3). לסיכום, הניתוח של ERG מאפשר השוואות בין בריא, האור הפגום ורשתית neuroprotected.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

פרוטוקול זה כדלקמן הנחיות טיפול בבעלי החיים של אוניברסיטת סידני.

1. אלקטרודות ביצוע

  1. לבנות את האלקטרודה החיובית (אחד שייצור קשר עם הקרנית) מאורך קצר (5 סנטימטרים) של חוט פלטינה 1-2 מ"מ קוטר. אופנה אותו ללולאה כמה מ"מ קוטר. חבר לולאה זה ליתרון קונבנציונלי, מספיק זמן כדי להגיע לשלב הקלט של המגבר שלך (ראה איור 4).
  2. לבנות את האלקטרודה השלילית (שילך בפיו של בעל החיים) באמצעות Ag / AgCl גלולה 1-2 מ"מ בקוטר, קשור גם ליתרון אמנה (ראה איור 4).
  3. כאלקטרודה התייחסות (שתיכנס לעכוזו של בעל החיים), להשתמש במחט מזרק נקייה (23 G), קשורה גם ליתרון של אורך המתאים (ראה איור 4).
  4. באופן אידיאלי, להשתמש בכבלים שלוש-עופרת מסופקים על ידי יצרני מכשיר, להתחבר שלוש אלקטרודות (U החיובי94; קרנית, שלילי → פה, התייחסות → עכוז) למגבר.

2. חיבור וכיול של גירוי האור וERG סט-אפ

  1. צור (או אתר) מעבדה הקלטה קטנה, אשר יכול להתבצע כהה. לצייד עם שניהם אור מעל לספסל עשה אדום או ראש-מנורה אדומה או או.
  2. השתמש מטר סוויטה דה לוקס כדי לאשר שהארת האור האדומה מגיעה עין של החולדה במהלך ההתקנה אינו עולה על לוקס 1.
    הערה: מסנן צפיפות ניטראלי יכול לשמש כדי להפחית מנורת בהירות והמקור של אור המנורה חייב במיוחד פולט אור אדום. adaption הכהה תהיה בסכנה אם מקורות אור פולטי אורכי גל נמוכים (גלוי).
  3. לאטום את כל האור התועה שנכנס למעבדה ההקלטה (זה לעתים קרובות דורש התמדה עם קלטת אטומה) ולהכין מסנן צפיפות ניטראלי (זה ניתן לרכוש בגיליונות) גדול מספיק כדי להתאים מעל, וכך עמום, כל מסך מחשב יהיה לך ב מעבדה.
    הערה: אור תועה והאור של מסך יש בם כדי לפגוע בהסתגלות כהה של העין החולדה.
  4. חבר את המגבר לחומרת רכישת נתונים. חבר מוביל חיובי, שלילי והתייחסות למגבר. ודא שהמחשב ויחידת אספקת חשמל Ganzfeld LED מחובר היטב למקור קרקע.
    הערה: מעבדות חלקם מתמחים נקודות הארקה, מחוברים לקרקע בניין; צינור מים הוא אלטרנטיבה יעילה.
  5. לכייל את מקור אור LED עם מד קרינת מחקר באיכות. תקן החיישן של המטר במצב שבו העין של החיה תהיה ממוקמת בניסוי.
  6. תכנית נוריות Ganzfeld להפעיל פרוטוקול ERG שדה מלא עם עליות צעד חכם באנרגיית הבזק, הבזק משך, הבזק חזרה וזמן בין הבזקים, מכונה מרווח interstimuls (ISI), הגדרות. לדוגמא פרוטוקול מלא שדה ראה טבלה 1.
    הערה: השדה מלא הבזקי ERG להגדיל מהבזקים עמומים חוזר על עצמו לbהבזקים תקין באופן חכם צעד. תכנית הבזק התאום הבאה על מפרוטוקול השדה המלא ומאפשרת בידוד של תגובות מוט וחרוט.

3. יום לפני הניסויים ERG

  1. Dark להסתגל Sprague-Dawley חולדות לשעה 12 לפני ההקלטה. זה נוח לעשות את זה במעבדה ההקלטה, פעם אור תועה כבר בוטל.

4. יום של ניסויים ERG

  1. לארגן את החיה להיות בעדינות מחוממת בעת ההקלטה. אנו משתמשים בפלטפורמת מתכת אור הבנויה כך שהראש של החיה יכול לנוח בנקודה הנכונה בכניסה לGanzfeld. יש פלטפורמת צינורות מובנים שבאמצעותו אנו לשאוב מים שחומם מראש ל 40 מעלות צלזיוס באמבט מים.
    הערה: הניסיון מראה שזה שומר על טמפרטורת הליבה של החיה על 37 מעלות צלזיוס.
  2. לשקול את העכברוש בתנאים חשוכים. שיא במשקל ולהפוך את קטמין הנכון (60 מ"ג / קילוגרם) ו xylazine (5 מ"ג / קילוגרם) במינון. לרסן את העכברוש gently ולהזריק חומר ההרדמה intraperitoneally.
  3. הערה זמן הזרקה. ברגע שבעלי החיים הוא לא מודע (בדרך כלל תוך 5 דקות) לבדוק לעומק של הרדמה על ידי צביטה קלה כרית רגל אחת, כדי לראות אם תגובת רפלקס היא הווה. עדיף לחכות עד שרפלקס זה הוא נעדר או חלש, לפני שתמשיך.
  4. החל טיפה אחת של אטרופין ועוד proxmethacaine לקרנית.
  5. לחתוך באורך 10 סנטימטר של חוט שחור. לעשות לולאה עם קשר פשוט ולהחליק את הלולאה מעל קו המשווה של העין. הדק אותו מעט; ההשפעה היא למשוך את גלגל העין מעט קדימה, עם לחץ מינימאלי. הדבר זה שומר את הקרנית ברורה מהעפעפיים.
  6. טיפות עיני קרבומר יחולו על פני השטח של הקרנית. ודא קרבומר נשאר על פני השטח של קרנית ולא לשפוך על העפעפיים או הפנים.
  7. הנח מצעים סופגים על גבי פלטפורמה מחוממת.
  8. עכברוש עמדה על המצעים, עם הראש במקום המומלץ בפתיחת Ganzfeld.
  9. int הכנסבדיקה טמפרטורת ernal לתוך פי הטבעת. בדיקה מאובטחת טמפרטורה בעמדה ידי מקליטה כבל בדיקה לזנב.
  10. הכנס את האלקטרודה ההתייחסות (מחט 23 G) תת עורי לרגל האחורית, ולהתחבר למגבר.
  11. מניחים את האלקטרודה השלילית (גלולה Ag / AgCl) מאובטח בפה. כדי למנוע זאת מחליקה את הפה, להדביק את ההובלה בחיבור למשטח יציב.
  12. מקם את האלקטרודה החיובית על המרכז של הקרנית. באמצעות micromanipulator, להבטיח כי האלקטרודה נוגעת הקרנית בעדינות.
  13. טמפרטורת גוף בדוק היא ב37.0-37.5 מעלות צלזיוס.
  14. ברגע שבעלי החיים ממוקם כראוי ואלקטרודות נמצאות במקום, לעטוף את ההתקנה כולה (Ganzfeld ובעלי חיים) עם חומר אטום (לשמר הסתגלות כהה). אנו משתמשים בבד שחור רך.
  15. ברכישת התוכנה להגדיר בקצב דגימה 2 קילוהרץ עם זמן אוסף של 100-1,000 msec עם 5 אלפיות השניים של דגימה מראש אוסף. הגדר את המסננים לעבור להקה ל1-1,000הרץ ולהבטיח דגימה שמופעל כדי לטעום את התקופה ~ 250 אלפיות השנייה הבא פלאש.
  16. בדוק את בסיס ההקלטה. זה צריך להיות חופשי של רעש מיותר, אבל להראות קצת רעש מגבר ותנודה בדרכי הנשימה.
  17. אם בסיס תערוכות רעש מיותר, להתחיל פתרון בעיות. רוב הבעיות הקשורות לזליגה בעמדת אלקטרודה, או הארקה. השתמש כלוב פאראדיי כדי להבטיח הקלטות הן ללא רעש מיותר.
  18. הפעל הבזק בדיקה, 0.4 יומן סקוטי cd.sm -2. גל ERG דומה לאיור 2A אמור להופיע. בתגובות האופייניות המעבדה שלנו לcd.sm -2 הבזק סקוטי 0.4 יומן הם (גל: -474 ± 39 μV וב-גל: 1,512 ± 160 μV, n = 11).
  19. לאפשר לבעלי חיים לכהים מחדש להסתגל במשך 10 דקות. זה נוח לשימוש 10 דקות אלה לבדוק שוב את נקודת ההתחלה.
  20. האישור הבא של אות יציבה להתחיל בהקלטה.
  21. בסוף פגישת ההקלטה, לבדוק שטמפרטורות הגוףיור נשמר. הסר אלקטרודות. מרח את קרם פולימר קרבומר לקרניות. לאפשר לבעלי החיים להתאושש על כרית חום עד שהוא נייד ופעיל באופן מלא, לפני שתחזור לדיור בעלי חיים.

5. איסכמיה מרחוק

  1. בצע איסכמיה המרוחקת בשני מכרסמים ער או anesthetised.
  2. אם בעל החיים מורדמים, להניח אותה על פלטפורמה מחוממת (לעיל) ולהחליק את שרוול מד לחץ דם על החלק העליון של האיבר האחורי-, ברור של הברך.
  3. אם בעלי החיים המשמשים לטיפולו, ניתן לבצע הליך זה ללא הרדמה; זה דורש שני אנשים. אדם אחד מרסן את החיה בעדינות והשנייה חל שרוול מד לחץ דם ומפעיל את מד לחץ דם.
  4. לבעלי חיים ער, להשתמש פיסת המגבת ~ 15 סנטימטרים x 30-50 סנטימטר לעטוף בעדינות את החיה, עם hindlimb אחד חינם. הנח את החיה על גבה על (נניח) זרוע השמאל, עם הראש שלו תחוב בין זרועו של בעל ופלג הגוף עליון, ומקוםהשרוול שכתואר.
  5. להוציא את האוויר השרוול ולהבטיח את שסתום לחץ האוויר סגור. לשאוב את השרוול עד 160 מ"מ כספית בבעלי החיים anesthetised, ועד 180 מ"מ כספית בבעלי חיים ער. זה עולה לחץ הסיסטולי (בדרך כלל 140 מ"מ כספית ו -160 מ"מ כספית בהתאמה).
  6. לשמור על לחצים אלה כנדרש, תוך שימוש במשאבת כף היד.
  7. לאחר הזמן המתוכנן לאיסכמיה (אנו משתמשים 2 תקופות של 5 דקות מופרדות על ידי 5 reperfusion דקות), להוציא את האוויר בלחץ השרוול על ידי שחרור שסתום לחץ האוויר.
  8. אשר את ההשפעה של איסכמיה מרחוק עם בדיקה טמפרטורת עור מחוברת לשודד. טמפרטורת עור בדרך כלל נופלת 32-30 מעלות צלזיוס, במשך 5 דקות ומתאוששת בreperfusion.

6. נזק קל

  1. ודא שחולדות נמצאות בלפני הלילה כהה מותאם, הליך נזק קל.
  2. בזמן המתאים הבא איסכמיה איבר (בניסויים שלנו ללא דיחוי), כל חיה ממוקמת ביחידות לתיבות פרספקס, wiמים ה ומזון במכלים מבוסס רצפה.
    הערה: נזק הנגרם אור יכול להתבצע רק בבעלי החיים לבקן.
  3. לעבור על אור לבן 1,000 לוקס-מכויל מראש בזמן סטנדרטי (בדרך כלל 09:00) ולשמור על מצב זה למשך 24 שעות.

7. ERG הפקת נתונים וניתוח

  1. לרכוש צורות גל בממוצע של ERG. במידת צורך, נכון לתחילת מחקר אינו אפס, על ידי חיסור.
  2. מדוד את משרעת של הגל (שהוצג באמצע לעוצמות גירוי גבוהות), כהפרש בין המתח הבסיסי והראשון (<30 אלפיות השני חביון) שוקת (איור 1).
  3. מדוד את משרעת ב-גל כהפרש בין המתח לשיא של הגל והחיובי של הגל הבא, בדרך כלל המתרחש בהשהיה של 80-100 אלפיות שני (איור 1).
  4. לבודד פוטנציאלי oscillatory באמצעות התמרת פורייה לסנן נתונים 60-235 הרץ, עם להקת מעבר 90 הרץ 7. אם נדרשה אות פוטנציאל oscillatory המבודדת אז יכולה להיות מופחתים צורת הגל מסונן כדי לאשר את זהותו של השוקת-הגל.
  5. הזמן הסמוי (חביון) של פסגות a- וב-גל יכול להיות גם אמצעי שימושי (איור 1). השתמש בהבזקי התאום לבודד את תגובת המוט. הפחת את תגובת קונוס (פלאש 2) מהתגובה המעורבת (פלאש 1) כדי לבודד את תגובת המוט (איור 2).
  6. לנרמל עוצמת אור בודדת-גל ואמפליטודות ב-גל (לאחר טיפול / פוסט-טיפול-בסיס) או בממוצע לקבוצות טיפול. עקומות עוצמת תגובת העלילה אמפליטודות הקבוצה וטעייה נגד הבזק אנרגיה.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

הפרוטוקול יכול לשמש למדידת תפקוד ראייה של רשתית המכרסמים in vivo. הגל, מדד לתפקוד קולטי האור, וב-הגל, מדד לתפקוד רשתית פנימי, הם מבואר באיור 1.

עליות-נשלט מוט ERG האות עם גירוי האור הגובר, כפי שמוצג באיור 2 א. הגל מתברר ב~ cd.sm סקוטי 0.4 יומן -2 ואת המשרעת של העליות-הגל עד רוויה בcd.sm סקוטי 2.5 יומן -2 (לא מוצג). הפרדיגמה הבזק התאום נעשתה שימוש כד...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

שיטת ERG הכהה מותאמת הבזק שתוארה לעיל היא שיטה אמינה להערכת תפקוד רשתית בחולדות. שני-הגל ו- B-הגל הופחתו נזק קל. מרחוק נפשית מראש איסכמי מיתנו ירידות מושרה נזק קלים ב- הגל ו- B-גל. שימור זה של תפקוד רשתית עולה כי נפשית מראש איסכמי מרחוק מושרה neuroprotection, מזכיר צורות אחרות של מגן נפשית מראש כגון היפוקסיה, איסכמיה ופעילות גופנית 8-10. אות ERG נרשמה נקבעה על ידי שלוש קבוצות של גורמים - הגדרת ההקלטה, פרמטרים של גירוי האור, והמצב של בעלי החיים.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

יונתן אבן היא מנהל CSCM Pty Ltd

תודות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

המחברים מודים לסיוע של הגב 'שרון Spana בניטור מכרסמים, טיפול וניסויים. תמיכה במימון דוקטורט כבר ניתן על ידי אוניברסיטה של ​​סידני ואוסטרלי מרכז מחקר למצוינות בחזון.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
מחשב
PC Powerlab, חומרת רכישה 4 ערוציםAD InstrumentsPL 35044רכישה של ERG
Animal Bio AmpAD InstrumentsFE 136מגבר
לתרשים מעבדהERG AD Instrumentsתוכנה לאיסוף אותות
Ganzfieldפתרונות פוטומטרייםFS-250Aגירוי אור
Ganzfield מערכת הפעלהפוטומטריים
מחקר רדיומטרטכנולוגיות אור בינלאומיותILT-1700כיול סדרת אור
לוקס מטרLX-1010Bלבדוק אילומנציה אור אדום
Excel
Microsoft חוטי עופרתAD מכשיריםחיבור חיובי, שלילי אלקטרודות קרקע למגבר
חוטי עופרת - תניןAD מכשיריםגנזפילד קרקע וחומרת רכישה למחשב
חוט פלטינה 95%A& E מתכותאלקטרודה פוסטיב
אלקטרודה פה Ag / AgCl גלולהSDRE205אלקטודה שלילית
26 G מחטBDקרקע אלקטודה
משאבת
אמבט
צינורות
מערכת שמיכה הומותרמית עם בדיקה גמישהHarvard Appartus507222F
אטרופין 1% עםבאוש & Mydriasis מקומי
Proxmethycaine 0.5% w/vBausch & הרדמהמקומית
דמעות ויסקו טיפות עינייםנוברטיסקרבומר פולימר
חוטנסוג עפעף
פינצטה
דבק רב פעמיBlu tacפנס ראש אדום עמום. אלקטרודות הדבקה
מצעים
קטמיל - קטמין 100 מ"ג/מ"ל - 50 מ"לTroy Laboratories Pty Ltdדיסוציאטיבי
קסיליום - קסילזין 100 מ"ג/מ"ל - 50 מ"לTroy Laboratories Pty Ltd
פתרונות מיםמיםLomb Lomb סופגיםמשקל להרפיית שרירים

מקורות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Arden, G. B., Heckenlively, J. Principles and practice of clinical electrophysiology of vision. , MIT Press. 139-183 (2006).
  2. Bui, B. V., Fortune, B. Ganglion cell contributions to the rat full-field electroretinogram. Journal of Physiology-London. 555 (1), 153-173 (2004).
  3. Fortune, B., et al. Selective ganglion cell functional loss in rats with experimental glaucoma. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 45 (6), 1854-1862 (2004).
  4. Alarcon-Martinez, L., et al. Short and long term axotomy-induced ERG changes in albino and pigmented rats. Molecular Vision. 15 (254-255), 2373-2383 (2009).
  5. Lyubarsky, A. L., et al. Functionally rodless mice: transgenic models for the investigation of cone function in retinal disease and therapy. Vision Research. 42 (4), 401-415 (2002).
  6. Bush, R. A., Sieving, P. A. A PROXIMAL RETINAL COMPONENT IN THE PRIMATE PHOTOPIC ERG A-WAVE. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 35 (2), 635-645 (1994).
  7. Liu, K., et al. Development of the electroretinographic oscillatory potentials in normal and ROP rats. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 47 (12), 5447-5452 (2006).
  8. Casson, R. J., Wood, J. P. M., Melena, J., Chidlow, G., Osborne, N. N. The effect of ischemic preconditioning on light-induced photoreceptor injury. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 44 (3), 1348-1354 (2003).
  9. Lawson, E. C., et al. Aerobic Exercise Protects Retinal Function and Structure from Light-Induced Retinal Degeneration. Journal of Neuroscience. 34 (7), 2406-2412 (2014).
  10. Grimm, C., et al. HIF-1-induced erythropoietin in the hypoxic retina protects against light-induced retinal degeneration. Nature Medicine. 8 (7), 718-724 (2002).
  11. Weymouth, A. E., Vingrys, A. J. Rodent electroretinography: Methods for extraction and interpretation of rod and cone responses. Progress in Retinal and Eye Research. 27 (1), 1-44 (2008).
  12. Bayer, A. U., Cook, P., Brodie, S. E., Maag, K. P., Mittag, T. Evaluation of different recording parameters to establish a standard for flash electroretinography in rodents. Vision Research. 41 (17), 2173-2185 (2001).
  13. Pugh, E. N., Lamb, T. D. AMPLIFICATION AND KINETICS OF THE ACTIVATION STEPS IN PHOTOTRANSDUCTION. Biochimica Et Biophysica Acta. 1141 (2-3), 111-149 (1993).
  14. Breton, M. E., Schueller, A. W., Lamb, T. D., Pugh, E. N. ANALYSIS OF ERG A-WAVE AMPLIFICATION AND KINETICS IN TERMS OF THE G-PROTEIN CASCADE OF PHOTOTRANSDUCTION. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 35 (1), 295-309 (1994).
  15. Mizota, A., Adachi-Usami, E. Effect of body temperature on electroretinogram of mice. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 43 (12), 3754-3757 (2002).
  16. Szabo-Salfay, O., et al. The electroretinogram and visual evoked potential of freely moving rats. Brain Research Bulletin. 56 (1), 7-14 (2001).
  17. Charng, J., et al. Conscious Wireless Electroretinogram and Visual Evoked Potentials in Rats. Plos One. 8 (9), (2013).
  18. Galambos, R., Juhasz, G., Kekesi, A. K., Nyitrai, G., Szilagyi, N. NATURAL SLEEP MODIFIES THE RAT ELECTRORETINOGRAM. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 91 (11), 5153-5157 (1994).
  19. Galambos, R., Szabo-Salfay, O., Szatmar, E., Szilagyi, N., Juhasz, G. Sleep modifies retinal ganglion cell responses in the normal rat. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 98 (4), 2083-2088 (2001).
  20. Guarino, I., Loizzo, S., Lopez, L., Fadda, A., Loizzo, A. A chronic implant to record electroretinogram, visual evoked potentials and oscillatory potentials in awake, freely moving rats for pharmacological studies. Neural Plasticity. 11 (3-4), 241-250 (2004).
  21. Huang, J. C., Salt, T. E., Voaden, M. J., Marshall, J. NON-COMPETITIVE NMDA-RECEPTOR ANTAGONISTS AND ANOXIC DEGENERATION OF THE ERG B-WAVE IN-VITRO. Eye (London). 5 (4), 476-480 (1991).
  22. Sasovetz, D. KETAMINE HYDROCHLORIDE - EFFECTIVE GENERAL ANESTHETIC FOR USE IN ELECTRORETINOGRAPHY. Annals of Ophthalmology. 10 (11), 1510-1514 (1978).
  23. Mojumder, D. K., Wensel, T. G. Topical Mydriatics Affect Light-Evoked Retinal Responses in Anesthetized Mice). Investigative Ophthalmology & Visual Science. 51 (1), 567-576 (2010).
  24. Fraunfel, F. t, Burns, R. P. ACUTE REVERSIBLE LENS OPACITY - CAUSED BY DRUGS, COLD, ANOXIA, ASPHYXIA, STRESS, DEATH AND DEHYDRATION. Experimental Eye Research. 10 (1), 19(1970).
  25. Calderone, L., Grimes, P., Shalev, M. ACUTE REVERSIBLE CATARACT INDUCED BY XYLAZINE AND BY KETAMINE-XYLAZINE ANESTHESIA IN RATS AND MICE. Experimental Eye Research. 42 (4), 331-337 (1986).
  26. Behn, D., et al. Dark adaptation is faster in pigmented than albino rats. Documenta Ophthalmologica. 106 (2), 153-159 (2003).
  27. Sugawara, T., Sieving, P. A., Bush, R. A. Quantitative relationship of the scotopic and photopic ERG to photoreceptor cell loss in light damaged rats. Experimental Eye Research. 70 (5), 693-705 (2000).
  28. Machida, S., et al. P23H rhodopsin transgenic rat: Correlation of retinal function with histopathology. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 41 (10), 3200-3209 (2000).
  29. Brandli, A., Stone, J. Remote Ischemia Influences the Responsiveness of the Retina. Observations in the Rat. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 55 (4), 2088-2096 (2014).
  30. Maccarone, R., Di Marco, S., Bisti, S. Saffron supplement maintains morphology and function after exposure to damaging light in mammalian retina. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 49 (3), 1254-1261 (2008).
  31. Hood, D. C., Birch, D. G. Assessing abnormal rod photoreceptor activity with the a-wave of the electroretinogram: Applications and methods. Documenta Ophthalmologica. 92 (4), 253-267 (1996).
  32. Robson, J. G., Frishman, L. J. The rod-driven a-wave of the dark-adapted mammalian electroretinogram. Progress in Retinal and Eye Research. 39, 1-22 (2014).
  33. Hood, D. C., Birch, D. G. A COMPUTATIONAL MODEL OF THE AMPLITUDE AND IMPLICIT TIME OF THE B-WAVE OF THE HUMAN ERG. Visual Neuroscience. 8 (2), 107-126 (1992).
  34. Wachtmeister, L. Oscillatory potentials in the retina: what do they reveal. Progress in Retinal and Eye Research. 17 (4), 485-521 (1998).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

בקש הרשאה לשימוש חוזר בטקסט או באיורים של מאמר JoVE זה

בקש הרשאה

תגיות

ElectroretinogramRetinal FunctionRemote Ischemic PreconditioningDark Adapted ERGA Wave B WaveKetamine Xylazine AnesthesiaGanzfeld StimulationCorneal Electrode PlacementLight Damage ModelPhotoreceptor Response Assessment

מאמרים קשורים