מאמר שיטה

השרשה ורישום האלחוטי electroretinogram ופוטנציאל חזותי מעורר אצל חולדות Conscious

DOI:

10.3791/54160

⸱

29 ביוני 2016

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Optometry and Vision Sciences, University of Melbourne, 2Pfizer Neusentis

במאמר זה

סיכום

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

אנחנו מראים נהלי השתלת הקלטה כירורגית למדוד אותות חזותיים אלקטרו מן העין (electroretinogram) והמוח (ויזואלי עורר פוטנציאל) בחולדות מודעות, וזה יותר מקביל למצב האנושי שבו הקלטות מתנהלות ללא מקעקעת הרדמה.

תקציר

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Electroretinogram שדה מלא (ERG) ופוטנציאל חזותי עורר (VEP) הם כלי שימושי כדי להעריך רשתית ויושרה מסלול ויזואלי הן במעבדה והן במסגרות קליניות. נכון לעכשיו, מדידות ERG ו VEP פרה-קליניות מבוצעות בהרדמה כדי להבטיח מיקומים אלקטרודה יציבים. עם זאת, עצם הנוכחות של הרדמה הוכחה לזהם תגובות פיסיולוגיות נורמליות. כדי להתגבר מקעקעת הרדמה אלו, אנו מפתחים פלטפורמה חדשנית assay ERG ו VEP בחולדות מודעות. אלקטרודות הושתלו תת-conjunctivally על העין כדי assay את ERG ו epidurally על קליפת הראייה למדוד את VEP. מגוון של משרעת ורגישות / פרמטרי תזמון assayed הוא ERG ו VEP להגדיל אנרגיות זוהרות. אותות ERG ו VEP מוצגים להיות יציב דיר לפחות השתלת 4 שבועות לאחר ניתוח. יכולת זו כדי להקליט אותות ERG ו VEP ללא הרדמה מקעקעת בשנות ה פרה-קלינייםetting אמור לספק תרגום מעולה נתונים קליניים.

מבוא

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ERG ו VEP הם פולשנית בכלי vivo להעריך את תקינות מסלולים רשתית וחזותיים בהתאמה בשנייה במעבדת המרפאה. התנאים המלאים שדה ERG מניב צורת גל מאפיין אשר יכול להיות שבור למטה לתוך רכיבים שונים, כאשר כל יסוד המייצג כיתות תאים שונים של 1,2 מסלול הרשתית. צורת גל ERG השדה מלא הקלאסיקה מורכבת של שיפוע שלילי ראשוני (א-גל), אשר הוכח לייצג חשיפה לאור קולטי אור פעילות פוסט 2-4. א-גל ואחריו גל חיובי משמעותי (ב-גל) המשקף פעילות חשמלית של הרשתית במרכז, בעיקר תאי ON-דו קוטבית 5-7. יתר על כן, אפשר לשנות אנרגיה זוהרת היתר עם ​​עוררות יתר מרווח לבודד חרוט מתגובות מוט 8.

המבזק VEP מייצג פוטנציאל חשמלי של גזע קליפת המוח החזותית בתגובה לגירוי אור ברשתית9,10. צורת גל זה יכול להיות שבור למטה לתוך רכיבים מוקדמים ומאוחרים, עם רכיב מוקדם המשקף את פעילות של נוירונים של מסלול retino-geniculo-striate 11-13 ומרכיב מאוחר המייצג עיבוד קליפת המוח מתבצע רבדים V1 שונים בחולדות 11,13. לכן מדידה בו זמנית של ERG ו VEP חוזרת הערכה מקיפה של המבנים המעורבים המסלול ויזואלי.

נכון לעכשיו, על מנת לרשום אלקטרופיזיולוגיה בחיות, הרדמה הוא מועסק כדי לאפשר מיקום יציב של אלקטרודות. נעשו ניסיונות למדוד ERG ו VEP בחולדות מודע 14-16 אך מחקרים אלה המועסקים התקנה קווית, אשר יכול להיות מסורבל שעלול להביא ללחץ חיה בהגבלת חופש התנועה של בעלי חיים התנהגות טבעית 17. עם התקדמות בטכנולוגיה אלחוטית כולל מזעור משופר וחיי סוללה, ניתן כיום ליישם גישה טלמטריה עבור ERGהקלטת ד VEP, ומקטינה את הלחץ הקשור קלטות קווים ושיפור כדאיים לטווח ארוך. לגמרי הפנימו השתלות יציבות של בדיקות טלמטריה הוכיחו להיות מוצלח לניטור כרוני של טמפרטורה, לחץ דם 18, פעילות 19 וכן electroencephalography 20. התפתחויות אלו בטכנולוגיה תסייענה גם עם דירות ויציבות של הקלטות מודעות, הגדלת השירות של הפלטפורמה ללימודים כרוניים.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

הצהרת אתיקה: ניסויים בבעלי חיים נערכו בהתאם לקוד האוסטרלי עבור הטיפול ושימוש בחיות למטרות מדעיות (2013). אתיקה אישור בעלי חיים הושג מוועדת האתיקה בעלי חיים, אוניברסיטת מלבורן. החומרים במסמך זה הנם עבור ניסויי מעבדה בלבד, ולא מיועדים לשימוש רפואי או וטרינרים.

1. אלקטרודות הכנה

הערה: משדר שלושה ערוץ משמש להשתלה כירורגית המאפשרת 2 ERG ו -1 הקלטת VEP להתנהל בו זמנית. השלוש אלקטרודות הפעילות פעילים ושלוש צריכות להיות מראש מעוצבות לתוך צורת טבעת לפני ההשתלה כדי לצרף את העין. למטרות זיהוי, היצרנית סגורה אלקטרודות פעיל לבן חצי, חצי נדני פלסטיק צבעוניים בעוד אלקטרודות פעיל מכוסים נדנים בצבע מלאים. האלקטרודה הקרקע (נדן פלסטיק שקוף) נותרת ללא שינוי. לכל אלקטרונ הפעיל ולא פעילהתנהגות האודות צעדים 1.1, 1.2, 1.3 ו -1.7.

  1. להתיר את האלקטרודה נירוסטת גדילים הכפולה עם שתי צבת הקנס הטתה.
  2. Trim אחד גדילי נירוסטה (כ 1 ס"מ מהקצה), השארת גדיל בודד כבר ישר הנותרים לעצב את האלקטרודה טבעת.
  3. מקפלים את גדיל נירוסטה יחיד בחזרה אל עצמו ולסובב, ויצרו טבעת חלקה על קצה האלקטרודה.
  4. עבור האופנתיים אלקטרודות פעיל ERG לולאה זה ~ 0.2 - 0.5 מ"מ קוטר על ידי סיבוב בסיס של הלולאה (לצורך המתואר כאן, לעצב שתי אלקטרודות לפעול בדרך זו כדי להקליט ERG משתי העיניים), ועבור ERG פעיל אלקטרודות VEP להפוך את בקוטר לולאה ~ 0.8 מ"מ קוטר (בדוגמה זו, לעשות את זה עבור אלקטרודה VEP פעיל אחד וכל שלוש אלקטרודות פעילה).
  5. הוק האלקטרודה VEP הפעילה המעגלית סביב בורג נירוסטה (בקוטר 0.7 מ"מ, אורך 3 מ"מ) כך האלקטרודה מונח כנגד ראש הבורג.
  6. hook 3 אלקטרודות הפעילים (2 ERG, 1 VEP) סביב בורג נירוסטה שני (בקוטר 0.7 מ"מ, אורך 3 מ"מ).
  7. משוך את שרוול הפלסטיק קדימה על הקצוות החדים של שני גדיל הנירוסטה להפחית גירוי.
  8. לעקר את משדרי טלמטריה על ידי השריית glutaraldehyde 2% במשך יותר מ -10 שעות ב כ 25 מעלות צלזיוס. לאחר מכן לשטוף את המשדר עם פעמים מלוחות 3 סטרילי.

2. משדר השרשה

  1. הכנת בעלי חיים
    1. לחטא את אזור הניתוח לפני ניסויים על ידי ניקוי עם אתנול 70%. החיטוי כל ציוד כירורגי לפני השימוש ולשמור ציוד כלורהקסידין כשאינו בשימוש במהלך הניתוח. כסה את בעל החיים עם וילון כירורגי במהלך הניתוח כדי לשמור על סביבה סטרילית. ודא כי כל הנסיינים לובשים מסכות כירורגיות, כפפות וחלוקים סטרילי.
    2. להשרות הרדמה עם 1.5 - 2% isoflurane, בקצב זרימה של 3 ליטר / דקה ו maintaiנד ב 1.5 - 2% ב -2 ליטר / דקה במהלך הניתוח. אשר עומק מספיק של הרדמה על ידי היעדר רפלקס דוושה על צובט את השריר בין האצבעות.
    3. לגלח אזור 40 מ"מ x 30 מ"מ מעל הבטן מלמעלה במפשעה אל עצם החזה.
    4. לגלח אזור 30 מ"מ x 20 מ"מ מעל המצח, האחוריים לעיניים קדמית האוזניים.
    5. לחטא את שני האזורים המגולחים. לקבלה באזור המצח לחטא עם 10% יוד povidone שלוש פעמים (להימנע משימוש חיטוי על בסיס אלכוהול לאזור ליד העין, להיות עקבי עם התקן העיסוק שנקבע על ידי האיגוד וטכנולוגים כירורגי). במהלך הבטן לחטא עם יוד povidone 10% ו 70% אתנול.
    6. החל 1 טיפה של proxymetacaine לקרנית עבור הרדמה מקומית נוספת.
    7. החל 1 טיפה של נתרן חומצה גליקולית תאית בקרנית כדי למנוע התייבשות של העיניים.
  2. השתלה ניתוחית
    1. ביצוע חתך 10 מ"מעל הראש לאורך קו האמצע האנכי בין האוזניים באיזמל מנתחים.
    2. ביצוע חתך 5 מ"מ על הבטן דרך שכבת העור לאורך קו האמצע מתחת עצם החזה.
    3. מנהרה באורך מתחת לעור צינורית בקוטר 5 מ"מ מן החתך בבטן אל החתך בראשו.
    4. להאכיל את חוטי אלקטרודות (3 פעילים ו -3 פעילה) של המשדר דרך הצינורית מבטן הראש.
    5. השאירו את האלקטרודה התייחסות עם בסיס משדר ולכסות את קצה האלקטרודה עם גזה ספטית.
    6. מכסים את טיפים אלקטרודה (3 פעילים ו -3 פעילה) עם גזה ספטית.
    7. אבטח את ראשו של החולדה פלטפורמה stereotaxic.
    8. הרחב את חתך מצח 30mm באורך עם מספרי כירורגיות.
    9. לחשוף אזור הניתוח על ידי חוזרת בה עור רפוי עם 2 תפרים (0 - 3) ב ~ 3 ו -9 בערב.
    10. לגרד את periosteum המכסה את הגולגולת באמצעות גזה מעוקרת לחשוף גבחת, תפרים למבדה ו קו אמצע.
    11. מקדחה שני חורים דרך הגולגולת על פעיל VEP (7 מ"מ הגחון גבחת 3 מ"מ לרוחב קו האמצע) ו פעיל (5 מקורי מ"מ עד גבחת על קו האמצע) הקואורדינטות stereotaxic.
    12. צרף VEP אלקטרודות פעיל פעיל עם ברגים נירוסטה מראש המצורפת (בקוטר 0.7 מ"מ, אורך 3 מ"מ) לגולגולת עם מברג קטן ~ 1 מ"מ עומק לתוך החורים התערובת של העוגיות. זה מעגן את הבורג עד העצם מבלי לפגוע ברקמת קליפת המוח הבסיסית.
    13. להשתיל אלקטרודות הפעילה ERG להשתמש 8 - תפר 0 לחזור בו העפעף העליון באופן זמני.
    14. כנס מתחת לעור צינורית 16 עד 21 G מאחורי העין דרך אל fornix הלחמית המעולה.
    15. הסר את המחט המנחה.
    16. להאכיל את האלקטרודה הפעיל באמצעות קטטר הפלסטיק המקוצר מן המצח כלפי העין. ואז להסיר את הקטטר פלסטיק.
    17. השתמש תפר זמני (0 - 8), אשר הוא מושחל דרך הלולאה אלקטרודה, כדי למנוע את ELECTrode מן חוזרת בה בחזרה אל המנהרה.
    18. ביצוע חתך 0.5 מ"מ על הלחמית מעולה בשעה 12, 1 מ"מ מאחורי לימבוס. השתמש דיסקציה קהה לחשוף את בלובן העין הבסיסית.
    19. השתל 8 - תפר 0 מיד מאחורי לימבוס על עובי חצי scleral - 0 או 9.
    20. הסר תפר זמני מן האלקטרודה פעיל ERG.
    21. לעגן את האלקטרודה ERG פעיל תפר עובי חצי scleral ידי קשירת 3 קשרים רצופים הבטחת קצה האלקטרודה ממוקם קרוב לימבוס.
    22. סגור את דש הלחמית באמצעות 1 עד 2 תפרים קטע (0 - 8 0 - 9). ודא הלחמית מכסה לחלוטין את האלקטרודה ERG כדי לשפר את נוחות.
    23. הסר תפר חוזרת בה העפעף.
    24. חזור על התהליך עבור העין הנגדית.
    25. החל ג'ל cyanoacrylate על הגולגולת כדי לאבטח את כל הברגים חלד וחוטי האלקטרודה. ודא אלקטרודות הפעילים ERG לא יימשכו חזקים מדי לפני ההבטחה כדי enתנועות עיניים מסוגלות.
    26. סגור את הפצע בראשו באמצעות שאינו נספג 3 - תפר 0.
    27. סובב מכרסם לחשוף באזור הבטן. להאריך את חתך עורי בבטן עד 40 מ"מ לאורך alba Linea עם מספרי כירורגיות.
    28. ביצוע חתך 35 מ"מ דרך קיר השריר הפנימי לחשוף את חלל הבטן הפנימי.
    29. שימוש בשני תפרים (0 - 3) לצרף את הגוף המשדר אל דופן הבטן הפנימית בצד ימין של בעל החיים. הימנע פנייה הכבדה.
    30. Loop אלקטרודה הקרקע ומאובטח הצורה הזו עם תפר (0 - 3). מניחים אותו חופשי צף בתוך חלל הבטן.
    31. סגור את הצפק באמצעות תפר מתמשך (0 - 3).
    32. סגירת החתך בעור באמצעות תפרים קטע (0 - 3).
  3. טיפול לאחר הניתוח
    1. צג את החיה עד שהוא שב להכרתו מספיק כדי לשמור שכיבה sternal. בית החיה לאחר הניתוח ביחידים.
    2. נהל carprאופן תת עורי על שיכוך כאבים (5 מ"ג / ק"ג) פעם ביום למשך 4 ימים.
    3. להוסיף אנטיביוטיקה דרך הפה מניעתי (Enrofloxin, 5 מ"ג / ק"ג) למי השתייה למשך 7 ימים שלאחר הניתוח.
    4. החל משחה אנטי דלקתית לאתרים חתך בעור כדי להפחית גירוי במשך 7 ימים לאחר הניתוח הראשון.

3. ניהול ERG ו VEP הקלטות בחולדות Conscious

  1. Dark להסתגל חיה במשך 12 שעות לפני הקלטות ERG ו VEP
  2. לנהל את כל המניפולציות ניסיון תחת תאורה אדומה עמומה (17.4 cd.m -2, λ מקסימום = 600 ננומטר)
  3. החל הרדמה מקומית (0.5% proxymetacaine) ו מתרחבים (0.5% tropicamide) טיפות לקרנית.
  4. מדריך המכרסם המודע לתוך עוצר בהתאמה אישית, ברור.
    הערה: אורכו של צינור פלסטיק זה יכול להיות מותאם כדי להתאים חולדות בגדלים שונים עם קוטר הכוללת קבוע ב -60 מ"מ. החלק הקדמי של המכשיר מחודד כדי למזער ראש מוvement ומכיל נקבים לאפשר נשימה רגילה. מול מחודד זה מאפשר יישור וייצוב של הראש והעיניים של חולדת הפתיחה בתחום Ganzfeld. ראוי לציין, כי המכרסם כבר התאקלם העוצר (3 עד 5 פעמים) לפני הניתוח.
  5. מניח את המכרסם מול קערת Ganzfeld בעיניים המיושרות עם פתיחת הקערה.
  6. הפעל משדר שכינה ידי העברת מגנט בתוך ~ 5 סנטימטר של המשדר. ודא כי המשדר הוא על ידי בדיקת נורית LED מעמד על בסיס המקלט.
  7. אסוף אותות על פני טווח של אנרגיות זוהרות (כלומר, -5.6 ל 1.52 יומן cd.sm -2) כפי שתואר לעיל 21. בקצרה, אותות ממוצעים יותר ברמות אור דימר (~ 80 חזרות) ופחות על האנרגיות זורחות הבהיר (~ 1 חוזר). בהדרגה להאריך את מרווח interstimulus מ 1 עד 180 שניות מ dimmest לרמת האור החזק.
  8. כדי לבודד את מוט ERGותגובות חרוטות לנצל פרדיגמה התאום פלאש 8. לדוגמה, ליזום שני הבהובים ב 1.52 יומן cd.sm -2 עם 500 מרווח בין גירוי msec שביניהם.
  9. כדי להקליט אותות VEP, 20 חזרות ממוצעות על האנרגיות זורחות הבהיר (כלומר, 1.52 יומן cd.sm -2, 5 שניות מרווח בין גירוי).
  10. כדי להעריך את יציבות השתל, אשר נבחנת על ידי השתנות האות לאורך זמן, לנהל הקלטות ERG ו VEP 7, 10, 14, 21 ו -28 ימים לאחר הניתוח.
  11. בעקבות תקופת הניסוי, להרדים חולדות באמצעות זריקה intracardial של pentobarbiturate (1.5 מ"ל / ק"ג) לאחר קטמין: הרדמה xylazine (12: 1 מ"ג / ק"ג).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

תגובת קולטי האור מנותחת על ידי התאמת גאוס בפיגור על הקצה המוביל של איבר היורד הראשוני של תגובת ERG ב -2 האנרגיות המאירות העליונות (1.20, 1.52 יומן CSM -2) עבור כל חיה, על פי המודל של כבש Pugh 22, שגובשה על ידי הוד ליבנה 23. נוסחא זו המחזירה משרעת פרמטר רגיש, (איור 1 ג ו 1D, בהתאמה). פונקציה היפרבולית הייתה מצוידת לתגובת האנרגיה המאירה של תאים דו קוטביים מוט עבור כל חיה, אשר גם חזיר ...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

בשל אופיו פולשנית של אלקטרופיזיולוגיה חזותית, קלטות ERG ו VEP בחולים אנושיים מתנהלות בתנאים מודעים רק דורשות שימוש בהרדמה מקומית עבור מיקום האלקטרודה. לעומת זאת, אלקטרופיזיולוגיה חזותי במודלים של בעלי חיים מתנהל כמקובל בהרדמה כללית כדי לאפשר מיקום האלקטרודה יציב על ידי ביטול תנועות עיניים וגוף מרצון. עם זאת, הרדמה כללית הנפוץ לשנות את תגובות ERG ו VEP כפי שמוצגת על ידי בפרסום הקודם שלנו 24 ואחרים 25-27. כמו פיתוח כזה של פלטפורמת ERG ו VEP מודעת במודל מכרסם מס...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

RG ו-RF הם עובדים של המממן המסחרי של מחקר זה (Pfizer Neusentis ו-Pfizer Global Research). MI היה עובד של Pfizer Global Research במהלך מחקר זה וכיום הוא עובד ב-Proteostasis Therapeutics (קיימברידג', ארה"ב).

תודות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

JC מבקש להודות לקרן הזיכרון של דיוויד היי, אוניברסיטת מלבורן על תמיכתה הכספית בכתיבת כתב יד זה. המימון לפרויקט זה ניתן על ידי מענק ARC Linkage 100200129 (BVB, AJV, CTON).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
ביו-אמפליפיירADInstrumentsML 135מגביר אותות ERG ו-VEP
נתרן קרבוקסימתיל צלולוז 1.0%אלרגןCAS 0009000-11-7שמור על הידרציה בקרנית במהלך הניתוח
קרפרופן 0.5%פייזר Animal Health GroupCAS 53716-49-7משככי כאבים לאחר ניתוח, ניתן עם מי מלח בהזרקה לחידוש נוזלים
כלורהקסדין 0.5%מעבדות אוריון27411, 80085חיטוי מכשיר כירורגי
מפעיל ג'ל ציאנואקרילטרכיבי RS473-439מייבש במהירות ג'ל ציאנואקרילט
ג'ל ציאנוקרילט רכיבי RS473-423קיבוע ברגים אל חלד לגולגולת
בור שינייםStorz Instruments, Bausch and LombE0824Aראש מקדחה מיניאטורי בקוטר ~ 0.7 מ"מ ליצירת חור קטן בגולגולת מעל כל חצי כדור להשתלת ברגי VEP
מקדחהבושדרמל 300מקדחה אוטומטית לטרפנינג
EnrofloxinTroy Laboratoriesפוסט אנטיביוטיקה מונעת surgey
Ganzfeld שילוב כדורפתרונות פוטומטריים בינלאומייםממריץ אור מעוצב בהתאמה אישית: קוטר 36 מ"מ, גודל צמצם 13 ס"מ
ספוגיות גזהMultigate Medical Products Pty Ltd57-100Bמייבש חתך כירורגי ומשטח גולגולת חשוף במהלך הניתוח
איזופלורן 99.9%Abbott Australasia Pty LtdCAS 26675-46-7שם הקניין: איזופלו(TM) אנאסתטיקה באינהלציה. חומר הרדמה בשאיפה בדרגה פרמצבטית מעורבב עם גז חמצן לניתוח השתלת אלקטרודות VEP
משחת KenacombAspen Pharma Pty Ltdלהפחתת גירוי וגירוד בעור לאחר הניתוח
Luxeon LEDsPhillips Lighting Co.לגירוי אור, עשרים נוריות LED של 5 וואט ואחת של 1 וואט, הנשלטות על ידי תוכנת סקופ
מחט (מקרו-כירורגיה)World Precision Instruments501959לתפירת ניתוחי בטן וראש, בשימוש עם 3 - 0 תפר, מחט עיניים, עיגול 5/16 חוד חנית גודל 1, 15 מ"מ
מחזיק מחט (מקרו-כירורגיה)World Precision Instruments500224להחזיק מחט במהלך ניתוח
בטן וראשמחזיק מחט (מיקרו-כירורגיה)מכשירי דיוק עולמיים555419NTלהחזקת מחט במהלך ניתוח עיניים
קטטר אופטיבהסמיתס מדיקל אינטרנשיונל בע"מ16 או 21 Gמדריך אלקטרודות פעילות בקרנית מהגולגולת ללחמית
פובידון יוד 10%סאנופי-אוונטיסCAS 25655-41-8: בטדין, חיטוי להכנת העור המגולח לניתוח 10%, 500 מ"ל
מערכת רכישת נתונים PowerlabADInstrumentsML 785רכוש אות ממשדר טלמטריה, משויך לממיר נתוני טלמטריה
Proxymetacaine 0.5%Alcon Laboratories CAS 5875-06-9משכך כאבים עיני מקומי
ריסוןעשויחזית המסנן מחודדת כדי למזער את תנועת הראש, ניתן לכוונן את האורך כך שיתאים לאורך חולדה שונה, הקוטר הכולל הוא 60 מ"מ.
להב סקייפלR.G. ציוד רפואיSNSM0206לחתך כירורגי
מספריים (מקרוכירורגיה)מכשירי דיוק עולמיים501225לחיתוך רקמות על הבטן והמצח
מספריים (מיקרו-כירורגיה)מכשירי דיוק עולמיים501232לנתח את הלחמית לחיבור אלקטרודות
תוכנת היקףADInstrumentsגרסה 3.7.6מפעיל בו זמנית את הגירוי באמצעות מערכת ADI Powerlab ואוסף נתונים
ShaverOsterGolden A5פרוות גילוח מאזורי ניתוח
ברגי סטריל אל חלד MicroFastenersL001.003CS304קוטר פיר 0.7 מ"מ, אורך 3 מ"מ 
מסגרת סטריאוטקסיתדיוויד קופףדגם 900מכשיר סטריאוטקסי של בעלי חיים קטנים לאיתור סימני ההשתלה על הגולגולת
וילון כירורגיאספקה רפואית חיוניתGM29-612EEהבטח סביבה סטרילית במהלך הניתוח
תפר (מקרוכירורגיה)מחטים רפואיות נינבו3-0לתפירת ניתוחי בטן וראש, משי סטרילי קלוע, 60 ס"מ
מחט תפר ( מיקרו-כירורגיה)מחטים רפואיות נינבו8-0 או 9-0לניתוחי עיניים כולל, תפירת אלקטרודה לסקלרה וסגירת פצע הלחמית, תפר ניילון, 3/8 מעגל 1 ופעמים; 5, 30 ס"מ
ממיר נתוני טלמטריה DataSciences InternationalR08מאפשר לאות טלמטריה להתממשק עם תוכנת איסוף נתונים
מטריצת חילופי נתונים טלמטריהDataSciences Internationalאוספת נתונים ממשדרים, בהתאמה למקלט
מקלט נתוני טלמטריהDataSciences InternationalRPC-1מקבל נתוני טלמטריה ממשדר
טלמטריה משדר DataSciences משדרF50-EEE3 ערוצים
טרופיקמיד 0.5%מעבדות אלקון פינצטה להרחבת הקשתית
(מקרו-כירורגיה)World Precision Instruments500092מניפולציה של רקמות במהלך ניתוחי בטן וראש
פינצטה (מיקרו-כירורגיה)World Precision Instruments500342מניפולציה של רקמות במהלך ניתוחי עיניים
שם קנייןחתך טלמטריה בינלאומי

מקורות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Frishman, L. J. Origins of the Electroretinogram. , The MIT Press. (2006).
  2. Granit, R. The components of the retinal action potential in mammals and their relation to the discharge in the optic nerve. J Physiol. 77, 207-239 (1933).
  3. Brown, K. T. The eclectroretinogram: its components and their origins. Vision Res. 8, 633-677 (1968).
  4. Brown, K. T., Murakami, M. Biphasic Form of the Early Receptor Potential of the Monkey Retina. Nature. 204, 739-740 (1964).
  5. Kline, R. P., Ripps, H., Dowling, J. E. Generation of b-wave currents in the skate retina. Proc Natl Acad Sci U S A. 75, 5727-5731 (1978).
  6. Krasowski, M. D., et al. Propofol and other intravenous anesthetics have sites of action on the gamma-aminobutyric acid type A receptor distinct from that for isoflurane. Mol Pharmacol. 53, 530-538 (1998).
  7. Stockton, R. A., Slaughter, M. M. B-wave of the electroretinogram. A reflection of ON bipolar cell activity. J Gen Physiol. 93, 101-122 (1989).
  8. Nixon, P. J., Bui, B. V., Armitage, J. A., Vingrys, A. J. The contribution of cone responses to rat electroretinograms. Clin Experiment Ophthalmol. 29, 193-196 (2001).
  9. Weinstein, G. W., Odom, J. V., Cavender, S. Visually evoked potentials and electroretinography in neurologic evaluation. Neurol Clin. 9, 225-242 (1991).
  10. Sand, T., Kvaloy, M. B., Wader, T., Hovdal, H. Evoked potential tests in clinical diagnosis. Tidsskr Nor Laegeforen. 133, 960-965 (2013).
  11. Brankack, J., Schober, W., Klingberg, F. Different laminar distribution of flash evoked potentials in cortical areas 17 and 18 b of freely moving rats. J Hirnforsch. 31, 525-533 (1990).
  12. Creel, D., Dustman, R. E., Beck, E. C. Intensity of flash illumination and the visually evoked potential of rats, guinea pigs and cats. Vision Res. 14, 725-729 (1974).
  13. Herr, D. W., Boyes, W. K., Dyer, R. S. Rat flash-evoked potential peak N160 amplitude: modulation by relative flash intensity. Physiol Behav. 49, 355-365 (1991).
  14. Guarino, I., Loizzo, S., Lopez, L., Fadda, A., Loizzo, A. A chronic implant to record electroretinogram, visual evoked potentials and oscillatory potentials in awake, freely moving rats for pharmacological studies. Neural Plast. 11, 241-250 (2004).
  15. Szabo-Salfay, O., et al. The electroretinogram and visual evoked potential of freely moving rats. Brain Res Bull. 56, 7-14 (2001).
  16. Valjakka, A. The reflection of retinal light response information onto the superior colliculus in the rat. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 245, 1199-1210 (2007).
  17. Lapray, D., Bergeler, J., Dupont, E., Thews, O., Luhmann, H. J. A novel miniature telemetric system for recording EEG activity in freely moving rats. J Neurosci Methods. 168, 119-126 (2008).
  18. Lim, K., Burke, S. L., Armitage, J. A., Head, G. A. Comparison of blood pressure and sympathetic activity of rabbits in their home cage and the laboratory environment. Exp Physiol. 97, 1263-1271 (2012).
  19. Nguyen, C. T., Brain, P., Ivarsson, M. Comparing activity analyses for improved accuracy and sensitivity of drug detection. J Neurosci Methods. 204, 374-378 (2012).
  20. Ivarsson, M., Paterson, L. M., Hutson, P. H. Antidepressants and REM sleep in Wistar-Kyoto and Sprague-Dawley rats. Eur J Pharmacol. 522, 63-71 (2005).
  21. He, Z., Bui, B. V., Vingrys, A. J. The rate of functional recovery from acute IOP elevation. Invest Ophthalmol Vis Sci. 47, 4872-4880 (2006).
  22. Lamb, T. D., Pugh, E. N. A quantitative account of the activation steps involved in phototransduction in amphibian photoreceptors. J Physiol. 449, 719-758 (1992).
  23. Hood, D. C., Birch, D. G. Rod phototransduction in retinitis pigmentosa: estimation and interpretation of parameters derived from the rod a-wave. Invest Ophthalmol Vis Sci. 35, 2948-2961 (1994).
  24. Charng, J., et al. Conscious wireless electroretinogram and visual evoked potentials in rats. PLoS Onez. 8, e74172(2013).
  25. Galambos, R., Szabo-Salfay, O., Szatmari, E., Szilagyi, N., Juhasz, G. Sleep modifies retinal ganglion cell responses in the normal rat. Proc Natl Acad Sci U S A. 98, 2083-2088 (2001).
  26. Meeren, H. K., Van Luijtelaar, E. L., Coenen, A. M. Cortical and thalamic visual evoked potentials during sleep-wake states and spike-wave discharges in the rat. Electroencephalogr Clin Neurophysiol. 108, 306-319 (1998).
  27. Nair, G., et al. Effects of common anesthetics on eye movement and electroretinogram. Doc Ophthalmol. 122, 163-176 (2011).
  28. Amouzadeh, H. R., Sangiah, S., Qualls, C. W. Jr, Cowell, R. L., Mauromoustakos, A. Xylazine-induced pulmonary edema in rats. Toxicol Appl Pharmacol. 108, 417-427 (1991).
  29. Charng, J., et al. Retinal electrophysiology is a viable preclinical biomarker for drug penetrance into the central nervous system. J Ophthalmol. , (2016).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

בקש הרשאה לשימוש חוזר בטקסט או באיורים של מאמר JoVE זה

בקש הרשאה

תגיות

מאמרים קשורים