Method Article

השרשה של תאורה אוטומטית, Culturing, מערכת דגימה עבור יישומים מיקרוביאלית optogenetic

DOI:

10.3791/54894

February 19th, 2017

In This Article

Summary

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

עיצבנו מנגנון culturing רציפה לשימוש עם מערכות optogenetic להאיר תרבויות של חיידקים ותאים תמונה בקביעות הקולחים עם מיקרוסקופ הפוכה. Culturing, הדגימה, ההדמיה, וניתוח התמונה באופן אוטומטי לחלוטין, כך תגובות דינמיות תאורה ניתן למדוד על פני כמה ימים.

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

מערכות optogenetic לנצל חלבונים גנטיים בקידוד משני קונפורמציה בתגובת אורכי גל מסוים של אור לשנות תהליכים תאיים. יש צורך culturing ומדידת מערכות המשלבות מתוכנת תאורה וגירוי של מערכות optogenetic. אנו מציגים פרוטוקול לבנייה באמצעות מנגנון culturing רציף להאיר תאים מיקרוביאליים עם מינונים מתוכנים של אור, ובאופן אוטומטי לרכוש ולנתח תמונות של תאי השפכים. המבצע של מנגנון זה בתור chemostat מאפשר קצב צמיחת הסביבה התאית להיות תחת פיקוח הדוק. השפכים של תרבית תאים הרציפה ידגמו בקביעות התאים הם צלמו על ידי מיקרוסקופ רב ערוצית. Culturing, הדגימה, ההדמיה, וניתוח התמונה באופן אוטומטי לחלוטין, כך תגובות דינמיות את עוצמת הקרינה ומורפולוגיה הסלולר של תאים שנדגמו הקולחים התרבות נמדדות לאורך ימים מרוביםללא קלט משתמש. אנו להדגים את התועלת של מנגנון culturing זה על ידי גרימת ייצור חלבון דינמית זן של שמר אפייה מהונדס עם מערכת optogenetic שמפעילה שעתוק.

Introduction

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

מערכות optogenetic להשתמש באור כדי לשלוט רשימה הולכת וגדלה של תהליכים תאיים כולל ביטוי גנים, 1, 2, 3, 4, לוקליזציה חלבון 5, פעילות חלבון 6, 6, 7, 8 חלבון מחייב, 8, 9, 10 ו פירוק חלבונים. 11 שיטה culturing תאים בסביבה מבוקרת עם גירוי אופטי ובעצם למדידת תגובתם על לוחות זמנים ביולוגיים רלוונטיים יש צורך לנצל את הפוטנציאל של כלים אלה למחקר בביולוגיה של תא וביוטכנולוגיה. השיטה שלנו מנצלת chemostasis לשמור על שיעור צמיחת תאים מתמיד בתוך מוּרבָּך, AEמדורג, וכלי culturing זכוכית בקרת טמפרטורה 12, 13, כי הוא חשוף תאורה מתוכנת. אנו תאים בודדים תמונה קולח התרבות עם מיקרוסקופ הפוכה כדי למדוד את התגובה של תרבות תאורה מתוכנת. Culturing, הדגימה, ההדמיה, וניתוח התמונה באופן אוטומטי לחלוטין, כך עוצמת הקרינה והמורפולוגיה הסלולר של תרבית תאים בשפכים יכולים להימדד לאורך ימים מרובים ללא קלט משתמש.

יכול להיות מיושם פרוטוקול זה ברוב המעבדות מכירות תרבות מיקרוסקופית תא גדלים, ואת המנגנון המשמש הוא זול עשויים רכיבים זמינים. כלי culturing שקוף ממוקם מעל מטריצה של דיודות פולטות אור (LEDs) מסוגל פולטות 1 μW / 2 ס"מ -10 mW / cm 2 של אור. חיידקים גדלים כלי culturing ברציפות; אחד משאבת peristaltic משמשת להוספת תקשורת בביתשיעור דילול, אחר משמש לסגת תרבות בקצב פחות המיקרוסקופ, וההבדל בורח דרך פורקן הצפה. כרית חימום שומרת על הטמפרטורה. האוויר נשאב ללא הרף לתוך כלי culturing כדי לשמור על לחץ חיובי כמו גם לערבב לאוורר את התרבות. פרט משאבת אוויר, חשמל למכשירים אלה מוסדר על ידי מיקרו כי גם מקבל קלט מתוך מדחום ומחשב שולחני מחובר. תרבות תא השפכים נשאבת למכשיר microfluidic על הבמה של מיקרוסקופ הפוכה. ללא פלורסנט ותמונות פלורסנט נרכשים באופן אוטומטי. התאמתי את התמונות מאופיינות אלגוריתם מאתר בכל תא כאזור של העניין (ROI) ומודד את המאפיינים של כל ROI.

כדי להדגים יישום של פרוטוקול זה, מדדנו את התגובה לעוצמות אור השונה של תאי שמר אפייה מהונדסות עם על אחריות כחולה-אורve מערכת optogenetic השולטת שעתוק של חלבון פלואורסצנטי. ס cerevisiae, הידוע בכינויו של שמרים בייקר, נבחר משום מערכות optogenetic מרובות לשליטת ביטוי גנים במערכת זו כבר קיימות 14, 15, 16. יתר על כן, אורגניזם מודל זה משמש בדרך כלל עבור מחקרים במערכות ביולוגיה 17 וכתוצאה שלדת יישומים ביוטכנולוגיים 18, 19, 20. תוצאות הנציג שלנו מראות כי פרוטוקול זה יכול לשמש כדי לשלוט שעתוק של תרבות לאורך כמה ימים על ידי בעוצמות משתנות קלט אור ומדידת הייצור של כתב ניאון.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

figure-protocol-1

איור 1: מנגנון culturing הרציף. דיאגרמה פשוטה זו מראה כיצד המנגנון צריך להתגודד כשהיא משמשת לתרבות, להאיר, ולמדוד תכונות אופטיות של החיידקים. אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.

figure-protocol-2
איור 2: מבט כולל של הפרוטוקול. השלבים באזור המוצל יש לחזור בכל פעם הפרוטוקול משמש. שליטה לולאה סגורה היא 34 אפשרי, אך אינו מיושם פרוטוקול זה.

1. להרכיב את המדחום אל ללוחות

-page = "1"> figure-protocol-3
איור 3: חיבורים לקרוא ערכי מדחום. תרשים זה מראה כיצד המדחום הדיגיטלי צריך להיות מחובר ל- PCB כך המיקרו יכול לקבל משוב כדי לשלוט על הטמפרטורה של התרבות. אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.

  1. הלחמת הקרקע, הנתונים, וקווי מתח חיוביים של המדחום הדיגיטלי כדי מיוחס להם דרך נקביים מסומנת "GD + V."
  2. קליפ את פין אחד מן נגיחה 3 פינים נקבה וקוצצים את הפינים 2 הנותרים עם קוצץ תיל, כך שהוא יכול להתאים לשתי דרך נקבי שכותרתו "R2" ולא לחסום את המיקרו-בקר. הלחמה זה במקום. חבר את שתי סיכות מולחמות על ידי החדרת נגד 4.7 קילו-אוהם בכותרת הסיכה.

2. חבר את כוח Conרכיבי trol אל ללוחות

figure-protocol-4
איור 4: חיבורים לשלוט בצריכת חשמל של כרית החימום. טבלה זו מראה כיצד חלקי PCB אבזר צריכים להתגודד כדי לשלוט כוח כרית החימום. החלקים לשלוט משאבות פריסטלטיות מחוברים באופן דומה. ראוי לציין, כי הרכיבים עבור המדחום הוסרו לבהירות. אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.

  1. חתוך 1 ס"מ מהפינים של חמש כותרות 3 פינים נקבה. הלחמה אלה לעמדות על המעגלים המודפסים (PCB) מסומן "# 1", "# 2", "# 3", "מס '4," ו "CB א"
  2. חתוך 1 ס"מ מהפינים של נגיחה 6 פינים ו 8 פינים נקבה. הלחמת לוואי אלה על ידי צדהטור של דרך-חורים שכותרתו K1 דרך K14.
  3. חבר את כרית חימום על המעגלים.
    1. הכנס את הקצוות של נגד 100 קילו-אוהם ב דרך נקבי שכותרתו K1 ו- K2 על PCB. הכנס טרנזיסטור אפקט שדה metal-oxide-מוליך למחצה (MOSFET) לתוך המיקום מסומן 1 # על PCB, עם התווית של MOSFET הפונה לכיוון K1 דרך K14 דרך חורים כך סיכת המקור קרובה אל "# "תווית, והפין לטמיון נמצאת במרחק מרבי" תווית # ".
    2. חותכים את קו הקרקע של כבל החשמל (DC) זרם חשמלי קבוע 5 V ולחבר אותו J2. חבר את קו הקרקע של כרית החימום כדי J1. חבר K3 להצמיד 3 עם נגד 1 קילו-אוהם. נוכחי צריך עכשיו רק לזרום J1 כדי J2 כאשר פינים 3 מוגדר + 5V.z
      הערה: פונקציות סט הנגד / MOSFET כמתג המאפשר לזרם לזרום מן J1 פינים J2 כאשר פינים 3 של מיקרו מוגדר +5 V.
  4. לְחַבֵּרמשאבת peristaltic האיטית.
    1. הכנס את הקצוות של נגד 100 קילו-אוהם ב דרך נקבי שכותרתו K4 ו K5 על PCB. הכנס MOSFET למצב מסומן 2 # על PCB, עם התווית של MOSFET הפונה לכיוון K1 דרך K14 דרך חורים כך סיכת המקור קרובה תווית "#", והפין לטמיון נמצא במרחק מרבי "#" תווית.
    2. חותך את קו הקרקע של כבל החשמל של 12 וולט DC של משאבת peristaltic האיטית. חבר את משאבת peristaltic מול קץ J3 ואת יבלת הקיר פונה קץ J4. חבר K6 להצמיד 4 עם נגד 1 קילו-אוהם. נוכחי צריך והיום הם קמים רק J3 כדי J4 כאשר 4 פינים מוגדר +5 V.
  5. חבר את המשאבה peristaltic מהר
    1. הכנס את הקצוות של נגד 100 קילו-אוהם ב דרך נקבי שכותרתו K7 ו K9 על PCB. הכנס MOSFET למצב מסומן 3 # על PCB, עם התווית של MOSFET הפונה לכיוון K1 דרך K14 דרך החורים של o כי סיכת המקור קרובה תווית "#", ופין ניקוז קליעה מהתווית "#".
    2. חותכים את קו הקרקע של כבל החשמל של 12 וולט DC של המשאבה peristaltic מהר. חבר את משאבת peristaltic מול קץ J5 ואת יבלת הקיר פונה קץ J6. חבר K9 להצמיד 5 עם נגד 1 קילו-אוהם. נוכחי צריכים והיום הם קמים רק J5 כדי J6 כאשר סיכה 5 מוגדרת +5 V.

3. חבר את מטריקס LED אל ללוחות

figure-protocol-5
איור 5: חיבורים לשלוט מטריקס LED. תרשים זה מראה כיצד מטריקס LED צריך להיות מחובר ל- PCB. הוא גם מראה כי PCB יכול להערם על מיקרו-בקר. ראוי לציין, כי הרכיבים עבור המדחום לשליטת כוח DC למכשירים אחרים הוסרו לבהירות.es / ftp_upload / 54,894 / 54894fig5large.jpg "target =" _ blank "> לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.

  1. הלחם את 6 פינים, 10 פינים, ושתיים כותרות הסיכה נשיות 8 הפינים לתוך דרך החורים בצדדים של PCB כזה שהוא יכול להיערם על גבי מייקרו.
  2. הלחמת 100 nF ואת 10 קבלי μF לעמדות המסומנות שלהם על PCB, וציינה כי הקוטב השלילי של 10 קבל μF (הספקה הקצרה) צריך להיות מחובר לאינטרנט-החור מסומן עם סימן שלילי.
  3. הלחם את הנהג LED אל 2 על ידי 12 סט של דרך-חורים, עם הכניסה על הנהג הרחק דרך נקבי שמורות עבור המטריצה ​​LED.
  4. הלחמה 2 טורים של כותרות פין זכר אל דרך-חורים המיועדים המטריצה ​​LED, וקוצצים את הקצוות של אלה מתחת לאמצעי כזה שהם לא יקשו על המיקרו-בקר. חבר אלה שתי רצועות 8-חוט של חוטי מגשר נקבה / נקבה. חבר קבוצה שנייה של גבריםכותרות סיכה אל הקצה השני של חוטי המגשר.
  5. הכנס את מטריקס LED מעל החציון של קרש החיתוך, ולאחר מכן הכנס את הסט השני של כותרות סיכה כדי העמודים משני צדי המטריצה. ודא כי חיבורים חשמליים זהים אם המטריצה ​​LED היה מחובר ישירות ל- PCB עם הצד שכותרתו של המטריצה ​​המתאים בעמודה שכותרתה של דרך-חורים.
  6. קליפ את פין אחד מן נגיחה 3 פינים נקבה וקוצצים את הפינים 2 הנותרים עם קוצץ תיל, כך שהוא יכול להתאים לשתי דרך נקבי שכותרתו "R1" ולא לחסום את המיקרו-בקר. הלחמה זה. חבר את שתי סיכות מולחמות על ידי החדרת נגד 1 קילו-אוהם בכותרת הסיכה.
    הערה: כלי culturing יהיה להערם מעל המטריצה ​​LED. אם סרטי החוט לחסום את כלי השיט, לקזז אותם מן מטריקס. לאחר מכן, השתמש חוט גרעין מוצק כדי לגשר על הפער בין פיני מטריקס ואת סיכות סרט חוט, כך את החיבורים החשמליים לא CHange.

4. התקן תוכנה ולהתחבר חומרה

  1. סטאק את PCB על מיקרו-בקר.
  2. עקוב אחר הקישורים ברשימת החומרים כדי להוריד את סביבת הפיתוח המשולבת (IDE) ואת קוד מותאם אישית עבור המיקרו-בקר.
  3. חבר את המיקרו-בקר למחשב מיקרוסקופ באמצעות אפיק טורי אוניברסלי AB (USB) כבל. לקמפל ולהעלות את הקוד המותאם אישית חזרה אל המעבד.
  4. הורד מיקרו-מנהל 21, 22 ופיג'י 23. הגדר מיקרו-מנהל בתור תוסף פיג'י ידי כל העתקת קבצים ".dll", בספריית "mmplugins", ואת ספריית "mmautofocus" מספריית שבו מנהל-מיקרו שהורד לתוך ספריית "Fiji.app". כמו כן, העתק את "plugins / מיקרו-מנהל" המדריך לתוך ספריית "Fiji.app/plugins".
  5. הורד את int קובץ "BioreactorController.jar"o בספרייה "Fiji.app/mmplugins".
  6. מנהל-מיקרו להרחיב מפיג'י> Plugins> מיקרו-מנהל> סטודיו מיקרו-מנהל. השתמש חומרה אשף תצורת כדי להגדיר את התוכנה כדי לשלוט המיקרוסקופ. כלול את המכשיר "FreeSerialPort" באשף עם תווית של היציאה שאליה כבל USB AB מחובר.

5. הפוך ולאפיין את מארז אור הוכחה עבור כלי Culturing

  1. סטאק ארובות IC שלוש 8 פינים כאבני בניין על קרש החיתוך בכל פינה של מטריקס LED כך כלי culturing יכול לנוח עליהם מעל מטריקס.
  2. הדק חלק מן נייר דיפוזיה מתחת לשכבה העליונה של השקעים, כך האור מכה את כלי culturing ממטריצת LED הוא מפוזר.
  3. לגזור שלוש 8 "ב -6" מנות של קצף שחור. לחתוך בה חור כי הוא באותו הגודל כמו קרש החיתוך האלקטרוני (2.3 "x 3.5") מבפנים של TW הראשוןo וחלק כי הוא בגודל של המלבן שנעשה על ידי ארובות IC (0.9 "x 1.8") מבפנים של השלישי. מחסנית שכבות אלה על מטריקס LED כך את השכבה האחרונה המכילה את הצמצם 0.9 "x 1.8" טמונה גם עם החלק העליון של ארובות IC, ומקיף את מטריקס LED.
  4. חותכים גיליון נוסף של קצף שחור לשניים כדי לעשות מלבן 6 "ב -24". מרדדים זה לתוך עמוד חלול של קצף שחור כי כלי culturing יכול להשתלב עם מקום צינורות וחוטי חשמל, כך שהוא יהיה תרמית אופטית לבודד את כלי culturing.
  5. מרכז את העמודה החלולה של קצף השחור מעל מטריקס LED, ולסמן את הגבול של הטור על שכבת הקצף השחור מתחתיה. גבול זה יציין איפה שהוא צריך להיות מרוכז בעתיד.
  6. לגזור חלק 3 "x 3" של קצף שחור. השתמש באפשרות זו מאוחר יותר כמו מכסה שיכול להיות מודבק לחלק העליון של העמודה כדי לחסום את האור החיצוני.
  7. חבר את חיישן כוח פוטו-דיודה כדי th דואר culturing כובע של כלי עם קלטת, לצרף את הכובע, והכניסו את כלי culturing במארז.
  8. בשנת מיקרו-מנהל, ללכת Plugins> בקר bioreactor. גדר מטריקס להאיר על קבוצת משנה של הטווח של עוצמות אפשריות ב 30 מרווחי ים.
  9. רשמו את עוצמות האור כמובא קונסולת מד הכוח מחובר חיישן כוח. מדידות אלו יאפשרו את עוצמת בפועל של האור להיות ידוע מתי מספר נוריות כי דולקים ואת הנוכחי ברוחב-מווסתת דופק (PWM) נוריות אלה מוגדר.

6. מכינים את כלי Culturing

figure-protocol-6
איור 6: חיבורי כלי. טבלה זו מראה שהקנקן צינורות של המנגנון צריך להיות מחובר בטרם autoclaved.blank "> לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.

  1. סמן את הגובה המתאים לכל תוספת 2 מ"ל של נוזל בטווח של 10 מ"ל 30 מ"ל ב כלי culturing. הכנס 10 מ"ל מים סטריליים deionized, סמן את מפלס המים, להוסיף 2 מ"ל, סמן את מפלס המים, וחזור עד לרמה 30 מ"ל מסומן. מכסה את הסימונים עם קלטת ברורה, כך שהם אינם מוסרים בקלות, ועושה את הנוזל.
  2. מניחים את הקצה הארוך של נמל אלומיניום באמצעות אטם סיליקון, לתוך כלי culturing. בורג על הכובע.
  3. מכסים אחד לשקע יציאת אלומיניום קצר עם 1/16 "צינורות סיליקון ID. חבר את הקצה הדיסטלי ידי הוספת מנעול luer נקבה ולאחר מכן חיבור תקע מנעול luer זכר. שקע זה משלים, ולא לשמש (צינור 6 באיור 6 ).
  4. חיבור שני קטעים קצרים של 1/16 "צינורות סיליקון מזהה עם מנעולים luer זכר ונקבה. חבר קצה אחד לשקע יציאת אלומיניום קצר וחבר את distaסוף l עם luer זכר תקע מנעול luer הנשי. כלי השייט יהיה מחוסן דרך הצינור הזה (צינור 7 / 7.1 באיור 6).
  5. חיבור שני 1/16 "צינורות מזהה את הקצוות של 1/16" צינורות ומחברים peristaltic מזהה. חבר קצה אחד ליציאת אלומיניום קצרה וחבר את (הצינור 4 באיור 6) האחר. מאוחר יותר, זה יחובר אל בקבוק התקשורת.

7. מכינים את Flask מדיה

  1. חבר "שפופרת סיליקון בקוטר פנימי (ID) לנמל האלומיניום הארוך. הצינור צריך להיות ארוך מספיק כדי להגיע בקבוק התקשורת. חבר 1/8" 1/16 מנעול luer זכר מזהה קטע קצר של 1/16 " צינורות מזהים, להתחבר זה אל הצינור שקדם ,, ולאחר מכן כנס קטע קצר זה לתוך פקק הגומי על בקבוק התקשורת (שפופרת 3 באיור 6).
  2. הצמד את הצינור. חיבור זה מאפשר לאוויר לזרום מבקבוק התקשורת לכלי שיט התרבות. כאשר בקבוק התקשורת נשאב מאוחר בארשת ד הצינור הזה הוא unclamped, התרבות תהיה מעורבת, סודה, והמשיכה בלחץ חיובי על ידי הבועות הנכנסות.
  3. הכנס "צינור מזהה מספיק זמן כדי להגיע לתחתית של הבקבוק לתוך הפקק, שדרכו תקשורת תועבר. חבר 1/16 אחר" 1/16 צינור זהות זו אחת, ולאחר מכן צינור 3/16 "זהות כי. חבר זה עם מנעול luer נקבת 3/16 "מזהה ואת תוספת מנעול luer זכר (צינור 1 / 1.1 באיור 6).
  4. החור השלישי הפקק צריך להיות מלא עם קטע קצר של 1/16 "צינורות מזהים, מחובר לשני מגזרים אחרים של צינורות בקוטר בינוניים מחובר בקצה הדיסטלי (צינור 2 / 2.1 באיור 6). זה יהיה מחובר משאבת ואקום ובהמשך משאבת האקווריום.
    הערה: אם הצינורות לא יכולים להתאים בקלות דרך חורי פקק הגומי, לחתוך את הקצוות של הצינור בשיפוע. ואז, הסוף המלוכסן אשר נדחף דרך החור ניתן להשתמש כדי למשוך את שאר דרך.

ss = "jove_title"> 8. הכן את Flask הקולח

  1. הכנס מנעול luer זכר לתוך קטע של 1/16 "צינורות סיליקון זהות, ולאחר מכן בתוקף להכניס 0.022" מזהה polytetrafluoroethylene (PTFE) צינורות. בנפרד, לחבר מנעול luer נקבה לצינור 1/16 "מזהה. לאחר מכן, בסוף חוט אחד לאורך צינור PTFE להתחבר המנעולים והשני ליציאת אלומיניום קצר (צינור 5 באיור 6).
  2. חבר את "צינור סיליקון ID אל 1/50" 1/50 חשוף צינור ומחברים peristaltic מזהה. כדי זה, להתחבר בשלושת מקטעי 1/50 "צינורות מזהה ושני קטעים של 0.022" צינורות PTFE מזהה, לסירוגין אותם. חבר זה בקבוק השפכים באמצעות 1/16 "צינורות מזהים (צינור 5 באיור 6).
  3. חבר קצה אחד של צינור סיליקון 1/16 "זהות הצינור השנייה באורכו של נמל האלומיניום ואת הקצה השני אל בקבוק השפכים. צינור אלומיניום זו מגדיר את נפח התרבות, והתרבות עודפת גולשת לתוך מכל השפכים (צינור 8 ב
  4. חיטוי הרכבת culturing ב 121 ° C ו -15 psi (עיקור כללי) למשך 30 דקות.
    הערה: צינורות שדרכם הבקבוק התקשורת מלא, שדרכו את הבקבוק התקשורת הוא שאב, ושדרכה הספינה culturing הוא מחוסן יש ריבוי קטעים של צינורות כך שאם במגזר דיסטלי מזוהם, אותו ניתן להסיר כדי לחשוף סטרילי מִגזָר.

9. מכינים את ערוץ microfluidic

  1. מערבבים polydimethylsiloxane (PDMS) וסוכן ריפוי בתוך 9: יחס 1. דגה ויוצקים על התבנית מאסטר סיליקון.
  2. לרפא את PDMS עבור 2 שעות על 65 מעלות צלזיוס ולאחר מכן לחתוך אותו מן המסכה עם סכין גילוח. חותכים סביב PDMS עד שהוא משחרר מהתבנית. הימנע לדחוף למטה ולשבור את רקיק שברירי.
  3. השתמש מחורר ביופסיה 1.2 מ"מ מזהה לנקב חורים בשני הקצוות של הערוץ.
  4. אג"ח פלזמה את PDMS אל הזכוכית המכסה 24.
  5. קלטת הארוכה הקצוות של זכוכית המכסה על מסגרת אלומיניום התומכים כך PDMS הערוץ הוא מרוכז על מסגרת אלומיניום, ולאחר מכן אופים את PDMS שוב עבור 2 שעות על 65 מעלות צלזיוס.

מילוי 10. Flask מדיה

figure-protocol-7
איור 7: הוספת מדיה. טבלה זו מראה כיצד תקשורת צריכה להיות ואקום המסונן לתוך בקבוק התקשורת. זה מבטיח כי התקשורת נשארה סטרילי. אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.

  1. פוך המדיה מתאימה. אם מערכת culturing הרציפה תופעלה כמו chemostat, השתמש מדיה בע"מ עבור מזין ספציפי.
    הערה: דוגמאות של רכב מדיה סטנדרטי ללימודים עם ס cerevisiae פורסמו בעבר 25,= "Xref"> 26, 27, 28, 29.
  2. חבר את מסנן אבק כדי בקבוק 100 מ"ל, להסיר את כיסוי הפטמה, ולאחר מכן להסיר את התקע הלבן הפטמה של מסנן אבק עם פינצטה סטרילית.
  3. חבור את צינור סיליקון 3/16 "מזהה את הפטמה, הצינור החופשי האחר של מדיה בבקבוק משאבת ואקום (צינורות 1 ו -2 באיור 7, בהתאמה), ולהבטיח כי הצינור המחבר את בקבוק התקשורת לכלי שיט culturing הוא הדק לסגור (שפופרת 3 באיור 7).
  4. מלאו את המסנן עם התקשורת, להפעיל את משאבת ואקום, ואז לסנן את שאר כלי התקשורת. הצמד את צינורות סיליקון 1/16 "מזהה מחובר ואקום (צינור 2 באיור 7) ולכבות את משאבת ואקום.
  5. הסר את leurs ממגזר הביניים של 1/16 "צינורות מזהים מחובר משאבת הוואקום כך קץ מזוהם של הצינור יהיה נגיש. הכנס הסוף e הכחול של מסנן אוויר מזרק סטרילי לתוך הצינור הזה.
  6. הצמד את צינורות סיליקון 3/16 "מזהה (צינור 1 באיור 7) ונתק את luer זכר ממנו. נתק את התקע luer הנשי של צינור היניקה התקשורת של כלי culturing. חבר luers זכר ונקבה אלה כדי לאפשר התקשורת להיות שאוב לתוך כלי culturing.
  7. הסר את מסנן האבק מכסה את בקבוק מיליליטר 100 של תקשורת אשר צורפה מסנן האבק.
  8. יממה לפני כלי culturing יהיה מחוסן, לחסן מושבה אחת של חיידק optogenetic במבחנה עם 4 מיליליטר של התקשורת שנאספה בשלב הקודם, ולתת לו לגדול בין הלילה ב 30 מעלות צלזיוס או טמפרטורת צמיחת הטמפרטורה האופטימלית של התרבות עם תסיסה.

11. להרכיב את הציוד סביבה מיקרוסקופ

  1. הגדר את מכלול culturing הרציף ליד מיקרוסקופ עם תקשורת הבקבוקון גבוהה יותר מאשר כלי culturing ואת effluהבקבוק אף אוזן גרון נמוך כלי culturing, כך הצינור מורכב מקטעים של 0.022 "צינורות PTFE ID (צינור 5 באיור 6) יכול להגיע לשלב מיקרוסקופ. מאובטח קלטת במורד פקקים גומי על הבקבוק התקשורת מיכל השפכים.
  2. נתק את הקצוות של "צינורות PTFE המזוהה 1/50" 0.022 שפופרת סיליקון ID חיבורם (צינור 5 באיור 6), וחבר הקצוות הללו לתוך הכניסה והיציאה של המכשיר microfluidic.
  3. חבר את הקצה הלבן של מסנן אוויר מזרק משאבת האקווריום. לחץ האוויר ידחוף מדיה לתוך כלי culturing.
  4. כאשר התקשורת מגיעה לרמה של יציאת שפכים, לעטוף את 1/16 "צינורות יניקת תקשורת מזהה ומחברים סביב משאבת peristaltic האיטית (צינור 4 באיור 6) ואת 1/50" צינורות מוצא המדגם מזהה ומחברים סביב הצום משאבת peristaltic (צינור 5 באיור 6).
  5. לאוורר את התקשורת על ידי שחרור באוויר tuלהיות בין כלי culturing בבקבוק ומדיה.
  6. קלט את כרית חימום מדחום לכלי שיט culturing כך שהטמפרטורה שלה ניתן לשלוט. סליל צינורות התקשורת סביב כלי culturing כך בתקשורת ההזנה תהיה באותה הטמפרטורה כמו הכלי.
    הערה: זרם PWM אל כרית החימום מוסדר על ידי מייקרו המשתמש תשומות מן המדחום כדי לשמור על כלי culturing בטמפרטורת setpoint שלה.
  7. הכנס את כלי culturing לתוך מתחם הקצף השחור מעל מטריקס LED, ולהבטיח כי הצינורות הם לא סחבו.
  8. בשנת מיקרו-מנהל, ללכת Plugins> בקר bioreactor. בחר את "יחס משאבת מדיה על" שדה 0.1 ואת "יחס משאבה לדוגמא על" שדה ל -0 קצב הזרימה יהיה נמוך מאוד, אך בשיעור גבוה יותר מהשיעור של אידוי.
  9. קלאמפ צינור האוויר הנכנס בין בקבוק התקשורת וכלי culturing. הסר את התקע מצינור החיסון (שפופרת 7 באיור
  10. מכסים את המתחם כך שאף האור נכנס, ולתת התרבות לגדול בין לילה.

12. כיילו את המחירים לשואבים

  1. בשנת מיקרו-מנהל, ללכת Plugins> בקר bioreactor. בחר את "יחס משאבת מדיה על" שדה 0.5 ואת "יחס משאבה לדוגמא על" שדה 0.
  2. ניתקתי את צינור ההצפה מבקבוק השפכים (צינור 8 באיור 6) ואת צינור הדגימה מבקבוק השפכים (הצינור 8 באיור 6) ולאסוף שפכים בכלים נפרדים. אסוף בשפכים עבור שעה 1, המתחיל לאחר המשאבות כבר על במשך 15 דקות.
  3. חשבתי את קצב הזרימה של תקשורת לתוך כלי culturing מהכרך שנאסף הכלי כמו:
    figure-protocol-8
  4. התאם את הערך של "יחס משאבת מדיה על" שדה ידי אומדן ליניארי זה:
    figure-protocol-9
    איפה
    figure-protocol-10
  5. איטרציות הליך הכיול הזה עד להפרש שבין שיעור הזרימה הרצויה ואת קצב הזרימה הנמדד הוא <0.2 מ"ל / שעה, שם את קצב הזרימה הוא בממוצע על פני תקופה h 1.
  6. הגדל את הערך של "יחס המדגם על" שדה ולכייל אותו באופן דומה עד בערך 4/5 ה מנפח לעזוב את ספינת culturing נשאב החוצה על ידי משאבת הדגימה בערך 1/5 ה מהכרך לצאת דרך היציאה בגלישה.
  7. תן צפיפות התרבות במנגנון culturing הרציף לאזן בתנאים אלה לילה.
    הערה: אם ספיקות היעד לא ניתן להגיע, שינויצינורות משאבת peristaltic. נוזלים נשאבים בשיעור גבוה כאשר צינורות בקוטר גדולים יותר משמשים. בצע צעד 14 ולאחר מכן חזור לשלב 8.4.

13. תמונות מיקרוסקופ אסופות של חיידקים בתרבית

  1. מלא את רשימת עמדת הסטייג 'מייקרו-מנהל עם מערך העמדות שאינן חופפות שבו תמונות של תאים נשאבים לתוך ערוץ microfluidic תהיינה במישור המוקד.
  2. פתח את התוסף "בקר Bioreactor". בחר את מהלך זמן מטריקס LED הרצוי, ערוצי הדמיה, והגדרות ניסיוניות אחרות לפי ההנחיות. לאסוף ולנתח תמונות.
  3. אמנם הניסוי פועל, להבטיח שהתקשורת בבקבוק תקשורת שרידים ברורה. אם זה מעונן, אז זה כבר מזוהם.

14. שאחרי הניסוי

  1. השלך תקשורת, תרבית תאי עודף שפכים.
  2. למלא את הבקבוק התקשורת עם 200 מ"ל של 20% EtOH מעורבב עם מים ללא יונים. הפעל את chemostat כפי שהיה בעברהופעל במהלך הניסוי כדי לשטוף את לכלוך תקשורת תא.
  3. כאשר פתרון האלכוהול נקז מבקבוק מדיה, לפרק את chemostat מלא.
  4. לשטוף זכוכית וצינורות עם מים חמים וחומר ניקוי עדין, ולשטוף היטב במים deionized. ולהשאיר לייבוש.
  5. פתח את הקובץ "microcontrollerRecords.csv" לבחון מחדש את הטמפרטורה ומצב מטריקס LED במהלך הניסוי, את הקובץ "Summary.csv" לסקור את נתוני סיכום מכל סט של תמונות ואת "תוצאות .csv" קבצים לסקור נתונים המסכמים כל ROI של כל פרק זמן, כאשר n הוא n th סט נתונים.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

מנגנון זה שימש כדי לעורר תרבות של ס cerevisiae לבטא חלבון פלואורסצנטי צהוב (YFP) בתגובה-אור כחול באמצעות מערכת שעתוק optogenetic מושרה מבוסס על זוג חלבון CRY2 / CIB1 30. תאים גדלו chemostatically במדיה פוספט-מוגבל עם שיעור דילול ממוצע של 0.2 ± 0.008. הגבלת הפוספט משמשת מקובלות הרבה יותר בניסויי chemostat cerevisiae ס לשלוט בקצב צמיחה ואת ההשפעות של הגבלת פוספט מאופיינות היטב. 31,

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

עיצבנו את המכשיר תוך מחשבה על גמישות. כל הקוד בשימוש הוא בחינם, קוד פתוח. תהליך ניתוח תמונת ברירת מחדל לתאי קטע הוא פשוט רץ במהירות. ניתוח מותאם אישית יכול להיות מיושם על ידי הקלטה קלט משתמש תוך ניתוח תמונה מייצגת עם ממשק משתמש גרפי פיג'י, המרת קלט תסריט beanshell, ולאחר מכן להגדיר את התוסף כדי לקרוא את התסריט. כאשר הוא נקרא, התסריט הזה יישלח מערך מחרוזת בשם "תמונות" המכילות את נתיבי קובץ לאתר הצילומים האחרונים של תמונות מופחתות ברקע. תמונות ונתונים נשמרים כפי שהם נא...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

החוקרים אין לי מה לחשוף.

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ברצוננו להודות מולי לזר ורוניקה דלגאדו סיוע בבדיקת פרוטוקול, קיירן סוויני לדיונים מועילים ועריכה, וטיילור סקוט, שלי אן-adirekkun, וסטפני גלר לקריאה ביקורתית של כתב היד. מייגן ניקול McClean, Ph.D. מחזיק פרס קריירה בבית הממשק המדעי מהקרן בורוז Wellcome.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
מדריך מעבדה מקיףGitHubNAמדריך מעבדה נרחב המתעדכן באופן קבוע זמין ב " תיקי כימוסטט אופטוגנטיים" מאגר GitHub (https://github.com/McCleanResearch/Optogenetic-Chemostat-Files). זה כולל גם תיאור של התבנית המיקרופלואידית המשמשת ליצירת התוצאות המייצגות.
Fritzing Design ViewerFritzingNAהתוכנה החינמית בקוד פתוח להצגה ועריכה של עיצובי מעגלים מסוג .fzz זמינה ב-"http://fritzing.org/download/"
Arduino Uno R3 (Atmega328 - מורכב)Adafruit50מיקרו-בקר. 1 נדרש.
ערכת כותרות ניתנות לגיבוב ArduinoSparkFun Electronics10007כותרות פינים נקבה לחיבור PCB למיקרו-בקר. 1 נדרש.
מלחם מתכוונן 30W 110V - XY-258 110VAdafruit180לחיבור חשמלי למעגל המודפס. 1 נדרש.
מעמד ברזל הלחמהAdafruit150לביצוע חיבורים חשמליים ל-PCB. 1 נדרש.
סליל מיני הלחמה - הלחמת ליבת רוזין עופרת 60/40 בקוטר "0.031 - 100 גרםAdafruit145ליצירת חיבורים חשמליים ל-PCB. נדרש 1.
0.1 μ קבל FSparkFun ElectronicsCOM-08375מייצב מתח ב-PCB. 1 נדרש.
10 μ קבל FSparkFun ElectronicsCOM-00523מייצב מתח ב-PCB. 1 נדרש.
MAX7219CNG דרייבר LED Matrix/Digit Display -MaximMAX7219CNG. 1 נדרש.
8 פינים IC שקעעכבר אלקטרוניקה575-14430816 נדרש. אלה ייערמו זה על גבי זה כדי לתמוך בכלי התרבות מעל מטריצת ה-LED.
שקע IC 24 פיניםMouser Electronics535-24-3518-10אופציונלי. השתמש בזה כדי לחבר באופן הפיך את מנהל ההתקן MAXIM 7219CNG ל-PCB.
מולטימטר דיגיטליAdafruit2034לפתרון בעיות אלקטרוניקה. 1 נדרש.
כותרות Break Away - 40 פינים זכר (ממורכז ארוך, PTH, "0.1)SparkFun ElectronicsPRT-12693פסי-פינים זכריים עבור מטריצת LED מחוברת ללוח מעגלים מודפסים. ניתן לקצץ קצוות בעזרת חותכי תיל. נדרשת ערכה אחת. 
חותכי תיל אלכסוניים שטוחיםAdafruit152לחיתוך ראשי פינים ארוכים וחיתוך כבלי חשמל. 1 נדרש.
חוטי מגשר פרימיום לנקבה/נקבה - 40 x 12 אינץ' (300 מ"מ)סרטAdafruit793לחיבור לוח לחם למטריצת LED. ניתן לחבר מקצה לקצה עם ראשי פינים זכריים כדי להיות ארוכים יותר. 1 נדרש.
לוח לחם בגודל חצי גודלAdafruit64מטריצת ה-LED תתחבר אליו וכלי הטיפוח ינוח מעליו.
מיניאטורי 8x8 כחול LED מטריקסAdafruit956. אורך הגל הדומיננטי הוא 470 ננומטר (כחול). 1 נדרש. מטריצות LED זעירות חלופיות מאותו ספק זמינות עם אורכי גל דומיננטיים: 624 ננומטר (אדום), 588 ננומטר (צהוב), 525 ננומטר (ירוק), 572 ננומטר (צהוב-ירוק) ולבן.
נדרש ראש ניתן לערום-3 פיניםSparkFun Electronics138758.
ערכת נגדים - 1/4W (סה"כ 500)SparkFun Electronics10969לאלקטרוניקה. 1 נדרש.
  IRL520N MOSFETמיישר בינלאומיIRL520Nמתג ויסות מתח לבקרת זרם DC. 4 נדרש.
חוט חיבור - מבחר (ליבה מוצקה, 22 AWG)חוט SparkFun ElectronicsPRT 11367לאלקטרוניקה. 1 נדרש.
ספק כוח מיתוג 5V 2A (2000mA) -Adafruit276ב-UL עבור כרית החימום ו-Arduino. 2 נדרש.
מתאם מתח מיתוג מווסת 12 VDC 1000mA - רשום ב-ULAdafruit798למשאבות פריסטלטיות. 2 נדרשים.
כרית חימום חשמלית - 10 ס"מ על 5 ס"מAdafruit1481לחימום הביוריאקטור. 1 נדרש.
משאבה פריסטלטית בזרימה משתנה בזרימה נמוכהפישר סיינטיפיק13-876-1לאמצעי שאיבה. 1 נדרש
משאבה פריסטלטית בזרימה משתנה בזרימה בינוניתפישר סיינטיפיק13-876-2לתרבית שאיבה. 1 נדרש.
מתאם מתח מיתוג מווסת 9 VDC 1000mA - רשום ב-ULAdafruit63לאספקת חשמל למיקרו-בקר. צו 1.
DS18B20 עמיד למים בטמפרטורה גבוהה חיישן טמפרטורה דיגיטלי + תוספותAdafruit642לביו-ריאקטור. 1 נדרש.
MicromanagerMicromanagerNAתוכנת בקרת המיקרוסקופ החינמית בקוד פתוח זמינה בכתובת "https://micro-manager.org/wiki/Download_Micro-Manager_Latest_Release"
FIJIImageJNAתוכנת ניתוח התמונות החינמית בקוד פתוח זמינה בכתובת "http://fiji.sc/"
Arduino Integrated Development EnvironmentArduinoNAה-IDE החינמי בקוד פתוח זמין ב-"https://www.arduino.cc/en/Main/Software"
קוד מותאם אישיתGitHubNAקוד המיקרו-בקר המותאם אישית והתוסף "Bioreactor Controller" זמינים ב " תיקי כימוסטט אופטוגנטיים" מאגר GitHub (https://github.com/McCleanResearch/Optogenetic-Chemostat-Files).
כבל USB A ל-B - 6 רגלSparkFun ElectronicsCAB-00512משמש להורדת נתונים למיקרו-בקר. 1 נדרש.
bioreactorTimecourse_example.csvGitHubNAהיתרון בטעינת ערכי מטריצת LED מקובץ CSV הוא שהתוסף יכול לקרוא לתוכנית לעדכן את הערכים הללו על סמך תוצאות ניתוח תמונה, וניתן לטעון מחדש את הערכים הללו למיקרו-בקר, מה שמאפשר בקרת הזנה חוזרת. זה זמין מ " תיקי כימוסטט אופטוגנטיים" מאגר GitHub (https://github.com/McCleanResearch/Optogenetic-Chemostat-Files).
ג'ל טוטה-פרוסט (נייר דיפוזיה)B& HB& H # LOFSFTL
MFR # T1-72
למטריצת LED. 1 נדרש.
גיליון קיט Crosslink 1/4x12x24inGrainger, inc20JL37קצף שחור לטיפוח מארז כלי שיט. 4 נדרש.
חיישן הספק פוטו-דיודה סטנדרטי, Si, 200 - 1100 ננומטר, 50 mW ThorlabsS120VCלמדידת עוצמת האור. 1 נדרש.
סרט תיוגפישר סיינטיפיק159015Nלתיוג ואבטחת רכיבים רופפים. 1 נדרש.
קונסולת מד כוח ואנרגיה קומפקטית, LCD דיגיטלי בגודל 4 אינץ'ThorlabsPM100Dלמדידת עוצמת האור. 1 נדרש.
בקבוק זכוכית היברידי GL45 100 מ"לBellco Glass, Inc.(7910-40150)כלי ביו-ריאקטור. 1 נדרש.
מכלול שש יציאותBellco Glass, Inc.מותאם אישית לכלי הביוריאקטור. מפרט צינורות: .125 אינץ' OD x .055 אינץ' ID. יציאה A: 1.0 אינץ' ארוך מעל שבלול המכסה ולתחתית הצינור. יציאות B,C,E,F: באורך 1.0 אינץ' מעל שבלול הכובע, באורך 33 מ"מ מתחת. יציאה D: אורך 1.0 אינץ' מעל שבלול המכסה, 65 מ"מ  הרבה מתחת. 1 נדרש. כולל מכסה בורג עליון פתוח מפוליפרופילן בקוטר 45 מ"מ ואטם סיליקון לבן כדי להבטיח אטימה הדוקה בין המכסה לכלי. 
סקוטש מג'יק טייפ 3105, 3/4 x 300 אינץ', חבילה של 3אמזוןB0009F3P3Uסקוטש שקוף. זה זמין אצל ספקים רבים אחרים. הוא משמש לכיסוי סימונים על כלי התרבות ולאבטחת זכוכית הכיסוי עם תעלת ה-PDMS למסגרת התמיכה מאלומיניום.
1/16 אינץ' מזהה x 3/16 אינץ' OD x 1/16 אינץ' צינורות סיליקון סניטריים קיר טיגוןארצות הברית פלסטיק קורפ.57288צינורות. ~25' נדרש.
פקק גומי לבן Cole-Parmer Twistit, גודל 10Cole-ParmerEW-62992-32פקק בקבוק מדיה ופקק בקבוק קולחין. 2 נדרש.
בקבוק מעבדה 2LPyrex4980בקבוק מדיה ובקבוק קולחין. 2 נדרש.
יום פינצ'קוקפישר סיינטיפיק5867לצינורות צביטה סגורים. 3 נדרשים.
מכלול צינורות חלופי 1/16 אינץ' IDמוצרים הניתנים למעקב3372המשאבות הפריסטלטיות מגיעות עם סט צינורות, אך הן נשחקות לאחר שבועות של שימוש.
מכלול צינורות חלופי 1/50 אינץ' IDמוצרים הניתנים למעקב3371המשאבות הפריסטלטיות מגיעות עם סט צינורות, אך הן נשחקות לאחר שבועות של שימוש.
לואר זכר עם טבעת נעילה x דוקרני צינור 1/16 אינץ', ניילון, מחברי 25/pkCole-ParmerEW-45505-00. נדרשים ~10 פתיונות.
לואר זכר עם טבעת נעילה x 1/8 אינץ' דוקרני צינור, ניילון, 25/pkCole-ParmerEW-45505-04מחברים. 5 נדרשים, אחד לכל חור פקק גומי למילוי בצינורות.
מתאם דוקרני צינור נקבה x 1/16 אינץ', ניילון, מחברי 25/pkCole-ParmerEW-45502-00. נדרשים ~10 לואורים.
מתאם דוקרני צינור נקבה x 3/16 אינץ'מחברי Cole-ParmerEW-45502-08. נדרשים ~10 פתיונות.
אביזר Cole-Parmer Luer, כובע לואר נקבה, ניילון, 25/PkCole-ParmerSC-45502-28
אביזר Cole-Parmer Luer, תקע נעילת Luer זכר, ניילון, 25/PkCole-ParmerEW-45505-56
צינורות PTFE Microbore, 0.022 אינץ' ID x 0.042 אינץ' OD, 100 רגל / גלילצינורות Cole-ParmerEW-06417-21. נדרש גליל אחד.
צינורות סיליקון מאסטרפלקס פלטינה, L/S 13,Cole-ParmerEW-96410-13. ~ 25 אינץ' נדרש.
3/16 אינץ' מזהה x 1/4 אינץ' OD x 1/32 אינץ' צינורות סיליקון סניטריים קיר טיגוןארצות הברית פלסטיק קורפ57293צינורות. ~1' נדרש.
מסנן ואקוםFisher Scientific974107מסנן ואקום Nalgene לאמצעי סינון סטריליים.
Aquel Oxy-Boost 200Rena Aquatic SupplyAP200משאבת אוויר זרימה מתכווננת עם דיאפרם כפול לאוורור וערבוב מדיות. 1 נדרש. 
0.2 μ מסנן מזרק נקבוביות mקורנינג אינטרנשיונל431229זה מבטיח שאוויר ממשאבת האקווריום לא יזהם את המכשיר. 1 נדרש.
Slygard 184 ערכת אלסטומר סיליקוןDow CorningSlygard 184למכשיר מיקרופלואידי. 1 נדרש.
סכין גילוח בטיחות אמריקאי GEM Scientific סכיני גילוח חד-קצהFisher Scientific17989000לחיתוך צינורות ו-PDMS. נדרש להב אחד.
מנקב חורים Harris Uni-Core 1.2 מ"מ IDSigma-AldrichWHAWB100028 ALDRICHלניקוב כניסה/יציאה במכשיר מיקרופלואידי. 1 נדרש.
זכוכית כיסוי מיקרוסקופ 22x60-1.5פישר סיינטיפיק12-544-Gלמכשיר מיקרופלואידי. 1 נדרש.
מסגרת אלומיניום מלבנית עם חלון מרובעמותאםאישיתלתמיכה בערוץ המיקרופלואידי. מידות חיצוניות: 3 אינץ' x 1.25 אינץ'.
דיממנטים פנימיים (חלק חתוך): 7/8 אינץ' x 7/8 אינץ'
עובי: ~1/32 אינץ'
דרייבר LED MAX7219 תיל מקור אור ספק כוח רשום מדחום צינורות באורך 25 רגל

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Motta-Mena, L. B., Reade, A., et al. An optogenetic gene expression system with rapid activation and deactivation kinetics. Nature chemical biology. 10 (3), 196-202 (2014).
  2. Hughes, R. M., Bolger, S., Tapadia, H., Tucker, C. L. Light-mediated control of DNA transcription in yeast. Methods. 58 (4), 385-391 (2012).
  3. Shimizu-Sato, S., Huq, E., Tepperman, J. M., Quail, P. H. A light-switchable gene promoter system. Nature biotechnology. 20 (10), 1041-1044 (2002).
  4. Polstein, L. R., Gersbach, C. a Light-inducible spatiotemporal control of gene activation by customizable zinc finger transcription factors. J Am Chem Soc. 134 (40), 16480-16483 (2012).
  5. Polstein, L. R., Gersbach, C. a A light-inducible CRISPR-Cas9 system for control of endogenous gene activation. Nature Chemical Biology. 11 (3), 198-200 (2015).
  6. Yang, X., Jost, A. P. T., Weiner, O. D., Tang, C. A light-inducible organelle-targeting system for dynamically activating and inactivating signaling in budding yeast. Molecular biology of the cell. 24 (15), 2419-2430 (2013).
  7. Lee, S., Park, H., et al. Reversible protein inactivation by optogenetic trapping in cells. Nature methods. 11 (6), 633-636 (2014).
  8. Kennedy, M. J., Hughes, R. M., Peteya, L. A., Schwartz, J. W., Ehlers, M. D., Tucker, C. L. Rapid blue-light-mediated induction of protein interactions in living cells. Nature Methods. 7 (12), 973-975 (2010).
  9. Yazawa, M., Sadaghiani, A. M., Hsueh, B., Dolmetsch, R. E. Induction of protein-protein interactions in live cells using light. Nat Biotechnol. 27 (10), 941-945 (2009).
  10. Zoltowski, B. D., Motta-Mena, L. B., Gardner, K. H. Blue light-induced dimerization of a bacterial LOV-HTH DNA-binding protein. Biochemistry. 52 (38), 6653-6661 (2013).
  11. Renicke, C., Schuster, D., Usherenko, S., Essen, L. O., Taxis, C. A LOV2 Domain-Based Optogenetic Tool to Control Protein Degradation and Cellular Function. Chemistry & Biology. 20 (4), 619-626 (2013).
  12. Novick, A., Szilard, L. Description of the chemostat. Science (New York, N.Y.). 112 (2920), 715-716 (1950).
  13. Monod, J. La technique de culture continue. Théorie et applications. Ann. Inst. Pasteur. 79 (4), 390-410 (1950).
  14. Shimizu-Sato, S., Huq, E., Tepperman, J. M., Quail, P. H. A light-switchable gene promoter system. Nature Biotechnology. 20, 1041-1044 (2002).
  15. Kennedy, M. J., Hughes, R. M., Peteya, L. A., Schwartz, J. W., Ehlers, M. D., Tucker, C. L. Rapid blue-light-mediated induction of protein interactions in living cells. Nature Methods. 7, 973-975 (2010).
  16. Olson, E. J., Tabor, J. J. Optogenetic characterization methods overcome key challenges in synthetic and systems biology. Nature chemical biology. 10 (7), 502-511 (2014).
  17. Botstein, D., Fink, G. R. Yeast: An experimental organism for 21st century biology. Genetics. 189 (3), 695-704 (2011).
  18. Galanie, S., Smolke, C. D. Optimization of yeast-based production of medicinal protoberberine alkaloids. Microbial cell factories. 14 (1), 144(2015).
  19. Gerngross, T. U. Advances in the production of human therapeutic proteins in yeasts and filamentous fungi. Nature biotechnology. 22 (11), 1409-1414 (2004).
  20. van Maris, A. J. A., Abbott, D. A., et al. Alcoholic fermentation of carbon sources in biomass hydrolysates by Saccharomyces cerevisiae: current status. Antonie van Leeuwenhoek. 90 (4), 391-418 (2006).
  21. Edelstein, A., Amodaj, N., Hoover, K., Vale, R., Stuurman, N. Computer control of microscopes using µManager. Curr Protoc Mol Biol. , Chapter 14 (2010).
  22. Edelstein, A. D., Tsuchida, M. A., Amodaj, N., Pinkard, H., Vale, R. D., Stuurman, N. Advanced methods of microscope control using µManager software. Journal of biological methods. 1 (2), (2014).
  23. Schindelin, J., Arganda-Carreras, I., et al. Fiji: an open-source platform for biological-image analysis. Nature methods. 9 (7), 676-682 (2012).
  24. Bhattacharya, S., Datta, A., Berg, J. M., Gangopadhyay, S. Studies on surface wettability of poly(dimethyl) siloxane (PDMS) and glass under oxygen-plasma treatment and correlation with bond strength. Journal of Microelectromechanical Systems. 14 (3), 590-597 (2005).
  25. Saldanha, A. J., Brauer, M. J., Botstein, D. Nutritional homeostasis in batch and steady-state culture of yeast. Molecular Biology of the Cell. 15, 4089-4104 (2004).
  26. Boer, V. M., Tai, S. L., et al. Transcriptional responses of Saccharomyces cerevisaie to preferred and nonpreferred nitrogen sources in glucose-limited chemostat cultures. FEMS Yeast Research. 7, 604-620 (2007).
  27. Boer, V. M., Amini, S., Botstein, D. Influence of genotype and nutrition on survival and metabolism of starving yeast. Proceedings of the National Academy of Sciences. 105, 6930-6935 (2008).
  28. Brauer, M. J., Huttenhower, C., et al. Coordination of growth rate, cell cycle, stress response and metabolic activity in yeast. Molecular Biology of the Cell. 19, 352-367 (2008).
  29. Gresham, D., Dunham, M. J. The enduring utility of continuous culturing in experimental evolution. Genomics. 104 (6), 399-405 (2014).
  30. Liu, H., Yu, X., et al. Photoexcited CRY2 interacts with CIB1 to regulate transcription and floral initiation in Arabidopsis. Science (New York, N.Y.). 322 (5907), 1535-1539 (2008).
  31. McIsaac, R. S., Oakes, B. L., Wang, X., Dummit, K. A., Botstein, D., Noyes, M. B. Synthetic gene expression perturbation systems with rapid, tunable, single-gene specificity in yeast. Nucleic Acids Research. 41 (4), 1-10 (2013).
  32. McIsaac, R. S., Petti, A. A., Bussemaker, H. J., Botstein, D. Perturbation-based analysis and modeling of combinatorial regulation in the yeast sulfur assimilation pathway. Molecular biology of the cell. 23 (15), 2993-3007 (2012).
  33. McIsaac, R. S., Silverman, S. J., et al. Fast-acting and nearly gratuitous induction of gene expression and protein depletion in Saccharomyces cerevisiae. Molecular biology of the cell. 22 (22), 4447-4459 (2011).
  34. Melendez, J., Patel, M., Oakes, B. L., Xu, P., Morton, P., McClean, M. N. Real-time optogenetic control of intracellular protein concentration in microbial cell cultures. Integrative biology quantitative biosciences from nano to macro. 6 (3), 366-372 (2014).
  35. Brauer, M. J., Huttenhower, C., et al. Coordination of growth rate, cell cycle, stress response, and metabolic activity in yeast. Molecular biology of the cell. 19 (1), 352-367 (2008).
  36. Boer, V. M., Crutchfield, C. A., Bradley, P. H., Botstein, D., Rabinowitz, J. D. Growth-limiting intracellular metabolites in yeast growing under diverse nutrient limitations. Molecular biology of the cell. 21 (1), 198-211 (2010).
  37. Markham, B. E., Byrne, W. J., Methods, E. Uptake, storage and utilization of phosphate by yeast. Journal of the Institute of Brewing. 73, 271-273 (1967).
  38. Kazemi Seresht, A., Palmqvist, E. A., Olsson, L. The impact of phosphate scarcity on pharmaceutical protein production in S. cerevisiae: linking transcriptomic insights to phenotypic responses. Microbial cell factories. 10 (1), 104(2011).
  39. Shimizu, K. Regulation Systems of Bacteria such as Escherichia coli in Response to Nutrient Limitation and Environmental Stresses. Metabolites. 4 (1), 1-35 (2013).
  40. Olson, E. J., Hartsough, L. A., Landry, B. P., Shroff, R., Tabor, J. J. Characterizing bacterial gene circuit dynamics with optically programmed gene expression signals. Nature methods. 11 (4), 449-455 (2014).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Optogenetic SystemsContinuous CulturingMicrobial CellsProgrammed IlluminationAutomated SamplingMulti channel MicroscopyChemostat OperationFluorescence IntensitySaccharomyces cerevisiaeOptogenetic Transcription

Related Articles