Method Article

שיטה צדדית של חלבוני דפוסי תאים

DOI:

10.3791/55513

February 26th, 2017

* These authors contributed equally

In This Article

Summary

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

דוח זה מתאר טכניקה פשוטה וקלה לביצוע, תוך שימוש בוואקום בלחץ נמוך, למילוי תעלות מיקרופלואידיות בתאים ומצעים למחקר ביולוגי.

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

טכניקות דפוס מצע ותאים נמצאות בשימוש נרחב בביולוגיה של התא כדי לחקור אינטראקציות בין תא לתא ותא למצע. טכניקות דפוס קונבנציונליות עובדות היטב רק עם צורות פשוטות, אזורים קטנים וחומרים ביולוגיים נבחרים. מאמר זה מתאר שיטה להפצת תרחיפי תאים כמו גם תמיסות מצע למיקרו-ערוצים מורכבים, ארוכים, סגורים (ללא מוצא) של פולידימתילסילוקסן (PDMS) תוך שימוש בלחץ שלילי. שיטה זו מאפשרת לחוקרים לעצב סובסטרטים מרובים כולל פיברונקטין, קולגן, נוגדנים (Sal-1), פולי-D-ליזין (PDL) ולמינין. דפוס של מצעים מאפשר לעצב בעקיפין מגוון תאים. בדקנו מיובלסטים C2C12, קו תאי העצב PC12, נוירונים בקליפת המוח של חולדות עובריות ונוירונים ברשתית של דו-חיים. בנוסף, אנו מדגימים כי טכניקה זו יכולה לעצב ישירות פיברובלסטים בתעלות מיקרופלואידיות באמצעות יישום קצר של ואקום נמוך על מתלי תאים. הוואקום הנמוך אינו מפחית משמעותית את כדאיות התאים כפי שמוצג על ידי מבחני כדאיות התא. נדונים שינויים ליישום השיטה על סוגי תאים ומצעים שונים. טכניקה זו מאפשרת לחוקרים לעצב תאים וחלבונים בתבניות ספציפיות ללא צורך בחומרים או ציוד אקזוטיים וניתן לבצע אותה בכל מעבדה עם ואקום.

Introduction

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

בהנדסת רקמות biosensing, את היכולת לשלוט בארגון המרחבי של חלבונים בתאים בסולם מיקרומטר, הפך חשוב יותר ויותר במהלך ארבעת העשורים האחרונים 1, 2, 3. ארגון המרחבי מדויק של חלבונים בתאים אפשר לחוקרים לבחון את יחסי הגומלין בין תאי מצעים המכילים סוגים דומים או שונים של תאים, כדי להדריך את גדילת תאים, וכדי לשתק ביומולקולות עבור הייצור של חיישנים ביולוגיים 4, 5, 6, 7, 8, 9.

השיטות הקיימות כיום של חלבונים דפוסים כוללים photopatterning והדפסה microcontact. Photopatterning מנצל חומר רגיש לאור אשר crosslinked בחשיפה ultrאור סגול (UV). אור UV מכוון photomask (מורכב האזורים שקופים עם אזורים כהים כדי למנוע העברת אור UV) גורם crosslinking באזורים ספציפיים אשר לאחר מכן ניתן להשתמש עבור ההתקשרות הבאה של חומרים ביולוגיים או תאים 10, 11. בעוד תכנית זו היא מאוד מדויקת ומאפשרת שליטה מדויקת של הטופוגרפיה של שטח התרבות, היא מוגבלת ביומולקולות UV הרגיש שניתן בדוגמת ידי קרינת UV 12. הדפסת Microcontact היא עוד שיטה פופולרית של דפוסי חלבונים ספציפיים 13, 14. בשיטה זו, siloxane פולי-דימתיל (PDMS) חותמת מטופל עם מגוון רחב של חומרים כימיים שינוי פני השטח בטרם ספוג בתמיסה של המצע וביומולקולרית הנבחר. הוא הקיש בעדינות על coverslip זכוכית או משטח אחר כך "הטבעה" את biomolecule על גבי משטח תרבות. הוwever, ביול מוגבל לסוג החומר שניתן להעביר כמו גם יכולת רטיבות של ביומולקולות אל פני השטח של PDMS להחתים 15.

דפוסים ישירים של תאים יכולים להיות יותר קשים ומסתמכים על שיטות מורכבות כגון מצעים להחלפה, שיטות המבוסס סטנסיל, או דפוסים עם מולקולות הדבקת תא ספציפיות 16, 17. שיטות אלו מוגבלים ביכולתם תאי דפוס בשל חוסר מצעי הידבקות תא תואמים, אי התאמה של התהליך לעבוד עם תאים ואילוצים ביולוגיים רגישים, חוסר עקביות לשחזר את הדפוסים, ומורכבות ההליך. לדוגמא, עם מצעים להחלפה, מצעים מותאמים אישית צריכים להיות מתוכננים עבור כל סוג תא, לעבור דבקותם סוגי תאים מסוימים ללא שפלה בחשיפה לאור UV והחום המשמש בתהליך 17, < sup class = "Xref"> 18, 19, 20. שיטות דפוסים סטנסיל מבוססות הם צדדים ביכולתם תאי דפוס; עם זאת, קשה לייצר שבלונות PDMS על עוביים המתאים לשימוש 16, 21. הזרקה ישירה של תאים לתוך ערוצי microfluidic PDMS יש כמה יתרונות כגון: 1) להקל על ייצור של ערוצי microfluidic ו -2) והתאמתו תאי מצעים שונים. עם זאת, הנושא הרווחת ללכוד בועות אוויר במהלך תהליך ההזרקה בשל הידרופוביות של PDMS ללא שימוש ניקוי פלזמה, או בשיטות אחרות כדי להקטין בועות אוויר, מקשה ליצור תאים בדוגמת בעקביות על משטחי זכוכית או פלסטיק 21.

עבודה זו מרחיבה נימי micromolding 22, 23,= ילדה "Xref"> 24, 25, 26 ו מדווח שיטה להזריק השעיות חלבון התא לתוך microchannels. השיטה כאן מדגימה את הדפוסים של מצעים ושניהם דפוסים ישירים ועקיפים של סוגי תאים מסוימים. טכניקה זו מתגברת על הידרופוביות הגבוהה של PDMS ומונעת את הנוכחות של בועות במהלך ההזרקה של או מצעים או תאים על ידי ניצול של חדירות הגז של 27 PDMS. מסמך זה מדגים את השימוש בטכניקה עם כמה מצעים שונים סוגי תאים. המאמר מדגיש גם הייצור של תבניות עבור ליתוגרפיה רכה באמצעות photolithography קונבנציונלי וכן פשוטה ושיטת דבק בעלות הנמוכה שימושית משאבי הגדרות מוגבלות 28, 29.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

הערה: אנא להתייעץ כל גיליונות נתוני בטיחות חומרים רלוונטיים (MSDS) לפני השימוש. חלק מהכימיקלים המשמשים פרוטוקול זה הוא רעיל ומסרטן. השתמש כל נוהלי הבטיחות המתאים (במנדף, שבתא הכפפות) וציוד מגן אישי (משקפי מגן, כפפות, חלוק, מכנסיים באורך מלא, נעליים סגורות) בעת השימוש בחומרים רעילים או חומצה / בסיס.

ייצור 1. של תבניות אב ליתוגרפיה באמצעות ליתוגרפיה Soft

  1. צייר את הפריסה של microchannel באמצעות כלי ציור תכנון בעזרת מחשב (CAD).
  2. הדפס את הפריסה על צלחת מסיכה אטומה באמצעות סופר מסכת ליזר.
  3. לשטוף פרוסות סיליקון 4 אינץ 'עם אצטון ואחריו isopropanol ויבש עם אקדח אוויר חנקן, כדי לוודא ששום ממס נותר על פרוסות סיליקון.
  4. מייבש את הפרוסות על ידי אפייה זה על צלחת חמה ב 200 מעלות צלזיוס למשך 5 דקות.
  5. בחר photoresist שלילית המיועד לגובה הרצוי של microchannels. Fאו למשל, להשתמש photoresist השלילי SU-8 50 להשיג microchannels עם גובה של 50 מיקרומטר.
  6. אפשר רקיק להתקרר לטמפרטורת החדר, ולאחר מכן ליישר את רקיק על צ'אק של coater ספין.
  7. לוותר 4 מ"ל (1 מ"ל / אינץ בקוטר של פרוסות סיליקון) של photoresist שלילית על מרכז של פרוסות סיליקון.
  8. ספין המעיל רקיק עם הסחיטה שני שלבים באמצעות הצנטריפוגה. ראשית, להחיל מחזור התפשטות 500 סל"ד עם תאוצה של 100 סל"ד / s עבור 10 שניות. ואז להחיל מחזור סחיטה של 2,000 סל"ד עם תאוצה של 300 סל"ד / s 2 למשך 30 שניות כדי לקבל ציפוי 50 מיקרומטר של photoresist על פרוסות סיליקון.
  9. לאפות Soft רקיק בשני שלבים על פלטה חשמלית על פי הנחיות היצרן. לקבלת ציפוי 50 מיקרומטר של photoresist, הראשון מראש לאפות את פרוסות סיליקון ב 65 מעלות צלזיוס במשך 6 דקות ולאחר מכן מיד תעלי את הטמפרטורה פלטה חשמלית כדי לפרסם לאפות את פרוסות סיליקון ב 95 מעלות צלזיוס במשך 20 דקות.
  10. אפשר רקיק להתקרר לטמפרטורת החדר ולאחר מכן לטעון אתוופל לבמה ליתוגרפיה.
  11. יישר את המסכה על פרוסות סיליקון באמצעות aligner מסכה ולחשוף את רקיק לאור UV (על פי הוראות היצרן) בעצימות של 1.5 mW / 2 ס"מ על 146 s ליישם את המינון UV כולל של 220 mJ / 2 ס"מ הנדרשים 50 מיקרומטר שכבת photoresist עבה.
  12. החל לאפות חשיפה לפרסם רקיק בשני שלבים על פלטה חשמלית. לקבלת ציפוי 50 מיקרומטר של photoresist, ראשון מראש לאפות את הפרוסות סיליקון ב 65 מעלות צלזיוס במשך 1 דקות ומייד תעלה את טמפרטורת הפלטה החשמלית כדי לפרסם לאפות אותו על 95 מעלות צלזיוס למשך 5 דקות.
  13. לפתח את רקיק על ידי השריית רקיק מפתח SU-8 ורועדת בעדינות עד תכונות להתבהר על פרוסות סיליקון. פיתוח רקיק עבור ~ 6 דקות עבור photoresist עבה 50 מיקרומטר.
  14. לשטוף מפתח עודף עם isopropanol ואתנול, ולאחר מכן לייבש את הפרוסות עם אקדח אוויר חנקן.
  15. קשה לאפות את פרוסות סיליקון על פלטה חשמלית ב 150 מעלות צלזיוס למשך 15 דקות.
  16. מניחים אתרקיק ייבוש עם 25 μL של סוכן silanizing tridecafluoro-1,1,2,2-tetrahydrooctyl-1-trichlorosilane.
    הערה: סוכן silanizing הוא מאכל, ולכן יש להשתמש בתוך במנדף חומצה / בסיס, עם ציוד מגן אישי מתאים (משקפי מגן, כפפות, חלוק, מכנסיים באורך מלאים, סגורות נעליים).
  17. החל את ואקום במשך 5 דקות ולחשוף את רקיק האדים של silane במשך 30 דקות מבלי לשחרר את הוואקום.
  18. מעבירים את פרוסות לתוך צלחת כראוי בגודל פטרי.

ייצור 2. מגיסטר תבניות ליתוגרפיה Soft באמצעות דבק

  1. צייר את הפריסה של microchannel באמצעות כלי ציור CAD ולהדפיס את הציור על נייר לבן.
  2. נקה שקופיות זכוכית גדולות מספיק כדי להכיל את העיצוב עם isopropanol ולאחר מכן לייבש את השקופית עם רובה אוויר.
  3. צרף דבק לשקופית זכוכית לנקות. היזהר שלא מלכודת כל בועות אוויר.
  4. קלטת את הצדדים של GLAss להחליק על הנייר עם העיצוב, עם למעלה בצד הקלטת.
  5. השתמש אזמל לחתוך את הקלטת בשקופית הזכוכית באמצעות עיצוב נייר כהפניה ולאחר מכן לקלף קלטת מאזורים לא רצויים של שקופיות הזכוכית.
  6. יש לשטוף את השקופית זכוכית עם isopropanol ואז יבש עם רובה אוויר. אופה את שקופיות זכוכית בתנור על 65 מעלות צלזיוס למשך 30 דקות.
  7. בעדינות לגלגל את הקלטת עם מכבש גומי כדי להסיר בועות אוויר ולאפשר את השקופית להתקרר לטמפרטורת החדר.

3. ייצור ליתוגרפיה Soft של מכשירי PDMS

  1. מערבבי PDMS אלסטומר סוכן הריפוי שלה ביחס של 10: 1 (w: w), מערבב את התערובת במרץ, ולאחר מכן דג את התערובת על ידי צבת אותו לתוך תא ואקום עד שאין בועות אוויר מופיעות התערובת.
  2. יוצקים את התערובת על תבנית סיליקון silanized או עובש דבק בצלחת פטרי להשיג ~ 2 מ"מ שכבה עבה של PDMS דגה עד שכל האוויר בועות להיעלם.
  3. לרפא את PDMS בתנורעל 65 מעלות צלזיוס למשך 2 שעות.
  4. השתמש אזמל לחתוך את שכבת PDMS במרחק של לפחות 5 מ"מ מן התכונות ולאחר מכן לקלף את PDMS נרפא את התבנית באמצעות פינצטה.
  5. פאנץ חור כניסת יחיד עם ביופסיה 1 מ"מ אגרוף בכל מקום על microchannel, רצוי בסוף רשת של microchannels כפי שניתן לראות באיור 2a ו -4.
  6. נקו את PDMS יצוק עם סרט דביק על מנת להסיר חלקיקי אבק adsorbed על גבי המכשיר. לעקר את המכשיר microchannel PDMS (יצוק PDMS) על ידי שטיפה עם תמיסה של אתנול 70% ואחריו מים סטריליים deionized (DI), ולחשוף את UV למשך 30 דקות.
  7. השאר את המכשיר PDMS סטרילי בצלחת פטרי סטרילית עד השימוש.

4. תשתית דפוסים

  1. מניחים את PDMS סטרילי יצוק באמצעות פינצטה על coverslip כוס סטרילית או בצלחת פטרי להפעיל לחץ עדין באמצעות קצה של פינצטה.
    הערה: צוות השחקנים PDMS עושה קונפורמי אבל חותם הפיך עם GLcoverslip התחת או בצלחת פטרי להרכיב microchannels ללא שימוש בכל דבק.
  2. מניח טיפה (20 - 40 μL) של פתרון המצע על הכניסה לגמרי מכסה את חור המפרצון. תבנית Poly-D- ליזין (PDL) על ידי הצבת אגל 20 μL של PDL חיץ נתרן tetraborate על מפרצון של microchannels.
  3. שים את צלחת פטרי בחלל ריק של ~ 254 mmHgA (שווה ערך ל לשכן ואקום במעבדות ביולוגיות) במשך 10 דקות, ולבחון אוויר היוצא של הערוץ בצורת בועות.
  4. לשחרר את הוואקום ולבחון את פתרון המצע זורם לתוך microchannel.
  5. דגירת הצלחת על התנאים המתאימים דבקות מצע. ראה לוחות 1 ו -2 תנאי דגירה (אלה משתנות בהתאם למצע). לקבלת דפוסי PDL, דגירה של 1 ש 'על 37 מעלות צלזיוס.
  6. בזהירות לקלף את חותמת PDMS באמצעות פינצטה סטרילית לשטוף את התבנית על coverslip זכוכית שלוש פעמים עם מים די.
  7. הוספת אלבומין 1% שור פתרון (BSA) כדי בצלחת פטרי לכסות את התבשיל או coverslip הזכוכית דגירה לילה בשעה 37 ° C.
    הערה: זה יקטין דבקות שאינן ספציפיות באזורים ללא ציפוי.
  8. לשאוב את פתרון 1% BSA, ואת המצע בדוגמת עכשיו הוא מוכן לשימוש.

5. דפוסים עקיפים של תאים

  1. הכן את ההשעיה תא בינוני תרבות סרום ללא. סוג התא צפיפות התאים מפורטים בטבלה 1.
  2. מוסיפים את ההשעיה תא אל צלחת פטרי בדוגמת ובאופן מוחלט לצלול באזור בדוגמת ההשעיה הסלולרי.
  3. דגירת צלחת פטרי על 37 מעלות צלזיוס באינקובטור במשך 15 דקות כדי לאפשר לתאים לצרף מצע בדוגמת.
  4. לשאוב את השעית התא העודפת מצלחת פטרי לשטוף את התאים בדוגמת שלוש פעמים עם בופר פוספט (PBS) תוך רעד בעדינות במשך 10 שניות כדי להסיר תאים פנויים.
  5. להוסיף אמדיום תרבות ppropriate אל בתרביות תאים בדוגמת דגירת התאים בדוגמת ב 37 מעלות צלזיוס CO 2 באינקובטור.

6. דפוסים ישירים של תאים

הערה: טכניקה זו היא חלופת דפוסי התא העקיף כמתוארים בשלב 5. עם זאת, שלא כמו בשלב 5, בטכניקה זו תאים הם בדוגמת על משטחים בתרבית רקמה עם או בלי ציפוי מצע.

  1. לעקר את המכשיר microfluidic על ידי שטיפה עם תמיסה של 70% אתנול ואחריו מים DI.
  2. משרים את המכשיר לילה בתמיסה של BSA 1% כדי למנוע את הידבקות התא אל PDMS.
  3. לייבש את המכשיר בטמפרטורת החדר וצרף אותו לחלק התחתון של צלחת פטרי שטופלו בתרבית רקמה.
  4. הכן את השעית תא תקשורת ותרבות סרום ללא. סוג תא צפיפות תאים מפורטים בטבלה 2.
  5. מניחים טיפה (4 - 8 μL) של ההשעיה תא, מספיק כדי למלא אתmicrochannels, על הכניסה לגמרי מכסה את חור המפרצון.
  6. שים את צלחת פטרי בחלל ריק במשך 10 דקות ולבחון אוויר היוצא של הערוץ בצורת בועות. לשחרר את הוואקום ולבחון את ההשעיה תא לזרום לתוך microchannel.
  7. דגירת צלחת פטרי באינקובטור כדי לקדם את הידבקות תא בהתאם לתנאי הדגירה (תלוי בסוג של תא בדוגמת) ציין בטבלה 2. להוסיף PBS על צלחת פטרי השריית מכשיר PDMS.
  8. מקלפים את PDMS בזהירות מעל צלחת פטרי עם פינצטה לשטוף את התבנית עם PBS. הוסף מדיה תרבית תאים כדי בצלחת פטרי ומקום תרבית התאים בחממה.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

שיטה זו מאפשרת יצירת הדפוסים של חלבוני דפוסים עקיפים של תאים באמצעות ערוצי microfluidic למבוי סתומים עם ממדים קטנים כמו 10 מיקרומטר וציוד זמין כמעט בכל מעבדות ביולוגיות פעם עובש האמן הוא עשה. טכניקה זו יכולה להיות מנוצלת עם ערוצי microfluidic PDMS נוצרו באמצעות photolithography הרך מסורתי, או עם ערוצי microfluidic PDMS שנוצרו עם ייצור סרט דביק (איור 1) 28, 29. אנחנו הוכחנו ...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

בעוד photolithography הקונבנציונלי היא טכניקה מבוססת היטב ליצירת תבניות עבור ליתוגרפיה רכה, הציוד, חומרים, ואת כישורים דרושים כדי להשתמש photolithography הקונבנציונלי אינם זמינים ברוב המעבדות. למעבדות ללא גישה למשאבים אלה, והצגנו ייצור סרט דביק כשיטה של ​​יצירת תבניות עם תכונות פשוטות יחסית למכשירי microfluidic. שיטה זו מאפשרת לכל מעבדה ליצור ולנצל מכשירי microfluidic למטרות מחקר עם כלים זמינים. השיטה הדבקה ניתן לשפר עם חותך ויניל שולחן העבודה בעלות נמוכה 31.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

המחברים מצהירים שאין אינטרסים פיננסיים מתחרים.

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

מימון למחקר זה סופק על ידי ועדת ניו ג'רזי בחקר חוט השדרה (NJCSCR) (כדי FHK), להעניק CSCR14IRG005 (כדי BLF), NIH מענק R15NS087501 (כדי CHC), וקרן קירבי FM (כדי ETA).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
כלי ציור CorelDRAW X4 CAD CorelCorporation, CanadaX4 גרסה 14.0.0.701כלי CAD המשמש לציור הפריסה של המכשיר המיקרופלואידי,
מדפסת לייזר HPHewlett Packard, CA1739629משמש להדפסת הפריסה של מכשיר מיקרופלואידיק, לטכניקת סרט דבק
Bel-Art DessicatorFisher Scientific, MA08-594-16Bמשמש להסרת הגז מתערובת
ה-PDMSסקוטש דבק3M מוצר, MNTape 600משמש לייצור סרט דבק Master
PDMS Sylgard 184Dow Corning, MI1064291יציקת פולימר
פטרי צלחתפישר סיינטיפיק, MA08-772-23משמש לשמירה על התבנית ליציקה עם PDMS
אזמל נירוסטה (# 3) עם להב (# 11)Feather Safety Razor Co. Ltd. יפן2976 # 11משמש לחיתוך ה- PDMS
פינצטהטד פלה, קליפורניה5627-07משמש לטיפול ביציקת ה-PDMS במהלך קילוף
שקופיות זכוכיתפישר סיינטיפיק, MA12-546-2משמש כמשטח לדפוס
שקופיות זכוכיתפישר סיינטיפיק, MA12-544-4משמש כמשטח לדפוס המצע
רולר גומידיק בליק חומרי אמנות, IL40104-1004משמש להצמדת סרט דבק על זכוכית מבלי ללכוד בועות אוויר
כותב מסכות לייזרהיידלברג מכשירים, גרמניהDWL66fsמשמש לייצור מסכת קוורץ המשמשת בתהליך ייצור פוטוליתוגרפיה
EVG Mask Aligner (כלי חשיפה לפוטוליתוגרפיה UV)EV Group, גרמניהEVG 620T(B)משמש לחשיפת הפוטו-התנגדות לאור UV
Spin Coater HeadwayHeadway Research Inc, TXPWM32-PS-CB15PLמשמש לסובב ציפוי הפוטו-רזיסט על פרוסת סיליקון
Photoresists SU-8 50MicroChem, MAY131269פוטו-רזיסט שלילי המשמש לייצור תבניות
SU-8 DevloperMicroChem, MAY020100מפתח Photoresist
Tridecafluoro-1,1,2,2-Tetrahydrooctyl-1-TrichlorosilaneUCT Specialties, PAT2492-KGתבנית מעיל למניעת הידבקות PDMS
איזופרופנולסיגמא-אולדריץ', MO190764ממס ניקוי
אתנולסיגמא-אולדריץ', MO24102ממס עיקור
פולי-D-ליזין הידרוברומיד (PDL)סיגמא-אולדריץ', MOP0899-10MGתמיסת PDL מיוצרת ב-0.1 מ"ג/מ"ל במאגר נתרן טטרבוראט
למיניןסיגמא-אולדריץ', MOL2020למינין נקוב ל-10 ומיקרו; L aliquots ומדולל ל-20 ומיקרו; g/µ L ב-PBS לפני השימוש
BSAFisher Scientific, MABP1605100תרבית תאים
C2C12 Myoblast celllline ATCC, VACRL-1722משמש להדגמת דפוס C2C12
PC12 CellLine ATCC, VACRL-1721משמש להדגמת דפוס PC12
קולגן מסוג 1, זנב עכברושBD Biosciences40236תרבית תאים
DMEMGIBCO, MA11965-084
סרום תרבית תאים לסוס, מומת בחוםפישר סיינטיפיק, MA26050-070תרבית תאים
פלואידין-טטרמתילרודמין B איזותיוציאנט (TRITC)סיגמא-אולדריץ', MOP1951לתיוג תאים
Calcein-AM ערכת בדיקת תאים מתיםחיים Invitrogen, MAL-3224בדיקת כדאיות תאים
ביופסיה חור אגרוףטד פלה, CA15110-10חור מנוקב ב-PDMS
המצע

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Kane, R. S., Takayama, S., Ostuni, E., Ingber, D. E., Whitesides, G. M. Patterning proteins and cells using soft lithography. Biomaterials. 20 (23-24), 2363-2376 (1999).
  2. Lin, R. Z., Ho, C. T., Liu, C. H., Chang, H. Y. Dielectrophoresis based-cell patterning for tissue engineering. Biotechnol J. 1 (9), 949-957 (2006).
  3. Veiseh, M., Zareie, M. H., Zhang, M. Highly Selective Protein Patterning on Gold-Silicon Substrates for Biosensor Applications. Langmuir. 18 (17), 6671-6678 (2002).
  4. Kung, F., Wang, J., Perez-Castillejos, R., Townes-Anderson, E. Position along the nasal/temporal plane affects synaptic development by adult photoreceptors, revealed by micropatterning. Integr Biol. 7 (3), 313-323 (2015).
  5. Dickinson, L. E., Lutgebaucks, C., Lewis, D. M., Gerecht, S. Patterning microscale extracellular matrices to study endothelial and cancer cell interactions in vitro. Lab Chip. 12 (21), 4244-4248 (2012).
  6. Khademhosseini, A., et al. Co-culture of human embryonic stem cells with murine embryonic fibroblasts on microwell-patterned substrates. Biomaterials. 27 (36), 5968-5977 (2006).
  7. Bogdanowicz, D. R., Lu, H. H. Studying cell-cell communication in co-culture. Biotechnol J. 8 (4), 395-396 (2013).
  8. Choi, Y., Lee, S. Guided cell growth through surface treatments. J of Mech Sci Technol. 19 (11), 2133-2137 (2005).
  9. Hwang, I. -T., et al. Efficient Immobilization and Patterning of Biomolecules on Poly(ethylene terephthalate) Films Functionalized by Ion Irradiation for Biosensor Applications. ACS Appl Mater Interf. 3 (7), 2235-2239 (2011).
  10. Clark, P., Britland, S., Connolly, P. Growth cone guidance and neuron morphology on micropatterned laminin surfaces. J Cell Sci. 105 (1), 203-212 (1993).
  11. Théry, M. Micropatterning as a tool to decipher cell morphogenesis and functions. J Cell Sci. 123 (24), 4201-4213 (2010).
  12. Douvas, A., et al. Biocompatible photolithographic process for the patterning of biomolecules. Biosens Bioelectron. 17 (4), 269-278 (2002).
  13. Alom, R. S., Chen, C. S. Microcontact printing: A tool to pattern. Soft Matter. 3 (2), 168-177 (2007).
  14. Essö, C. Modifying Polydimethylsiloxane (PDMS) surfaces. Institutionen för biologi och kemiteknik. , (2007).
  15. Zhou, J., Ellis, A. V., Voelcker, N. H. Recent developments in PDMS surface modification for microfluidic devices. Electrophoresis. 31 (1), 2-16 (2010).
  16. Folch, A., Jo, B. H., Hurtado, O., Beebe, D. J., Toner, M. Microfabricated elastomeric stencils for micropatterning cell cultures. J Biomed Mater Res. 52 (2), 346-353 (2000).
  17. Yeo, W. S., Yousaf, M. N., Mrksich, M. Dynamic interfaces between cells and surfaces: electroactive substrates that sequentially release and attach cells. J Am Chem Soc. 125 (49), 14994-14995 (2003).
  18. Bhatia, S. N., Toner, M., Tompkins, R. G., Yarmush, M. L. Selective adhesion of hepatocytes on patterned surfaces. Ann N Y Acad Sci. 745, 187-209 (1994).
  19. Song, E., Kim, S. Y., Chun, T., Byun, H. -J., Lee, Y. M. Collagen scaffolds derived from a marine source and their biocompatibility. Biomaterials. 27 (15), 2951-2961 (2006).
  20. Yamato, M., Konno, C., Utsumi, M., Kikuchi, A., Okano, T. Thermally responsive polymer-grafted surfaces facilitate patterned cell seeding and co-culture. Biomaterials. 23 (2), 561-567 (2002).
  21. Takayama, S., et al. Patterning cells and their environments using multiple laminar fluid flows in capillary networks. Proc Natl Acad Sci U S A. 96 (10), 5545-5548 (1999).
  22. Kim, D. S., Lee, K. -C., Kwon, T. H., Lee, S. S. Micro-channel filling flow considering surface tension effect. J of Micromech Microeng. 12 (3), 236(2002).
  23. Kim, E., Xia, Y., Whitesides, G. M. Micromolding in Capillaries: Applications in Materials Science. J Am Chem Soc. 118 (24), 5722-5731 (1996).
  24. Kim, E., Xia, Y. N., Whitesides, G. M. Polymer Microstructures Formed by Molding in Capillaries. Nature. 376 (6541), 581-584 (1995).
  25. Jeon, N. L., Choi, I. S., Xu, B., Whitesides, G. M. Large-area patterning by vacuum-assisted micromolding. Adv Mater. 11 (11), 946(1999).
  26. Shrirao, A. B., et al. System and method for novel microfluidic device. US patent. , 61/414,237 (2010).
  27. Merkel, T. C., Bondar, V. I., Nagai, K., Freeman, B. D., Pinnau, I. Gas sorption, diffusion, and permeation in poly(dimethylsiloxane). J Polym Sci Part B Polym Phys. 38 (3), 415-434 (2000).
  28. Shrirao, A. B., Hussain, A., Cho, C. H., Perez-Castillejos, R. Adhesive-tape soft lithography for patterning mammalian cells: application to wound-healing assays. Biotechniques. 53 (5), 315-318 (2012).
  29. Shrirao, A. B., Perez-Castillejos, R. Chips & tips: simple fabrication of microfluidic devices by replicating scotch-tape masters. Lab Chip. , (2010).
  30. Anil, B. S., Frank, H. K., Derek, Y., Cheul, H. C., Ellen, T. -A. Vacuum-assisted fluid flow in microchannels to pattern substrates and cells. Biofabrication. 6 (3), 035016(2014).
  31. Yuen, P. K., Goral, V. N. Low-cost rapid prototyping of flexible microfluidic devices using a desktop digital craft cutter. Lab on a Chip. 10 (3), 384-387 (2010).
  32. Wang, L., et al. Self-loading and cell culture in one layer microfluidic devices. Biomed Microdevices. 11 (3), 679-684 (2009).
  33. Feng, H., et al. Survival of mammalian cells under high vacuum condition for ion bombardment. Cryobiology. 49 (3), 241-249 (2004).
  34. Haubert, K., Drier, T., Beebe, D. PDMS bonding by means of a portable, low-cost corona system. Lab on a Chip. 6 (12), 1548-1549 (2006).
  35. Fan, D. -H., Yuan, S. -W., Shen, Y. -M. Surface modification with BSA blocking based on in situ synthesized gold nanoparticles in poly (dimethylsiloxane) microchip. Colloids Surf, B. 75 (2), 608-611 (2010).
  36. Hideshima, S., Sato, R., Inoue, S., Kuroiwa, S., Osaka, T. Detection of tumor marker in blood serum using antibody-modified field effect transistor with optimized BSA blocking. Sens Actuator B-Chem. 161 (1), 146-150 (2012).
  37. Zheng, C., et al. High-throughput immunoassay through in-channel microfluidic patterning. Lab on a Chip. 12 (14), 2487-2490 (2012).
  38. MacLeish, P., Barnstable, C., Townes-Anderson, E. Use of a monoclonal antibody as a substrate for mature neurons in vitro. Procs Nat Acad of Sci. 80 (22), 7014-7018 (1983).
  39. Suchodolskis, A., et al. Elastic properties of chemically modified baker's yeast cells studied by AFM. Surf Interface Anal. 43 (13), 1636-1640 (2011).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Protein PatterningCell PatterningPDMS MicrochannelsNegative PressureSubstrate DistributionVacuum ApplicationFibronectin PatterningCollagen PatterningDirect Cell PatterningIndirect Cell Patterning

Related Articles