מאמר שיטה

הטכניקה של פולשנית התרחבות אבי העורקים רוחבי בעכברים עבור אינדוקציה של גדילת

DOI:

10.3791/56231

⸱

25 בספטמבר 2017

 ,  ,  ,  , 
1Institute of Veterinary Physiology and Zurich Center for Integrative Human Physiology (ZIHP), University of Zurich, 2Laboratoire d'Innovation Thérapeutique, UMR7200, Université de Strasbourg - CNRS, 3Department of Cardiology, Canton Hospital Lucerne

במאמר זה

סיכום

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

המטרה של פרוטוקול זה היא לתאר צעד אחר צעד הטכניקה של פולשנית רוחבי אבי העורקים הכיווץ (טק) בעכברים. על ידי חיסול של צנרור ואוורור אשר הכרחיות עבור הליך רגיל בשימוש נפוץ, טק פולשנית ומפשט את תהליך פעיל ומפחית את הלחץ על החיה.

תקציר

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

התרחבות אבי העורקים רוחבי (טק) בעכברים הוא אחד של טכניקות כירורגיות הנפוץ ביותר עבור חקירה נסיונית של לחץ יתר-induced עזב חדרית היפרטרופיה (LVH) והתקדמות שלה כדי אי ספיקת לב. ברוב המכריע של החקירות שדווחה, הליך זה מבוצע עם צנרור ואוורור של החיה אשר הופך את תובעניים ולגזול ומוסיף הנטל כירורגי לחיה. המטרה של פרוטוקול זה היא לתאר טכניקה פשוטה של טק פולשנית ללא צנרור ואוורור של עכברים. שלבים קריטיים של הטכניקה מודגשים על מנת להשיג התמותה נמוכה ויעילות גבוהה תוך גרימת LVH.

זכר עכברים C57BL/6 (בן שבוע 10, 25-30 g, n = 60) היו מרדימים עם זריקה אחת בקרום הבטן של תערובת של קטמין חריגות השירותים הווטרינריים. ב נושם באופן ספונטני בעלי חיים לאחר 3-4 מ מ העליון חלקית sternotomy, קטע 6/0 בתפר משי מושחל דרך עינו של מכשיר מצדו היה עבר מתחת לקשת אבי העורקים וקשר על מחט 27-מד קהות. חיות המופעלים המזויפים עברה הכנת כירורגי אותו אך ללא התרחבות אבי העורקים. היעילות של ההליך ב גרימת LVH כתביהם לעליה משמעותית יחס המשקל גוף/לב. יחס זה מתקבל ימים 3, 7, 14, ו- 28 לאחר הניתוח (n = 6-10 בכל קבוצה, בכל נקודת זמן). באמצעות הטכניקה שלנו, LVH נצפית בטק לעומת בעלי החיים המזויפים מיום 7 עד 28 יום. פעיל. ומאחר (מעל 28 ימים) בהירושימה הם שניהם מאוד נמוכה ב- 1.7%.

לסיכום, הטכניקה שלנו חסכונית של טק פולשנית בעכברים נושאת בהירושימה פעיל ואחרי הניתוח נמוך מאוד, יעיל ביותר ב גרימת LVH. זה ומפשט את תהליך פעיל, ומפחיתה את המתח על החיה. זה ניתן בקלות לבצע על-ידי ביצוע השלבים הקריטיים המתוארים פרוטוקול זה.

מבוא

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

במהלך השנים האחרונות, המחקר של אי ספיקת לב נערכה ב קיימא החיה מודלים1. מודלים בעלי חיים קטנים לעומת מודלים בעלי חיים גדולים של אי ספיקת לב, יש יתרונות פוטנציאליים רבים. לצד העלויות הנמוכות של דיור ואחזקה, מודלים בעלי חיים קטנים נגישים לחוקרים יותר בשל המתקנים הדרושים פחות מורכב2.

העכבר אי ספיקת לב דגמים מציעים את היתרונות אותו כמו הדגמים עכברוש. בנוסף דיור מוזל עד עולה3, העכבר מודלים להפיק תועלת הזמינות של זנים (KO) רלוונטי מהונדס, נוק אאוט. האפשרות של תאים ייחודיים לסוג, inducible KO או אסטרטגיות הטרנסגניים הפוך את העכבר כלי יקר ערך ללמוד בפתוגנזה של אי ספיקת לב ולנסות לזהות את הרומן משטרי טיפולית3.

בין העכבר מודלים של אי ספיקת לב בשימוש כיום4, התרחבות אבי העורקים רוחבי (טק) אשר תוארה לראשונה על ידי יובל בנאי-ג'וליה5 הוא הדגם המועדף כדי ליצור לחץ יתר-induced גדילת (LVH)1 , 3. היתרון הגדול ביותר של מודל זה הוא היכולת לאפשר ריבוד של LVH2, למרות עזב חדרית שיפוץ בתגובה טק הוא משתנה בין זנים שונים בעכבר. בפרט, עכברים C57BL/6 לפתח התרחבות מהירה LV לאחר עיגול זה עלולים להופיע עם אחרים זנים4,6,7.

התפרצות פתאומית של יתר לחץ דם מושגת עם טק גורם כ 50% עלייה במסה LV בתוך 2 שבועות, ומאפשר לבחון את הפעילות של התערבויות תרופתי או המולקולריות מכוון להתכוונן על התפתחות LVH4במהירות. תנאי הגיוס חריפה של יתר לחץ דם חמור על ידי טק לא בדיוק לשחזר את גדילת מתקדמת, שיפוץ שנמדדו בסביבה קלינית של באבי העורקים או יתר לחץ דם. עם זאת, מודל זה משמש על ידי חוקרים רבים כדי לזהות ולשנות את הרומן מטרות טיפולית אי ספיקת לב4.

ביצוע טק בעכברים דורש למומחיות הכירורגית גדול יותר מהנדרש לקבלה אחרים טכניקות המשמשות לזירוז LVH ואי ספיקת לב לאחר מכן2. הסופרים לבצע הליך זה באמצעות נלוקסון ואוורור של בעלי חיים2,8, אשר גורם בהליך זה יותר תובעניים ולגזול ומוסיף הנטל כירורגי לבעל החיים. רק כמה חוקרים השתמשו טק פולשנית במחקר שלהם עם התייחסות קצרה הליך כירורגי9,10,11.

המטרה של פרוטוקול זה היא לתאר צעד אחר צעד טכניקה פשוטה וידידותית של פולשנית התרחבות אבי העורקים רוחבי בעכברים, הדגשת השלבים הקריטיים של ההליך. על-ידי ביצוע השלבים הבאים מפתח, באפשרותך לבצע בקלות בטכניקה זו.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

C57BL זכר/6J עכברים (10 שבועות, 25-30 גרם, n = 60) נמצאים בשימוש בפרוטוקול זה. בעלי החיים מקבלים טיפול אנושי תואם ההנחיות שגובשו על ידי משרד הצרפתי של החקלאות ושל ההשכלה הגבוהה והמחקר, כל הפרוצדורות מתבצעות לפי ההנחיה מועצת הקהילה האירופית של 24 בנובמבר 1986 ( 86/609/EEC) ואת החוקים צרפתי. הפרוטוקול שאושר על ידי " הוועדה המחוזית אתיקה CREMEAS ניסויים בבעלי חיים " (#2016092816207606).

1. הכנה לניתוח

  1. לשמור על העכברים במשך שבוע לאחר ההגעה במתקן בעל חיים על מחזור/כהה h 12h 12, בכלובים רגילים, עם מזון (לפרטים ראה טבלה של החומרים) ומים זמינים ad libitum.
  2. ביום של המבצע, להציב העכברים בכלובים בודדים כמה דקות לפני אינדוקציה של הרדמה, כדי למנוע כל מתח נוסף לחיה. לחטא כלי ניתוח כל יום לפני הניתוח.
  3. Intra-peritoneally מזריקים מנה אחת של תערובת של קטאמין (51.4 מ"ג/ק"ג) חריגות השירותים הווטרינריים (3.3 מ"ג/ק"ג) מדולל בתמיסת (0.9% NaCl).
  4. לוודא עומק ההרדמה בגלל היעדר רפלקס הבוהן-retreat.
  5. לגלח בצוואר ובחזה של החיה עם תער זמינים מסחרית ולחטא את האזור מגולח עם אלכוהול 70%-
  6. למקם את החיה פרקדן על משטח עבודה נקי הפקק ולתקן את כפות רגליו עם דבק.

2. ניתוח

  1. סטרילי טכניקה כירורגית משמש לאורך כל ההליכים. בנושם באופן ספונטני חיה, לבצע חתך בצוואר הרחם אורכי קו האמצע מעל 10 מ מ בסכין. סכין מספר 11 מן הרמה העל-בחזה ובצלעות בחזה האמצעי על מנת לחשוף את עצם החזה ( איור 1).
  2. משכי בלוטת התריס ע י העברת בתפר פוליפרופילן השהייה ב 4/0 monofilament עם Crile-עץ המחט והדבק על משטח עבודה.
  3. נפרדים שמותחת את שרירי הנשימה מראש עם מלקחיים מיקרו-כירורגי לחשוף את קנה הנשימה.
  4. שקופית בעדינות חלקה שקצהו מעוקל מיקרו-כירורגי מלקחיים עם הלסתות סגור מעל קנה הנשימה, מאחורי עצם החזה.
  5. על ידי בקפידה פתיחה וסגירה מלתעות שקצהו חלקה מעוקל המיקרוכירורגית המלקחיים לבצע עמום תחת שרירי הנשימה מראש, מאחורי עצם החזה להרחיק את קרום הריאות.
  6. את השרירים נכון העל-בריחי עם המלקחיים ישר מיקרו-כירורגי שקצהו חלקה ומשוך בעדינות החזה של החיה למעלה.
  7. שקופית בלסת נחות של אוחז העצם מתחת לעצם החזה ולבצע של 3-4 מ מ העליון חלקית sternotomy ( איור 2). לכוון את החלק התחתון של המיני-sternotomy מעט לכיוון צד שמאל.
  8. עוברים monofilament 7/0 פוליפרופילן השהייה בתפר מ פנימה אל מחוץ לחלל הבין-צלעי השני בכל צד של המיני-sternotomy באמצעות בעל מחט מיקרו-כירורגי. . הישאר קרוב costo-פצע כדי למנוע פציעות הבין-צלעי וספינות בית החזה הפנימי או קרום הריאות.
  9. להפיץ את הקצוות בחזה ובצלעות באמצעות 7/0 monofilament פוליפרופילן התפרים בכל צד ולפתור אותן על משטח עבודה עם דבק.
  10. בעדינות להזיז הצידה את השרירים מראש בקנה הנשימה, שומן mediastinal, התימוס באמצעות שקצהו חלקה מעוקל מלקחיים המיקרוכירורגית להמחיש את קשת אבי העורקים תחת הגדלה צריכת חשמל נמוכה (2-3 X) ( איור 3). . שמור על עצמך מסוים לא כדי לגעת או נזק אדר הקודקוד כדי למנוע התפתחות חזה אוויר.
  11. לחשוף את הרקמות הרכות מתחת לקשת אבי העורקים על ידי קשירת מלקחיים ( איור 4 א), מורחים בעדינות לסתותיו. להכין מנהרה ברקמות הרכות מתחת לקשת אבי העורקים עם מלקחיים קשירת השני על ידי פתיחה וסגירה של הלסתות ברקמות הרכות בעדינות.
  12. לעבור קטע של 6/0 קשירה משי מושחל דרך עינו של מכשיר מצדו ( איור 4 B) החזיק ביד שמאל מתחת לקשת אבי העורקים ולאחזר אותה על ידי קשירת מלקחיים החזיק ביד ימין בין מקור נכון innominate ושמאלה נפוצות עורק ( איור 5).
  13. לחתוך מחט 27-מד באורך של 5 מ מ, קהה בשני הקצוות על ידי לחיצה על אותם עם בעל מחט Crile. למקם את מחט בקוטר 27 קהות בסמוך לקשת אבי העורקים ( איור 6) עם מלקחיים ישר מיקרו-כירורגי שקצהו חלקה, לקשור את התפר בנוחות סביב המחט העורקים בין שמאלה וימינה innominate שחתך את עורק הצוואר העורקים עם המלקחיים שני קשירה ( איור 7). כדי לקשור בקלות לכף את התפר, מבצעים של קשר כפול הראשונית ולאחריה ארבעה קשרים נוספים. ודא כי כל הקשרים הם שטוחים.
  14. לאחר מצדו, להסיר במהירות אבל בעדינות את המחט כדי להשיג 0.4 מ מ קוטר היצרות כיווץ העורקים לשחזור רוחבי 65-70%-
  15. בדוק hemostasis של הרקמות הרכות סביב הקימור אבי העורקים, של קצוות בחזה ובצלעות, שרירי הנשימה מראש. לשים גזה hemostatic resorbable בכל מקום נוטף דם נצפית. הסר פוליפרופילן monofilament 7/0 להישאר התפרים בשימוש להפצת הקצוות בחזה ובצלעות.
  16. לעבור פשוט 6/0 monofilament בתפר פוליפרופילן עם בעל מחט מיקרו-כירורגי מ מחוץ ל בתוך המרחב הבין-צלעי השני השמאלי ולאחר מכן מ בתוך מחוץ הרווח הבין-צלעי השני נכון. . הישאר קרוב costo-פצע כדי למנוע פציעות הבין-צלעי וספינות בית החזה הפנימי או קרום הריאות.
  17. להפגיש הקצוות בחזה ובצלעות על ידי קשירת monofilament 6/0 בתפר פוליפרופילן עם Crile-עץ המחט.
  18. לסגור את העור עם פוליפרופילן 5/0 monofilament פועל תפר בשכבה אחת עם Crile-עץ המחט.
  19. ביצוע ההליך דמה זהה לפעולת הכיווץ אך ללא קשירה בתפר סביב העורקים.

3. ההחלמה לאחר הניתוח

  1. לפקח מקרוב מאוד את החיות. להעביר את העכבר לכלוב הפרט ולמקם אותו במצב של שכיבה-
  2. אפשר בעכבר כדי לשחזר מתחת לאור התחממות כדור הארץ עד מלא ער (פחות מ 1 h לאחר גרימת הרדמה).
  3. על שיכוך כאבים לאחר הניתוח, מזריקים 0.1 מ"ג/ק"ג של הבופרנורפין intraperitoneally. חזור על זריקות תת עורית של 0.1 mg/kg של הבופרנורפין כל 8 שעות עבור שלושת הימים הראשונים, כפי שמצוין.
  4. מקום העכברים המופעלים בכלובים רגילים (מקסימום 3 עכברים לכל כלוב) ועכברים 2 מינימלי לכל כלוב.

4. לב קציר

  1. ביום של ניתוח, המתת חסד את העכבר עם פתרון של קטמין 300 מ"ג/ק"ג, חריגות השירותים הווטרינריים 20 מ"ג/ק"ג בתוך תמיסת מלח על ידי זריקה בקרום הבטן.
  2. לקצור קודם כל הדם הכלילי התחתון, ולאחר מכן דרך באותה השורה הוסף 5 מ של תמיסת 2.6 מ מ EDTA בתוך תמיסת מלח.
  3. לקצור את הלב, להסיר את אטריה, משקל הלב (החדרים ימינה ושמאלה בלי אטריה).
  4. השמאל להפריד ventr נכוןקפואה עם מחצה הנותרים את החלק השמאלי. שוקלת שתי דגימות רקמה ולהקפיא אותן בחנקן נוזלי.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

פעיל. ומאחר הישרדות
פעיל ההישרדות היה גבוה מאוד, 98.3% (59 מתוך 60) של הסידרה כולה (טק ובעלי המופעלים דמה). פעיל רק מותו היה בגלל סיבוך דימום בעכבר מהוקצע לפעולה המזויפים. הישרדות לאחר הניתוח במהלך התצפית של 28 ימים גם היה מצוין, ב 98.3% (58 מתוך 59). רק לאחר מותו לאחר הניתוח אירע עכבר טק ביום (D) 16, ואולי של מקור לבבי.

אימות של הטכניקה
הטכניקה הציג הוא אמין מאוד לשחזור. המיקום הנכון של ה...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

המטרה של פרוטוקול זה היא להציג דוגמה צעד אחר צעד של טכניקה כירורגית פולשנית התרחבות אבי העורקים רוחבי בעכברים. תיאור טכני מפורט של התרחבות אבי העורקים רוחבי בעכברים דווחה על-ידי סופרים אחרים,2,8. עם זאת, חוקרים אלה לבצע ניתוח בעקבות צנרור ואוורור של בעלי חיים. השימוש צעד נוסף של צנרור-איוורור מגביר את המורכבות ואת משך הזמן של כל התהליך ואת הלחץ העולמי החיה הוא חשוף. מסיבות אלו, קיבלה המושג פולשנית התרחבות אבי העורקים רוחבי קצת תשומת לב. הכיווץ של אבי העורקים רוחב...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

המחברים יש אין ניגוד אינטרסים לחשוף.

תודות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

עבודה זו נתמכה על ידי מענק (N ° 32016) של קרן לב וכלי דם שוויצרי כדי RT.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
מיקרוסקופ כירורגיOlympusSZX2-TR30
סכין גילוחRowentaNomad TN3650FO
<חזק>תפרים:
פוליפרופילן 7/0EthiconBV-1X
פוליפרופילן 6/0BBraunC0862061
משי 6/0 קשירה FST18020-60
פוליפרופילן 4/0Ethicon8683
פוליפרופילן 5/0EthiconZ303
<חזק>תרופות: < / חזק >
קטמיןמריאלImalgè ne 1000, LBM154AD
XylazineBayerRompun 2%, KP09PPC
BuprenorphineCevaVetergesic, 072013
<חזק>מכשירים: 
ציפורני עצםכלים כירורגיים עדינים16101-10
עזר קשירהכלים כירורגיים עדינים18062-12
מלקחיים קשירתכלים כירורגיים עדינים18026-10
מחזיק מחטכלים כירורגיים עדיניםמעץ קרייל 12003-15
מלקחיים מיקרו-כירורגיים כלים כירורגיים עדינים11003-12
מלקחיים מיקרו-כירורגיים כלים כירורגיים עדינים11002-12
מלקחיים לרקמותכלים כירורגיים עדינים11021-12
מחזיק מחט מיקרוכירורגיהכלים כירורגיים עדינים12076-12
מספריים מיקרוכירורגיהכלים כירורגיים עדינים91501-09
מספריים מאיוכלים כירורגיים עדינים14511-15
סכין 11 להביםכירורגית עדינה כלים10011-00
<חזק>מיצוי RNA ו-qPCR:
TriReagentEuromedexTR-118-200
Rneasy Mini kitQiagen74704
Qubit בדיקת RNA פלואורמטריתפישר סיינטיפיק10034622
RNA 6000 ערכת ננוAgilent5067-1511
ערכת cDNA בקיבולת גבוההפישר סיינטיפיק10400745
טקמן מאסטר מיקספישר סיינטיפיק10157154
טקמן BNP פריימריםפישר סיינטיפיקMm01255770_g1
תקמן ANPפישר סיינטיפיקMm01255747_g1 
פריימרים Taqman ACEFisher ScientificMm00802048_m1
Taqman Col1a1 פריימרים פישר סיינטיפיקMm00801666_g1
טקמן TGFb פריימריםפישר סיינטיפיקMm01178820_m1
טקמן גפד פישרסיינטיפיקMm99999915_g1
ABIPrism  ThermocyclerApplied Biosystems7000
<חזק>תוכנה:
GraphPad פריזמהGraphPadפריזמה 7
<חזק>מזון מן החי
תזונה מלאה לחולדות/עכברים בוגריםבטוחUB220610R

מקורות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Molinari, F., Malara, N., Mollace, V., Rosano, G., Ferraro, E. Animal models of cardiac cachexia. Int. J. Cardiol. 219 (15), 105-110 (2016).
  2. Tarnavski, O. Mouse surgical models in cardiovascular research. Methods. Mol. Biol. 573, 115-137 (2009).
  3. Verma, S. K., Krishnamurthy, P., Kishore, R., et al. Transverse aortic constriction: a model to study heart failure in small animals. Manual of Research Techniques in Cardiovascular Medicine. Ardehali, H. , Wiley, J., & Sons. 164-169 (2014).
  4. Patten, R. D., Hall-Porter, M. R. Small animal models of heart failure. Development of novel therapies, past and present. Circ. Heart Fail. 2 (2), 138-144 (2009).
  5. Rockman, H. A., et al. Segregation of atrial-specific and inducible expression of an atrial natriuretic factor transgene in an in vivo murine model of cardiac hypertrophy. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 88 (18), Erratum in: Proc. Natl. Acad. Sci. USA Page 9907 8277-8281 (1991).
  6. Barrick, C. J., Rojas, M., Schoonhoven, R., Smyth, S. S., Threadgill, D. W. Cardiac response to pressure overload in 129S1/SvImJ and C57BL/6J mice: temporal- and background-dependent development of concentric left ventricular hypertrophy. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 292 (5), 2119-2130 (2007).
  7. Deschepper, C. F., Olson, J. L., Otis, M., Gallo-Payet, N. Characterization of blood pressure and morphological traits in cardiovascular-related organs in 13 different inbred mouse strains. J. Appl. Physiol. 97 (1), 369-376 (2004).
  8. Almeida, A. C., van Oort, R. J., Wehrens, X. H. T. Transverse aortic constriction in mice. J. Vis. Exp. (38), April 21 (2010).
  9. Hu, P., Zhang, D., Swenson, L., Chakrabarti, G., Abel, E. D., Litwin, S. E. Minimally invasive aortic banding in mice: effects of altered cardiomyocyte insulin signaling during pressure overload. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 285 (3), 1261-1269 (2003).
  10. Faerber, G., et al. Induction of heart failure by minimally invasive aortic constriction in mice: Reduced peroxisome proliferator-activated receptor ϒ coactivator levels and mitochondrial dysfunction. J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 141 (2), 492-500 (2011).
  11. Andersen, N. M., Tang, R., Li, L., Javan, H., Zhang, X. Q., Selzman, C. H. IKK-β inhibition prevents adaptive left ventricular hypertrophy. J. Surg. Res. 178 (1), 105-109 (2012).
  12. Nemska, S., Monassier, L., Gassmann, M., Frossard, N., Tavakoli, R. Kinetic mRNA profiling in a rat model of left ventricular hypertrophy reveals early expression of chemokines and their receptors. PLoS ONE. 11 (8), 0161273(2016).
  13. Liao, Y., et al. Echocardiographic assessment of LV hypertrophy and function in aortic-banded mice: necropsy validation. Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 282 (5), 1703-1708 (2002).
  14. Stansfield, W. E., et al. Characterization of a model to independently study regression of ventricular hypertrophy. J. Surg. Res. 142 (2), 387-393 (2007).
  15. Beetz, N., et al. Ablation of biglycan attenuates cardiac hypertrophy and fibrosis after left ventricular pressure overload. J. Mol. Cell. Cardiol. 101, December 145-155 (2016).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

בקש הרשאה לשימוש חוזר בטקסט או באיורים של מאמר JoVE זה

בקש הרשאה

תגיות

TACSham

מאמרים קשורים