Method Article

בדיקת עמידות הגלוקוז בקרום הבטן, מדידה של תפקודי ריאה של קיבעון של הריאה לחקור את ההשפעה של השמנת יתר, חילוף חומרים לקוי על תוצאות ריאתי

DOI:

10.3791/56685

March 15th, 2018

In This Article

Summary

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

השכיחות של השמנת יתר עולה ומגבירה את הסיכון של מחלות ריאה כרונית. להקים את המנגנונים שבבסיס ואת אסטרטגיות מניעה, חיה מוגדרים היטב דרושים מודלים. כאן, אנו מספקים שלוש שיטות (גלוקוז-סובלנות-בדיקה, הגוף plethysmography של הריאה קיבוע) לחקור את ההשפעה של השמנת יתר על תוצאות ריאתי בעכברים.

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

השמנת יתר בעיות נשימה בעיות בריאות קשות בקרב אנשי עסקים ותיירים כאחד. השמנת יתר הופכת למגיפה המתעוררים עם מספר הצפוי של מעל 1 מיליארד אנשים שמנים ברחבי העולם 2030, ובכך המייצג נטל חברתי-כלכלי הולך וגדל. במקביל, הקשורות להשמנת יתר מחלות רקע, כולל סוכרת, כמו גם מחלות ריאה כרוניות, והלב הם ברציפות בעלייה. למרות ההשמנה נמצא קשור לסיכון מוגבר עבור אסטמה exacerbations, החמרה של תסמינים נשימתיים, ושליטה המסכן, תפקיד פונקציונלי השמנה וחילוף החומרים מודאג בפתוגנזה של מחלת ריאות כרונית היא לעתים קרובות underestimated, ולהישאר המנגנונים המולקולריים שבבסיס חמקמק. מאמר זה שואף להציג את השיטות כדי להעריך את ההשפעה של השמנת יתר על חילוף החומרים, כמו גם ריאות מבנה ותפקוד. כאן, אנו מתארים שלוש טכניקות ללימודי עכברים: (1) ובחינת בקרום הבטן גלוקוזה (ipGTT) כדי לנתח את השפעת השמנת יתר על חילוף החומרים של הגלוקוז; (2) מידת ההתנגדות דרכי הנשימה (במיל ') ותאימות מערכת הנשימה (Cdyn) כדי לנתח את השפעת השמנת יתר על תפקוד הריאות; (3) אופן ההכנה, קיבוע של הריאה להערכת היסטולוגית כמותיים הבאים. מחלות ריאה הקשורים להשמנה הם כנראה multifactorial, הנובעות מערכתית dysregulation דלקתיות וחילוף זה פוטנציאל לרעה על תפקוד הריאות ואת התגובה לטיפול. לכן, מתודולוגיה מתוקננת ללמוד המנגנונים המולקולריים ואת השפעת טיפולים חדשניים חיוני.

Introduction

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

על-פי ארגון הבריאות העולמי (WHO) בשנת 2008, יותר מ- 1.4 מיליארד מבוגרים, בגילאי 20 ומעלה, היו בעלי משקל עודף עם מדד מסת הגוף (BMI) גדול או שווה ל- 25; יתר על כן, יותר מ-200 מיליון אנשים, כמעט 300 מיליון נשים היו שמנים (BMI≥30)1. השמנת יתר תסמונת מטבולית גורמי סיכון עיקריים עבור מספר רב של מחלות בקרב אנשי עסקים ותיירים כאחד. בעוד השמנת יתר, והמצוות מוגברת שומן לבן מסה בצורה אינטימית נקשר הקלד2,2 סוכרת3, מחלות קרדיו-וסקולרית, כולל מחלת לב כלילית (CHD), אי ספיקת לב (HF), פרפור פרוזדורים4 דלקת מפרקים ניוונית5, תפקידיהם פונקציונלי בפתוגנזה של הפרעות נשימה נשארים ממעטים להבין. עם זאת, מחקרים אפידמיולוגיים הדגימו כי השמנת יתר הוא קשור מאוד עם נשימה כרוניות, כולל exertional קוצר נשימה, תסמונת דום נשימה בשינה חסימתית (OSAS), השמנת יתר hypoventilation תסמונת (OHS), כרונית מחלת ריאות חסימתית (COPD), תסחיף ריאתי, שאיפה דלקת ריאות, אסטמה6,7,8,9. מנגנונים פוטנציאליים קישור השמנה וחילוף החומרים מודאג, למשל, עמידות לאינסולין ועל סוג סוכרת II, בפתוגנזה של מחלת ריאות כרונית לא רק מהווים ההשלכות מכני והפיזי של משקל רווח אלא גם אוורור זירוז של המדינה דלקתית כרונית subacute10,11. עלייתו של השמנת יתר, מחלות ריאה בעשור האחרון, יחד עם העדר אסטרטגיות מניעה אפקטיביות וגישות טיפוליות, מדגיש את הצורך לחקור את המנגנונים המולקולריים להגדרת דרכים חדשות כדי לנהל ריאות הקשורות להשמנת יתר מחלות.

כאן, אנו מתארים שלוש בדיקות תקן, אשר הם יסודות חשוב לחקור ההשמנה והשפעתה על ריאות מבנה ותפקוד במודלים של העכבר: גלוקוז (1) בקרום הבטן סובלנות (ipGTT) (2) מדידה של דרכי הנשימה ההתנגדות (במיל '), מערכת הנשימה תאימות מערכת (Cdyn); (3) אופן ההכנה, קיבוע של הריאה להערכת היסטולוגית כמותיים הבאים. IpGTT הוא מבחן הקרנה חזקה כדי ספיגת הגלוקוז מידה, ולכן ההשפעה של השמנת יתר על חילוף החומרים. הפשטות של השיטה מאפשרת סטנדרטיזציה טוב, ולכן את comparability של תוצאות בין מעבדות. שיטות מתוחכמות יותר, כמו מלחציים hyperglycemic או מחקרים על איים מבודדים, יכול לשמש לניתוח מפורט של פנוטיפ מטבולית12. כאן נוכל להעריך גלוקוזה להגדרת מצב הקשורים להשמנה של הפרעה מערכתית וחילוף כבסיס ללימודי על תוצאה ריאתי. כדי להעריך את ההשפעה של השמנת יתר, הפרעות מטבוליות על תפקודי ריאה, מדדנו התנגדות דרכי הנשימה (במיל ') ותאימות מערכת הנשימה (Cdyn). לאפיון מחלות ריאה, שיטות ערככם וכן מאופקת עבור הערכה של תפקוד הריאות הינם זמינים. Plethysmography ערככם במעבר בחופשיות חיות מחקה מצב טבעי, המשקף את דפוסי נשימה; לעומת זאת, שיטות פולשניות, כגון מדידת עכבת Res, cDyn בעכברים עמוקות ומורדמת ולהעריך מכניקת ריאות דינמי, הן מדויקות יותר13. מאז כרוניות בדרכי הנשימה משתקפים על ידי שינויים היסטולוגית של רקמת הריאה, ריאות תקין קיבוע לצורך ניתוח נוסף הוא בלתי נמנע. הבחירה של השיטה של קיבוע הרקמה והכנות תלוי התא של הריאה אשר להילמד, לדוגמה, ניצוח איירווייז או parenchyma הריאה14. כאן, אנו מתארים שיטה המאפשרת הערכה כמותיים של דרכי הנשימה ניצוח לחקור את ההשפעה של השמנת יתר על פיתוח אסטמה.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

כל ההליכים בבעלי חיים נערכו בהתאם לפרוטוקולים אושרו על ידי רשויות מקומיות (קרקע NRW, AZ: 2012.A424), היו בהתאם לחוק הגרמני רווחת בעלי חיים והתקנון על רווחתם של בעלי החיים שבהם משתמשים עבור ניסויים או למטרות מדעיות אחרות. מאז ניתוח תפקוד הריאות עלולה להשפיע על מבנה הריאות ומנתח הבאים ולכן היסטולוגית, מדידת Res Cdyn, הכנה ואת קיבוע של הריאה עבור histomorphometry צריכה להתבצע בבעלי חיים שונים. עם זאת, מדידה של מיל ו- Cdyn בעקבות ipGTT אפשרי. מאז מתח במהלך ipGTT עלולה להפריע בהרדמה לצורך תפקוד הריאות בדיקות, תקופת ההחלמה כשבועיים לאחר ipGTT מומלץ לאפשר עכברים להתאושש ירידה במשקל הגוף ושינוי פרמטרים דם12.

1. הכנה בדיקת עמידות הגלוקוז בקרום הבטן (ipGTT)

הערה: לאחר 12 שעות של צום, ipGTT השלם לוקח כ 2 h.

  1. מאז הלחץ משפיע על רמת הסוכר בדם באופן משמעותי, ודא כי שני התאקלמות של עכברים, כמו גם הכשרה של המדען, מבוצעות.
  2. העברת החיות לאזור הניסוי בתנאים שקטה ורגועה.
  3. שקול את היישום של דיאטה hypercaloric לזירוז השמנת יתר בעכברים. עיין בסעיף הדיון לייעוץ נוסף.
  4. חיות מהירות של 12 שעות בין לילה, מבלי להגביל גישה למים. למחרת, לאחר 12 שעות של צום, הכנת מד הסוכר הדם על פי היצרן של פרוטוקול (ראה טבלה של חומרים) על-ידי הוספת ציור נסיון החדשות ליציאת רצועת הבדיקה.
  5. פצעים וחתכים בקצה הזנב באמצעות מספריים סטרילי, תוך שמירה על העכבר על זנבו, בעדינות, מיד למדוד את רמת הסוכר בדם התענה על-ידי החלת טיפה דם זורמת (מינימום מדגם בגודל 0.5 µL) רצועת הבדיקה של מד גלוקוז בדם.
    הערה: טיימר מתחיל על המסך לאחר יישום מספקת דגימת הדם. לאחר 4 s, תוצאת הבדיקה מופיעה על המסך.
  6. לאחר מכן, שוקל, תווית החיות בנפרד באמצעות צבע סימון.
  7. לנהל דור 2 גלוקוז/ק"ג גוף במשקל באמצעות בקרום הבטן הזרקה. ודא כי אמצעי האחסון הזרקת 0.1 מ"ל/10 גרם משקל (27 G מחט, מזרק 1 סמ ק).
  8. לאחר מכן, למדוד רמת הסוכר בדם אחרי 15, 30, 60, 120 דקות על-ידי החלת טיפת דם זורמת למפצל מבחן חדש.
    הערה: זרימת הדם יכול להיות מוגברת על ידי עיסוי עדין של המחלקות הקצה הזנב. אם הפצע זנב encrusts, נקה אותו באמצעות מקלון סטרילי ספוגה פתרון נתרן כלוריד 0.9%.
  9. לאפשר את החיות לנוח בכלובים שלהם הביתה עם גישה בלתי מוגבלת למים בין המדידות.

2. ריאות ניתוח פונקציה מדידה Res, cDyn

הערה: למדידה ללא הפרעה בין Res cDyn, עכברים צריך להיות מאוורר תחת הרדמה עמוקה. נטולת מתחים לטיפול בבעלי חיים, פיקוח נאות של הרדמה חיוניים. לקבלת הוראות כלליות תוך שימוש בטכניקות סטריליות, נא עיין במאמר על-ידי Hoogstraten-מילר. et al. 15

  1. לכייל את היא תגלה לפני כל קבוצה של ניסויים ולהכין את ההגדרות מחקר בתוך התוכנה (ראה טבלה של חומרים).
  2. לפני הניתוח, עמוק עזים ומתנגד חיות דרך בקרום הבטן הזרקה של חריגות השירותים הווטרינריים (10 מ"ג/ק"ג משקל גוף), קטמין (100 מ"ג/ק"ג משקל גוף) (27 G מחט, מזרק 1 סמ ק). ודא כי אמצעי האחסון הזרקת 0.1 מ"ל/10 גרם לכל משקל גוף.
    הערה: מאז קטמין יש אפקט כאבים נאות בעכברים, אין טיפול כאב נוסף הכרחי. הליך פולשני והכו אותי קטטר/היא תגלה אורכת כ- 5-7 דקות, ולאחר מכן הנתונים יכול להתחיל.
  3. הנח את העכבר במצב פרקדן על כרית החימום כדי לשמור על טמפרטורת הגוף.
  4. מכסים את העיניים עם משחה למניעת יובש תחת הרדמה.
  5. כל הזמן לפקח על העומק של הרדמה באמצעות הבוהן קמצוץ-התגובה.
    הערה: ממשל נוספים של הרדמה ייתכן הדרוש לשמירה על מטוס כירורגי של הרדמה.
  6. להרטיב את הפרווה של האזור כירורגי באזור בלוטת התריס עם 70% אתנול.
  7. בזהירות פצעים וחתכים האמצע עבור 1 ס מ בין החריץ צוואר של עצם החזה symphyses פקעת של mentum העור באמצעות הרמת אותו עם מלקחיים חיתוך העור תחת בדיקה ויזואלית באמצעות מספריים בוטה (איור 1 א').
  8. דמיינו את רקמת השומן התת עורית הבסיסית ואת בלוטת התריס.
  9. חושפים את קנה הנשימה על ידי בקפידה בוטה המפריד בין שתי אונות בלוטת התריס מצר, דיסקציה של sternothyroid ושל sternothyroid השרירים (איור 1B). להיזהר לא לפגוע בכל כלי, לגרום לדימום, מאחר שהדבר עלול לגרום השפעות שליליות על מערכת הלב וכלי הדם, ובסופו של דבר על המדידות.
  10. לאחר מכן, תעביר בתפר כירורגי קלועה 4-0 בין הנשימה לבין הוושט באמצעות מלקחיים בוטה. בזהירות פצעים וחתכים קנה הנשימה קרוב הגרון בין הסחוסים והכו אותי עם מספריים מיקרו.
  11. לצנרר עם צינור הנשימה (0.04 אינץ/1.02 מ"מ קוטר) תחת שליטה ויזואלית (איור 1C). לתקן את הצינור דרך מצדו עם תפירה כדי למנוע נזילה במערכת.
  12. הבא, להעביר את החיה המיטה מחוממת של גוף התא, לחבר את הצינור בקנה הנשימה לצלחת הפנים (איור 1D) והפעל האוורור על-ידי לחיצה על כפתור אוורור בלוח הקדמי של הבקר (איור 1E).
  13. סקר האוורור על ידי התבוננות את תנועת בית החזה contemporaneously עם קצב האוורור. כדי לאשר השמה נכונה של הצינור בקנה הנשימה, ודא כי שני הצדדים של בית החזה להעביר בו זמנית.
  14. . שימו לב ללחץ אות על מסך המחשב (איור 1F). ודא עקומות אוורור אחיד. אם זה לא המקרה, לנתק את החיה, נבדוק את הצד ניתוח. היזהרו דם או ליחה חוסמת את הצינור בקנה הנשימה.
    הערה: לבעלי-חיים למבוגרים עם משקל הגוף של 20-25 גרם, ההגדרות הנשמה כמודגם באיור 2 הם הציעו בהתאם להמלצות היצרן.
  15. כדי לשלוט שינויי הלחץ הטרנס-ריאות במהלך אוורור, הכנס של צינור הוושט (0.04 אינץ/1.02 מ"מ קוטר) לתוך הוושט בעומק המעריכה את הרמות של הריאות. תסתכל על המסך בעת הנחת הצינור. במקום שבו לחץ מקסימלי סטיה וחפצים לב מינימלית ניתן לראות על המסך את הצינור.
  16. לאחר הניתוח, להכין את החיה המדידה. מזריק הרדמה דרך בקרום הבטן הזרקה של קטאמין (100 מ"ג/ק"ג משקל גוף) באמצעות מחט 27-G ו- 1 במזרק cc. ודא כי אמצעי האחסון הזרקת 0.1 מ"ל/10 גרם לכל משקל גוף.
    הערה: כדי להעריך hyperreagibility הסמפונות, nebulize בדיקת אתגור, אגוניסט קולטן מוסקריניים לא בררניים של מערכת העצבים הפאראסימפתטית, אשר גורם bronchoconstriction. חדרי קירור והקפאה מבוצעת בארבעה שלבים שונים (איור 3).
  17. התחל ייבוא נתונים לפי הפרוטוקול manufacturer´s.
    הערה: התוכנה באופן אוטומטי המדריכים משתמשים בתהליך הרכישה.
  18. למרוח את µL 10 ל- PBS (הרכב) מפוחים, ולהתחיל nebulization אחרי 5 דקות של והפיזיולוגי. לאחר מכן, בצע שלב התגובה של 3 דקות, בו נמדדים Res (cmH2O/mL/s), cDyn (mL/cmH2O). בסוף, לספק שלב ההתאוששות של 3 דקות החיה לפני nebulization הבא.
  19. בצע את התוכנה על ידי יישום stepwise µL 10 של הגדלת ריכוזים של בדיקת אתגור (2.5 µL µg/10, µL µg/10 6.25 ו 12.5 µL µg/10) על ההנשמה.
  20. לאחר כל המדידות בוצעו נרשמה, להקריב את החיה על ידי נקע בצוואר הרחם.

3. ריאות בידוד לניתוח Histomorphometric כמותית של עכברים בוגרים

  1. עמוק עזים ומתנגד בבעלי חיים באמצעות בקרום הבטן הזרקה של חריגות השירותים הווטרינריים (10 מ"ג/ק"ג משקל גוף), קטמין (100 מ"ג/ק"ג משקל גוף) (27 G מחט, מזרק 1 סמ ק). אמצעי האחסון הזרקת צריך להיות 0.1 מ"ל/10 גרם לכל משקל גוף.
    הערה: כשמגיעים המדינה של ניתוח רגישות, ההכנה לוקח כ 5 דקות ולאחר מכן על ידי איבר זלוף, 30 דקות עבור קיבעון.
  2. ברגע החיה הגיעה המדינה של ניתוח סובלנות (הבוהן שלילי קמצוץ-תגובה), לחטא את החיה עם 70% אתנול, לתקן את החיה על משטח הדבקה.
  3. להקריב את החיה על ידי ניקוב לב ודימום. בקצרה, לפתוח את הבטן עם חתך המדיאלי דרך העור של הצפק באמצעות מספריים בוטה.
  4. אתר המחלקות ראש הסרעפת של הכבד, ולאחר הפרד בזהירות את הכבד מהסרעפת.
  5. עושים חתך קטן בתוך הסרעפת שימוש במספריים קהים, punctate החדר השמאלי של הלב עם מחט 20 גרם המצורפת מזרק 2-mL. לאט לאט תדמם החיה.
    הערה: דימום למוות איטי וזהיר חשוב למניעת החדרים קורסת בשל הלחץ השלילי, עיכוב של זרימת הדם ללא הפרעה.
  6. לנתח את הריאה על ידי פתיחת בית החזה בעדינות דרך חתך מתחת לכל אורכו של כלוב הצלעות באמצעות מספריים מעוגלים, בוטה.
  7. לאחר מכן, הרם את כלוב הצלעות לחשוף את חלל הצדר (איור 3C). להסיר את בלוטת התימוס כדי לראות את הלב והריאות.
    הערה: הזרקה אופציונלי של החדר הימני, ואחריו זלוף של מערכת כלי הדם בריאה עם PBS קר כקרח, ולאחר מכן עם פתרון מקבע [למשל, 4% (מסה/נפח) paraformaldehyde (PFA)] אפשרי. דע כי יש סיכון מוגבר לקרע septae מכתשי, להשפיע לרעה על מבנה הריאות באמצעות שיטה זו.
  8. לנתח את הריאה על ידי הראשון בזהירות להסיר את הלב.
  9. לאחר מכן, תעביר בתפר כירורגי קלועה 4-0 בין הנשימה לבין הוושט באמצעות מלקחיים בוטה.
  10. בשלב הבא, בזהירות פצעים וחתכים קנה הנשימה קרוב הגרון בין הסחוסים והכו אותי לצנרר עם בצינורית תוך ורידי (26 גרם), לנפח הריאה על ידי לחץ קיבעון, בלחץ קבוע של 20 ס מ H2O באמצעות הסוכן מקבע [למשל, 4% (מסה /volume) של כדורגלן].
  11. עבור כדורגלן קיבעון, להשאיר את מקבע למשך 30 דקות בטמפרטורת החדר. לאחר מכן, מאתרים ומפסיקים את קנה הנשימה ולהסיר את הצינורית. לאחר מכן, לסלק את הריאה בזהירות מבלי לפגוע הרקמה, לאחסן אותו לשבועיים סוכן ב 4 מעלות צלזיוס למשך הלילה.
    הערה: לחלופין, על-פי ATS/החוצנים קונצנזוס נייר 2.5% GA buffered OsO4, אורציל פתרון משמש לייצוב הרקמה הנכונה. הכנה נוספת רקמות, ראית את העיתון הסכמה מאת Hsia. et al. 14

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

נציג תוצאות של בדיקת עמידות הגלוקוז בקרום הבטן (ipGTT) (איור 4), ריאות פונקציה מבחן (איור 5), נציג ותמונות הממחישות hematoxylin ואאוזין מוכתם הריאות (איור 6).

IpGTT בוצעה בעכברים שמנים (כחול) לאחר 7 שבועות של high-שומן-דיאטה (HFD). תקן דיאטה-fed עכברים שימש פקדים (שחור). העכברים המשמינים הראה סרום מוגברת גלוקוז רמות 15 עד 30 דקות לאחר ההזרק...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

דוח זה מספק שלושה פרוטוקולים עבור שלוש שיטות שונות לנתח את השפעת השמנת יתר על מטבוליזם הגלוקוז ותוצאות ריאתי. ראשית, הבדיקה סובלנות גלוקוז מציעה את ההזדמנות כדי לנתח את ספיגת הגלוקוז תאיים, יכול להיות מעיד על עמידות לאינסולין. שנית, כל הגוף plethysmography היא טכניקה כדי למדוד את תפקוד הריאות, ובכך מועיל לבדוק את יעילותם של טיפולים חדשניים. שלישית, פרוטוקול קיבוע מתוקננת חיוני לניתוח כמותי morphometric להעריך את ההשפעה של השמנת יתר על שינויים מבניים.

דיאטה-induced השמנת יתר מחקר בבעלי חיים

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

המחברים אין לחשוף.

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

הניסויים נתמכו על ידי מארגה וולטר בול-Stiftung, Kerpen, גרמניה; פרויקט 210-02-16 (MAAA), פרויקט 210-03-15 (MAAA), על ידי קרן מחקר גרמני (DFG; AL1632-02; MAAA), בון, גרמניה; מרכז לרפואה מולקולרית קלן (CMMC; בית חולים אוניברסיטת קלן; תוכנית לקידום הקריירה; MAAA), הון קלן (הפקולטה לרפואה, אוניברסיטת קלן; KD).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
GlucoMenLX A.Menarini, פירנזה, איטליה38969מד סוכר בדם
GlucoMen LXחיישן A.Menarini אבחון, פירנזה, איטליה39765פסי בדיקה
גלוקוז 20%B. בראון, מלסונג, גרמניה2356746
FinePointe SoftwareDSI, MC s´ Hertogenbosch, הולנד601-1831-002
FinePointe RC שולחן עכבר אתר יחידDSI, MC s´ הרטוגנבוש, הולנד601-1831-001
בקר FPRCDSI, MC s´ Hertogenbosch, הולנד601-1075-001
FPRC Aerosol BlockDSI, MC s´ Hertogenbosch, הולנד601-1106-001
Aerogen neb head-5.2-4umDSI, MC s´ הרטוגנבוש, הולנד601-2306-001
מלקחייםFST, קולומביה הבריטית, קנדה11065-07
מספריים קהיםFST, קולומביה הבריטית, קנדה14105-12
מספריים מיקרו FST, קולומביה הבריטית, קנדה15000-00
Perma-Hand 4-0Ethicon, פורטו ריקו, ארה"ב736Hתפר
כירורגיRoti-Histofix 4%RothP087.14% Paraformaldehyd
KetasetZoetis, ברלין, גרמניה10013389Ketamine
Rompun 2%Bayer, Leverkusen, Germany770081Xylazine
אבחון

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Kelly, T., Yang, W., Chen, C. S., Reynolds, K., He, J. Global burden of obesity in 2005 and projections to 2030. Int J Obes (Lond). 32, 1431-1437 (2008).
  2. Freemantle, N., Holmes, J., Hockey, A., Kumar, S. How strong is the association between abdominal obesity and the incidence of type 2 diabetes? International journal of clinical practice. 62, 1391-1396 (2008).
  3. Wassink, A. M. J., et al. Waist circumference and metabolic risk factors have separate and additive effects on the risk of future Type 2 diabetes in patients with vascular diseases. A cohort study. Diabetic Medicine. 28, 932-940 (2011).
  4. Oktay, A. A., et al. The Interaction of Cardiorespiratory Fitness with Obesity and the Obesity Paradox in Cardiovascular Disease. Progress in cardiovascular diseases. , (2017).
  5. Azamar-Llamas, D., Hernandez-Molina, G., Ramos-Avalos, B., Furuzawa-Carballeda, J. Adipokine Contribution to the Pathogenesis of Osteoarthritis. Mediators Inflamm. 2017, 5468023(2017).
  6. Koenig, S. M. Pulmonary complications of obesity. The American journal of the medical sciences. 321, 249-279 (2001).
  7. Stunkard, A. J. Current views on obesity. The American journal of medicine. 100, 230-236 (1996).
  8. Murugan, A. T., Sharma, G. Obesity and respiratory diseases. Chron Respir Dis. 5, 233-242 (2008).
  9. Zammit, C., Liddicoat, H., Moonsie, I., Makker, H. Obesity and respiratory diseases. International journal of general medicine. 3, 335-343 (2010).
  10. Ouchi, N., Parker, J. L., Lugus, J. J., Walsh, K. Adipokines in inflammation and metabolic disease. Nat Rev Immunol. 11, 85-97 (2011).
  11. McArdle, M. A., Finucane, O. M., Connaughton, R. M., McMorrow, A. M., Roche, H. M. Mechanisms of obesity-induced inflammation and insulin resistance: insights into the emerging role of nutritional strategies. Front Endocrinol (Lausanne). 4, 52(2013).
  12. Ayala, J. E., et al. Standard operating procedures for describing and performing metabolic tests of glucose homeostasis in mice. Disease models & mechanisms. 3, 525-534 (2010).
  13. Bates, J. H., Irvin, C. G. Measuring lung function in mice: the phenotyping uncertainty principle. J Appl Physiol. 94 (1985), 1297-1306 (2003).
  14. Hsia, C. C., Hyde, D. M., Ochs, M., Weibel, E. R. An official research policy statement of the American Thoracic Society/European Respiratory Society: standards for quantitative assessment of lung structure. Am J Respir Crit Care Med. 181, 394-418 (2010).
  15. Hoogstraten-Miller, S. L., Brown, P. A. Techniques in aseptic rodent surgery. Curr Protoc Immunol. Chapter 1, Unit 1 12 11-11 12-14 (2008).
  16. Heydemann, A. An Overview of Murine High Fat Diet as a Model for Type 2 Diabetes Mellitus. Journal of diabetes research. 2016, 2902351(2016).
  17. Asha, G. V., Raja Gopal Reddy, M., Mahesh, M., Vajreswari, A., Jeyakumar, S. M. Male mice are susceptible to high fat diet-induced hyperglycaemia and display increased circulatory retinol binding protein 4 (RBP4) levels and its expression in visceral adipose depots. Archives of physiology and biochemistry. 122, 19-26 (2016).
  18. Jovicic, N., et al. Differential Immunometabolic Phenotype in Th1 and Th2 Dominant Mouse Strains in Response to High-Fat Feeding. PLoS One. 10, e0134089(2015).
  19. Fontaine, D. A., Davis, D. B. Attention to Background Strain Is Essential for Metabolic Research: C57BL/6 and the International Knockout Mouse Consortium. Diabetes. 65, 25-33 (2016).
  20. Muniyappa, R., Lee, S., Chen, H., Quon, M. J. Current approaches for assessing insulin sensitivity and resistance in vivo: advantages, limitations, and appropriate usage. Am J Physiol Endocrinol Metab. 294, E15-E26 (2008).
  21. Heijboer, A. C., et al. Sixteen hours of fasting differentially affects hepatic and muscle insulin sensitivity in mice. Journal of lipid research. 46, 582-588 (2005).
  22. Heikkinen, S., Argmann, C. A., Champy, M. F., Auwerx, J. Evaluation of glucose homeostasis. Current protocols in molecular biology. Chapter 29, Unit 29B.23 (2007).
  23. McGuinness, O. P., Ayala, J. E., Laughlin, M. R., Wasserman, D. H. NIH experiment in centralized mouse phenotyping: the Vanderbilt experience and recommendations for evaluating glucose homeostasis in the mouse. Am J Physiol Endocrinol Metab. 297, E849-E855 (2009).
  24. Ayala, J. E., Bracy, D. P., McGuinness, O. P., Wasserman, D. H. Considerations in the design of hyperinsulinemic-euglycemic clamps in the conscious mouse. Diabetes. 55, 390-397 (2006).
  25. Lodhi, I. J., Semenkovich, C. F. Why we should put clothes on mice. Cell Metab. 9, 111-112 (2009).
  26. Swoap, S. J., Gutilla, M. J., Liles, L. C., Smith, R. O., Weinshenker, D. The full expression of fasting-induced torpor requires beta 3-adrenergic receptor signaling. J Neurosci. 26, 241-245 (2006).
  27. Geiser, F. Metabolic rate and body temperature reduction during hibernation and daily torpor. Annu Rev Physiol. 66, 239-274 (2004).
  28. Mead, J. Mechanical properties of lungs. Physiological reviews. 41, 281-330 (1961).
  29. Lundblad, L. K., Irvin, C. G., Adler, A., Bates, J. H. A reevaluation of the validity of unrestrained plethysmography in mice. J Appl Physiol. 93, 1198-1207 (2002).
  30. Lundblad, L. K., et al. Penh is not a measure of airway resistance! Eur Respir J. 30, 805(2007).
  31. Adler, A., Cieslewicz, G., Irvin, C. G. Unrestrained plethysmography is an unreliable measure of airway responsiveness in BALB/c and C57BL/6 mice. J Appl Physiol. 97, 286-292 (2004).
  32. Fairchild, G. A. Measurement of respiratory volume for virus retention studies in mice. Applied microbiology. 24, 812-818 (1972).
  33. Brown, R. H., Wagner, E. M. Mechanisms of bronchoprotection by anesthetic induction agents: propofol versus ketamine. Anesthesiology. 90, 822-828 (1999).
  34. Goyal, S., Agrawal, A. Ketamine in status asthmaticus: A review. Indian journal of critical care medicine: peer-reviewed, official publication of Indian Society of Critical Care Medicine. 17, 154-161 (2013).
  35. Doi, M., Ikeda, K. Airway irritation produced by volatile anaesthetics during brief inhalation: comparison of halothane, enflurane, isoflurane and sevoflurane. Canadian journal of anaesthesia = Journal canadien d'anesthesie. 40, 122-126 (1993).
  36. Braber, S., Verheijden, K. A., Henricks, P. A., Kraneveld, A. D., Folkerts, G. A comparison of fixation methods on lung morphology in a murine model of emphysema. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 299, L843-L851 (2010).
  37. Weibel, E. R., Limacher, W., Bachofen, H. Electron microscopy of rapidly frozen lungs: evaluation on the basis of standard criteria. Journal of applied physiology: respiratory, environmental and exercise physiology. 53, 516-527 (1982).
  38. Rolls, G. Process of Fixation and the Nature of Fixatives. , (2017).
  39. Winsor, L. Tissue processing. Laboratory histopathology. Woods, A., Ellis, R. , 4.2-1-4.2-39 (1994).
  40. Histochemistry, theoretical and applied. Pearse, A. , Churchill Livingstone. London. (1980).
  41. Weibel, E. R. Morphological basis of alveolar-capillary gas exchange. Physiological reviews. 53, 419-495 (1973).
  42. Bur, S., Bachofen, H., Gehr, P., Weibel, E. R. Lung fixation by airway instillation: effects on capillary hematocrit. Experimental lung research. 9, 57-66 (1985).
  43. Bachofen, H., Ammann, A., Wangensteen, D., Weibel, E. R. Perfusion fixation of lungs for structure-function analysis: credits and limitations. Journal of applied physiology: respiratory, environmental and exercise physiology. 53, 528-533 (1982).
  44. Balcombe, J. P., Barnard, N. D., Sandusky, C. Laboratory routines cause animal stress. Contemporary topics in laboratory animal science. 43, 42-51 (2004).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Intraperitoneal Glucose Tolerance TestLung Function MeasurementLung FixationObesity MetabolismAirway ResistanceRespiratory System ComplianceTracheal IntubationMethacholine ChallengeHistological AssessmentPressure Fixation

Related Articles