הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

טיפול ונקומיצין טעון סולפט סידן ועצמות Autogenous במודל משופר הארנב של זיהום עצם

9K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/57294

⸱

14 במרץ 2019

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Medicine, Zhejiang Academy of Traditional Chinese Medicine, 2Department of Orthopaedic Surgery, Tongde Hospital of Zhejiang Province, 3Institute of Orthopaedics and Traumatology, First Affiliated Hospital of Zhejiang Chinese Medical University, 4Department of Clinical Laboratory, Tongde Hospital of Zhejiang Province

* These authors contributed equally

במאמר זה

סיכום

מחקר זה מציג את הארנב משופרת של מודל נגוע Staphylococcus aureus על ידי חסימת את אותה כמות של חיידקים במח העצם. סולפט סידן ואנקומיצין טעון ועצמות autogenous משמשות לטיפול ותיקון אנטיביוטיקה ועצמות. הפרוטוקול יכול להיות מועיל עבור הלומדים העצם זיהום והתחדשות.

תקציר

עצם התוצאות זיהום מפני פלישה חיידקים, אשר קשה מאוד לטפל בחדר ניתוח הקליני, אורטופדי, טראומטי. הזיהום העצם עלולה לגרום לדלקת ממושכת, דלקת עצם מוגלתית, והמעלית העצם בסופו של דבר. הקמת מודל בעלי חיים ריאלי לשחזור חשובה עצם זיהום מחקר וטיפול אנטיביוטי. כמודל ויוו, דגם ארנב נעשה שימוש נרחב במחקר זיהום של העצם. עם זאת, מחקרים קודמים על הארנב עצם מודלים זיהום כי מצב זיהום הוא לא עקבי, כמו גם כמות החיידקים משתנה. מחקר זה מציג שיטה כירורגית משופרת עבור גרימת זיהום עצם על ארנב, על ידי חסימת החיידק במח העצם. לאחר מכן, הערכות רשתי יכול להתבצע כדי לאמת את שיטת הדוגמנות.

באופן כללי, להסיר רקמות מתות רקמת נמק, השרשה של סידן טעון ואנקומיצין סולפט (VCS) הם השולט טיפול אנטיביוטי. למרות סולפט סידן ב VCS הטבות osteocyte זוחלים, צמיחת עצם חדשה, עצם מסיבית פגמים להתרחש לאחר להסיר רקמות מתות. עצם autogenous (אלב) היא אסטרטגיית מושך כדי להתגבר על עצם פגמים לטיפול של פגמים עצם מסיבית לאחר להסיר רקמות מתות נמק עצם.

במחקר זה, השתמשנו בעצם הזנב כמו עצם autogenous הושתלו בתוך עצם הפגם. עצם תיקון נמדדה באמצעות מיקרו-מחושב-טומוגרפיה (מיקרו-CT) וניתוח היסטולוגית לאחר להקריב חיה. כתוצאה מכך, בקבוצה VCS, עצם והמעלית בעקביות הושג. לעומת זאת, האזורים פגם עצם בקבוצה VCS-AB ירדו באופן משמעותי. שיטת מידול נוכח תיאר שיטה לשחזור, ריאלי, יציב כדי להכין מודל זיהום של העצם. הטיפול VCS-AB הביא נמוכים, והמעלית עצם לאחר טיפול אנטיביוטי. המודל זיהום עצם משופרת והטיפול שילוב של VCS ועצמות autogenous יכולים להיות לעזר בלימוד מנגנוני כבסיס זיהום ועצם התחדשות העצם הרלוונטי ליישומים אורתופדיים טראומה.

מבוא

דלקת העצם נובע בדרך כלל חיידקים או אחרים הפלישה מיקרואורגניזם לאחר טראומה, שבר או מחלות אחרות עצם1. עצם זיהום עלול לגרום רמה גבוהה של דלקת והרס רקמות העצם. במרפאה, Staphylococcus aureus (S. aureus) הוא סוכן סיבתי הדומיננטית של העצם זיהום2,3. הזיהום עצם מכאיב, מתישה, ולוקח בדרך כלל קורס כרונית קשה מאוד לטפל4. בזמן הנוכחי, הטריה של רקמת נמק, השתלת של סידן טעון ונקומיצין (VCS) חרוזים אושרו כמו אסטרטגיית יעיל לשליטה זיהום מקומי5,6. עם זאת, 10% עד 15% מהמטופלים חוו של תהליך התיקון עצם ממושך, מתעכב איחוד או והמעלית לאחר טיפול נגד זיהום7. קטע גדול של פגם עצם הבעיה הקשה ביותר מנתחים אורטופדיים. שתל עצם אוטולוגי נחשב התחליף האופטימלי עצם עצם הטיפול, והמעלית8,9.

נכון להיום, רוב המחקרים על עצם זיהום, עצם אוטולוגי השרשה נערכו בסוגים שונים של מודלים בעלי חיים, כגון חולדות, ארנבים, כלבים, חזירים, כבשים10,11. ארנב מודלים הנפוץ ביותר ללימודים דלקת העצם, כמו הראשונה שבוצעה על-ידי נורדן, קנדי בשנת 197012,13. במחקר הקודם שלנו, השתמשנו מודלים ארנב בעקבות השיטה של נורדן, מצאנו כי הכמות של S. aureus מוזרק מח העצם יכול לא ניתן לכמת במדויק, כפי דולף הדם. מח עצם הוביל חיידקים פתרון גלישה.

מאמר זה מציג שיטה כירורגית משופרת עבור גרימת זיהום עצם על ארנבים. בסופו של ההליך, בדיקת דם לביוכימיה, בדיקה בקטריולוגית של היסטופתולוגיות בוצעו כדי לאמת את המודל זיהום של העצם. לאחר מכן, VCS הושתל לעכב זיהום, עצם autogenous הושתל לקדם התחדשות העצם.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

ארנבים השתמשו במחקר הנוכחי טופלו לפי המדריך על טיפוח ועל שימוש של חיות מעבדה. כל ההליכים ניסיוני הובילו את החוקים של ביואתיקה הוועדה של ג'ה-ג'יאנג האקדמיה של הרפואה הסינית המסורתית.

1. הכנת ההשעיה חיידקי

  1. להמיס 0.5 מ ג של S. aureus ליופיליזציה אבקת (בקרת האוויר 6538) עם mL 0.3 לוריא-Bertani תרבות בינוני. מערבבים התלוי לחלוטין.
  2. צובעות את המתלים חיידקים על פלטות אגר סויה tryptic, דגירה מושבות חיידקים ב 37 מעלות צלזיוס במשך 16 שעות.
  3. בחר מושבת חיידקים יחיד ויוצרים יחידה (CFU) ותרבות סויה tryptic צינורות מרק עבור ה 24 בצע גלובלי עבור 24 שעות ב 37 מעלות צלזיוס, ולקבל אמצע-לוגריתמי הצמיחה חיידקים שלב לאחר 16 עד 18 h, כאשר ערך צפיפות אופטית (OD) הוא 0.6-600 nm 14.
  4. העברת 1 מ"ל של השעיה חיידקים לתוך שפופרת צנטרפוגה. צנטריפוגה למשך 5 דקות-825- g ו- 4 ° C, ולמחוק את תגובת שיקוע. Resuspend. ולשטוף את החיידקים עם µL 100 תמיסת פוספט buffered (PBS); חזור על שלב זה 3 פעמים. לבסוף, resuspend חיידקים עם 3 מ"ל של PBS.
  5. מעריכים את ריכוז החיידקים באמצעות של מקפרלנד turbidimetry15.
    1. העברת 100 עד 500 µL של חיידקים השעיה צינור ערכי צבע מוחלטים עד עכירות שווה מקפרלנד 0.5 סטנדרטי.
    2. להעריך עכירות על ידי השוואה חזותית מקפרלנד 0.5, התוכן של חיידקים מגיע כ-108 CFU/mL.
      הערה: ודא כי אמצעי האחסון של חיידקים השעיה מספיקה עבור הפרוטוקולים הבאים. עבור כל ארנב, הנפח של חיידקים ההשעיה היא פחות מ 1 מ"ל.
  6. להעביר 0.2 מ"ל של השעיה חיידקי צלחת אגר ולהחיל אותו באופן שווה. דגירה הצלחת ב 37 מעלות צלזיוס במשך 16 ח ספירת מושבות חיידקים כדי לאמת את CFU של חיידקים השעיה.

2. הכנת מודלים זיהום עצם

  1. לשמור זכר בניו זילנד וארנבים לבנים, בגיל 3 חודשים, בכלובים בודדים, תחת תנאים אוויר מבוקר (20 ± 1 ° C) ו- h 12 h 12 מחזורים תאורה בהירה-כהה. מציעים דיאטה שגרתית, ברז מים מדי יום.
  2. להבטיח כי בזמנו של הניתוח כי הארנב שוקל יותר מ- 3 ק ג.
  3. להרדים ארנבים באמצעות בקרום הבטן הזרקת סודיום פנטוברביטל (3 מ ג לכל 100 גרם של משקל הגוף). ודא ארנבים הם מורדם לחלוטין על ידי כשל להגיב הפינצ כפת. לתקן את הארנבים על שולחן הניתוחים במהלך מבצע הליך.
    הערה: ודא לדוגמנות משך ההליך הוא פחות מ 1 h.
  4. גילוח באזור השוקה צינתור באמצעות מכונת גילוח חשמלית נגד כיוון צמיחת השיער. לחטא את העור על-ידי החלת פתרון povidone יוד.
  5. סמן את החלק העליון של עצם השוקה ואת המיקום חור הקידוח להזרקה עם S. aureus (המרחק לקצה העליון של עצם השוקה הוא 1.5 ס מ) עם עט, השליט. ודא מיקומי החורים קידוח נמצאים בליבה השוקה אופקית (איור 1א').
  6. שוקה העור באמצעות איזמל מס 11 גזורה עושים חתך 1 ס מ ב קרום העצם (איור 1ב, ג). פונץ ' חור בקוטר 2 מ מ עצם השוקה באמצעות יחידת מקדחה חשמלית עצם (איור 1D).
  7. הקש את החורים בקוטר 2 מ מ השוקה עם גליל של שעווה לאיטום של 2 מ מ קוטר וגובה 2 מ מ (איור 1E). הסר את השעווה חילוף עצם לאורך מישור אופקי השוקה (איור 1F). בדוק החור 2 מ מ מלא שעווה לאיטום (איור 1G).
    הערה: להבטיח כי החורים מלאים של שעווה לאיטום בבדיקת החור עם או בלי דם גלישה.
  8. לתפור קרום העצם, עור בעל תפירה שנספג בתפר המזרן אנכי כדי למנוע את החיה לועס את התפרים (איור 1H).
  9. להזריק עונה 1 פרק 10-8 CFU/mL של S. aureus פתרונות (30 µL לכל 100 גרם של משקל הגוף) עם מזרק asepsis 1 מ"ל (איור 1אני). ודא המחטים לחדור את השעווה עצם להזריק את הפתרון S. aureus לתוך מח עצם לאט.
  10. שמור את החיה בתנאים חמים ונקיים כדי למנוע איבוד חום לאחר דוגמנות. לפקח על קצב הנשימה וקצב הלב. לאחר, מתעוררת בית הארנבים בכלובים בודדים עם גישה חופשית מזון ומים.

3. הערכה של מודל זיהום עצם

  1. ימים 7, 14, 21, 28 לאחר ההדבקה, למקם ארנבים המתקנת ארנב עם ראשו ועל אוזנו מחוץ המתקנת.
  2. לצייר 2 מ"ל של דם מן הורידים אזני אל גורם מכיל של dipotassium ethylenediaminetetraacetic קרישה דם (EDTA-K2) חומצה. צייר 1 מ"ל של דם מן כלי דם לתוך מיכל דם. Centrifuge את הנסיוב 10 דקות עם מהירות של x 651 g בטמפרטורת החדר.
    1. לקבוע בספירת תאי הדם הלבנים (WBC) בדם שלם באמצעות מנתח הביוכימי דם, חלבון מגיב C (חלבון) מאת מקושרים-אנזים immunosorbent assay שיטה (אליסה)16.
  3. ימים 7, 14, 21, 28 לאחר ההדבקה להרדים אחד דגם ארנב עם סודיום פנטוברביטל במינון של 3 מ"ג לכל 100 גרם במשקל הגוף. שוקה העור באמצעות איזמל מס 11 גזורה עושים חתך 2 ס מ ב קרום העצם (איור 2א).
  4. שעווה לאיטום נקי. הרקמה המתה נמק עצם באמצעות חבטות שני חורים בקוטר של מ מ 4.8 סמוכים, באמצעות יחידת מקדחה חשמלית עצם (איור 2B). הרקמה המתה נמק במח העצם ואת רקמות פרור באמצעות כפית עצם (איור 2C).
    הערה: רקמת העצם נקייה במהלך הטריה להימנע רקמת העצם שנותרה במח העצם.
  5. לגרד ולנקות את רקמת העצם בין שני החורים (איור 2D).
  6. מורחים 1 מ"ל של מח העצם על פלטות אגר דם כבשים. דגירה צלחות בן לילה ב 37 º C. בחר צלחות של המושבות 30-300, לחשב את מספר מושבות.
  7. בקצה של 28 יום לאחר ההדבקה, לחלץ שוקה דגימות בשולי המפרקים בברך ובקרסול. לתקן את דגימות שוקה ב 4% paraformaldehyde עבור ה 24 Decalcify דגימות שוקה EDTA 10% למשך 8 שבועות.
  8. מייבשים את דגימות שוקה בסדרה מדורגת של אתנול דילולים ולאחר מכן הטבע בפרפין. חותכים 4 ברציפות 5 מיקרומטר סעיפים מן המטוסים הילתית. כתם מקטעים עם hematoxylin ואאוזין (H & E) צביעת ערכת.
  9. השתמש במיקרוסקופ כדי להציג את סעיפים מוכתמים ולהקליט המשודרת אור תמונות עם תוכנה סטנדרטית.

4. הכנת חרוזים VCS

  1. להוסיף 1 גר' אבקה הידרוכלוריד ואנקומיצין 9.5 גר' סולפט סידן יש לזה סיווג רפואי, ולאחר מכן להוסיף 3 מ"ל של תמיסת מלח אל הכוח מעורבת. לערבב אותם ביסודיות עם מרית במשך 30 עד 45 s.
  2. מקם את המוצר מעורב לתוך תבנית גמישה סיליקה ג'ל (גליל של 4.8 מ"מ קוטר וגובה 4.8 מ"מ) ולאחר יבש בטמפרטורת החדר במשך 15 דקות להסיר את החרוזים VCS על ידי כיפוף העובש.

5. השרשה של עצם Autogenous וטיפול אנטיביוטי

  1. להרדים דגם ארנבים עם סודיום פנטוברביטל במינון של 3 מ"ג לכל 100 גרם משקל ביוםה 28 לאחר ההדבקה. גילוח באזור השוקה צינתור באמצעות מכונת גילוח חשמלית. לחטא את העור על-ידי החלת הפתרון povidone יוד.
    הערה: ודא כי הנוהל הדוגמנות אינו פחות מ 1 h.
  2. גילוח באזור הזנב באמצעות מכונת גילוח חשמלית ולחטא את הזנב על-ידי החלת הפתרון povidone יוד.
  3. לחתוך את הזנב באמצעות מספריים כירורגיים. לחתוך את הזנב העור באמצעות איזמל מס 11 ולחשוף את עצם הזנב. . אתפור את העור-באזור הזנב בתפרים נספגים כירורגי בתפר המזרן אנכי כדי למנוע את החיה לועס את התפרים.
  4. הסר כל שריר, רקמות רכות, קרום העצם. לנתק את עצם הזנב כל מפרק ולהעביר שהרסיס צלחת פלסטיק 100 מ מ המכילה מלח סטרילית.
  5. שתל 4 חתיכות של VCS חרוזים (גליל של 4.8 מ"מ קוטר וגובה 4.8 מ"מ, 1.25 מ ג ונקומיצין לכל פיסת חרוז) לתוך חלל מוח באמצעות פינצטה מעוקל (איור 2E).
  6. למלא את הפגם עצם עם 8 חתיכות של עצמות autogenous (גליל בקוטר 2 מ מ, גובה 4 מ מ לכל כל חתיכה) באמצעות מעוקל פינצטה (איור 2E).
  7. לתפור קרום העצם, עור בעל כירורגי נספגים בצורה תפר המזרן (איור 2F).
    הערה: לשמור על הטמפרטורה 25 ° C במהלך הניתוח.
  8. שמור את החיה בתנאים חמים ונקיים כדי למנוע איבוד חום לאחר ניתוח. לפקח על קצב הנשימה וקצב הלב. לאחר, מתעוררת בית הארנבים בכלובים בודדים עם גישה חופשית מזון ומים.

6. הערכות של פעילות לאנטיביוטיקה

  1. מכניסים ארנבונים מתקן ארנב, ולמקם את ראשו ועל אוזנו מחוץ המתקנת 2, 4, 6 ו- 8 שבועות לאחר הטיפול.
  2. דם מן הוורידים אוריקולארית עם EDTA-K2 כלי דם קרישה. צייר 1 מ"ל של דם מן כלי דם לתוך מיכל דם. Centrifuge את הנסיוב 10 דקות עם מהירות של x 651 g בטמפרטורת החדר.
  3. לקבוע את ספירת תאי הדם הלבנים (WBC) בדם שלם באמצעות מנתח הביוכימי דם, חלבון מגיב C (חלבון) על-ידי מטוס בשיטת ELISA16.

7. הערכות של התחדשות העצם

  1. המתת חסד ארנבים באמצעות הזרקת עם מעל במינונים של סודיום פנטוברביטל, בקצה של 8 או 12 שבועות לאחר הטיפול.
  2. תמצית דגימות השוקה, בשולי המפרקים בברך ובקרסול. הרקמה המתה השרירים ושכבות fascial.
  3. ניתוח המבנה של שוקה באמצעות טומוגרפיה שחושב מיקרו (מיקרו-CT). לבחור של אזור אליפטי 4.8 מ"מ קוטר של 9.6 ארוך אזור בעל עניין (ROI). לשחזר תמונות דגם התלת-ממד באמצעות מפת סיביות נתונים.
  4. בחרו עשרות רבות של היחס בין נפח אחסון/רקמות עצם (BV/טלוויזיה), עובי trabecular (Tb.Th), trabecula (Tb.N) ומספר ההפרדה trabecular (Tb.Sp)from the3D מודלים להערכת התחדשות העצם.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

הערכה של מודל זיהום עצם
לאחר זיהום עם S. aureus, ביטויים פתולוגיים ארנבים היו הדומה הסימפטום הייצוגי ביותר של דלקת עצם מוגלתית כרונית במרפאה. במחקר שלנו, ארנבים 30 היו נגועים, נתון כקבוצה מודל, ונחשפו ארנבים 10 היו כמו חיות בקרת. כל הארנבונים דגם יש נגוע הסינוסים של האתר המקומי השוקה, עם מוגלה צהוב ולבן זרימת מ הסינוסים (איור 3א). התוצאות של צביעת המטוקסילין מצביעים על כך אגרגטים חיידקי ממוקמים סביב עצם מת בקבוצה ...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

במחקרים קודמים, נבנו סוגים שונים של מודלים בעלי חיים כדי ללמוד הן זיהום אקוטי וכרוני העצם; עם זאת, חפש את המודל האידיאלי עדיין נמשכת17,18. בנוסף, המודל זיהום עצם אידיאלי צפוי לדמות את מאפייני פתולוגי של העצם זיהום בסביבה קלינית, תוך התקופות הדוגמנות, להישאר זולה וקלה לביצוע. עד כה, המודל זיהום של העצם ארנב הוא המודל הנפוץ ביותר במחקר מחלת עצם דלקתיות, כמו הארנבים הם זמינים, ריאלי וזולה. במחקר הקודם שלנו, השווינו את שיעור התמותה ואת שיעור ההידבקות ארנבים עם משקולו...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

המחברים מדווחים שאין ניגודי אינטרסים בעבודה זו.

תודות

עבודה זו נתמכה על ידי את נבחרת מדעי הטבע קרן של סין (81803808, 81873062), ג'ג'יאנג המחוז רפואי, מדע הבריאות בטכנולוגיית קרן (2017KY271) ו המדע ואת הטכנולוגיה פרוייקט של בפרובינצית ג'ה-ג'יאנג (2017C 37181).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
תפר כירורגי נספגJinghuan18S0604A
מזרק אספסיסJinglong20170501
שעוות עצםETHICONJH5CQLM
CCD מצלמהאולימפוסDP72
EDTA-K2 כלי דם נוגד קרישהXINGE20170802
יחידת מקדחת עצם חשמליתבאו קאנגBKZ-1
מכונת גילוח חשמליתCodos3800
תבנית ג'ל סיליקה גמישה של WRIGHT1527745
Hematoxylin ו-EosinBeyotime20170523
מדיום תרבית לוריא-ברטאניBaisi Biothchnology20170306
סידן גופרתי בדרגה רפואיתWRIGHT1527745
טומוגרפיה מיקרו-ממוחשבת (מיקרו-CT)BrukerSkyScan 1172 
מיקרוסקופאולימפוסCX41
ניו זילנד ארנבים לבניםג'ג'יאנג מרכז בעלי חיים ניסיוניים SCXK 2014-0047
אזמל מס' 11 Yuanlikang 20170604
תמיסת מלח רגילהMingsheng20170903
PBSTBD (Jingyi)20170703-0592
פנטוברביטל נתרןמרק2070124
תמיסת פובידון-יודLierkang20170114
S. aureus אבקת ייבוש בהקפאהסין מיקרוביולוגית כללית מרכז איסוף תרבותATCC 6538
אגר דם כבשיםHuanKai מיקרוביאלי3103210
צלחות אגר סויה טריפטיותHuanKai צינורות
טריפטיHuanKai Microbial3104260
VancomycinLillyC599180
ערכת צביעה מרק סויה מיקרוביאלי 3105697

מקורות

  1. Malizos, K. N. Global Forum: The Burden of Bone and Joint Infection: A Growing Demand for More Resources. Journal of Bone and Joint Surgery-American Volume. 99, 20(2017).
  2. Peeters, O. Teicoplanin - based antimicrobial therapy in Staphylococcus aureus bone and joint infection: tolerance, efficacy and experience with subcutaneous administration. BMC Infectious Diseases. 16, 622(2016).
  3. Sugaya, H., et al. Percutaneous autologous concentrated bone marrow grafting in the treatment for nonunion. European Journal of Orthopeadic Surgery and Traumatology. 24, 671-678 (2014).
  4. Birt, M. C., Anderson, D. W., Bruce, T. E., Wang, J. Osteomyelitis: Recent advances in pathophysiology and therapeutic strategies. Journal of Orthopeadics. 14, 45-52 (2017).
  5. Walter, G., Kemmerer, M., Kappler, C., Hoffmann, R. Treatment algorithms for chronic osteomyelitis. Deutsches Arzteblatt International. 109, 257-264 (2012).
  6. Henriksen, K., Neutzsky-Wulff, A. V., Bonewald, L. F., Karsdal, M. A. Local communication on and within bone controls bone remodeling. Bone. 44, 1026-1033 (2009).
  7. Mendoza, M. C., et al. The effect of vancomycin powder on bone healing in a rat spinal rhBMP-2 model. Journal of Neurosurgery Spine. 25, 147-153 (2016).
  8. Cohn Yakubovich, D., et al. Computed Tomography and Optical Imaging of Osteogenesis-angiogenesis Coupling to Assess Integration of Cranial Bone Autografts and Allografts. Journal of Visualized Experiments. (106), e53459(2015).
  9. Brecevich, A. T., et al. Efficacy Comparison of Accell Evo3 and Grafton Demineralized Bone Matrix Putties against Autologous Bone in a Rat Posterolateral Spine Fusion Model. Spine Journal. 17, 855-862 (2017).
  10. Jensen, L. K., et al. Novel porcine model of implant-associated osteomyelitis: A comprehensive analysis of local, regional, and systemic response. Journal of Orthopeadic Research. 35, 2211-2221 (2016).
  11. de Mesy Bentley, K. L., et al. Evidence of Staphylococcus Aureus Deformation, Proliferation, and Migration in Canaliculi of Live Cortical Bone in Murine Models of Osteomyelitis. Journal of Bone and Mineral Research. 32, 985-990 (2017).
  12. Norden, C. W., Kennedy, E. Experimental osteomyelitis. I: A description of the model. Journal of Infectious Diseases. 122, 410-418 (1970).
  13. Mistry, S., et al. A novel, multi-barrier, drug eluting calcium sulfate/biphasic calcium phosphate biodegradable composite bone cement for treatment of experimental MRSA osteomyelitis in rabbit model. Journal of Controlled Release. 239, 169-181 (2016).
  14. Bernthal, N. M., et al. Combined In vivo Optical and µCT Imaging to Monitor Infection, Inflammation, and Bone Anatomy in an Orthopaedic Implant Infection in Mice. Journal of Visualized Experiments. (92), e51612(2014).
  15. Koeth, L. M., DiFranco-Fisher, J. M., McCurdy, S. A Reference Broth Microdilution Method for Dalbavancin In Vitro Susceptibility Testing of Bacteria that Grow Aerobically. Journal of Visualized Experiments. (103), e53028(2015).
  16. Uttra, A. M., et al. Ephedra gerardiana aqueous ethanolic extract and fractions attenuate Freund Complete Adjuvant induced arthritis in Sprague Dawley rats by downregulating PGE2, COX2, IL-1β, IL-6, TNF-α, NF-kB and upregulating IL-4 and IL-10. Journal of Ethnopharmacology. 224, 482-496 (2018).
  17. Harrasser, N., et al. A new model of implant-related osteomyelitis in the metaphysis of rat tibiae. BMC Musculoskeletal Disorders. 17, 152(2016).
  18. Abedon, S. T. Commentary: Phage Therapy of Staphylococcal Chronic Osteomyelitis in Experimental Animal Model. Frontiers in Microbiology. 7, 1251(2016).
  19. Tan, H. L., Ao, H. Y., Ma, R., Lin, W. T., Tang, T. T. In vivo effect of quaternized chitosan-loaded polymethylmethacrylate bone cement on methicillin-resistant Staphylococcus epidermidis infection of the tibial metaphysis in a rabbit model. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 58, 6016-6023 (2014).
  20. Chiara, L., et al. Detection of Osteomyelitis in the Diabetic Foot by Imaging Techniques: A Systematic Review and Meta-analysis Comparing MRI, White Blood Cell Scintigraphy, and FDG-PET. Diabetes Care. 40, 1111-1120 (2017).
  21. Khalid, M., et al. Raman Spectroscopy detects changes in Bone Mineral Quality and Collagen Cross-linkage in Staphylococcus Infected Human Bone. Scientific Reports. 8, 9417(2018).
  22. Putters, T. F., Schortinghuis, J., Vissink, A., Raghoebar, G. M. A prospective study on the morbidity resulting from calvarial bone harvesting for intraoral reconstruction. International Journal of Oral and Maxillofacial Surgery. 44, 513-517 (2015).
  23. Yin, J., Jiang, Y. Completely resorption of autologous skull flap after orthotopic transplantation: a case report. International Journal of Clinical and Experimental Medicine. 7, 1169-1171 (2014).
  24. Takehiko, S., et al. Preliminary results of managing large medial tibial defects in primary total arthroplasty: autogenous morcellised bone graft. International Orthopaedics. 41, 931-937 (2017).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

Micro CTStaphylococcus Aureus
טיפול ונקומיצין טעון סולפט סידן ועצמות Autogenous במודל משופר הארנב של זיהום עצם
צור קשר
המלצה לספרייה

פרטיות

תנאי שימוש

מדיניות

2026 © זכויות יוצרים MyJoVE Corporation. כל הזכויות שמורות.