מאמר שיטה

שכפול של הוזמן, ספריית Nonredundant של Pseudomonas aeruginosa זן PA14 Transposon ההכנסה מוטציות

DOI:

10.3791/57298

⸱

4 במאי 2018

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Pediatrics, Mucosal Immunology and Biology Research Center, Massachusetts General Hospital, 2Department of Molecular Biology, Massachusetts General Hospital, 3Department of Genetics, Harvard Medical School, 4Department of Pediatrics, Harvard Medical School

* These authors contributed equally

במאמר זה

סיכום

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Pseudomonas aeruginosa זיהום גורם תחלואה משמעותית מארחים פגיע. Nonredundant transposon ההכנסה מוטציה הספרייה של זן aeruginosa פ PA14, כמנהל PA14NR להגדיר, מקלה על ניתוח של ג'ין פונקציונליות בתהליכים רבים. המוצג כאן הוא פרוטוקול כדי ליצור עותקים באיכות גבוהה של ספריית מוטנטים PA14NR להגדיר.

תקציר

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Pseudomonas aeruginosa הוא phenotypically, genotypically מגוונת וישימה גראם שליליים חיידק נפוץ בסביבות אנושי. Aeruginosa פ הוא מסוגל ליצור biofilms לפתח עמידות לאנטיביוטיקה, לייצר הגורמים התקפה אלימה, להתפתח במהירות במהלך זיהום כרוני. לפיכך aeruginosa פ יכול לגרום הן אקוטית, כרונית, קשה לטפל בדלקות, וכתוצאה מכך תחלואה משמעותית באוכלוסיות מסוימות החולה. זן aeruginosa פ PA14 הוא בידוד קליני האדם עם מבנה הגנום שנשמרת מדביק מגוון רחב של מחשבים מארחים יונקים ו nonvertebrate, שהופך PA14 זן אטרקטיבי ללמוד את הפתוגן. בשנת 2006, נוצרה מוטציה nonredundant transposon ההכנסה ספריה המכילה מוטציות 5,459 המקביל 4,596 גנים PA14 החזוי. מאז, הפצה של הספרייה PA14 אפשרה את קהילת המחקר להבין טוב יותר את הפונקציה של גנים יחידניים מסלולים מורכבים של aeruginosa פ. שמירה על תקינות הספרייה באמצעות תהליך השכפול דורשת טכניקות טיפול נכונה ומדויקת. לשם כך, כתב יד זה מציג פרוטוקולים המתארים בפרוטרוט השלבים המעורבים ספריית שכפול, בקרת איכות ספריית ואחסון נאות של מוטציות בודדות.

מבוא

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Pseudomonas aeruginosa הוא phenotypically, genotypically מגוונת וישימה גראם שליליים חיידק נוכח קרקע, מים, סביבות האנושי ביותר, כמו גם microflora העור. בהשוואה למינים רבים של חיידקים, aeruginosa פ יש גנום גדולה יחסית של Mbp 5.5-7 עם גבוהה G + C תוכן (65-67%). יתר על כן, חלק ניכר את הגנים מעורבים הסתגלות מטבולית, חלק רשתות רגולטוריות, המאפשרות גמישות רבה בתגובה עקה1. פ aeruginosa מבטא שפע של הגורמים התקפה אלימה, תערוכות נטייה כדי ליצור biofilms, הנו היכולת לתאם בין תגובות דרך חישת מרובים מסלולים ו מציג קיבולת הבולטים לפתח עמידות לאנטיביוטיקה סובלנות2,3,4,5,6,7,8. תכונות אלה מציגים אתגרים משמעותיים לטיפול זיהומים הנגרמים על ידי aeruginosa פ.

כרוניות זיהומים aeruginosa פ יכול להתרחש מצבי מחלה רבים. סיסטיק פיברוזיס (CF), מחלה גנטית נגרמת על ידי מוטציה של הגן סיסטיק פיברוזיס Transmembrane מוליכות הרגולטור (CFTR) , התוצאה היא הפרשות inspissated, נגועים בתוך האוויר, ברונכיאקטזיס מתקדמת ובסופו של דבר, למוות כשל נשימתי9. מאת לבגרות, הרוב המכריע של חולים עם CF כרוני נגוע aeruginosa פ, אשר ממלא תפקיד מפתח התחלואה והתמותה הקשורים למחלה זו10. בנוסף, חולים עם כוויות חמורות הפציעות11, tracheostomies12, החלפות פרקים13או קטטרים שכנה14 הם בסיכון לזיהום aeruginosa פ הקשורים ליכולת של החיידקים טופס biofilms ולברוח לארח תגובות דלקתיות15. יתרה מזאת, קולוניזציה מתרחשת ללא תחרות לאחר אוכלוסיה עמידים בפני אנטיביוטיקה מרובות או סובלנית נבחרה דרך טיפול מיקרוביאלית רחבת ספקטרום רציף12,16,17 , 18. הבנה טובה יותר בפתוגנזה של aeruginosa פ יהיו השלכות משמעותיות על מצבי מחלה רבים.

מספר aeruginosa פ קליניים מבודד, כולל זנים PAO1, PA103, PA14, פאק, נחקרו בהרחבה לחקור תכונות שונות של פתוגנזה aeruginosa פ . זן PA14 הוא בידוד קליניים שייך לאחד הנפוצים המשובטים קבוצות ברחבי העולם19,20 , לו לא היה בהרחבה passaged במעבדה. PA14is מאוד מידבק במודלים חוליות של זיהום, עם אנדוטוקסין הבולטים פרופיל21, pili מבנה22, פתוגניות איי23, הקלד מערכת הפרשת השלישי (TTSS), cytotoxicity כלפי מידע יונקים תאים24 ו פרופילים עמידות והתמדה לאנטיביוטיקה25. יתר על כן, PA14 הוא גם מאוד מידבק במערכות דגם פתוגן-פונדקאי רבים, כולל צמח העלה הסתננות מודלים26,27, זיהוםCaenorhabditis elegans מודלים28, 29, חרק מודלים30,31, כמו גם דלקת ריאות העכבר דגמי32,33 , צריבה בעור מודלים34.

ספריות מוטציה הגנום כולו הן אוספים של isogenic מוטציות בגנים חיוניים מהווה כלי רב עוצמה כדי להבין את הביולוגיה של אורגניזם בכך שהוא מאפשר ניתוח של ג'ין פונקציה בקנה מידה גנומית. שני transposon ליד, הרוויה ההכנסה מוטציה ספריות שנבנה ב פ aeruginosa זמינים כעת להפצה. האתרים ההכנסה של טרנספוזונים שנקבע עבור שתי ספריות. ספריות nonredundant כביכול אלה להקל על מחקרים ברמת הגנום של זני חיידקים על ידי להקטין במידה ניכרת את הזמן ואת עלות מעורב ההקרנה uncharacterized מוטציות אקראיות transposon. Aeruginosa פ PAO1 transposon מוטציה הספרייה, שנבנה ב MPAO1 לבודד את זן PAO1 באמצעות טרנספוזונים ISphoA/ הא והואlacZ/ הא35, היא נאצרה על ידי המעבדה Manoil, אוניברסיטת וושינגטון. הספרייה כוללת תבדוק-רצף אוסף של מוטציות transposon 9,437 מספק כיסוי הגנום רחב וכולל שתי מוטציות של גנים רוב36. מידע אודות ספריית מוטנטים של transposon PAO1 aeruginosa פ הוא ציבורי, נגישים לאינטרנט Manoil המעבדה באתר-http://www.gs.washington.edu/labs/manoil/libraryindex.htm. Aeruginosa פ זן PA14 nonredundant transposon ההכנסה מוטציה ספריה (מוגדר PA14NR) נבנה בזן PA14 באמצעות MAR2xT7 ו- Tn טרנספוזוניםphoA37 מופץ כיום על ידי המחלקה לרפואת בבית החולים הכללי במסצ'וסטס. ערכת PA14NR כוללת אוסף של יותר מ- 5,800 מוטציות עם הוספות transposon יחיד בגנים חיוניים37. פרטים על הקמה של ערכת PA14NR מתוארים http://pa14.mgh.harvard.edu/cgi-bin/pa14/home.cgi?section=NR_LIB אתר ציבורי, אינטרנט נגיש, אשר כולל גם מגוון רחב של כלי חיפוש באינטרנט כדי להקל על השימוש PA14NR הגדר.

ערכת PA14NR המקורית כללה מוטציות 5,459, שנבחר מתוך ספרייה מקיפה של 34,000 transposon אקראיים ההכנסה מוטציות, התואמים 4,596 גנים PA14 החזוי המייצגים 77% של כל החזוי PA14 גנים37. מאז הקמת הספרייה בשנת 2006 נוספו המוטנטים החדשים וכוללת כיום ערכת PA14NR 5,800 יותר מוטציות38 המייצגים כ-4,600 מינים גנים PA14. רוב המוטציות transposon PA14 נוצרו על רקע פראי סוג37. פרטים על כל חבר של ספריית מוטנטים, כולל רקע גנטי, זמינים דרך חיפוש במסד הנתונים המקוון, או על-ידי הורדת את הגיליון האלקטרוני של ספריית Nonredundant, שתי תכונות זמין באתר האינטרנט של PA14 (http:// pa14.mgh.harvard.edu/cgi-bin/pa14/home.cgi). רוב המוטציות שנוצרו באמצעות MAR2xT7 של transposon (MrT7), עם קבוצה קטנה שנוצרו באמצעות transposon TnPhoA (phoA)37. בכל transposon יש קלטת של עמידות לאנטיביוטיקה, המאפשר בחירה מוטציה באמצעות גנטמיצין (MrT7) או kanamycin (phoA). ערכת PA14NR של מוטציות מאוחסן בשישים ושלוש 96-ובכן צלחות, כולל בקרה 96-ובכן נוספים שני לוחות, המורכבים מסקטור פראי סוג PA14 מחוסן, בארות uninoculated intercalated בתבנית מוגדרת מראש. התבנית 96-ובכן צלחת לזווג עם כלי החיפוש באינטרנט מאוד מקלה על התפתחות אישית הקרנת מבחני המאפשרים למשתמשים בקלות לזהות גנים הקשורים פנוטיפים מוטציה. כלי החיפוש המקוון להקל גם לחיפוש ובחירת ושכמותי רלוונטיים נוספים הנדרשים ללימודי.

PA14, PAO1 transposon מוטציה הספריות הן במשאבים גלובליים חשוב מאוד עבור הקהילה המדעית, הם משלימים אחד את השני אימות את התפקוד של הגנים לא ידוע מסלולים של פתוגן חיידקי הזה. בצירוף מקרים, מאז הקמת ספריות מוטציה transposon של PAO1 ו- PA14, מלא הגנום אנליזת רצפי דנ מבודד aeruginosa פ רבים הראו כי PAO1 ו- PA14 שייך שונים subclades הגדולות של aeruginosa עמ' האמיניות7,39,40,41. כי קליניים aeruginosa פ מבודד נמצאים מופצים ברחבי האמיניות, העובדה כי PAO1 ו- PA14 שייך שונים aeruginosa פ תת-קבוצות המעלה את ערכו של מוטציה transposon שתי ספריות עבור השוואתי מחקרים.

פרסומים המתארים את הבנייה וסינון של ספריות מוטציה חיידקיים, כולל ספריות aeruginosa פ 35,37,42, זמינים בקלות בספרות. עם זאת, לפי מיטב ידיעתנו, אין פרוטוקולים שפורסמו המתארת הליכים מפורטים ואת טכניקות המשמשות לצורך שכפול, תחזוקה, אימות של חיידקי ספריות מוטציה הינם זמינים.

המתודולוגיה המתוארים בפרסום זה מתאר קבוצה של פרוטוקולים שלושה המאפשרים שימוש ותחזוקה של ערכת PA14NR. הפרוטוקול הראשון מתאר שכפול של הספרייה כמומלץ לנמענים של ערכת PA14NR. פרוטוקול השני כולל הנחיות ומבטא, גדל, ואחסון מוטציות בודדות מזוהה באמצעות ערכת PA14NR. הפרוטוקול השלישי מתאר טכניקות בקרת איכות, כולל PCR הגברה של קטעים מן transposon מוטציות ורצף הבאים כדי לאשר את הזהות מוטציה. זו קבוצה של פרוטוקולים עשוי גם להיות מותאם שכפול ותחזוקה של חיידקי ספריות מוטציה או אוספים אחרים. השכפול של חיידקי ספריות מוטציה או אוספים מומלץ מאוד כדי לשמור על השלמות של "העותק הראשי" (העותק המקורי קיבל). שכפול של מספר עותקים של ערכת PA14NR לשימוש מעבדה שגרתיות ממזער את ההסתברות של זיהום interwell של העותק הראשי.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

התראה: לנצל אמצעי בטיחות BSL-2 רגיל בעת טיפול aeruginosa פ, פתוגניות. אם אתה אדם immunocompromised או יש מצב רפואי מגביר את הרגישות שלך זיהום חיידקי, קח זהירות מיוחדת בעת עבודה עם פ . aeruginosa. להתייעץ עם המשרד אבטחה במוסד שלך ולקבל אישור מהרופא שלכם לפני שעבדה עם PA14 ע נ קבע או ספריות מוטציה של פתוגנים חיידקיים.

figure-protocol-1
איור 1: מבט כולל על פרוטוקול i: שכפול של PA14NR הגדר. יום 1: לשכפל קפוא תרבויות מוטציה מעותק"מאסטר" של הגדר PA14NR לתוך המדיה LB אגר ולגדול מוטציות בן לילה ב 37 º C. יום 2: העברת הצמיחה מוטציה ממדיה LB אגר לאבני עמוק טוב המכיל מרק נוזלי ליברות, גדלים בין לילה ב 37 מעלות צלזיוס ברעידות-950 סל ד יום 3: לערבב תרבויות LB לילה עם גליצרול, ולאחר מכן להעביר ללוחות 96-ובכן היעד לאחסון לטווח ארוך. מקום 96-ובכן לוחות שטוחים במקפיא-80 ° C. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.

figure-protocol-2
איור 2: מומלץ ההתקנה. עקרות וזרימת עבודה חלקה צריך להישמר באמצעות אמצעי זהירות מתאימים. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.

1. פרוטוקול i: שכפול של PA14NR הגדר

הערה: שכפול של הספרייה יכולה להיות מושגת על ידי חלוקת ערכת PA14NR של ארבע קבוצות משנה של 16 צלחות בכל זאת ניתן יהיה לעבד ארבעה שבועות רצופים. דור 1 עד 6 עותקים לאנאפוליס שזרימת שבועיות המתוארים בטבלה 1, בעוד דור של יותר מ-6 עותקים עוקב אחר זרימת העבודה שבועיות המתוארים בטבלה מס ' 2. כדי ליצור עותקים 12 של ערכת PA14NR, לחסן המשנה PA14NR אותו לתוך נוזל מדיית LB ביום 2, שוב ביום השלישי (מתוך אותה קבוצה של אגר הגלופות ישוכפל על יום 1), העברה בין לילה תרבויות מוטציה לתוך צלחות העתק על יום 3 ו- 4 יום בהתאמה.

יום 0יום 1יום 2יום 3
יום הכנהצמיחה של PA14NR להגדיר מוטציות במדיה אגר ליברותצמיחה של PA14NR להגדיר מוטציות בתקשורת LB נוזליהעברה של תרבויות מוטציה PA14NR להגדיר ללוחות היעד

טבלה 1: לוח הזמנים עבור שכפול של 1-6 עותקים של ערכת PA14NR. שכפול של מספר קטן של עותקים עשויים לדבוק זרימת עבודה שבועי.

יום 0יום 1יום 2יום 3יום 4
יום הכנהצמיחה של PA14NR להגדיר מוטציות על אגר ליברותגדלים של PA14NR להגדיר מוטציות בתקשורת LB נוזליהעברה של תרבויות מוטציה ביום השלישי כדי ליצור ערכת 1 6 עותקים של הגדר PA14NRהעברה של תרבויות מוטציה ביום הרביעי ליצירת סט של 6 עותקים של PA14NR להגדיר 2
צמיחה של PA14NR להגדיר מוטציות בתקשורת LB נוזלי

בטבלה 2: לוח הזמנים עבור שכפול של עד 12 עותקים של ערכת PA14NR. שכפול של מספר גדול יותר של עותקים ידרוש בשכבות בתוך זרימת עבודה שבועי.

  1. יום 1: צמיחה של עותק PA14NR להגדיר מאסטר על פלטות אגר ליברות
    1. ללבוש כפפות, חלוק ומסיכה להתמודד עם ערכת PA14NR.
    2. ברור משטח ספסל ולנגב עם 70% אתנול.
    3. להכין LB-אגר-מדיה-43 , עיקור אוטוקלב עבור מדיה מגניב מינימלית 25 עד 55 ° C במים אמבט ולהוסיף או גנטמיצין 15 µg/mL, למוטאנטים המכילה הוספות transposon MAR2xT7 או µg/mL 200 kanamycin, למוטאנטים המכיל TnphoA הוספות.
    4. יוצקים אגר LB מותכת בתוך צלחות מלבניות באמצעות כ- 60 מ של מדיה בכל צלחת. צלחות יבש בשכונה סטרילי עבור 1 h לפני שימוש. לוודא שאין שום עיבוי מים על פני השטח של אגר. חנות צלחות ב 4 ° C, במידת הצורך.
    5. ליצור שדה סטרילי בעזרת מבער בונזן על גבי ספסל מחה אתנול ולהגדיר מכולות עם פתרונות מתאימים עבור המשכפל pin עיקור (ראה שלב 1.1.9). שימוש לפתוח מיכלי פלסטיק (של 5.25" L x 4.25" W x 1.75 "H בגודל המשוער) עבור המשכפל pin עיקור. אוטוקלב מיכלי פלסטיק לפני השימוש.
      הערה: חום הלהבה מבער בונזן יוצר של הסעת חום הנוכחי, אשר מחמם את השטח מעל הלהבה, מרים את כל החלקיקים באוויר האוויר הקר מתחת, ולהרחיקו שמירה על אזור העבודה סטרילי.
    6. להסיר מספר מרבי של ארבעה לוחות ראשיים PA14NR להגדיר מהמקפיא-80 מעלות (כדי למנוע מפשיר מיותרים), ומניחים אותם על קרח יבש ב- 4 L קרח פאן.
    7. לוקח את הצלחת 96-ובכן האב ישוכפלו של קרח יבש ולמקם אותו על הספסל כדי לאפשר מפשיר קצר, אשר יקח את הזמן הדרוש עבור עיקור הפינים משכפל (כ 3-4 דקות) (ראה שלב 1.1.8). סמן את המיקום של הקואורדינטה A1 בצלחת אגר לפני החתמת. יישר מאסטר צלחת, צלחת אגר עם קואורדינטת A1 של שתי צלחות בפינה השמאלית העליונה.
    8. לחטא את המשכפל "סיכות" על-ידי ביצוע השלבים המתוארים להלן. הקש על המשכפלים מעט לאחר כל שלב כדי להסיר עודפי נוזלים.
      1. לטבול פינים 250 מ של 0.3-0.5% נתרן תת-כלורי (אקונומיקה ביתיים 10%) למשך 30 שניות. למזער מגע עם פתרון נתרן תת-כלורי, כמו זה יכול להוביל לנזק של סיכות. לטבול סיכות 250 מ ל ddH סטרילי2O או סטרילי מים הנדסה גנטית למשך 10 שניות, ואז 250 מ"ל אתנול 70% למשך 30 שניות, ואז ב- 250 מ של 95% אתנול למשך 2 דקות.
      2. להבה לעקר את המשכפלים סיכות על ידי מחזיק משכפל בניצב ללהבה מבער בונזן, לאט לאט מתקרבת הלהבה עד אתנול, מצית, ואז מיד פורש זה מהלהבה. הלהבה לכבות פעם כל אתנול ברנס חופש. לשמור על המכסה או מיכל דומה קרוב להיחנק שריפת אתנול, במידת הצורך.
        הערה: השתמש בזהירות בעת עבודה עם אתנול ליד להבה. ואינם מחזיקים משכפל ישירות מעל הלהבה.
      3. סיכות מגניב על-ידי הצמדת על צלחת מלבנית סטרילי שאינו בשימוש המכילה אגר LB מדיה למשך 30 שניות.
    9. בקצרה אלומיניום חמים חותם מהאדון PA14NR להגדיר צלחת עם היד שלך לפני פילינג זה ביטול. . לעשות את זה תוך כדי קירור משכפל סיכות להסיר את החותם אלומיניום בקפידה כדי למנוע את החותם של ליטוש את הצלחת. השתמש פינצטה לקלף את כל שרידים של החותם אלומיניום.
    10. הכנס משכפל סיכות לתוך צלחת הבסיס, דוחפים בעדינות, משכפל מתנדנדים בכל ארבעת הכיוונים כדי להבטיח כי פיני לגרום ליצירת קשר עם תרבויות חיידקי קפואים בכל אחד מן הבארות-96. שים לב נוסף בארות ממוקם הקצה החיצוני של הצלחת על ידי דחיפת משכפל סיכות נגד תרבויות קפוא ב בארות ממוקם בקצה של הצלחת.
    11. הנח בעדינות משכפל סיכות על גבי משטח של צלחת אגר. להעביר משכפל בתנועה סיבובית קלה כדי טופס מיני-מדשאות של 4-5 מ מ עבור כל זן מוטציה. למנוע את האפשרות כי המיני-המדשאות ייתכן חפיפה, כדי למנוע זיהום לחצות.
    12. חותם PA14NR להגדיר לוח אב חותם אלומיניום סטרילית חדשה. אל תגעו בצד דבק של אלומיניום חותם בכל נקודה כדי למנוע זיהום. ודא כי כל טוב ואת הקצוות של צלחת לחלוטין חתומות באמצעות גלגלת לצלחת. צלחת החזרה 96-ובכן קרח יבש.
    13. חזור על הליך עבור כל צלחת הבסיס.
    14. נגב את כל משטחי עבודה עם אתנול 70% לאחר טיפול ערכת PA14NR.
    15. העברת לשכפל פלטות אגר חממה 37 ° C, דגירה בין לילה.
  2. יום 2: צמיחה של העותק PA14NR להגדיר מאסטר במרק נוזלי ליברות
    1. להכין מרק נוזלי LB43 המכיל גם גנטמיצין 15 µg/mL, למוטאנטים המכילה הוספות transposon MAR2xT7 או µg/mL 200 kanamycin, למוטאנטים המכילה הוספותphoA Tn.
    2. נקה למינארי של ציוד מיותר, להפעיל מפוח הוד למשך תקופה מינימלית של 10 דקות לפני תחילת העבודה. לנקות משטחים הוד וכל הפריטים להציב בשכונה באמצעות אתנול 70%.
    3. למלא 2 מ"ל-באר רחובות µL 525 LB מרק נוזלי המכיל אנטיביוטיקה מתאימה על למינארי באמצעות פיפטה אלקטרוניים µL 12-ערוץ 50-1200. לאחר מכן, להעביר מלא מדיה רחובות באר העליון מחה אתנול ספסל. שימוש חוזר טיפים כל עוד נשמר בתנאים סטריליים.
    4. ללבוש כפפות, חלוק המעבדה ואת מסיכת לטפל PA14NR להגדיר.
    5. ברור משטח ספסל ולנגב עם 70% אתנול.
    6. להביא צלחות אגר עם לילה זנים מוטציה בוגר ספסל העליון.
    7. ליצור שדה סטרילי בעזרת מבער בונזן על גבי ספסל מחה אתנול ולהגדיר מכולות עם פתרונות מתאימים עבור המשכפל pin עיקור (ראה שלב הבא).
    8. לעקר את המשכפלים "סיכות" ביצוע הפעולות המתוארות להלן. הקש על המשכפלים מעט לאחר כל טבילה כדי להסיר עודפי נוזלים.
      1. לטבול פינים 250 מ של 0.3-0.5% נתרן תת-כלורי למשך 30 שניות. מזער משכפל קשר pin עם פתרון נתרן תת-כלורי, כמו זה יכול להוביל לנזק של סיכות. לאחר מכן, לטבול סיכות 250 מ ל ddH סטרילי2O או הנדסה גנטית מים למשך 10 שניות, ואז ב 250 מ של אתנול 70% למשך 30 שניות, לאחר מכן ב- 250 מ של 95% אתנול למשך 2 דקות.
      2. להבה לעקר את המשכפלים סיכות, אז סיכות מגניב על-ידי הצמדת לתוך צלחת מלבנית שאינם בשימוש המכילה אגר LB מדיה למשך 30 שניות.
        הערה: לנקוט בזהירות בעת עבודה עם אתנול ליד להבה (ראה 1.1.8).
    9. בעדינות במקום סיכות המשכפלים על גבי צלחת אגר המכילה צמיחה מוטציה, בדוק כי סיכות נמצאים בקשר עם כל המוטציות 96 על צלחת אגר, ואז להטביע סיכות לתוך בארות עמוקים המכילות מרק נוזלי ליברות. להימנע מלגעת הצדדים מן הבארות עם הסיכות.
    10. חותם הרחוב עמוק טוב עם קרום איטום לנשימה סטרילי. השתמש גלגלת לצלחת כדי להבטיח כי כל אדם טוב אטום כראוי.
    11. חזור על הליך עבור כל צלחת אגר.
    12. נגב את כל משטחי עבודה עם אתנול 70% לאחר טיפול ערכת PA14NR.
    13. לגדול חוסנו נוזלי תרבויות במשך 15-16 h ב 37° C-950 סל ד בעזרת מטרף במהירות גבוהה, אם הם זמינים.
      הערה: אם מטרף במהירות גבוהה אינה זמינה, דגירה של בלוקים עמוק היטב בשייקר-250-300 סל ד זה ריאלי. עם זאת, יש סיכוי גדול יותר של המושבה הקטנה משתנים (SCVs)25 המתעוררים בתנאים חמצון נמוכה. לכן, מומלץ מאוד לשמור הדגירה פעמים מתחת לגיל 15-16 h גדל תרבויות בבלוקים עמוק טוב במהירויות נמוכות של שייקר. לא רצויים התפשטות SCVs בבארות מוטציה יכול לשנות מוטציה פנוטיפים בעת שימוש בספריה כדי לבצע מסכי גנטי.
      מסוימים בארות ערכת PA14NR מכילים מוטציות גדל/הלא-הגדלים לאט, חסר שיבוטים, או להכיל מדיה uninoculated. המיקום של בארות אלה נרשמו וכי ניתן למצוא בקובץ PA14NR משלימה להגדיר מידע בארות הכלולים בפרסום זה.
  3. יום 3: העברה של תרבויות לילה PA14NR להגדיר יעד לוחות
    1. נקה למינארי, להפעיל מפוח הוד למשך תקופה מינימלית של 10 דקות לפני תחילת העבודה. לנקות משטחים הוד וכל הפריטים להציב בשכונה באמצעות אתנול 70%.
    2. הדפס תוויות דבק עמיד למים (ראה קובץ משלים PA14NR הגדר תוויות עבור תבנית). הסר 96-ובכן צלחות פלסטיק עטוף בתוך תא למינארי. קילוף המבוססת צלחת תווית ולמקם אותו לאורך הקצה של הלוח הקרוב ביותר ל A1 H1 בארות של צלחת היעד. מעט להרים את המכסה של צלחת היעד ומניחים את התווית על הקצה התחתון כדי להציג תווית כאשר צלחת מכוסה עם מכסה.
    3. להכין 3.5 L של 60% גליצרול (v/v) ולחטא 20 דקות ב החיטוי.
    4. ללבוש כפפות, חלוק המעבדה, מסיכה כדי להתמודד עם ערכת PA14NR. להסיר בלוקים עמוק טוב בשייקר במהירות גבוהה או שאכר רגיל.
    5. להעביר בלוקים באר למינארי סטרילי, הסר בזהירות לנשימה רפידה איטום. החלף את החותם אלומיניום. ספין-מטה רחובות באר במהירות נמוכה מאוד לאסוף עיבוי (30 שניות ב g x 50-150, ואז להאט quicky באמצעות צנטריפוגה בלם).
    6. להעביר בלוקים באר חזרה אל הוד סטרילי ולא באמצעות פיפטה אלקטרוניים µL 12-ערוץ 50-1200 ולהוסיף טיפים מסוננים סטרילי µL 525 של מיקס מרק נוזלי גליצרול/ליברות (בחלקים שווים LB נוזלי מרק ו- 60% גליצרול פתרון) כל טוב. מערבבים על ידי בעדינות pipetting 300 µL למעלה ולמטה 3 פעמים עם פיפטה אלקטרונית. לגעת טיפים לצד של היטב לפני הוצאת טיפים למניעת טפטוף. טיפים להוצאת ולהמשיך עם השורה הבאה, עד נעשה עם הבלוק טוב עמוק.
    7. באמצעות פיפטה חוזרות אלקטרונית ערוץ 12 טיפים מסוננים, כדי למנוע זיהום interwell במהלך aliquoting, תעלה 900 µL של תרבות מוטציה, לוותר על 150 µL כל לוחות 96-ובכן היעד כדי ליצור עותקים 6 של צלחת הספרייה. למנוע טיפות על-ידי נגיעה בקיר של הבארות עם טיפים לפני התחלת ההעברה של התרבות היעד לוחות. אם אין פיפטה חוזרת זמין, השתמש פיפטה רב-ערוצי כדי לשלול 150 µL לתוך כל הלוחות 6 96-ובכן, בטכניקה המתוארת לעיל כדי למנוע טפטוף.
    8. השתמש חותמות אלומיניום סטרילי כדי לכסות את הלוחות ולהשתמש גלגלת לצלחת לחלוטין חותם צלחת קצוות, כל בארות. ודא כי לא לכסות את התווית המזהה עם החותם אלומיניום. לא ללחוץ את לוחיות הרישוי, כפי תרבות עשוי תשפריץ על צידי הבארות או על החותם אלומיניום.
    9. הסר צלחות אטום צלחות הוד ומקום על דירה, אפילו משטח במקפיא-80 ° C.
    10. נגב את כל משטחי עבודה עם אתנול 70% לאחר טיפול הספרייה.
    11. לבצע בדיקות בקרת איכות אחרי השכפול ספריה ואחרי השימוש בספריה כדי לבצע מסכי גנטי (ראה פרוטוקול השלישי).

2. פרוטוקול II: טיפול ואחסון של מוטציות בודדות מסידרת PA14NR

  1. יום 1: מוטציה רצף של עניין
    1. לזהות את מיקום המוטציה עניין דרך http://pa14.mgh.harvard.edu/cgi-bin/pa14/search.cgi?searchType=SEARCH_PLATE_POSITIONS קישור PA14NR להגדיר או באמצעות הקובץ Nonredundant Library.xls שהורדו מה-http:// קישור pa14.mgh.harvard.edu/cgi-bin/pa14/downloads.cgi). רשום של אנטיביוטיקה הדרוש לבחירת כל מוטציה מסוימת (גנטמיצין או kanamycin).
    2. להכין מדיה אגר ליברות, עיקור אוטוקלב למשך 20-25 דקות, מגניב עד 55 מעלות צלזיוס בתוך המים הרותחים. הוסף גנטמיצין µg/mL 15 למוטאנטים המכילה הוספות transposon MAR2xT7 , 200 µg/mL kanamycin למוטאנטים המכילה הוספות transposonphoA Tn. יוצקים LB אגר מדיה על צלחות (צלחות עגולות או מלבניות הן נאותה). צלחות יבש בשכונה סטרילי כ 30 דקות עד h 1 לפני שימוש.
    3. אוטוקלב plasticware וכל ציוד שאינו סטרילי לפני השימוש.
    4. ללבוש כפפות, חלוק המעבדה, מסיכה כדי להתמודד עם ערכת PA14NR. לנקות ספסל ונגב משטח עם אתנול 70% לפני שעבדה עם ערכת PA14NR.
    5. ליצור שדה סטרילי בעזרת מבער בונזן.
    6. הסר את לוחית 96-ובכן PA14NR להגדיר עם מוטציה של עניין מ-80 מעלות צלזיוס מקפיא, הניחו אותו על קרח יבש, לקחת קרח יבש מיכל לספסל, ולמקם בקצרה 96-ובכן צלחת מעל הספסל כדי לאפשר קלה מפשיר (כ 1-2 דקות).
      הערה: לשמור תיעוד של כל PA14NR להגדיר 96-ובכן הצלחות לגשת פס המוטנטים בודדים, כמו יותר גישה ללוחות הספרייה הוא מתואם עם סיכון גדול יותר עבור זיהום interwell.
    7. חותם אלומיניום חם ביד לפני פילינג זה ביטול, נזהר למנוע את החותם של ליטוש את הצלחת. השתמש פינצטה לקלף את כל שרידים של החותם אלומיניום.
    8. אתר המוטציה עניין בצלחת 96-ובכן. להשתמש או מקל עץ סטרילי או פיפטה סטרילי טיפ לבחור כמות קטנה של תרבות קפואים מתוך הפרט טוב המכיל החשבונאי של עניין.
    9. פס קפוא תרבות על צלחת אגר על מושבות מוטציה בודדת כדלקמן: מורחים בעדינות החיידקים על מקטע של צלחת כדי ליצור פס 1, באמצעות טריים, סטרילי עץ מקל או פיפטה טיפ, לגרור פס 1 ו מורחים את החיידקים על קטע שני הצלחת, כדי ליצור רצף של 2. באמצעות השלישי סטרילי עץ מקל או פיפטה טיפ, גרור דרך פס 2 ולהפיץ את החיידקים מעל המקטע האחרון של הצלחת, כדי ליצור רצף של 3.
    10. חותם מקור לוחית אלומיניום עקר חותם חדש. אל תגעו צד דבק של אלומיניום חותם בכל נקודה כדי למנוע זיהום. ודא כל באר וקצוות של צלחת אטום לגמרי באמצעות גלגלת לצלחת. צלחת החזרה 96-ובכן קרח יבש ולאחר מכן במקפיא-80 ° C.
    11. דגירה צלחת אגר חממה 37 º C למשך הלילה.
    12. נגב את כל משטחי עבודה עם אתנול 70% לאחר טיפול הספרייה.
  2. יום 2: צמיחה של מוטציה עניין במרק נוזלי ליברות
    1. להכין מרק LB נוזלי המכיל גנטמיצין µg/mL 15 או 200 kanamycin µg/mL, לפי transposon ההכנסה.
    2. ללבוש כפפות, חלוק המעבדה ואת מסיכת לטפל aeruginosa פ.
    3. ברור משטח ספסל ולנגב עם 70% אתנול. ליצור שדה סטרילי בעזרת מבער בונזן.
    4. להעביר 3-5 מ ל ציר ליברות עם אנטיביוטיקה מתאימה לתוך צינור תרבות סטרילי עם כובע.
    5. שימוש של המוליך סטרילי או טיפ פיפטה סטרילי, לבחור מושבה בודדת של זן מוטציה, לחסן אותו לתוך המדיה ליברות.
    6. דגירה LB תרבויות נוזלי ב 37 מעלות צלזיוס ב שייקר-225-250 סל"ד למשך הלילה.
    7. נגב את כל משטחי עבודה עם אתנול 70% לאחר טיפול aeruginosa פ.
  3. יום 3: לאחסן mutant הריבית במקפיא-80 ° C
    1. Cryovial תווית עם שם המוטציות, אנטיביוטי להוסיף ציר LB ואת התאריך של אחסון.
    2. הכנת 500 מ"ל של 50% גליצרול (v/v) ולחטא ב החיטוי.
    3. ללבוש כפפות, חלוק המעבדה ואת מסיכת לטפל aeruginosa פ.
    4. לנקות ספסל ו/או שיטפון למינריות הוד ונגב משטח עם 70% אתנול.
    5. הסר את שפופרת המכילה תרבות מוטציה של שייקר.
    6. להכין את מיכל קטן עם קרח יבש.
    7. השתמש תא למינארי או ליצור שדה סטרילי על גבי ספסל אתנול-ניגבתי עם מבער בונזן.
    8. להוסיף כמויות שוות של התרבות חיידקי והגליצרול 50% cryovial עם תוויות תוך שימוש בתנאים סטריליים, ומערבבים בעדינות עם פיפטה (נפח סופי 1-2 מ ל/בקבוקון בהתאם לגודל cryovials בשימוש). במקום cryovial על קרח יבש עד quick-freeze.
    9. Cryovial מקום בתיבה תווית במקפיא-80 ° C.
    10. למחוק את כל משטחי עבודה עם אתנול 70% לאחר טיפול aeruginosa פ.

3. פרוטוקול השלישי: בקרת איכות של PA14NR סט

  1. בחר קבוצה אקראית של מוטציות צלחות המשוכפל החדש כדי לזהות זיהום אפשרי interwell (בדיקה של 30-40 מוטציות מומלץ).
    הערה: במקרים שבהם יש צורך לאשר את זהותה של מוטציה בשימוש עבור אפיון גנים ספציפיים, מומלץ לבצע PCR amplifications באמצעות תחל גנים ספציפיים המיועדים הרצף ידוע של הגן המכיל הכניסה transposon. למרות יותר מאתגר, היתרונות של שימוש שרירותי PCR תחל במקום תחל PCR גנים ספציפיים כאשר amplyfing DNA שברים מוטציות transposon כוללת את קלות את היכולת לזהות הנוכחות של פוטנציאל ואישור מוטציה בקנה מידה גדול מזהמים. למטרות בקרת איכות, זה לא הכרחי להשיג איכות גבוהה PCR רצף נתונים באקראי slected מוטציות, כל עוד מספר מספיק של מוטציות מוקרנים להערכת שיעור שגיאה.
  2. בצע "פרוטוקול II", צובעות ולגדול זנים מוטציה.
  3. אוטוקלב plasticware וכל ציוד שאינו סטרילי לפני השימוש.
  4. לבודד דנ א גנומי בשיטה המועדפת. לניתוח שתואר בעבודה זו, ערכת בידוד דנ א גנומי היה מנוצל בעקבות הפרוטוקולים של היצרן. יכול להיות מנותח זנים מוטציה מרובים בו זמנית.
  5. מודדים את ריכוז הדנ א הגנומי באמצעות ספקטרופוטומטרים microvolume. להתאים את ריכוז הדנ א הגנומי כ-100 ng/µL.
  6. השתמש דנ א גנומי כתבנית כדי להפעיל "תגובה PCR1" כפי שמתואר בשלב 1 של טבלה 3, יצירת שברים Arb1 PCR (איור 3). תחל בשלב זה מפורטים בטבלה 4.
  7. להוסיף 0.5 µL של 10 x טעינת מאגר ל 5 µL של תגובה PCR1, לטעון לתוך ג'ל agarose 1.5-2% ולהפעיל את הג'ל-80-150 V.
    הערה: אורך קטע ספציפי או טווח קטע מסוים לא צפוי, הלהקה אחד או יותר רשאי להיות נוכח כפי ומהצמיגים שרירותי עלול להיקשר למספר מיקומים.
  8. השתמש דנ א מתגובה PCR1 כתבנית כדי להפעיל "תגובה PCR2" כפי שמתואר בשלב 2 של טבלה 3, יצירת שברים Arb2 PCR (איור 3). תחל בשלב זה מפורטים בטבלה 4.
  9. להוסיף 0.5 µL של 10 x טעינת מאגר ל 5 µL של תגובה PCR2, לטעון לתוך ג'ל agarose 1.5-2%, ולהפעיל את הג'ל-80-150 V.
    הערה: אורך קטע ספציפי או טווח קטע מסוים לא צפוי, הלהקה אחד או יותר רשאי להיות נוכח כפי ומהצמיגים שרירותי עלול להיקשר למספר מיקומים.
  10. שלח תגובה PCR2 יחד עם transposon ספציפיים המתאימים, למתחילים רצף.
  11. Analize רצף תוצאות byBLASTing אותם נגד הגנום PA14 מלאה באמצעות הקישור הפיצוץ מסופק באתר האינטרנט של הספרייה PA14NR (http://pa14.mgh.harvard.edu/cgi-bin/pa14/blast.cgi) או על-ידי פיצוץ אותם ישירות נגד רצף גנים ספציפיים החשבונאי של עניין.
    הערה: מידע על מוטציות שנבחרו ניתן למצוא על ידי חיפוש באתר PA14NR להגדיר (חיפוש http://pa14.mgh.harvard.edu/cgi-bin/pa14/search.cgi?searchType=SEARCH_PLATE_POSITIONS או הורדה Library.xls Nonredundant קובץ מ http:/ הקישור / pa14.mgh.harvard.edu/cgi-bin/pa14/downloads.cgi).

figure-protocol-3
איור 3: PCR הגברה ורצף של מוטציות ההכנסה transposon. הצג סכימתי של שלבים מעורב הגברה PCR ורצף לצורך אימות זהות מוטציה. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.

הגדרת תגובת ה-PCR
שלב 1שלב 2
תגובת PCR1 : תגובת PCR2 :
23.25 µL מים (ביולוגיה מולקולרית כיתה)19.15 µL מים (ביולוגיה מולקולרית כיתה)
3µL 10 x. אנזימים מאגרµL 5 10 x. אנזימים מאגר
0.5µL אנזימים0.6 µL. אנזימים
0.625 µL 20 מיקרומטר פריימר Arb1D (טבלה 4)0.625 µL 20 מיקרומטר פריימר Arb2A (טבלה 4)
0.625 µL 20 מיקרומטר ספציפי transposon פריימר (PMFLGM. GB 3a או Tn5Ext) (טבלה 4)פריימר Transposon ספציפיים 0.625 mL 20 מיקרומטר (PMFLGM. GB 2a או Tn5Int2) (טבלה 4)
1 dNTPs 10 מ מ µL1 dNTPs 10 מ מ µL
1 µL הדנ א, 100 ngהתגובה PCR1 5 µL
נפח התגובה האחרונה 30 µLנפח התגובה האחרונה 30 µL
הגדרות תגובת ה-PCR
PCR1 Thermocycler תנאים: PCR2 תנאי Thermocycler:
95 ° C – 2 דקות95 ° C – 2 דקות
חזור 5 מחזורים:חזור מחזורים:
95 ° C – 30 s95 ° C – 30 s
30 ° C-1 דקות54 ° C – 30 s
72 ° C – 1 דקות72 ° C – 1.5 דקות
חזור מחזורים:72 ° C – 10 דקות
95 ° C – 30 s4 ° C – החזק
45 ° C – 30 s
72 ° C – 1 דקות
72 ° C – 10 דקות
4° C – החזק

טבלה 3: PCR thermocycler הקמה תנאי ריאקציה המשמש PCR שרירותי. תגובות PCR שרירותי מתבצעות ברצף, קטעים שנוצרו במהלך התגובה PCR1 משמשות כתבנית בתגובה PCR2. הגדרות ספציפיות thermocycler משמשות עבור כל ערכה של תגובות.

פריימר שםפריימר רצף
MAR2xT7 Transposon ספציפיים תחל
PMFLGM. GB-3aTACAGTTTACGAACCGAACAGGC
PMFLGM. GB-2aTGTCAACTGGGTTCGTGCCTTCATCCG
MAR2xT7 Transposon רצף פריימר
PMFLGM. GB-4aGACCGAGATAGGGTTGAGTG
TnphoA ספציפי Transposon Primers
Tn5ExtGAACGTTACCATGTTAGGAGGTC
Tn5Int2GGAGGTCACATGGAAGTCAGATCCTGG
TnphoA Transposon רצף פריימר
Tn5IntCGGGAAAGGTTCCGTTCAGGACGC
צבעי יסוד שרירותי
ARB1DGGCCAGGCCTGCAGATGATGNNNNNNNNNNGTAT
ARB2AGGCCAGGCCTGCAGATGATG

בטבלה 4: רשימת תחל להשתמש בבקרת איכות ניסויים. תחל המשמש עבור הגברה PCR ורצף של מוטציות transposon הכניסה כדי לאשר את הזהות מוטציה.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

12 עותקים חדשים של ערכת PA14NR היו משוכפלות באמצעות פרוטוקול ואני הערכה בקרת איכות של העותקים החדש שנוצר נערך באמצעות פרוטוקול השלישי.

PA14NR להגדיר לוחות מוטציה יחד עם לוחות בקרה, המורכבים מסקטור פראי סוג PA14 מחוסן, uninoculated בארות intercalated ב כקביעת דוגמת מילוי (איור 4A), היו משוכפלות בעקבות methology תיאר פרוטוקול אני שולט צלחות כלולים PA14NR קבע להעריך אפשרות הידבקות interwell בעת ביצוע ש...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

P. aeruginosa PA14NR הינו משאב יקר ערך עבור הקהילה המדעית. לפי לערכת 2017/03 ממסד חיוני אינדיקטורים המדע של Clarivate Analytics,. Liberati et al. (2006) 37, אשר מתאר את בניית ערכת PA14NR, היא מדורגת במקום 1% העליונים של מיקרוביולוגיה פרסומים. Google Scholar דוחות. מעל 600 אזכורים של. Liberati, et al. (2006) לכתב היד המקורי החל באוגוסט 2017. הספרייה שיחק תפקיד חשוב שחקרתי המנגנונים aeruginosa פ פתוגנזה. חשוב, פורמט צלחת 96-ובכן ערכת PA14NR מקלה על תפוקה ...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

המחברים מדווחים שאין ניגודי אינטרסים כספיים. אליאנה Drenkard ו פרדריק Ausubel השתתפו ביצירת ספריית מוטנטים של nonredundant transposon PA14. בריאן הארלי, היידי באש Lael-חרוד כיום בית ולהפיץ את ספריית מוטנטים כחלק מחלקת ילדים בבית החולים הכללי במסצ'וסטס.

תודות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ברצוננו להודות ליסה Philpotts של הספריה הווירטואלית טריידוול MGH להנחיה שלה חפש את מסד הנתונים. עבודה זו נתמכה על ידי איגוד סיסטיק פיברוזיס (YONKER16G0 ו- HURLEY16G0) NIH NIAID (BPH ואייד: R01 A1095338).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
חומרים לשכפול ספרייה
Sterile 96-well Tissue Culture מטופל, מקרה של 50Corning Life Sciences353072via Fisher Scientific
Sterile 96 Well Clear V-Bottom 2000μ L צלחות באר עמוקות, מארז של 25Corning Life Sciences3960באמצעות Fisher Scientific
Nunc OmniTray (לוחות מלבניים), מארז של 60Thermo Scientific Rochester242811via Fisher
Scientific Rectangular Ice Pan, Midi (4L)Corning Life Sciences432104via Fisher
Scientific Secure-Gard Cone Mask, מארז של 300Cardinal HealthAT7509via Fisher Scientific
AluminaSeal, חבילה של 100ביוטכנולוגיה מגוונתALUM-100באמצעות
ממברנה Fisher Scientific Breathe-Easy, חבילה של 100ביוטכנולוגיה מגוונתBEM-1באמצעות Sigma-Aldrich
סטרילי, עטוף בנפרד, 50 מ"ל שוקת/מאגר ריאגנט, מארז של 100SorensonS50100
רולר צלחתVWR60941-118באמצעות תוויות
לייזר קריו VWR - CRYOLAZRTAG 2.64 אינץ' x 0.277 אינץ', חבילה של 16 גיליונותGA InternationalRCL-11T1-WHבאמצעות Labtag.com (תבנית להדפסה זמינה גם מ-Labtag.com)
משכפל 96 בארותV & פי סיינטיפיק בע"מ407C מותאם אישית, קוטר סיכה 3.18 מ"מ, אורך 57 מ"מבאמצעות V & פי סיינטיפיק בע"מ
Multitron Pro, חממת טלטול 3 מ"מInfors HTl10003Pבאמצעות Infors HT
Picus 12 ערוצים 50-1200μ L פיפטה אלקטרוניתSartorius735491PRבאמצעות טיפים לסנן Sartorius
50-1200μ L, חבילה של 960Biohit14-559-512באמצעות Fisher Scientific; השתמש בטיפים אלקטרוניים תואמים רב-ערוציים
Iceספק ספציפי למשתמש
חומרים לאחסון מוטנטים בודדים
צינורות מיקרוצנטריפוגה פרימיום של פישרברנד: 1.5 מ"לפישר סיינטיפיק05-408-130באמצעות פישר סיינטיפיק
פיפטות (P1000, P200, P20, P2)GilsonF167370באמצעות Gilson
חומרים לבקרת איכות PCR
צינורות מיקרוצנטריפוגה פרימיום של Fisherbrand: 1.5 מ"לFisher Scientific05-408-130באמצעות Fisher Scientific
NanoDropThermo ScientificND-2000באמצעות ThermoFisher
PCR Thermocycler
צינורות PCR של Omnistrips עם מכסים כיפתייםThermo ScientificAB0404באמצעות Fisher Scientific
ART קצות פיפטה בעלי שמירה נמוכה (10 uL, 100 uL, 1000 uL)Molecular BioProducts, Inc.Z676543 (10 uL), Z676713 (100 uL), Z676802 (1000 uL)via Sigma-Aldrich
Pipettes (P1000, P200, P20, P2)GilsonF167370via Gilson
Fisherbrand Premium Microcentrifuge Tubes: 1.5 מ"לFisher Scientific05-408-130באמצעות Fisher Scientific
MasterPure DNA Purification KitEpicentreMCD85201באמצעות Epicentre Technologies Corp
GeneRuler 1 kb פלוס סולם DNA, מוכן לשימושThermo ScientificSM1333באמצעות ThermoFisher
RediLoad Loading BufferInvitrogen750026באמצעות ThermoFisher
Chemicals<
em>כימיקלים לספרייה ואחסון מוטנטי בודד
גליצרול MB כיתה, 1LSigma AldrichG5516באמצעות מרק
LBלכל 1 ליטר dH2O: 10 גרם טריפטון, 5 גרם תמצית שמרים, 5 גרם NaCl, 1 מ"ל 1N NaOH (פרוטוקולים נוכחיים בביולוגיה מולקולרית.  Wiley, 1994.)
טריפטוןסיגמא אולדריץT7293סיגמא-אולדריץ
סיגמא אולדריץ'Y1625באמצעות סיגמא-אולדריץ
' סודיום כלורידסיגמא אולדריץ'S7653באמצעות סיגמא-אולדריץ
' נתרן הידרוקסידסיגמא אולדריץ'S8045באמצעות סיגמא-אולדריץ'
LB  אגרראה הכנה למעלה, הוסף 15 גרם בקטו אגר
Bacto AgarSigma AldrichA5306באמצעות Sigma-Aldrich
Gentamicin sulfate, 10 גרםBioReagent1405-41-0באמצעות Sigma-Aldrich
Kanamycin sulfateGibco11815024via ThermoFisher
Ethanol, 190 proofDecon04-355-221באמצעות Fisher Scientific
כימיקלים לבקרת איכות PCR
פריימרסספק מועדף על ידי המשתמשראה פריימרים המפורטים בטבלה 3
Corning cellgro Molecular Biology Grade WaterCorning46000CVבאמצעות Fisher Scientific
Taq Polymerase BufferInvitrogen10342020באמצעות ThermoFisher
Taq DNA Polymerase, Invitrogen רקומביננטי10342020דרך ThermoFisher
dNTPsInvitrogen10297018באמצעות ThermoFisher
AgaroseSigmaA9539דרך Sigma-Aldrich
באמצעות משולב Westnet Dry Sigma-Aldrich' באמצעות תמצית שמרים '

מקורות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Moradali, M. F., Ghods, S., Rehm, B. H. Pseudomonas aeruginosa lifestyle: A paradigm for adaptation, survival, and persistence. Front Cell Infect Microbiol. 7, 39(2017).
  2. Bleves, S., et al. Protein secretion systems in Pseudomonas aeruginosa: A wealth of pathogenic weapons. Int J Med Microbiol. 300 (8), 534-543 (2010).
  3. Breidenstein, E. B., de la Fuente-Nunez, C., Hancock, R. E. Pseudomonas aeruginosa: all roads lead to resistance. Trends Microbiol. 19 (8), 419-426 (2011).
  4. Flynn, K. M., et al. Evolution of ecological diversity in biofilms of Pseudomonas aeruginosa by altered cyclic diguanylate signaling. J Bacteriol. 198 (19), 2608-2618 (2016).
  5. Hazan, R., Maura, D., Que, Y. A., Rahme, L. G. Assessing Pseudomonas aeruginosa persister/antibiotic tolerant cells. Methods Mol Biol. 1149, 699-707 (2014).
  6. Klockgether, J., et al. Genome diversity of Pseudomonas aeruginosa PAO1 laboratory strains. J Bacteriol. 192 (4), 1113-1121 (2010).
  7. Mathee, K., et al. Dynamics of Pseudomonas aeruginosa genome evolution. Proc Natl Acad Sci U S A. 105 (8), 3100-3105 (2008).
  8. Taylor, P. K., Yeung, A. T., Hancock, R. E. Antibiotic resistance in Pseudomonas aeruginosa biofilms: towards the development of novel anti-biofilm therapies. J Biotechnol. 191, 121-130 (2014).
  9. Flume, P. A., Van Devanter, D. R. State of progress in treating cystic fibrosis respiratory disease. BMC Med. 10, 88(2012).
  10. Foundation, C. F. Cystic Fibrosis Foundation Patient Registry 2015 Annual Data Report. , Available from: https://www.cff.org/Our-Research/CF-Patient-Registry/2015-Patient-Registry-Annual-Data-Report.pdf (2016).
  11. Church, D., Elsayed, S., Reid, O., Winston, B., Lindsay, R. Burn wound infections. Clin Microbiol Rev. 19 (2), 403-434 (2006).
  12. Sadikot, R. T., Blackwell, T. S., Christman, J., Prince, A. Pathogen-host interactions in Pseudomonas aeruginosa pneumonia. Am J Respir Crit Care Med. 171 (11), 1209-1223 (2005).
  13. Song, Z., et al. Prosthesis infections after orthopedic joint replacement: the possible role of bacterial biofilms. Orthop Rev (Pavia). 5 (2), 65-71 (2013).
  14. National Nosocomial Infections Surveillance, S. National Nosocomial Infections Surveillance (NNIS) System Report, data summary from January 1992 through June 2004, issued October 2004. Am J Infect Control. 32 (8), 470-485 (2004).
  15. Cohen, T. S., Parker, D., Prince, A. Pseudomonas aeruginosa Host Immune Evasion. 7, 3-23 (2014).
  16. Fernandes, A., Dias, M. The microbiological profiles of infected prosthetic implants with an emphasis on the organisms which form biofilms. J Clin Diagn Res. 7 (2), 219-223 (2013).
  17. Khosravi, A. D., Ahmadi, F., Salmanzadeh, S., Dashtbozorg, A., Montazeri, E. A. Study of Bacteria Isolated from Orthopedic Implant Infections and their Antimicrobial Susceptibility Pattern. Res J of Microbiol. 4 (4), 6(2009).
  18. Roemhild, R., Barbosa, C., Beardmore, R. E., Jansen, G., Schulenburg, H. Temporal variation in antibiotic environments slows down resistance evolution in pathogenic Pseudomonas aeruginosa. Evol Appl. 8 (10), 945-955 (2015).
  19. Fischer, S., et al. Intraclonal genome diversity of the major Pseudomonas aeruginosa clones C and PA14. Environ Microbiol Rep. 8 (2), 227-234 (2016).
  20. Wiehlmann, L., et al. Population structure of Pseudomonas aeruginosa. Proc Natl Acad Sci U S A. 104 (19), 8101-8106 (2007).
  21. Lam, J. S., Taylor, V. L., Islam, S. T., Hao, Y., Kocincova, D. Genetic and functional diversity of Pseudomonas aeruginosa lipopolysaccharide. Front Microbiol. 2, 118(2011).
  22. Choi, J. Y., et al. Identification of virulence genes in a pathogenic strain of Pseudomonas aeruginosa by representational difference analysis. J Bacteriol. 184 (4), 952-961 (2002).
  23. He, J., et al. The broad host range pathogen Pseudomonas aeruginosa strain PA14 carries two pathogenicity islands harboring plant and animal virulence genes. Proc Natl Acad Sci U S A. 101 (8), 2530-2535 (2004).
  24. Mikkelsen, H., McMullan, R., Filloux, A. The Pseudomonas aeruginosa reference strain PA14 displays increased virulence due to a mutation in ladS. PLoS One. 6 (12), e29113(2011).
  25. Drenkard, E., Ausubel, F. M. Pseudomonas biofilm formation and antibiotic resistance are linked to phenotypic variation. Nature. 416 (6882), 740-743 (2002).
  26. Rahme, L. G., et al. Common virulence factors for bacterial pathogenicity in plants and animals. Science. 268 (5219), 1899-1902 (1995).
  27. Rahme, L. G., et al. Use of model plant hosts to identify Pseudomonas aeruginosa virulence factors. Proc Natl Acad Sci U S A. 94 (24), 13245-13250 (1997).
  28. Kirienko, N. V., Cezairliyan, B. O., Ausubel, F. M., Powell, J. R. Pseudomonas aeruginosa PA14 pathogenesis in Caenorhabditis elegans. Methods Mol Biol. 1149, 653-669 (2014).
  29. Mahajan-Miklos, S., Tan, M. W., Rahme, L. G., Ausubel, F. M. Molecular mechanisms of bacterial virulence elucidated using a Pseudomonas aeruginosa-Caenorhabditis elegans pathogenesis model. Cell. 96 (1), 47-56 (1999).
  30. Limmer, S., et al. Pseudomonas aeruginosa RhlR is required to neutralize the cellular immune response in a Drosophila melanogaster oral infection model. Proc Natl Acad Sci U S A. 108 (42), 17378-17383 (2011).
  31. Miyata, S., Casey, M., Frank, D. W., Ausubel, F. M., Drenkard, E. Use of the Galleria mellonella caterpillar as a model host to study the role of the type III secretion system in Pseudomonas aeruginosa pathogenesis. Infect Immun. 71 (5), 2404-2413 (2003).
  32. Coleman, F. T., et al. Hypersusceptibility of cystic fibrosis mice to chronic Pseudomonas aeruginosa oropharyngeal colonization and lung infection. Proc Natl Acad Sci U S A. 100 (4), 1949-1954 (2003).
  33. Pazos, M. A., et al. Pseudomonas aeruginosa ExoU augments neutrophil transepithelial migration. PLoS Pathog. 13 (8), e1006548(2017).
  34. Maura, D., Hazan, R., Kitao, T., Ballok, A. E., Rahme, L. G. Evidence for direct control of virulence and defense gene circuits by the Pseudomonas aeruginosa quorum sensing regulator, MvfR. Sci Rep. 6, 34083(2016).
  35. Jacobs, M. A., et al. Comprehensive transposon mutant library of Pseudomonas aeruginosa. Proc Natl Acad Sci U S A. 100 (24), 14339-14344 (2003).
  36. Held, K., Ramage, E., Jacobs, M., Gallagher, L., Manoil, C. Sequence-verified two-allele transposon mutant library for Pseudomonas aeruginosa PAO1. J Bacteriol. 194 (23), 6387-6389 (2012).
  37. Liberati, N. T., et al. An ordered, nonredundant library of Pseudomonas aeruginosa strain PA14 transposon insertion mutants. Proc Natl Acad Sci U S A. 103 (8), 2833-2838 (2006).
  38. Feinbaum, R. L., et al. Genome-wide identification of Pseudomonas aeruginosa virulence-related genes using a Caenorhabditis elegans infection model. PLoS Pathog. 8 (7), e1002813(2012).
  39. Stewart, L., et al. Draft genomes of 12 host-adapted and environmental isolates of Pseudomonas aeruginosa and their positions in the core genome phylogeny. Pathog Dis. 71 (1), 20-25 (2014).
  40. Thrane, S. W., et al. The widespread multidrug-resistant serotype O12 Pseudomonas aeruginosa clone emerged through concomitant horizontal transfer of serotype antigen and antibiotic resistance gene clusters. MBio. 6 (5), e01396-e01315 (2015).
  41. van Belkum, A., et al. Phylogenetic Distribution of CRISPR-Cas Systems in Antibiotic-Resistant Pseudomonas aeruginosa. MBio. 6 (6), e01796-e01715 (2015).
  42. Lewenza, S., et al. Construction of a mini-Tn5-luxCDABE mutant library in Pseudomonas aeruginosa PAO1: a tool for identifying differentially regulated genes. Genome Res. 15 (4), 583-589 (2005).
  43. Current Protocols in Molecular Biology. , Wiley. (1994).
  44. Breidenstein, E. B., Khaira, B. K., Wiegand, I., Overhage, J., Hancock, R. E. Complex ciprofloxacin resistome revealed by screening a Pseudomonas aeruginosa mutant library for altered susceptibility. Antimicrob Agents Chemother. 52 (12), 4486-4491 (2008).
  45. Musken, M., Di Fiore, S., Dotsch, A., Fischer, R., Haussler, S. Genetic determinants of Pseudomonas aeruginosa biofilm establishment. Microbiology. 156 (Pt 2), 431-441 (2010).
  46. Schurek, K. N., et al. Novel genetic determinants of low-level aminoglycoside resistance in Pseudomonas aeruginosa. Antimicrob Agents Chemother. 52 (12), 4213-4219 (2008).
  47. Oumeraci, T., et al. Comprehensive MALDI-TOF biotyping of the non-redundant Harvard Pseudomonas aeruginosa PA14 transposon insertion mutant library. PLoS One. 10 (2), e0117144(2015).
  48. Yeung, A. T., et al. Swarming of Pseudomonas aeruginosa is controlled by a broad spectrum of transcriptional regulators, including MetR. J Bacteriol. 191 (18), 5592-5602 (2009).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

בקש הרשאה לשימוש חוזר בטקסט או באיורים של מאמר JoVE זה

בקש הרשאה

תגיות

LB

מאמרים קשורים