הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

עלות נמוכה גמיש מערכת הידרופונית להערכת תגובות צמח מולקולות קטנות בתנאים סטריליים

10.9K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/57800

⸱

25 באוגוסט 2018

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Brazilian Bioethanol Science and Technology Laboratory (CTBE), Brazilian Center for Research in energy and materials (CNPEM), 2University of Campinas (UNICAMP), 3University of Viçosa (UFV), 4CTBE, CNPEM, 5Brazilian Bioethanol Science and Technology Laboratory (CTBE/CNPEM), Max Planck Partner Group

* These authors contributed equally

במאמר זה

סיכום

מערכת פשוטה רב-תכליתי, בעלות נמוכה במבחנה הידרופוני בהצלחה אופטימלי, הפעלת ניסויים בקנה מידה גדול בתנאים סטריליים. מערכת זו מקלה על היישום של חומרים כימיים פתרון וספיגה יעילה שלהם על ידי השורשים ללימודי מולקולרית, ביוכימיה ו פיזיולוגיים.

תקציר

מגוון רחב של לימודי בביולוגיה צמח מבוצעות באמצעות תרביות הידרופוני. בעבודה זו, מוצג במבחנה גידול הידרופוני מערכת המיועדת הערכת התגובות מפעל כימיקלים וחומרים אחרים עניין. מערכת זו היא היעילה ביותר בהשגת שתילים הומוגנית ובריא של C3 ו- C4 דגם מינים תודרנית לבנה , זיפן דגולה, בהתאמה. טיפוח סטרילי מונע אצות וזיהום מיקרואורגניזם, אשר ידועים גורמים מגבילים צמח רגיל לצמיחה ופיתוח בהידרופוניקה. בנוסף, מערכת זו היא מדרגית, המאפשר את היבול של חומר צמחי בקנה מידה גדול עם נזקים מכניים קלים, כמו גם את היבול של חלקים נפרדים של צמח במידת הצורך. פרוטוקול מפורט הוכחת כי מערכת זו יש הרכבה קלה, בעלות נמוכה, כפי שהיא משתמשת פיפטה מתלים כפלטפורמה העיקרי לגידול צמחים, מסופק. הכדאיות של מערכת זו אומתה באמצעות תודרנית השתילים כדי להעריך את ההשפעה של הסם AZD-8055, מעכב כימי של היעד של קינאז rapamycin (טור). טור עיכוב ביעילות זוהה מוקדם ככל 30 דקות לאחר טיפול AZD-8055 ב רוטס & שוטס. יתר על כן, צמחים AZD 8055-שטופלו מוצגים על פנוטיפ עמילן-עודף הצפוי. הצענו מערכת הידרופוני זו כמו שיטת אידיאלי עבור חוקרי הצמחים במטרה לפקח על הפעולה של הצמח inducers או מעכבי, כמו גם באשר להעריך פלקסים מטבולית באמצעות תיוג-איזוטופ תרכובות אשר, באופן כללי, מחייב שימוש יקר ריאגנטים.

מבוא

היתרונות של שימוש הידרופוניקה גידול צמחים זוהו נרחב בייצור של צמחים גדולה ואחידה, הפעלת ניסויים לשחזור1,2,3. במערכת זו, ההרכב של הפתרון התזונתי יכול להיות כראוי נשלטים ועל ממוחזר לאורך כל שלבי התפתחות וצמיחה של הצמח. יתר על כן, שורשים לא נתון והאביוטיים מושם, כפי שעלול לקרות בצמחים שגודלו בקרקע, כגון חומר מזין הרעבה ומים מחסור4. כמו הצמחים גדלו hydroponically נוכח פיזיולוגיים מורפולוגיים תכונות דומים למדי לאלו תרבותי בקרקע, מערכת זו כבר בהרחבה מועסקים במחקר כי זה מאפשר פיקוח על צמיחה שורש/לירות קצירת שלהם מבלי פציעות2,5.

בשל האפשרות של שינוי הרכב ואת ריכוז של הפתרון התזונתי, רוב המחקרים שימוש בתנאים הידרופוני בוצעה כדי לאפיין את הפונקציות של מיקרו - ו macronutrients1,3 ,6,7,8. עם זאת, מערכת זו הוכיחה להיות מאוד שימושי למגוון רחב של יישומים בביולוגיה הצמח, כגון להבהיר את הפונקציות של הורמונים וכימיקלים בצמחים. כך למשל, גילוי סטריגולקטונים כמו סוג חדש של הורמונים9 ו של פנוטיפ הצמיחה המואצת המופעלות על-ידי יישום ברסינוסטרואיד10 בוצעו בתנאים הידרופוני. יתר על כן, מערכת זו מאפשרת ניסויים עם איזוטופים שכותרתו (למשל, 14N /15N ו- 13CO2)11,12 להעריך שלהם שהשתלבה חלבונים ו מטבוליטים באמצעות ספקטרומטר מסה.

בהתחשב החשיבות של מערכת זו במחקר הצמח, מספר גבוה של תרבויות הידרופוני תוכנן בהשנים האחרונות, כולל מערכות המשתמשות (i) את ההעברה של שתילים של פלטות מיכלי הידרופוני3, 13; (ii) rockwool המגבילים גישה בשלבים המוקדמים של שורש פיתוח2,14,15; (iii) פוליאתילן מגרסת כמו הגוף צף, מה שהופך את היישום הומוגנית של מולקולות קטנות/טיפולים קשה16; או (iv) מופחתת מספר צמחים9,17. הנפח של טנקים הידרופוני תיאר ברבות מן הפרוטוקולים האלו הם בדרך כלל גדולים (אחסון קטן הנע בין 1-5 L, עד 32 L)18, מה שהופך את היישום של כימיקלים יקר מאוד. למרות מחקרים מעטים לתאר ההידרופוניות תחת תנאים aseptic8,19, ההרכבה של המערכת בדרך כלל די מייגעת, המורכב ההתאמה המושלמת של רשתות שינוי ניילון פלסטיק או זכוכית מכולות5,8,17,20.

בשל החשיבות של תודרנית לבנה כמו צמח מודל, הרוב המכריע של הידרופוניקה מערכות תוכננו עבור זה מינים1,2,8,14,18, 19 , 20. עם זאת, ישנם כמה מחקרים דיווח התכונות גידול הידרופוני מיני צמחים אחרים עם רעלני של זרעים לשפר את הנביטה שלהם ומחשיבה סינכרון במבחנה8,16 . כדי לעבוד בקנה מידה גדול, פיתחנו פרוטוקול עבור הגדרת מערכת הידרופוני תחזוקה פשוטה, בעלות נמוכה המאפשר בתנאים סטריליים לגידול צמחים, כולל לבנה א ו מינים אחרים, כגון הדשא זיפן דגולה. השיטה המתוארת כאן מתאימה לניסויים שונים, ככל הגידול שתיל יכול להיות מוגדל, מסונכרנים, בקלות תחת פיקוח. יתר על כן, מערכת זו יש יתרונות רבים כמו: (i) על מנת להרכיב וסופן ולהשתמש מרכיביו; (ii) זה מאפשר את יישום קל של כימיקלים שונים לתוך המדיום הנוזלי; (iii) את השתילים לנבוט ולגדול ישירות בהמדיום תרבות ללא הצורך של העברה אל מערכת הידרופוניקה; (iv) לירות ושורש הפיתוח/הגידול יכול להיות תחת פיקוח צמוד, השתילים נקצרים ללא פיצויים; ו (v) זה עושה את זה אפשרי לעבודה בקנה מידה גדול, שמירה על מצבים פיזיולוגיים.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

1. הכנת המדיה תרבות נוזלי ומוצק

  1. להכין מדיום נוזלי באמצעות מדיום Murashige ו- Skoog (MS) בחצי כוח עם ויטמינים [0.0125 mg/L של cobalt(II) pentahydrate כלוריד, 0.0125 mg/L של copper(II) סולפט pentahydrate, 18.35 mg/L של נתרן ferric ethylenediaminetetraacetate, 3.10 מ ג/ליטר של . חומצת בור, 0.415 mg/L של אשלגן יודיד, 8.45 מ ג/ליטר של מנגן מונוהידראט, 0.125 מ"ג/ליטר של נתרן molybdate וגופרית והרכבו 4.30 מ ג/ליטר של אבץ סולפט heptahydrate, 166.01 mg/L של סידן כלורי, 85 מ"ג/ליטר של אשלגן פוספט dihydrogen, 950 מ ג/ליטר של חומצה גופרתית חנקת אשלגן 90.27 mg/L של מגנזיום גופרתי, 825 מ"ג/ליטר של אמוניום חנקתי, 1 מ ג/ליטר של גליצין, 50 מ"ג/ליטר של myo-אינוזיטול, 0.25 mg/L nicotinic חומצה, 0.25 mg/L של פירידוקסין הידרוכלוריד, 0.05 mg/L של תיאמין הידרוכלוריד] בתוספת 0.25 g/L של MES, ולהתאים את ה-pH ל 5.8 עם 10 מ' KOH.
  2. להוסיף 10 גרם/ליטר של אגר לעשות בחצי כוח מוצק MS בינוני. אוטוקלב המדיום ב 121 מעלות צלזיוס במשך 20 דקות לפני השימוש.

2. מערכת הידרופונית הרכבת

הערה: השלבים שיש אחריו בקפידה כדי לבנות מערכת הידרופוני.

  1. עיקור גשמי
    1. לארוז בשקית אוטוקלב הטיפ פיפטה ארונות תקשורת (ללא מכסה) אשר ישמש בתור minitanks. אוטוקלב המדפים ב 121 מעלות צלזיוס במשך 20 דקות, 15 psi.
      הערה: המדף עצה פיפטה פוליפרופילן השתמשנו היה הממדים הבאים: 120 מ מ (אורך) x 89 מ מ (רוחב) x 55 מ מ (גובה). משטח שטוח של עצה פיפטה חייב להיות שטח עבור התוספת של תרבות בינוני. ארונות תקשורת אחרים עצה יכול לשמש (ראו טבלה של חומרים).
      הערה: לאורך כל ההליך הרכבה של מערכת הידרופוני, יש צורך להשתמש תא למינארי, אשר צריך לנקות ולשמור חיטוי עם אתנול 70% לפני השימוש. הנסיין עליך ללבוש חלוק מעבדה, לשטוף את הידיים שלהם, כל חשופות העור, ולחטא אותם עם 70% אתנול. כפפות הם אופציונליים, מלבד יישום סמים.
    2. לנקות את כל האביזרים שתוארו לעיל (קופסאות פלסטיק חד פעמיות, דבק, פיפטות, מספריים, ופינצטה) עם אתנול 70% לפני הכניסה את למינארי. אם המנוע מאפשר, הפעל את האור האולטרה סגול 10 דקות לפני הרכבת של מערכת הידרופוני על מנת לשמור על אזור העבודה ושוקמו.
  2. Minitank הרכבת
    1. לאטום את המשטח העליון של קצה פיפטה שטוח עם סקוטש (איור 1B). אם אפשר, תשאיר את זה מתחת UV אור למשך 10 דקות.
    2. להוסיף כל טוב באמצעות פיפטה רב-ערוצי (איור 1C) µL 180 מומס מוצק MS תרבות בינוני (מעט חמים).
      הערה: בעת הכנת טנקים רבים, השתמש פלטה כדי למנוע המדיום MS שהשרף מתהווה.
    3. לאפשר המדיום שבמהלכו לחלוטין (במשך כ 30 דקות).
      הערה: במהלך תקופת התמצקות, האור האולטרה סגול יכול להיות מופעלת.
    4. למלא את המדף עצה פיפטה לחלוטין עם MS נוזלי תרבות בינוני (איור 1D) וודאו כי יש קשר הדוק בין המוצק התקשורת נוזלי.
    5. הסר את סרטי הדבקה של המשטח העליון של קצה פיפטה שטוח, להתאים את זה על המדף בקפידה. מערכת הידרופוני עכשיו הוא מוכן לקבל את הזרעים מעוקר.

3. זרעי עיקור

  1. המקום 500 תודרנית זרעים 1.5 mL microtube. השתמש microtubes רבים ככל שנדרש על פי מספר צמחים הנדרשות לניסוי.
  2. לשטוף את הזרעים עם אתנול 70% למשך 2 דקות עם עצבנות עדין. תן הזרעים להתיישב ולאחר מכן תסיר האתנול בקפידה.
  3. להוסיף 1 מ"ל של נתרן תת-כלורי 10% הפתרון הכולל 2 µL של חומר ניקוי 20 polysorbate. להתסיס הפתרון עבור 5 דק. הסר את הפתרון בקפידה.
  4. יש לשטוף את הזרעים במים מזוקקים סטריליים עד להסרת כל השאריות אקונומיקה הוא לחלוטין (בערך 5 x).
    הערה: לאחר עיקור פני השטח, הזרעים היו שקוע במים מזוקקים סטריליים, מרובדת ב 4 ° C בחושך 5 d לסנכרן את הנביטה.
    הערה: זרעי דגולה זיפן (ההצטרפות A10.1) היו preincubated בחומצה גופרתית מרוכזת למשך 15 דקות (לשבור את תרדמה הפיזי), לשטוף ביסודיות במים מזוקקים סטריליים, ואז disinfested עם פתרון 5% נתרן תת-כלורי המכיל 0.1% polysorbate 20 במשך חמש דקות עם עצבנות עדין21. השלבים עיקור הנותרים היו זהים לאלו שתוארו תודרנית זרעים.

4. הזרע יישום

  1. לחתוך מעט החמורים של טיפ µL 200 בעזרת אזמל סטרילי.
  2. Pipette הזרעים תודרנית לתוך האמצעי תרבות אחיד על פני השטח העליון של קצה פיפטה שטוח. . שמור על עצמך כי המדיום לא שחרר מהדירה; . אחרת, הזרעים יהיה מוצל ולא השתילים לא יגדלו כראוי (איור 1E).
    הערה: השתמש פינצטה סטרילי עבור זרעים זיפן (עם העובר בעמדה כלפי מעלה).
  3. חנות minitanks רבים ככל האפשר בתוך קופסת פלסטיק חד פעמיות כדי לשמור על לחות גבוהה ולשמור על הסביבה מפני מיקרואורגניזמים (איור 1F) חינם.
  4. חותם את קופסת פלסטיק חד פעמיות ביסודיות באמצעות דבק כדי למנוע זיהום.
  5. מקם את מערכות הידרופוני לתא צמיחה עם התנאים המתאימים צמיחה של הצמח עניין.
    הערה: בעבודה זאת, התנאים הבאים שימשו: 75% לחות, ו- 150 µmol ז-2 s-1 irradiance והתנאים equinoctial של 12 שעות אור (21 ° C) / 12 h כהה (19 ° C) עבור תודרנית, או 300 µmol ז-2 s-1 של אור בקרינה ו- 12 h (28 מעלות צלזיוס) / 12 h כהה (25 ° C) עבור זיפן (איור 1 ג'י ו- 1 H).

5. אימות השימוש של מערכת הידרופוני זו כדי לעכב את היעד של קינאז Rapamycin

הערה: מערכת הידרופוני זו פותחה בתחילה כדי להקל את הניהול של כימיקלים צמחים, אשר, באופן כללי, הם יקרים מאוד להיות מיושם ניסויים בקנה מידה גדול. מהווה הוכחה של המושג, החומר המדכא תחרותי ATP AZD-8055, אשר ידוע במיוחד למטרה האתר מחייב ATP של TOR פרוטאין קינאז22, הועסק לעקוב הדיכוי של TOR פעילות אחרים-שתילים, (קולומביה-0 לבנה א מרכז תודרנית מניות נוטינגהאם, NASC מזהה: N22681). . הנה, פרוטוקול המשמש מתואר בקצרה.

  1. גדלים הזרעים hydroponically עד שלב 1.04 לפי BBCH גודל23 (במשך כ 11 יח) בתנאים אקלימיים שתוארו לעיל. להחליף את הפתרון התזונתי, גם עם טרי בינוני המכילים 0.05% דימתיל סולפוקסיד (בקרה), 2 מיקרומטר AZD-8055 (TOR מעכב) מדולל דימתיל סולפוקסיד, או ללא טיפול (מעושה), בסוף הלילה (EN).
  2. הקציר כמה שתילים בנקודות זמן שונות לאחר הטיפול ולהפריד אותם לתוך רוטס & שוטס. הקפאת הדגימות של חנקן נוזלי, לטחון אותם כדי אבקה לתוך מטחנה רובוטית (ראה טבלה של חומרים), ולאחסן את האבקה ב-80 מעלות צלזיוס עד השימוש.
  3. Immunoblot נגד phosphorylated ו- phosphorylated צורות החלבונים ribosomal בשנות ה-40, S6 (RPS6) על פי Dobrenel. et al. 24.
  4. אקונומיקה שתילים שלם עבור מדגם depigmentation לשטוף אותם במים מזוקקים, לטבול אותם פתרון יוד 5 דקות25, לצלם את השתילים בשטח stereomicroscope (0.63 X אובייקטיבי, 20 x קירוב, ובהיקף x 7.5) עבור הערכה איכותית של התוכן עמילן.
  5. לכמת את העמילן בעקבות השפלה אנזימטי של מדידה של הגלוקוז שפורסמו spectrophotometrically על ידי צימוד זה את ההפחתה של NADP+ ל nadph ל26,27.
  6. מבצע החילוץ RNA הכולל, סינתזה cDNA, ו- RT-PCR כמותי מבחני כפי שתואר על ידי. Caldana et al. 28 כדי להעריך את רמת הביטוי של גנים הקשורים סוגים שונים של לחצים.
  7. באופן אופציונלי, לגדל שתילים על מצע הגננות בעציצים פלסטיק עם קיבולת 0.1 L תחת תנאי אקלים דומה [60% לחות, 150 µmol ז-2 s-1 של אחידות irradiance והתנאים equinoctial של 12 שעות אור (21 ° C) / 12 h כהה (19 מעלות )] על מנת להשוות אותם עם שתילים שגדלו hydroponically.
    הערה: הגנים היעד המשמש את מבחני ביטוי הגן היו ABF3 (At4g34000), ASN1 (At3g47340), ו- TPS5 (At4g17770), ואת רמות הביטוי שלהם היו מנורמל העסקת את שיטת דלתא-Ct29 באמצעות ACT2 (At3g18780) או PDF2 (At4g04890) כמו הגנים להפניה פנימית, בהנחה 100% של ה-PCR הגברה יעילות בכל הדוגמאות. זוגות oligonucleotide משמש את ה-PCR כמותי היו: ABF3 (GTTCTCAACCTGCAACACAGTGC; TCCAGGAGATACTGCTGCAACC), ASN1 (AGGTGCGGACGAGATCTTTG; GTGAAGAGCCTTGATCTTGC), TPS5 (CTGCTCTGATGCTCCTTCTTCC; AAGCTGGTTTCCAACGATGATG), ACT2 (CGTACAACCGGTATTGTGCTGG; CTCTCTCTGTAAGGATCTTCATG), ו- PDF2 (TAACGTGGCCAAAATGATGC; GTTCTCCACAACCGCTTGGT).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

קינאז TOR הוא מווסת הגדולות המשלבת חומרי מזון ואנרגיה איתות לקדם את התפשטות תאים וכן מגידול כל פרוקריוטים. מאמצים התירי פונקציות תור בצמחים כוללים את הדור של תודרנית הטרנסגניים שורות המכילות דיכוי מותנה תור דרך התערבות RNA או microRNA מלאכותי28,30,31, נתן את העובר פנוטיפ קטלני של TOR נוקאאוט צמחים32,33,

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

מבנה הידרופוני ממוטבת זה מאפשר התרבות מוצלחת במבחנה של צמחים. הזרעים לנבוט על המדיום מוצק על משטח שטוח של עצה פיפטה, רווח ניכר לעומת מערכות איפה זרעים רטובים עם הפתרון התזונתי. יתרון גדול של השיטה היא כי במהלך הפיתוח שתיל, שורשים לקבל ישירות עם המדיום הנוזלי ללא הצורך של העברה. יתר על כן, טיפול כימי ניתן להחיל בקלות בתוך המדיום הנוזלי באמצעי אחסון מופחת. נשמרת לחות גבוהה, הימנעות האידוי של הפתרון התזונתי, חידוש המלאי שלה. בנוסף, ולהתפתחות הומוגנית במהלך הקמת שתיל ניתן להשיג בקלות, לערבב אינה נדרשת בעת עבודה עם ט...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

המחברים אין לחשוף.

תודות

עבודה זו נתמכה על ידי קרן מחקר סאו פאולו (FAPESP; להעניק 12/19561-0), אגודת מקס פלאנק. אליאס פ Araújo (FAPEMIG 14/30594), קרולינה ג מונטה בלו (FAPESP; Mafra גרנט 14/10407-3), Valéria (FAPESP; גרנט 14/07918-6), ו- Viviane ג ה דה סילבה (גלימות/CNPEM 24/2013) אסירי תודה על המלגות. המחברים מודים כריסטיאן מאייר מ אינסטיטוט ז'אן פייר Bourgin (INRA, ורסאי, צרפת) על בנדיבות מתן נוגדנים נגד RPS6. המחברים תודה RTV UNICAMP והקלטת אד פאולו Aparecido de Souza מנואל לתמיכה טכנית שלהם במהלך השמע.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
אתנולMerck100983
תמיסת נתרן היפוכלוריטסיגמא-אולדריץ'425044
פוליסורבט 20   Sigma-AldrichP2287
Murashige ו-Skoog (MS) בינוני כולל ויטמינים Duchefa BiochemieM0222
2-(N-morpholino)חומצה אתנסולפונית (MES) מונוהידראטDuchefa BiochemieM1503
Agar Sigma-AldrichA7921
אשלגן הידרוקסידסיגמא-אולדריץ'484016
קולט אדים זרימה למינריתTelstarBH-100
פלטה חמהARECתא
Weiss TechnikHGC 1514
צלחת פטרי זכוכית (150 מ"מ x 25 מ"מ)Uniglass189.006
200 & מו; מתלים לקצה פיפטה L KasviK8-200-5 *
300 μ L פיפטה רב ערוציתEppendorf3122000060
300 μ קצות פיפטה LEppendorf30073088
200 μ L פיפטה Eppendorf3120000054
200 μ L קצות פיפטהEppendorfמספריים 30000870
Tramontina25912/108
פינצטהABC Instrumentos702915
להב אזמלSigma-AldrichS2771
סרט שקוף דבק (45 מ"מ x 50 מ')סקוטש 3M5803
קופסאות פלסטיק חד פעמיות, מידות חיצוניות: 353 מ"מ (L) x 178 מ"מ (W) x 121 מ"מ ( H)מקסיפק32771
צמיחה F20510011

מקורות

  1. Conn, S. J., et al. Protocol: Optimising hydroponic growth systems for nutritional and physiological analysis of Arabidopsis thaliana and other plants. Plant Methods. 9, 4(2013).
  2. Gibeaut, D. M., Hulett, J., Cramer, G. R., Seemann, J. R. Maximal Biomass of Arabidopsis thaliana Using a Simple, Low-Maintenance Hydroponic Method and Favorable Environmental Conditions. Plant Physiology. 115, 317-319 (1997).
  3. Nguyen, N. T., McInturf, S. A., Mendoza-Cózatl, D. G. Hydroponics: A Versatile System to Study Nutrient Allocation and Plant Responses to Nutrient Availability and Exposure to Toxic Elements. Journal of Visualized Experiments. (113), e54317(2016).
  4. Koevoets, I. T., Venema, J. H., Elzenga, J. T. M., Testerink, C. Roots Withstanding their Environment: Exploiting Root System Architecture Responses to Abiotic Stress to Improve Crop Tolerance. Frontiers in Plant Science. 7, 1335(2016).
  5. Arteca, R. N., Arteca, J. M. A novel method for growing Arabidopsis thaliana plants hydroponically. Physiologia Plantarum. 108, 188-193 (2000).
  6. Wang, R., Okamoto, M., Xing, X., Crawford, N. M. Microarray analysis of the nitrate response in Arabidopsis roots and shoots reveals over 1,000 rapidly responding genes and new linkages to glucose, trehalose-6-phosphate, iron, and sulfate metabolism. Plant Physiology. 132, 556-567 (2003).
  7. Hirai, M. Y., et al. Integration of transcriptomics and metabolomics for understanding of global responses to nutritional stresses in Arabidopsis thaliana. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 101, 10205-10210 (2004).
  8. Alatorre-Cobos, F., et al. An improved, low-cost, hydroponic system for growing Arabidopsis and other plant species under aseptic conditions. BMC Plant Biology. 14, 69(2014).
  9. Umehara, M., et al. Inhibition of shoot branching by new terpenoid plant hormones. Nature. 455, 195-200 (2008).
  10. Arteca, J. M., Arteca, R. N. Brassinosteroid-induced exaggerated growth in hydroponically grown Arabidopsis plants. Physiologia Plantarum. 112, 104-112 (2001).
  11. Bindschedler, L. V., Palmblad, M., Cramer, R. Hydroponic isotope labelling of entire plants (HILEP) for quantitative plant proteomics; an oxidative stress case study. Phytochemistry. 69, 1962-1972 (2008).
  12. Huege, J., et al. GC-EI-TOF-MS analysis of in vivo carbon-partitioning into soluble metabolite pools of higher plants by monitoring isotope dilution after 13CO2 labelling. Phytochemistry. 68, 2258-2272 (2007).
  13. Berezin, I., Elazar, M., Gaash, R., Avramov-Mor, M., Shaul, O. The Use of Hydroponic Growth Systems to Study the Root and Shoot Ionome of Arabidopsis thaliana. Hydroponics: A Standard Methodology for Plant Biological Researches. Asao, T. , InTechOpen. 135-152 (2012).
  14. Smeets, K., et al. Critical evaluation and statistical validation of a hydroponic culture system for Arabidopsis thaliana. Plant Physiology and Biochemistry. 46, 212-218 (2008).
  15. Huttner, D., Bar-zvi, D. An improved, simple, hydroponic method for growing Arabidopsis thaliana. Plant Molecular Biology Reporter. 21, 59-63 (2003).
  16. Battke, F., Schramel, P., Ernst, D. A novel method for in vitro culture of plants: Cultivation of barley in a floating hydroponic system. Plant Molecular Biology Reporter. 21, 405-409 (2003).
  17. Negi, M., Sanagala, R., Rai, V., Jain, A. Deciphering Phosphate Deficiency-Mediated Temporal Effects on Different Root Traits in Rice Grown in a Modified Hydroponic System. Frontiers in Plant Science. 7, 550(2016).
  18. Tocquin, P., et al. A novel high efficiency, low maintenance, hydroponic system for synchronous growth and flowering of Arabidopsis thaliana. BMC Plant Biology. 3, 2(2003).
  19. Schlesier, B., Bréton, F., Mock, H. P. A hydroponic culture system for growing Arabidopsis thaliana plantlets under sterile conditions. Plant Molecular Biology Reporter. 21, 449-456 (2003).
  20. Norén, H., Svensson, P., Andersson, B. A convenient and versatile hydroponic cultivation system for Arabidopsis thaliana. Physiologia Plantarum. 121, 343-348 (2004).
  21. Martins, P. K., Ribeiro, A. P., da Cunha, B. A. D. B., Kobayashi, A. K., Molinari, H. B. C. A simple and highly efficient Agrobacterium-mediated transformation protocol for Setaria viridis. Biotechnology Reports. 6, 41-44 (2015).
  22. Montané, M. H., Menand, B. ATP-competitive mTOR kinase inhibitors delay plant growth by triggering early differentiation of meristematic cells but no developmental patterning change. Journal of Experimental Botany. 64, 4361-4374 (2013).
  23. Boyes, D. C., et al. Growth stage-based phenotypic analysis of Arabidopsis: a model for high throughput functional genomics in plants. The Plant Cell. 13, 1499-1510 (2001).
  24. Dobrenel, T., et al. The Arabidopsis TOR Kinase Specifically Regulates the Expression of Nuclear Genes Coding for Plastidic. Frontiers in Plant Science. 7, 1611(2016).
  25. Lunn, J. E., Furbank, R. T. Localisation of sucrose-phosphate synthase and starch in leaves of C4 plants. Planta. 202, 106-111 (1997).
  26. Hendriks, J. H. M., Kolbe, A., Gibon, Y., Stitt, M., Geigenberger, P. ADP-Glucose Pyrophosphorylase Is Activated by Posttranslational Redox-Modification in Response to Light and to Sugars in Leaves of Arabidopsis and Other Plant Species. Plant Physiology. 133, 838-849 (2003).
  27. Stitt, M., Lilley, R. M., Gerhardt, R., Heldt, H. W. Metabolite levels in specific cells and subcellular compartments of plant leaves. Methods in Enzymology. Fleischer, S., Fleischer, B. 174, Academic Press. Amsterdam, The Netherlands. 518-552 (1989).
  28. Caldana, C., et al. Systemic analysis of inducible target of rapamycin mutants reveal a general metabolic switch controlling growth in Arabidopsis thaliana. The Plant Journal. 73, 897-909 (2013).
  29. Livak, K. J., Schmittgen, T. D. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2-ΔΔCT method. Methods. 25, 402-408 (2001).
  30. Dobrenel, T., et al. Sugar metabolism and the plant target of rapamycin kinase: a sweet operaTOR? Frontiers in Plant Science. 4, 93(2013).
  31. Moreau, M., et al. Mutations in the Arabidopsis homolog of LST8/GβL, a partner of the target of Rapamycin kinase, impair plant growth, flowering, and metabolic adaptation to long days. The Plant Cell. 24, 463-481 (2012).
  32. Deprost, D., et al. The Arabidopsis TOR kinase links plant growth, yield, stress resistance and mRNA translation. EMBO Reports. 8, 864-870 (2007).
  33. Menand, B., et al. Expression and disruption of the Arabidopsis TOR (target of rapamycin) gene. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 99, 6422-6427 (2002).
  34. Mahfouz, M. M., Kim, S., Delauney, A. J., Verma, D. P. Arabidopsis TARGET OF RAPAMYCIN Interacts with RAPTOR, Which Regulates the Activity of S6 Kinase in Response to Osmotic Stress Signals. The Plant Cell. 18, 477-490 (2006).
  35. Zhang, R., et al. ScFKBP12 bridges rapamycin and AtTOR in Arabidopsis. Plant Signaling & Behavior. 8, e26115(2013).
  36. Schepetilnikov, M., et al. TOR and S6K1 promote translation reinitiation of uORF-containing mRNAs via phosphorylation of eIF3h. The EMBO Journal. 32, 1087-1102 (2013).
  37. Schepetilnikov, M., et al. Viral factor TAV recruits TOR/S6K1 signalling to activate reinitiation after long ORF translation. The EMBO Journal. 30, 1343-1356 (2011).
  38. Xiong, Y., et al. Glucose-TOR signalling reprograms the transcriptome and activates meristems. Nature. 496, 181-186 (2013).
  39. Creff, A., Sormani, R., Desnos, T. The two Arabidopsis RPS6 genes, encoding for cytoplasmic ribosomal proteins S6, are functionally equivalent. Plant Molecular Biology. 73, 533-546 (2010).
  40. Turck, F., Zilbermann, F., Kozma, S. C., Thomas, G., Nagy, F. Phytohormones participate in an S6 kinase signal transduction pathway in Arabidopsis. Plant Physiology. 134, 1527-1535 (2004).
  41. Gibon, Y., et al. Adjustment of diurnal starch turnover to short days: Depletion of sugar during the night leads to a temporary inhibition of carbohydrate utilization, accumulation of sugars and post-translational activation of ADP-glucose pyrophosphorylase in the followin. Plant Journal. 39, 847-862 (2004).
  42. Smith, A. M., Stitt, M. Coordination of carbon supply and plant growth. Plant, Cell & Environment. 30, 1126-1149 (2007).
  43. Smith, A. M., Zeeman, S. C., Smith, S. M. Starch Degradation. Annual Review of Plant Biology. 56, 73-98 (2005).
  44. Orzechowski, S. Starch metabolism in leaves. Acta Biochimica Polonica. 55, 435-445 (2008).
  45. Gibon, Y., et al. Adjustment of growth, starch turnover, protein content and central metabolism to a decrease of the carbon supply when Arabidopsis is grown in very short photoperiods. Plant, Cell & Environment. 32 (7), 859-874 (2009).
  46. Kim, J. B., Kang, J. Y., Soo, Y. K. Over-expression of a transcription factor regulating ABA-responsive gene expression confers multiple stress tolerance. Plant Biotechnology Journal. 2, 459-466 (2004).
  47. Vishwakarma, K., et al. Abscisic Acid Signaling and Abiotic Stress Tolerance in Plants: A Review on Current Knowledge and Future Prospects. Frontiers in Plant Science. 8, 161(2017).
  48. Yoshida, T., et al. Four Arabidopsis AREB/ABF transcription factors function predominantly in gene expression downstream of SnRK2 kinases in abscisic acid signalling in response to osmotic stress. Plant, Cell & Environment. 38, 35-49 (2015).
  49. Koch, K. E. Carbohydrate-Modulated Gene Expression in Plants. Annual Review of Plant Physiology and Plant Molecular Biology. 47, 509-540 (1996).
  50. Price, J., Laxmi, A., St Martin, S. K., Jang, J. C. Global transcription profiling reveals multiple sugar signal transduction mechanisms in Arabidopsis. The Plant Cell. 16, 2128-2150 (2004).
  51. Thimm, O., et al. mapman: a user-driven tool to display genomics data sets onto diagrams of metabolic pathways and other biological processes. The Plant Journal. 37, 914-939 (2004).
  52. Bläsing, O. E., et al. Sugars and Circadian Regulation Make Major Contributions to the Global Regulation of Diurnal Gene Expression in Arabidopsis. The Plant Cell. 17, 3257-3281 (2005).
  53. Osuna, D., et al. Temporal responses of transcripts, enzyme activities and metabolites after adding sucrose to carbon-deprived Arabidopsis seedlings. The Plant Journal. 49, 463-491 (2007).
  54. Yadav, U. P., et al. The sucrose-trehalose 6-phosphate (Tre6P) nexus: specificity and mechanisms of sucrose signalling by Tre6P. Journal of Experimental Botany. 65, 1051-1068 (2014).
  55. Brutnell, T. P., et al. Setaria viridis: A Model for C4 Photosynthesis. The Plant Cell. 22, 2537-2544 (2010).
  56. Altman, N., Krzywinski, M. Points of Significance: Clustering. Nature Methods. 14, 545-546 (2017).
  57. Pratelli, R., Boyd, S., Pilot, G. Analysis of amino acid uptake and translocation in Arabidopsis with a low-cost hydroponic system. Journal of Plant Nutrition and Soil Science. 179, 286-293 (2016).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

Arabidopsis thalianaSetaria viridisTORAZD 8055
עלות נמוכה גמיש מערכת הידרופונית להערכת תגובות צמח מולקולות קטנות בתנאים סטריליים
צור קשר
המלצה לספרייה

פרטיות

תנאי שימוש

מדיניות

2026 © זכויות יוצרים MyJoVE Corporation. כל הזכויות שמורות.