Method Article

חקר את הפוטנציאל של תא גזע Mesenchymal גיליון על הפיתוח של קרצינומה Hepatocellular In Vivo

DOI:

10.3791/57805

September 11th, 2018

In This Article

Summary

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

כאן, אנו מציגים פרוטוקול לפתח ויוו סרטן מודל של שימוש בטכנולוגיית תאי גליון. מודל כזה יכול להיות מאוד שימושי עבור הערכת הרפוי נגד סרטן.

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

אין ויוו במודל חיה המחקה סרטן אנושי יכול להיות יישומים שונים המספקים מידע קליני משמעותי. משמש כיום הטכניקות לפיתוח ויוו סרטן דגמים יש מגבלות ניכר. לפיכך, במחקר זה, אנו שואפים לממש בטכנולוגיית תאי גליון לפתח מודל סרטן ויוו . קרצינומה Hepatocellular (HCC) מפותחת בהצלחה בחולדות עירום באמצעות גליונות התא שנוצר מתאי השורה תא HCC. הסדינים התא סרטן שנוצרו באמצעות אדהזיה תאיים ויצירת מבנה מרובדת, נשלט על ידי מטריצות. דבר זה מאפשר השתלת גיליון HCC לתוך הכבד ויצירת מודל בעלי חיים נושאות תוך חודש. בנוסף, חקר את התפקיד של גזע mesenchymal (MSC) בפיתוח של מודל זה סרטן. בנוסף הגיליון קו תא HCC, נוצרים עוד תא שני גיליונות: גיליון HCC תאי מח עצם MSCs (BMMSCs) ואת גיליון של תאים HCC, חבל הטבור MSCs (UCMSCs). הגליונות אשר יש שילוב של תאים HCC והן MSCs הם גם מסוגלים לייצר חיה נושאות. עם זאת, התוספת של MSCs מקטין את גודל הגידול בנוי, זו השפעה שלילית על התפתחות גידולים משתנה בהתאם למקור של MSCs בשימוש. אפשרות זו מציינת כי גיליון תא העשוי מסוימת יחוברו MSC יכול להיות מנוצל שליטה וניהול של הגידול.

Introduction

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

HCC הוא סרטן ראשוני של הכבד, קשורה באופן משמעותי עם פרוגנוזה גרועה. מדי שנה, כמעט חצי מיליון חולים חדשים מאובחנים עם HCC, המייצג 85% של סרטן הכבד בחולים ברחבי העולם1. Hepatocarcinogenesis אינה מחלה אחת-טופס; ליתר דיוק, זה אוסף של מחלות בעלי תכונות שונות histopathological ולשינויים גנטיים ולא גנומית, בנוסף מגוון תוצאות prognostic1. לכן, האתגרים העיקריים בהתפתחות של אסטרטגיית טיפולית יעילה עבור HCC הן את הידע מוגבל לביולוגיה HCC וחוסר מודל ניסיוני מתאימים בעלי חיים שיכולים לעזור להבין זו מחלה מורכבת. אין ויוו במודל חיה המחקה סרטן אנושי הוא הכרחי עבור בחירת המועמד גנים וזיהוי סמנים prognostic/ניבוי ערבו אינדוקציה סרטן, כמו גם על חקירת גורמים שונים שעשויים להשפיע על סרטן תגובות לסוכנים טיפולית.

מחקרים במבחנה סרטן משויכות עדיין מגבלות הגדולות. זה בשל העובדה כי התאים הסרטניים לאבד תכונות רבות שלהם ויוו כאשר נשמר בתרבות. השינויים שמתרחשים תאי במבחנה תוצאה של העדר רקמות כל הפיזיולוגיה באווירה ex-vivo . סרטן-לתא אינטראקציה (סטרומה, המערכת החיסונית, להערכת, אפיתל, וכו ') בתוך microenvironment הגידול משקף במידה רבה על סרטן התא מאפיינים2. Microenvironment הגידול יכול לשנות ביטוי גנים/חלבון התא סרטן ומאפיינים פנוטיפי, בנוסף angiogenetic ואת פוטנציאל גרורתי. מערכת התרבות דו-ממדית (2-D) במבחנה חסרה גם מטריצה רקמות מתאים, אשר הכרחי לווסת את התקדמות הגידול. לפיכך, בשל מגבלות אלו, מודלים ויוו צריך תמיד להיות מנוצל כדי לתמוך ממצאים ראשוניים של מודלים במבחנה . במחקר זה, אנו משתמשים בטכנולוגיית תאי גליון לפתח ויוו במודל חיה זה elucidates את התהליך הביולוגי המלא שבבסיס HCC.

לפני יותר מעשור מעבדה של Okano הוקמה שיטה של הנדסת רקמות, המבוסס על טכנולוגיית תא גליון3. שיטה זו משתמשת פלסטיק תרבות מגיבים תרמו כדי לאפשר הפיכה תא אדהזיה/ניתוק על ידי שליטה על פני השטח hydrophobicity. שיטה זו מאפשרת קציר עדין של תאים בתרבית בתבנית ללא פגע תלת-ממדיים (3-D) (גיליון i.e.,cell), עם מטריצה חוץ-תאית מטופחים (ECM) ואינטראקציות מתא לתא. הטכניקה גיליון תא מחייב את precoating של תרבות מנות עם poly(N-isopropylacrylamide) טמפרטורה-מגיבה פולימר (אני פיפה), וזו מסחרית זמינים ומוכנים לשימוש. בטמפרטורה מתחת 20 ° C, פולימרים פיפה אני להפוך להתייבש, להמיס פתרונות מימית, ואילו, בטמפרטורה גבוהה (37 מעלות צלזיוס), פולימרים להתייבש, להפוך התמיסה עכורים. הפולימר מכיל אמיד הידרופילית שרשראות הידרופוביות לצד רשתות (איזופרופיל קבוצות). בטמפרטורות גבוהות, תנועה בראונית של מולקולות מים מתעצמת, הואיל בטמפרטורה נמוכה, מולקולות המים המקיפים את קבוצות איזופרופיל של פירוק מבנה רטוב וקבוצות איזופרופיל הידרופובי צבירה בגלל אינטראקציות הידרופוביות. לכן, כל שרשרת הפולימר אגרגטים, ארגונייט שוקע4.

במסגרת המחקר הציג, בטכניקה זו משתמשים לפתח מודל חיה HCC באמצעות שלושה גליונות תאים שונים. הגיליון הראשון מועסקים מורכב HCC תא שורת תאים בלבד, בעוד ששני הדפים האחרים מורכבים של שילוב של HCC תא שורת תאים MSCs משני מקורות שונים: MSCs במח העצם (BMMSCs) ו- MSCs הטבור (UCMSCs). MSCs הם הלא-hematopoietic סטרומה תאים המסוגלים המבדילים intocell נגזרות של השושלת mesenchymal, כולל adipocytes, osteocytes, chondrocytes ונייטרלים5. הסיבה שאנו מעסיקים תאים אלה בעת יצירת גליון התא סרטן היא תפוקתב לא עקבית על ההשפעה של MSCs על סרטן. הוצע כי MSCs יכולים להיות שני פנוטיפים שונים: "MSC1", הפנוטיפ proinflammatory, ו- "MSC2", פנוטיפ לדיכוי המערכת החיסונית6. MSCs מבטאים קולטנים כמו אגרה (TLRs). TLR4 לקרקע של MSCs מגביר את הפרשת גורמים proinflammatory, ואילו לקרקע TLR3 מגביר את הפרשת גורמים לדיכוי המערכת החיסונית6. המחקר במבחנה של פנוטיפים שני אלה דיווחו כי תרבות משותפת של MSC1 עם שורות תאים סרטן הקלוש צמיחת תאים של סרטן, בעוד תרבות משותפת MSC2 היה את האפקט ההפוך7. זה מרמז כי MSCs יכול להיות סרטן בעד או נגד סרטן, בהתאם פנוטיפ שלהם. לכן, בנוסף פיתוח המודל בעלי חיים HCC בטכנולוגיה גיליון תא, אנחנו רוצים לחקור את ההשפעה של השתלות MSC על התפתחות גידולים, ואם באמצעות תאים אלה להגביר או להפחית את התפתחות מודל זה.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

הפרוטוקול מנחים את טיפול בבעלי חיים של הוועדה האתית של אוניברסיטת המלך סעוד. ניתוחים, הרדמה, תרופות אחרות בשימוש בבעלי חיים המאושרים על ידי הוועדה האתית של אוניברסיטת המלך סעוד. כל עבודה ניסויית מתבצע על ידי צוות מיומן כראוי.

1. תא גליון בנייה

  1. מעיל המנות תרבות (מנות תרבות טמפרטורה מגיב 3.5 ס מ) עם סרום שור עוברית (FBS) מדולל ולהבטיח כדי לכסות את כל השטח של המנה.
    הערה: שלב זה הוא חשוב עבור הניתוק של הגיליון תא מאז זה תומך את הצמיחה של התאים טפט ומונע צבירת התא.
  2. דגירה הכלים במשך 24 שעות ביממה ב 37 מעלות צלזיוס באווירה humidified, המכילה 5% CO2 ו- 95% אוויר.
  3. להסיר את עודף FBS כלים מצופים ולאפשר את הכלים לייבוש בטמפרטורת החדר (RT) במשך לפחות שעה.
  4. להכין את המתלים שלושה תאים: תאים6 HepG2 עונה 1 פרק 10 עונה 1 פרק 106 HepG2 תאים עם BMMSCs, עונה 1 פרק 106 HepG2 תאים עם UCMSCs (ביחס של 4:1 גם BMMSCs וגם UCMSCs).
  5. זרע ההשעיה תאים מתאים על כל מנה עם תוויות.
  6. להשעות כל התאים במדיום תרבות DMEM, בתוספת 10% FBS ו 1% פניצילין/סטרפטומיצין.
  7. דגירה התאים ב 37 מעלות צלזיוס באווירה humidified, המכילה 5% CO2 ו- 95% אוויר.

2. תא גליון התנתקות

  1. ב- 100% תא הנהרות, לקחת את הכלים מתוך החממה 37 º C.
  2. דגירה המנה גיליון תא HepG2 עבור h 1-RT, בעוד המקננת על HepG2/BMMSC ומנות HepG2/UCMSC תא גיליון 30-40 דקות ב- 20 ° C באווירה humidified, המכילה 5% CO2 ו- 95% אוויר.
    הערה: הגיליון תא זני רק HepG2 שברירי; להקטין את הטמפרטורה עד 20 ° C גורם נזקים למבנה של הגיליון.

3. ביצוע הליך כירורגי

הערה: במהלך זמן הדגירה עבור הניתוק גיליון תא, תתחילי בטיפול בבעלי חיים.

  1. הוראות הכנה של אזור הניתוח
    1. לנהל את כל הניתוחים באזור נפרד סטרילי בתוך המעבדה, כגון ברדס, זרימה שכבתית ארון או חדר ניתוח אספטי. להבטיח כי כל המשטחים של אזור הניתוח שאינו נקבובי, אטום, עמידה sanitizable.
    2. ללבוש ציוד מגן מתאים, כולל חלוק, כפפות, מסכות של כיסויי הראש ואת הנעל.
    3. שימוש כירורגית כלי זה הם סטיריליים ונקייה (via autoclaving; גזע רווי בלחצים גבוהים) בתחילתו של הניתוח.
    4. לשנות כפפות בין חולדות.
  2. הכנה של החיה לניתוח
    1. השתמש חולדות עירום 8 ל 12-בת.
    2. צור בזריקות הרדמה על חולדות.
      1. כדי להכין את הפתרון הרדמה, חריגות קטמין-השירותים הווטרינריים, לערבב 2 מ"ל של קטמין, 1 מ"ל של חריגות השירותים הווטרינריים (על ריכוז של 20 מ"ג/מ"ל) ו- 1 מ ל תמיסת סטרילית הפיזיולוגיות (למשל, 0.9% נתרן כלורי) בבקבוקון אוסף סרום 10-mL סטרילי, לנער היטב לפני השתמש.
      2. כדי להחיל הרדמה, להזריק 0.2 מ"ל של הפתרון קטמין-חריגות השירותים הווטרינריים לכל 100 גרם של משקל הגוף של העכברוש intraperitoneally.
        הערה: המינון הכולל של הפתרון הוא 100 מ ג/ק ג של קטמין ו- 10 מ"ג/ק"ג של חריגות השירותים הווטרינריים.
    3. הסר העפר גלוי/פסולת באתר כירורגית.
    4. בדוק את עומק הרדמה על ידי בוחן את רפלקס הנסיגה פדלים (צביטה כרית כף הרגל בשתי הרגליים האחוריות).
      הערה: אם בלחץ כרית כף הרגל גורם לתגובה, חזור במינון של 0.05 גרם/100 גרם (כ כל 30 דקות) ולאחר מכן בדוק את עומק הרדמה.
    5. לחטא באזור הניתוח עם שיפשופים בשני שלבים מאת povidone-יוד/אלכוהול איזופרופיל.
    6. מכסים את העכברוש עם תלוי סטרילי כדי למנוע זיהום של החתך.
    7. להחדיר את החולדות subcutaneously הבופרנורפין (0.01 - 0.05 מ"ג/ק"ג)8 לפני קבלת את החתך.
    8. באמצעות אזמל סטרילי, להפוך 7 - ל ס מ-10 לחתוך בין פריטי מעטפת השרירים שמתחת כדי לחשוף את הכבד.
      1. הפרד את שריר הבטן מן העור עם הקצה האחורי השטוח של האזמל.
      2. בזהירות לדקור לינאה אלבה באמצעות אזמל ולהרחיב גזירה במספריים חדים.

4. השתלת גיליון תא

הערה: השתלת גיליון תא מתבצע על הכבד.

  1. לאסוף את הגיליון תא המנה תרבות.
    1. טפח בעדינות את המנה תרבות מעל הספסל כדי לנתק את הסדין מפני-השטח.
    2. הפרד את הגיליון תא ממשטח של המנה על ידי גירוד קצה הסדין במעגל חצי באמצעות טיפ פיפטה סטרילי.
    3. הסר בעדינות את המדיום כולו מתוך קערה תרבות.
    4. להבטיח הגיליון שלם ללא נזק; אחרת, זה לא יכול להיות בשימוש (איור 1).
      הערה: ניתן להבחין הסדינים שנוצר ישירות באמצעות העין.
  2. להכין את קרום סטרילי (נייר סינון) כדי לקצור את הגיליון תא מתוך קערה.
    1. ראשית, משרים את הקרום עם תמיסת מלח. לאחר מכן, הסר את תמיסת המלח עודף עם כרית כותנה סטרילי.
    2. הצב קרום רטובה מעל הסדין התא, תוך הימנעות רוחביים בועות אוויר בין הקרום ואת הסדין תא.
    3. הוסף מספר טיפות של תמיסת מלח מעל הקרום ואת הסדין תא כדי לאסוף אותם יותר קל.
      הערה: כדי למנוע את שבירת הגיליון תא, לא להשתמש תמיסת מלח קר והרם את הקרום ואת הסדין תא עם מלקחיים.
    4. השאר הקרום לכמה שניות להבטיח כי הגיליון תא מחובר כראוי למוח ולאחר מכן לאסוף אותו.
  3. היכונו הכבד השתלת גיליון תא.
    1. ודא כי השטח הכבד הוא יבש על ידי בעדינות טפיחות עם כרית כותנה סטרילי.
    2. בעזרת מלקחיים סטרילי, הצב את הקרום עם הסדין תא מעל אונת הכבד של החולדה יחיד.
    3. הוסף מספר טיפות של תמיסת מלח סטרילית ולהחיל לחץ עדין על קרום כדי לנתק את הגיליון תא ממנו.
    4. המתן 5 דקות לפני הסרת בזהירות את הקרום.
      הערה: פעולה זו מתבצעת על מנת להבטיח שהגיליון תא מחובר כראוי אל הכבד.
    5. לבסוף סוגרים את השרירים המשמשים כבסיס, העור החתכים בתפרים ניילון 5-0.
    6. לחטא את האזור ניתוח עם povidone יוד.
      הערה: איור 2 מציג תרשים של ההליך השתלת תאי גליון על הכבד של עכברוש עירום.

5. לאחר הניתוח טיפול

  1. מיד לאחר הניתוח, בית העכברוש בנפרד כדי להימנע קניבליזם או חנק, ולנטר אותה באופן קבוע (לפחות כל 15 דקות) עד שזה המודעים והבלתי מודעים, מהיותו באופן מלא.
  2. לאחר מכן, להעריך את החולדות מדי יום עבור 5-14 d, לפחות 5 d וכאב לאחר הניתוח, כדי להבטיח שלא יהיו שום סיבוכים. במהלך המבדק יומי, ודא מהפעולות הבאות.
    1. הפצע סגור, התפרים שלמים, בלי להיות הדוקה יתר על המידה.
    2. ישנם סימנים של זיהום באזור הניתוח, כגון חום, עודף הפרשות נפיחות או מוגלתי.
    3. ישנם סימנים הקשורים לכאב, כגון ירידה בצריכת מזון ומים, ירידה במשקל, התייבשות, העור להקים אוהל או נשימה מהירה, פתח את הפה. כדי לשלוט מתון עד חמור כאב לאחר הניתוח, אם בכלל, להזריק החולדות subcutaneously הבופרנורפין (0.01 - 0.05 מ"ג/ק"ג) כל 6-8 h9 מינימום של 48-72 h במשככי.

6. ניתוח של האזור המושתלים

  1. חודש אחד לאחר ההשתלה, scarifice החולדה ולאסוף את האזור המושתלים היסטולוגית וניתוח immunohistochemical.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tumorigenicity של התאים המושתלים גיליונות בחולדות:

חודש אחד לאחר ההשתלה, כל גיליונות התאים המושתלים כבדי של חולדות פיתחו גידולים (איור 3). הגודל הממוצע של גידולים מפותחים של HepG2, HepG2/BMMSC HepG2/UCMSC תא הסדינים היו 4.5 ס מ 4 ס מ, 2.5 ס מ, בהתאמה10.

ניתוח היסטולוגית של רקמות הכבד:

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

כמות נרחבת של המחקר מוקדש להתפתחות נאותה ויוו פרה במודל חיה הדומה סרטן אנושיים. כיום, הגישות העיקריים המשמשים ליצירת מודלים בעלי חיים סרטן כרוך השתלת הנדסה גנטית ותא11. מודלים מהונדס גנטית הם כלים טובים עבור זיהוי ואימות של גנים היעד, כמו גם להבין את המנגנונים המולקולריים שבבסיס רעילות תחת השפעת סמים. לעומת זאת, מודל זה מזוהה עם כמה מגבלות; למשל, השינוי של גן מסוים לא תמיד התוצאה הצפויה פנוטיפ12. הגישה השתלת תאים נפוץ יותר כדי לגרום לסרטן בבעלי חיים, זה כרוך ההזרקה...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

המחברים אין לחשוף.

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

המחברים רוצה להודות הצוות של ניתוח ניסיוני, חיות מעבדה המכללה לרפואה, אוניברסיטת המלך סעוד, שיתוף פעולה, תמיכה-במיוחד Almukhayzim חוסיין, הישאם Aloudah. המחברים גם רוצה להכיר את הצוות המדיה באוניברסיטת המלך סעוד סל ישראל אריאל להכנת חזותית את החומר-במיוחד Muath סל ר'נאם, רעות קרן אלינוי קסוטו.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
<ריאגנטים חזקים>;
FBS Gibco/Invitrogen10270106
DMEM גלוקוז גבוה סיגמאD5671-500 מ"ל
פניצילין/סטרפטומיצין Life Technology15070063
תמיסת מלח פיזיולוגית סטריליתSigma S0817-1GA
קו תאי HepG2 אנושיATCC, ארה"בHB-8065
קו תאים MSCs מח עצם אנושיPromoCell, ארה"בC-12974
רקמת חבל טבור אנושית MSCsPromoCell, ארה"ב C-12971
קטמין 50%רומפון, באייר
קסילזין 2%רומפון23076-35-9
Alphadine®   תמיסה.ריאד פארמהLBL0816
<חזק>חד פעמי: 
15 מ"ל פוליפרופילן בהירות גבוהה צינור צנטריפוגה PP בז 
3.5 ס"מ סטרילי כלי תרבית UpCell סטריליים עם נייר סינון (ממברנה)Sigma174904-1CS
100-1000 & מיקרו; l   טיפים לפיפטה סיגמאCLS4868-1000EA   
נוהל בסיסי וילוןתרמופישרPMD5293.0
<חזק>ציוד 
פלוס, נפח משתנהEppendorf®   מחקר ו-reg;Z683779-1EA
אינקובטור תרביות רקמה 37 מעלות; C, 5% CO2כלמותג
ארון בטיחות ביולוגיכל מותג
חממת תרביות רקמות 20 & deg; C, 5% CO2כלמותג
כלים כירורגיים סטריליים וחולדות עירומות: 
מספריים
מלקחיים
 
  תפר ניילון  5-0AccutomeAB-3854Sמונופילמנט, Lancet
1 מ"ל מזרקי טוברקוליןפישר סיינטיפיק14-826-88
חולדות עירומות Charles נהר
352097 אזמל

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Marra, M., et al. Molecular targets and oxidative stress biomarkers in hepatocellular carcinoma: an overview. Journal of Translational Medicine. 9, 171(2011).
  2. Yamada, K. M., Cukierman, E. Modeling tissue morphogenesis and cancer in 3D. Cell. 130 (4), 601-610 (2007).
  3. Kushida, A., et al. Decrease in culture temperature releases monolayer endothelial cell sheets together with deposited fibronectin matrix from temperature-responsive culture surfaces. Journal of Biomedical Materials Research. 45 (4), 355-362 (1999).
  4. Okano, T., Yamada, N., Sakai, H., Sakurai, Y. A novel recovery system for cultured cells using plasma-treated polystyrene dishes grafted with poly (N-isopropylacrylamide). Journal of Biomedical Materials Research Part A. 27 (10), 1243-1251 (1993).
  5. Chamberlain, G., Fox, J., Ashton, B., Middleton, J. Concise review: mesenchymal stem cells: their phenotype, differentiation capacity, immunological features, and potential for homing. Stem Cells. 25 (11), 2739-2749 (2007).
  6. Waterman, R. S., Tomchuck, S. L., Henkle, S. L., Betancourt, A. M. A new mesenchymal stem cell (MSC) paradigm: polarization into a pro-inflammatory MSC1 or an Immunosuppressive MSC2 phenotype. PLoS One. 5 (4), e10088(2010).
  7. Waterman, R. S., Henkle, S. L., Betancourt, A. M. Mesenchymal stem cell 1 (MSC1)-based therapy attenuates tumor growth whereas MSC2-treatment promotes tumor growth and metastasis. PLoS One. 7 (9), e45590(2012).
  8. Curtin, L. I., et al. Evaluation of buprenorphine in a postoperative pain model in rats. Comparative Medicine. 59 (1), 60-71 (2009).
  9. Nowland, M. H. Guidelines on Anesthesia and Analgesia in Rats - ULAM Guidelines and SOPs - Michigan Medicine Confluence. , https://wiki.med.umich.edu/display/ULAMGSOP/Guidelines+on+Anesthesia+and+Analgesia+in+Rats (2017).
  10. Alshareeda, A. T., Sakaguchi, K., Abumaree, M., Mohd Zin, N. K., Shimizu, T. The potential of cell sheet technique on the development of hepatocellular carcinoma in rat models. PLoS One. 12 (8), e0184004(2017).
  11. Russo, J., Russo, I. H. Atlas and histologic classification of tumors of the rat mammary gland. Journal of Mammary Gland Biology and Neoplasia. 5 (2), 187-200 (2000).
  12. Lin, J. H. Applications and limitations of genetically modified mouse models in drug discovery and development. Current Drug Metabolism. 9 (5), 419-438 (2008).
  13. Driscoll, J. S. The preclinical new drug research program of the National Cancer Institute. Cancer Treatment Reports. 68 (1), 63-76 (1984).
  14. Suzuki, R., Aruga, A., Kobayashi, H., Yamato, M., Yamamoto, M. Development of a novel in vivo cancer model using cell sheet engineering. Anticancer Research. 34 (9), 4747-4754 (2014).
  15. Chen, G., et al. Application of the cell sheet technique in tissue engineering. Biomedical Reports. 3 (6), 749-757 (2015).
  16. Matsuura, K., Haraguchi, Y., Shimizu, T., Okano, T. Cell sheet transplantation for heart tissue repair. Journal of Controlled Release. 169 (3), 336-340 (2013).
  17. Matsuura, K., Shimizu, T., Okano, T. Toward the development of bioengineered human three-dimensional vascularized cardiac tissue using cell sheet technology. International Heart Journal. 55 (1), 1-7 (2014).
  18. Folkman, J. What is the evidence that tumors are angiogenesis dependent? Journal of the National Cancer Institute. 82 (1), 4-6 (1990).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Mesenchymal Stem CellCell Sheet TechnologyHepatocellular CarcinomaNude Rat ModelTumor DevelopmentBone Marrow MSCsUmbilical Cord MSCsCell Sheet TransplantationHepG2 Cancer CellsTemperature Responsive Dishes

Related Articles