הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

מיצוי קפאין, פעילות אנזימטיות, ביטוי גנים של קפאין סינתאז מ המתלים תא צמח

13.1K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/58166

⸱

2 באוקטובר 2018

 ,  ,  ,  ,  , 
1Unidad de Bioquímica y Biología Molecular de Plantas, Centro de Investigación Científica de Yucatán, 2CONACYT, Facultad de Ingeniería Química, Campus de Ciencias Exactas e Ingeniería, Universidad Autónoma de Yucatán

במאמר זה

סיכום

פרוטוקול זה מתאר מתודולוגיה יעיל עבור חילוץ ו כימות של קפאין ב השעיות תא של ערביקה ג ל' ואת תהליך ניסיוני להערכת הפעילות האנזימטית מתרחשת של קפאין סינתאז עם רמת ביטוי הגן המקודד אנזים זה.

תקציר

קפאין (1,3,7-trimethylxanthine) הוא אלקלואיד פורין נוכח משקאות פופולריים כמו קפה ותה. מטבוליט המשני הזה נחשב הגנה כימית בגלל זה יש פעילות מיקרוביאלית, והוא נחשב של חרקים טבעי. קפאין יכול לייצר גם השפעות שליליות allelopathic למנוע את התפתחותם של צמחים שמסביב. בנוסף, אנשים ברחבי העולם צורכים קפאין על השפעותיו להרגעה, מופחתים. בשל עניין היישומים הטכנולוגיים של קפאין, מחקר על מסלול biosynthetic הוחלף נגזר של מתחם זה גדל. מחקרים אלה התמקדו בעיקר הבנת המנגנונים הביוכימי והמולקולרי המסדירים ביוסינטזה של קפאין. במבחנה תרביות רקמה הפכה מערכת שימושי ללמוד מסלול זה biosynthetic הוחלף נגזר. מאמר זה יתאר פרוטוקול צעד אחר צעד עבור כימות של קפאין, מדידת הרמות את התעתיק של הגן (CCS1) אשר קידוד קפאין סינתאז (CS) ב השעיות תא של ערביקה ג ל, כמו גם את פעילותה.

מבוא

קפאין הוא מטבוליט משני זה biosynthesized על-ידי צמחים הסוג קפה1. אלקלואיד הזה שייך למשפחת methylxanthine, נחשב כהגנה מפעל כימי כי הוא יכול להתנהג מול ההשפעות השליליות של גורמי מחלה, אוכלי עשב2,3. בנוסף, מטבוליט זו אחראית על מאפייני מגרה לשתות קפה, אשר הוא נצרך בדרך כלל עולמית4,5. בשל תכונותיו, מספר קבוצות מחקר מעוניינות ללמוד את מסלול biosynthetic הוחלף נגזר ולבצע קטבוליזם של קפאין6,7. כיום, המפעל במבחנה תרבויות תא/רקמות לשמש אלטרנטיבה להערכת קפאין הצטברות תחת אסטרטגיות והאביוטיים ביוטיים שונים8,9.

קפאין ביוסינטזה מערבת את שחרור hydrolytic של 7-methylxanthine nucleoside ריבוז המתאים ואחריו מסודרות N-methylations-עמדות 3 ו- 1. ספציפית S- adenosyl מתיונין (SAM)-N התלויים-(nmt ב) methyltransferase מזרז מתילציה במיקום 7, ואילו תאוברומין סינתאז (TS) במדעי המחשב הם מעורבים ב 3 - ו 1-methylations, בהתאמה, בהפקת תאוברומין ו קפאין. המחקר של גנים קידוד NMTs ברורים אפשרה להבנת המנגנון המווסת קפאין ייצור10,11. הפקולטה למדעי המחשב, אשר יש N -פעילות methyltransferase, מזרז את שני השלבים האחרונים של הנתיב biosynthetic הוחלף נגזר של קפאין11. בשתילי עץ הקפה, הוכח כי קרינה אור יכול להגביר פעילות בפקולטה למדעי המחשב, כשהתוצאה היא עלייה ביוסינטזה קפאין. לאחרונה, הראינו כי שמירה על התא השעיות של ערביקה ג ל' תחת אור הקרנה היא התנאי האופטימלית להערכת ההשפעות המייצרים והאביוטיים גורמים להשפיע על מסלול biosynthetic הוחלף נגזר של קפאין8. המידע הנקלט במחקרים אלה ייתכן יישומים בביולוגיה מערכות והנדסה מטבולית עבור למקסם את המחקר של הנתיב biosynthetic הוחלף נגזר קפאין במערכות כאלה במבחנה .

לאור היתרונות של קבלת מודל מתאים לצורך המחקר של קפאין ביוסינטזה, אנחנו ממוטב תנאי מיצוי קפאין על התא המתלים של ערביקה ג ל' היה זה גם אפשר לפתח פרוטוקול שימושי ללמוד את פעילות אנזימטי וכן את השלבים מתודולוגי להערכת רמת גן תעתיקים של קפה קפאין סינתאז 1 (CCS1) קידוד אנזים זה. במסמך זה, אנו מדווחים על פרוטוקול כדי לחלץ ולכמת קפאין ב השעיות תא ערביקה ג על ידי שכבת דק ו- densitometry (TLC-densitometry).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

1. קפאין החילוץ ב השעיות תא של ערביקה ג ל'

  1. השתמש ערביקה ג תא המתלים9. לשמר את המתלים על-ידי התרבויות דו-שבועיים בינוני Murashige ו- Skoog ב- pH 4.3 עם 100 סל"ד קבוע רועד 25 ° c תחת תאורה רציפה (8.3 W/m2).
  2. לקצור את התאים תחת ואקום סינון באמצעות נייר סינון נקבובית מיקרומטר 11 ומשפך בוכנר.
  3. לרשום את המשקל טריים של התאים שנאספו באמצעות סרגל, עטפי אותם בנייר אלומיניום, להקפיא אותם בחנקן נוזלי ולשמור אותם ב-80 מעלות צלזיוס עד הניתוח.
  4. Lyophilize את החומר הסלולר קפוא עבור 72 h.
  5. לרשום את המשקל של התאים lyophilized כדי לאמוד את התשואה משקל יבש.
  6. לאחסן את החומר אבקת שקיות פוליאתילן לשימוש חוזר (9 ס"מ על 7.5 ס"מ). Macerate את החומר אבקה, בחנות desiccator עד השימוש.
  7. למדוד 0.5 גרם של חומר יבש הסלולר בסולם אנליטי ולהוסיף אותו בקבוקון זכוכית (25 מ ל).
    1. להוסיף 10 מ של אצטון על התאים lyophilized ולערבב במיקסר מערבולת ב-30 s עבור המגון. לאחר מכן, חותם את הבקבוקון ברדיד אלומיניום.
    2. מערבבים-100 סל"ד באמצעות מסובב בטמפרטורת החדר (25 ° C) במשך 5 שעות.
  8. העברת כל החומר צינור חרוטי 15 מ"ל ו צנטריפוגה ב 13,000 x g עבור 10 דקות העברת הנוזל שלב לרכבת התחתית החדשה ולהפחית את זה יובש בטמפרטורת החדר בשכונה fume.
  9. Resuspend הדגימה עם 25 µL של אצטון.

2. התנאים ההערכה של קפאין על ידי דק שכבה כרומטוגרפיה (TLC)-Densitometry

  1. 1 µL של התמצית קפאין בעבר resuspended חלות על השלב נייח.
    הערה: סיליקה ג'ל צלחות (F254) משמשים שלב נייח. לפני החלת הדגימות, הלוחות פותחו עם 10 מ"ל של כלורופורם-מתנול [9:1 v/v] בתוך תא כרומטוגרפיה (14 ס מ x 12 ס"מ x 9.5 ס מ), הצלחות היו מיובשים בטמפרטורת החדר. המאפיינים של צלחת כרומטוגרפי שבו מוחלות הדגימות מוצגים באיור1. החדר היה רווי למשך 30 דקות עם הממס לפני לפתח את הצלחת. צלחות TLC צריך לטפל באמצעות כפפות כדי למנוע זיהום.
  2. לפתח את TLC בתא גזים עם 10 מ"ל של שלב ניידים ציקלוהקסאן-אצטון [40:50 וי/v].
    הערה: תערובת זו מאפשר ההפרדה של קפאין-גורם השמירה (Rf) של 0.34.
    1. הסר את לוחית TLC מן החדר ולתת לו להתייבש לחלוטין בטמפרטורת החדר.
  3. דמיינו קפאין להקות באור אולטרה סגול באורך גל קצר (UV, 254 ננומטר). השתמש מנורת UV קומפקטי. בנוסף, בשלב זה, השתמש משקפי עם הגנת UV.
  4. לכמת רמות הקפאין על ידי densitometry ב 273 ננומטר. הכלי נשלט עם בדיקות תוכנה.

3. חומצה ריבונוקלאית (RNA) בידוד

  1. קח את המתלים תא מ שלב 1.1 ופילטרט של ואקום עם נייר סינון (11 µm גודל הנקבוביות).
  2. לאסוף את החומר הסלולר נייר הסינון, שוקל לצאת 0.5 גר' חומר הסלולר על איזון האנליטי, תכניסו אותו רדיד אלומיניום. להקפיא את הדגימה עם נוזל N2.
  3. Macerate את דגימת תאים במרגמה פורצלן עם חנקן נוזלי ולהוסיף 1 מ"ל של ריאגנט בידוד RNA ובודקים.
    הערה: לעקר את הפגזים פורצלן תנור לעמעם ב 300 ° C עבור 6-אייץ RNA בידוד ריאגנט מכיל פנול, guanidine isothiocyanate ורכיבים אחרים.
    1. העברת µL 500 מדגם צינור microcentrifuge סטרילי (1.5 מ ל). הוסף µL 300 באלכוהול כלורופורם-isoamyl (24:1) ו- 300 μL של equilibrated פנול (pH 8.0).
  4. לערבב את הדגימה עם מערבל מערבולת, אז centrifuge זה ב x 20,000 g למשך 15 דקות ב 4 º C.
  5. העברת μL 300 השלב העליון צינור microcentrifuge. להוסיף 200 μL של אלכוהול איזופרופיל. דגירה הצינור עבור h 1 ב-20 ° C.
  6. Centrifuge את הצינור ב x 12,000 g 10 דקות ב 4 ° C ולאחר מכן decant את שלב נוזלי.
    1. להוסיף 1 מ"ל אתנול (70%) כדי ליצור גלולה בצינור. צנטריפוגה ב x 12,000 g למשך 10 דקות, decant. חזור על שלב זה פעמיים.
  7. יבש את הדגימה עבור h 1.5 בטמפרטורת החדר (25 ° C). Resuspend את תמצית ה-RNA עם 25 μL של diethyl pyrocarbonate (DEPC)-מים מטופלים.
    הערה: על החילוץ RNA, להשתמש במים שטופלו 0.1% DEPC וי/v....

4. דגירה של RNA תעתיק עם Deoxyribonuclease (DNase)

  1. לתוך צינור microcentrifuge סטרילי, להוסיף 2 µg של RNA הכולל לחלץ. להוסיף 1 μL x 10 תגובה מאגר (100 מ"מ טריס-HCl, 25 מ מ MgCl2, 1 מ"מ CaCl2). להוסיף 1 μL של DNase U/µL 1.
    1. להביא התגובה נפח סופי של μL 10 במים שטופלו DEPC. מערבבים את הדגימה ואת צנטריפוגה בקצרה ב 2,000 x g עבור 1 דקות.
  2. דגירה המדגם ב 37 מעלות צלזיוס למשך 30 דקות.
  3. עוצרים את התגובה עם התוספת של 1 μL של 50 מ מ ניתרן ethylenediaminetetraacetate וגופרית והרכבו (נה2EDTA), דגירה המדגם-65 מעלות צלזיוס למשך 10 דקות.
  4. לנתח את התקינות של RNA ידי agarose בג'ל.
    1. הכנת ג'ל agarose 1% סטנדרטיים, את הכתם עם µL 1 של 3 x intercalating חומצת גרעין הכתם פתרון.
    2. להחיל 500 ננוגרם של RNA כדי agarose ג'ל ולהפעיל את הג'ל.
    3. דמיינו בשלמות הרנ א באמצעות מערכת תיעוד צילום ג'ל.
    4. השתמש RNA כתבנית עבור סינתזה cDNA מאת רוורס טרנסקריפטאז.

5. משלימים חומצה Deoxyribonucleic (cDNA) סינתזה

  1. להוסיף 2.5 μg של RNA סה כ צינור microcentrifuge. להוסיף 1 μL של פריימר oligo-deoxythymine (dT) ולמלא את הצינור לאמצעי הסופי 13 μL במים נטולי נוקלאז. לערבב את הדגימה, ואז centrifuge 2,000 x g עבור 1 דקות.
  2. דגירה המדגם 65 מעלות צלזיוס למשך 5 דקות ולאחר מכן 4 מעלות צלזיוס למשך 2 דקות.
  3. להוסיף 4 μL של 5 x תגובת מאגר להשתמש רוורס טרנסקריפטאז, 2 μL של deoxynucleotide triphosphates (dNTPs) מיקס (10 מ מ כל dNTP) של μL 1 של רוורס טרנסקריפטאז (200 U µL). לערבב בעדינות, צנטריפוגה ב 2,000 x g עבור 1 דקות.
  4. דגירה המדגם 45 º C למשך 50 דקות ולאחר מכן 70 מעלות צלזיוס למשך 10 דקות.
  5. לכמת את הריכוז cDNA באמצעות ספקטרופוטומטרים UV.
  6. השתמש את cDNA כתבנית עבור תגובת שרשרת פולימראזית (PCR).
    הערה: המאגר התגובה שימש 10 x (שלב 4.1.1) 5 x פעמים מרוכזת (שלב 5.3), בהתאמה.

6. בזמן אמת PCR כמותי (qPCR) כדי להגביר את ג'ין CCS1

  1. להוסיף 7.5 μL של Taq DNA פולימראז 2 x (0.1 U/mL) ו- 0.1 μM של 5-carboxy-X-rhodamine (רוקס) צינור microcentrifuge ה-PCR.
    הערה: התחלה לוהטת Taq DNA פולימראז 2 x שימש פתרון 2 x מרוכז.
    1. להוסיף 5 μL של נוקלאז ללא מים.
    2. להוסיף 0.75 μL כל של 10 μM ואחורה פריימר כדי להגביר את הגן CCS1 (AB086414) (לפנים: 5'-CCTGTATCCTGCGATGAACA-3' ו הפוכה: 5'-AACACTATCATAGAAGCCTTTG-3'). לשימוש תחל טובולין כמו הגן משק בית בתגובה נפרדת (לפנים: 5'-GTGCCCAACTGGGTTCAA-3' ו הפוכה: 5'-CCTTCCTCCATACCTTCACC-3')9.
    3. להוסיף 600 ng cDNA תבנית.
  2. לבצע את התגובה הגברה ב 50 מעלות צלזיוס במשך 2 דקות ו- 95 מעלות צלזיוס במשך 5 דק דגירה התגובה במערכת ה-PCR בזמן אמת עבור 40 מחזורי 95 ° C ל 30 s, 60 ° C ל 30 s ו- 72 מעלות צלזיוס ל 30 s.
  3. דגירה המדגם ב 50 מעלות צלזיוס במשך 30 s ו- 20 ° C עבור 10 s.
  4. לנתח את הנתונים בתוכנת ה-PCR.
  5. לחשב את הביטוי יחסי על-ידי ה-2-ΔΔCT בשיטה המתוארת באמצעות Livak ו- Schmittgen (2001)12.
    הערה: לנתח תגובה שליטה המכילה את כל הרכיבים למעט תבנית ה-DNA (אין תבנית שליטה, NTC) ריאגנטים להשליך מזוהמים או הגברה פריימר-הדימרים.

7. כמות חלבון תמצית של תא השעיות של ערביקה ג ל'

  1. לסנן תא המתלים תחת ואקום עם נייר סינון בינוני-הנקבובית.
  2. שוקל 1 g של חומר הסלולר ותארוז את זה בנייר אלומיניום.
    1. להקפיא את הדגימה עם חנקן נוזלי. Macerate הדגימה במרגמה פורצלן סטיריליים לקבל אבקה.
  3. להעביר את הדגימה בקבוקון זכוכית ולהוסיף 2.5 מ ל חילוץ מאגר (400 מ טריס (hydroxymethyl) aminomethane הידרוכלוריד (טריס-HCl), ב- pH 8.0, המכיל 10 מ מ β-mercaptoethanol, 5 מ מ נה2EDTA ו- 0.5% (w/v) סודיום אסקורבט.
    1. מערבבים את הדגימה במיקסר מערבולת למשך 2 דקות.
      הערה: חשוב כי הדגימה נשמרת בקירור כדי למנוע דנטורציה של חלבונים.
  4. Centrifuge הדגימה ב x 20,000 g למשך 20 דקות ב 4 ° C, להעביר 500 µL aliquots לתוך מבחנות הקפאה (2 מ"ל). לאחסן דגימות ב-72 מעלות צלזיוס עד השימוש.
  5. למדוד את ריכוז חלבון המדגם-562 nm בספקטרופוטומטר שימוש assay חומצה bicinchoninic עם אלבומין שור התקנית.

8. Assay אנזימטי של קפאין סינתאז

  1. להכין תערובת התגובה צינור microcentrifuge המכילה 200 מיקרומטר סאם, kBq 4.07 של מתיל [3H]-סאם, 200 מיקרומטר תאוברומין, 200 מיקרומטר MgCl2ו- 5 מיקרומטר קפאין. להגביר את עוצמת הקול כדי µL 200 עם 100 מ מ טריס-HCl ב- pH של 8.0.
  2. לשמור את הצינור microcentrifuge על קרח ולהוסיף אמצעי אחסון של השבר מסיסים המכיל 7-9 מ"ג של חלבון. לאחר מכן, לערבב על ידי מערבולת, תקופת דגירה של 30 דקות ב- 30 מעלות צלזיוס ברים, מערכות אינסטלציה אמבטיה/סירקולטור. עבור אצווה של מספר דגימות, דגירה כל דגימה של כפילויות בתקופות 1 דקות לתת מספיק זמן כדי להפסיק את התגובות עבור כל הדגימות תקופת הזמן המדויק של 30 דקות.
    1. להוסיף 1 מ"ל של כלורופורם להפסיק את התגובה, אז תלחצו את הדגימה עם מערבל מערבולת. לנער את הדגימה באמצעות מערבל מערבולת למשך 3 דקות כדי להסיר את הקפאין רדיואקטיבי הממס.
  3. צנטריפוגה דגימות ב 11,000 x g למשך 5 דקות, בזהירות לשחזר אמצעי אחסון של 900 µL. לאחר מכן, העבר את הדגימות נצנוץ בקבוקונים.
  4. להתאדות ההרדמה כדי להשלים יובש בשכונה בטמפרטורת החדר 25 º C. הוסף 5 מ של נוזל נצנוץ למבחנה ומערבבים את הדגימה.
  5. לנתח רדיואקטיביות שולבו את הקפאין ב מונה נצנוץ.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

תמציות קפאין שהושג דרך התהליך המוצג כאן נותחו על ידי TLC-densitometry במינים את הדוגמאות כדי צלחת כרומטוגרפיה על פי התכנית המוצגת באיור1. כדי לכמת את הרמות של קפאין תמציות תא, עקומה עם ריכוזים שונים של תקן מסחרי מתחם זה היה בשימוש (איור 2 א). הדפוס של ספיגת עבור קפאין נותחו בתחום האור הנראה (UV-VIS) באמצעות ספיגה מירבית לשיא ב 273 nm (איור 2B), נגד ההפרדה שיא של קפאין על הצלחת TLC הראה של Rf בין 0.34...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

אנו מציגים כאן את תנאים אופטימליים עבור הערכת את הקפאין תוכן, פעילות CS ורמות תעתיק במבחנה לשתול תרביות רקמה, כגון תא השעיות של ערביקה ג. בדו"חות קודמים אישרו כי שמירה על תאים תחת אור הקרנה ובפני תאוברומין במדיום תרבות הם פרמטרים מתאימים להגדיל את רמת של קפאין, כך שניתן להעריך את שיטות ההפרדה קפאין באמצעות הפוך-פאזי ביצועים גבוהים כרומטוגרפיה נוזלית (RP-HPLC). כיום, ישנם דיווחים מעטים המשתמשות שיטה פשוטה ומהירה עם יתרונות כלכליים ללמוד קפאין ביוסינטזה ב השעיות התא. . הנה, הערכה חלופית הראה שיטת ההפרדה ק...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

המחברים אין לחשוף.

תודות

העבודה של המעבדה שלנו מומן על ידי מענק Consejo נאסיונאל דה Ciencia, y Tecnología (CONACyT 219893) SMTHS. מחקר זה גם נתמך על ידי התחברות שהוענקו RJPK (מס 37938) מאת CONACyT, את "סיסטמה" נסיונאל דה Investigadores (4422). המחברים תודה CIATEJ על השימוש של התקנות שלה במהלך הכתיבה של כתב היד הזה. תודה מיוחדת מורחבות כדי ד ר Víctor מנואל גונזלס מנדוזה לקבלת המלצות כל סעיף ביולוגיה מולקולרית, ולנטין מנדוזה רודריגס, IFC, UNAM מתקנים במהלך הצילומים של מאמר זה.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
מוראשיג'ה & תערובת מלח בסיס SkoogPhytoTechnology LaboratoriesM524גודל אריזה: 50 L
מגיב (מ"ג/ליטר)
אמוניום חנקתי (1650)
חומצה בורית (6.2)
סידן כלורי, נטול מים (322.2)
קובלט כלוריד ושור; H2O (0.025)
Cupric Sulfate• 5H2O (0.025)
Na2EDTA• 2<תת>2O (37.26)
ברזל סולפט ושור; 7H2O (27.8)
מגנזיום גופרתי, נטול מים (180.7)
מנגן גופרתי&פר; H2O (16.9)
חומצה מוליבדית (מלח נתרן) ושור; 2<תת>2O (0.25)
אשלגן יודיד (0.83)
אשלגן חנקתי (1900)
אשלגן פוספט, מונו-בסיסי (170)
אבץ גופרתי ושור; 7 שעות<תת>2O (8.6)
<חזק>בתוספת
מיו-אינוזיטול (100)
תיאמין (10)
ציסטאין (25)
סוכרוז (30000)
2,4-חומצה דיכלורופנוקסיאציטית (3)
6-בנזילאמין פורין (1)
קפאיןSIGMAC0750-5Gסטנדרטי-5 גרם
תיאוברומיןSIGMAT450020 גרם
CAMAG TLC סורק -4CAMAG27.62
WinCATS Planar Chromatography Manager תוכנהCAMAG1.4.10תוכנה
איזואמיל אלכוהול (24:1)SIGMAC-0549500 מ"ל
ציקלוהקסאןJALMEXC4375-131 ליטר
אצטוןJ.T. BAKER900643 4 ליטר
מתנולJ.T. BAKER9093-034 ליטר
כלורופורםJALMEXC-4425-153.5 ליטר
TLC סיליקה ג'ל 60 F254Merck1.05554.0001צלחת TLC
ובטא;-מרקפטואתנולM6250SIGMA100 מ"ל
(+)-נתרן L- אסקורבטA4034SIGMA100 גרם
בסיס טריזמהSIGMAT60661 ק"ג
חומצה הידרוכלורית 36.5-38%J.T. בייקר9535-052.5 ליטר
פירס BCA ערכת בדיקת חלבוןתרמו מדעיערכת232227
מתיל [3H]-S-אדנוזיל מתיוניןפרקין אלמרNET155פעילות ספציפית של 15 Ci/mmol
בקבוקוני נצנוץ נוזלייםSIGMAZ253081
אמבט תרמוסטטי / סירקולטורקול פארמר60714
צינורצנטריפוגה מיקרושפופרת אפנדורףשל בקבוקונים קריוגניים 1.5 מ"ל
הית'רו סיינטיפיקHS23202A2 מ"ל
צנטריפוגה 5804אפנדורף5804 000925
מערבולתתרמוליןLR 5947
טיט חרסינהפישרברנדFB961B
נייר סינוןWhatmanZ274844נקבוביות בינונית
PicofugeStratagene4005502000 x g
איזון אנליטיANDHR-120דגם HR-120
מונה נצנוץבקמן קולטר6500
מערכת תיעוד צילום ג'לBio-RadChemic XRSדגם Chemic XRS
מנורת UV קומפקטיתUVP 95002112 UVGL-25
Scienceware HDPE משפך בוכנרSIGMA2419907 סוג 37600 מיקסר
TRIzol ריאגנטThermo scientific15596-018200 מ"ל
ReverdAid Reverse transcriptaseThermo scientific#EP044110000 U
Oligo (dT)18 פריימרThermo scientific#S0131100 µ M
DNase I,תרמו מדעי#EN05251000 U
מגנזיום כלורידתרמו מדעיEN05251.25 מ"ל
חומצה אתילנדיאמינטטראצטיתתרמו מדעיEN05251 מ"ל
dNTP mixתרמו מדעיR0191R0191
SYBR ירוק qPCR מאסטר מיקס (2X)Thermo scientificK0251ל-200 תגובות של 25 ומיקרו; L
PikoRealThermo scientific2.2פנול תוכנה
, pH 8.0, מאוזן, דרגת ביולוגיה מולקולרית, UltrapureUSB J75829100 מ"ל
אלכוהול איזופרופילKaral20401 ליטר
אלכוהול אתיליSIGMA641751 ליטר
דיאתיל פירוקרבונטSIGMAD5758100 מ"ל
מסובב מעבדהLW ScientificMod. LW210
ללא RNase

מקורות

  1. Ferruzzi, M. G. The influence of beverage composition on delivery of phenolic compounds from coffee and tea. Physiolgy & Behavior. 100 (1), 33-41 (2010).
  2. Majhenič, L., Škerget, M., Knez, Ž Antioxidant and antimicrobial activity of guarana seed extracts. Food Chemistry. 104 (3), 1258-1268 (2007).
  3. Sledz, W., Los, E., Paczek, A., Rischka, J., Motyka, A., Zoledowska, S., Lojkowska, E. Antibacterial activity of caffeine against plant pathogenic bacteria. Acta Biochimica Polonica. 62 (3), 605-612 (2015).
  4. Lipton, R. B., Diener, H. C., Robbins, M. S., Garas, S. Y., Patel, K. Caffeine in the management of patients with headache. Journal of Headache and Pain. 18 (1), 1-11 (2017).
  5. De Mejia, E. G., Ramirez-Mares, M. V. Impact of caffeine and coffee on our health. Trends in Endocrinology & Metabolism. 25 (10), 489-492 (2014).
  6. Uefuji, H., Tatsumi, Y., Morimoto, M., Kaothien-Nakayama, P., Ogita, S., Sano, H. Caffeine production in tobacco plants by simultaneous expression of three coffee N-methyltrasferases and its potential as a pest repellant. Plant Molecular Biology. 59 (2), 221-227 (2005).
  7. Denoeud, F., Carretero-Paulet, L., Dereeper, A., Droc, G., Guyot, R., Pietrella, M., Aury, J. M. The coffee genome provides insight into the convergent evolution of caffeine biosynthesis. Science. 345 (6201), 1181-1184 (2014).
  8. Kurata, H., Matsumura, S., Furusaki, S. Light irradiation causes physiological and metabolic changes for purine alkaloid production by a Coffea arabica cell suspension culture. Plant Science. 123 (1-2), 197-203 (1997).
  9. Pech-Kú, R., Muñoz-Sánchez, J. A., Monforte-González, M., Vázquez-Flota, F., Rodas-Junco, B. A., González-Mendoza, V. M., Hernández-Sotomayor, S. T. Relationship between aluminum stress and caffeine biosynthesis in suspension cells of Coffea arabica L. Journal of Inorganic Biochemistry. 181, 177-182 (2018).
  10. Huang, R., O'Donnell, A. J., Barboline, J. J., Barkman, T. J. Convergent evolution of caffeine in plants by co-option of exapted ancestral enzymes. Proceedings of the National Academy of Sciences. 113 (38), 10613-10618 (2016).
  11. Mizuno, K., Okuda, A., Kato, M., Yoneyama, N., Tanaka, H., Ashihara, H., Fujimura, T. Isolation of a new dual-functional caffeine synthase gene encoding an enzyme for the conversion of 7-methylxanthine to caffeine from coffee (Coffea arabica L.). FEBS letters. 534 (1-3), 75-81 (2003).
  12. Kato, M., Mizuno, K., Fujimura, T., Iwama, M., Irie, M., Crozier, A., Ashihara, H. Purification and characterization of caffeine synthase from tea leaves. Plant Physiology. 120 (2), 579-586 (1999).
  13. Livak, K. J., Schmittgen, T. D. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2(-Delta Delta C(T)) Method. Method. 25 (4), 402-408 (2001).
  14. Kurata, H., Achioku, T., Furusaki, S. The light/dark cycle operation with an hour-scale period enhances caffeine production by Coffea arabica cells. Enzyme and Microbial Technology. 23 (7-8), 518-523 (1998).
  15. Sartor, R. M., Mazzafera, P. Caffeine formation by suspension cultures of Coffea dewevrei. Brazilian Archives of Biology Technology. 43 (1), 1-9 (2000).
  16. Koshiro, Y., Zheng, X. Q., Wang, M. L., Nagai, C., Ashihara, H. Changes in content and biosynthetic activity of caffeine and trigonelline during growth and ripening of Coffea arabica and Coffea canephora fruits. Plant Science. 171 (2), 242-250 (2006).
  17. Schimpl, F. C., Kiyota, E., Mayer, J. L. S., de Carvalho Gonçalves, J. F., da Silva, J. F., Mazzafera, P. Molecular and biochemical characterization of caffeine synthase and purine alkaloid concentration in guarana fruit. Phytochemistry. 105, 25-36 (2014).
  18. Perrois, C., Strickler, S. R., Mathieu, G., Lepelley, M., Bedon, L., Michaux, S., Privat, I. Differential regulation of caffeine metabolism in Coffea arabica (Arabica) and Coffea canephora (Robusta). Planta. 241 (1), 179-191 (2015).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

דנסיטומטריה של TLCבידוד RNAPCR בזמן אמתמונה סינטילציהבדיקת חלבון
מיצוי קפאין, פעילות אנזימטיות, ביטוי גנים של קפאין סינתאז מ המתלים תא צמח
צרו קשר
המליצו לספרייה

פרטיות

תנאי שימוש

מדיניות

זכויות יוצרים © 2026 MyJoVE Corporation. כל הזכויות שמורות.