הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

במבחני חוץ גופית כדי להעריך את ההעברה הפלישה, התפשטות של שורות תאים מונצחים Trophoblast בטרימסטר הראשון אנושי

10K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/58942

⸱

5 במרץ 2019

 ,  ,  , 
1Department of Obstetrics, Gynecology and Reproductive Sciences, Yale School of Medicine

במאמר זה

סיכום

כאן, אנו מציגים את פרוטוקול ונגישות גבוהה להערכת תנועת התא בתאים trophoblast האנושי באמצעות שלושת מבחני במבחנה: וזמינותו מאפס, וזמינותו הפלישה transwell ואת וזמינותו התפשטות תאים.

תקציר

תנועת התא הוא מאפיין קריטי של trophoblasts במהלך הריון מוקדם ופיתוח היפרדות. המשמעות של הגירה trophoblast נאות ופלישה מומחש הפרעות ההריון כגון הגבלת גדילה תוך רחמי, רעלת היריון, אשר משויכות trophoblast לקוי הפלישה להערכת אימהית. למרבה הצער, שלנו להבנת המנגנונים מאת אשר השליה מתפתח נודדות trophoblasts מוגבל. ניתוח במבחנה של נדידת תאים באמצעות וזמינותו הזמני הוא כלי שימושי בזיהוי גורמים לווסת את קיבולת נודדות trophoblast. עם זאת, זו assay לבד אינו מגדיר את השינויים הסלולר שיכול לגרום נדידת תאים שהשתנו. פרוטוקול זה מתאר שלושה מבחני במבחנה שונים המשמשים יחדיו כדי להעריך את תנועת התא trophoblast: וזמינותו מאפס, וזמינותו הפלישה ואת וזמינותו התפשטות. ניתן לשנות את הפרוטוקולים המתוארים כאן גם לשימוש במבנים אחרים תא לכמת תנועת התא בתגובה לגירויים. שיטות אלה מאפשרות חוקרים כדי לזהות גורמים בודדים לתרום תנועת התא, לספק בדיקה יסודית של מנגנונים פוטנציאליים שבבסיס לכאורה לשינויים נדידת תאים.

מבוא

פיתוח היפרדות היא שלב חיוני בהקמה של ההריון, להשפיע על בריאות האמהי וגם העובר. עם זאת, הבסיס מכניסטית שבו מתרחש תהליך זה אינו מובן במלואו. נדידת תאים הוא תהליך ביולוגי חשוב אשר תורם הקמתה ואת הפונקציות של השליה במהלך ההריון. בעקבות ההשתלה הבלסטוציסט, מבדילה trophectoderm לתוך trophoblasts villous חלקית, אשר לכסות את המשטח של villi כוריוני מעורבים גז וחילופי מזין, trophoblasts extravillous (EVTs), אשר להעביר החוצה villi לפלוש אימהי רותמי, להערכת1. העברה של EVTs חיוני עבור שיפוץ ספירלה אימהי העורקים ויצירת מחזור uteroplacental כדי לתמוך גידול העובר2. הפלישה trophoblast לקויה במהלך ההריון התוצאה היא התפתחות לא תקינה היפרדות, עשוי לתרום הריון סיבוכים כגון רעלת, הריון יתר לחץ דם, גדילה המושבחים לידה לידה מוקדמת3, 4. לכן, להבין את הגורמים המשפיעים על תנועתיות trophoblast הוא חיוני לקביעת המסלולים הדרושים עבור placentation רגיל.

Trophoblast ההעברה נשלטת על ידי רשת מורכבת של מולקולות, לרבות גורמי גדילה, ציטוקינים, ההורמונים גורמי אנגיוגנזה5איתות. בגלל המגבלות של הלומדים את השליה ויוו, מבחני במבחנה ניצול מונצחים תא trophoblast האנושי קווים הייתה מכרעת לזיהוי גורמים שתורמים trophoblast תנועתיות. מבחני שריטה ופלישה נעשה שימוש נרחב להעריך באופן כמותי את התפקיד של מולקולות בודדות על trophoblast תא העברה6,7,8. עם זאת, בעוד שימושי במשולב כדי לחקור כיצד שינויים ההעברה עלולה להיגרם על ידי שינויים ב- invasiveness תא, אלה שני מבחני להסביר מנגנונים נוספים שעשויים לתרום שיעור שונה של נדידת תאים. לדוגמה, הנחות על קצב התפשטות תאים עלול לגרום תאים פחות זמין להעביר.

כאן, אנו מתארים במבחנה שיטות כמותיות להערכת trophoblast ההעברה באמצעות שריטות, התפשטות תאים מבחני חדירה לתא. ב וזמינותו מאפס, פצע אחיד נוצר בטפט התא, ההעברה של תאים כדי למלא את הפער נמדד על ידי הדמיה אוטומטית, בצילום מואץ של גודל הפצע צפיפות של תאים בתוך הפצע. תא התפשטות וזמינותו מבוסס על חישוב היחס בין תאים בכל נקודה בזמן לעומת כמות ההתחלתי ידוע של תאים. ב תא הפלישה וזמינותו, התאים הם נזרע על גבי תא הוספה התרבות תאים מצופים מטריצה חוץ-תאית (למשל Transwell), מספר תאים לפלוש דרך מטריצה חוץ-תאית, בתגובה כימותרפיה-attractant נספרים.

וזמינותו הזמני הוא כלי פשוט ויעיל יכול לשמש כדי לקבוע תנאים סביבתיים שונים איך להשפיע על נדידת תאים. מבחני התפשטות ופלישה עשוי לשמש לאחר מכן כדי לקבוע את התרומה של התפשטות תאים, invasiveness לשינויים הכוללת נדידת תאים. באופן קולקטיבי, מבחני אלה מספקים מדידות חזקים של תהליכים ביולוגיים שעשויים לתרום תא תנועתיות. שתי שורות תאים מונצחים בטרימסטר הראשון trophoblast שימשו מבחני המתואר, Swan.71 (Sw.71), תיקוני-8/SVneo9,10. עם זאת, אלה מבחני עשוי גם ממוטב לשימוש בסוגי תאים אחרים כדי לזהות מאפננים מפתח של נדידת תאים, הפלישה.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

1. תא הכנה

  1. לשמור על תאים T-75 מבחנות בתקשורת צמיחה רגיל-37 מעלות צלזיוס, 5% CO2ו- 95% לחות.
    הערה: התאים המשמשים ניסויים אלה היו immortalized בטרימסטר הראשון trophoblast תא קווים Swan.71 (Sw.71) לתיקוני-8/SVneo9,10. התאים Sw.71 היו בהשתתפות DMEM/F-12 בתוספת 10% לא פעיל חום העובר שור סרום (FBS) פירובט נתרן 1.0 מ מ, 10 מ מ HEPES, חומצות אמינו מ מ 0.10 MEM שאינם חיוניים, 100 יחידות/mL פניצילין, סטרפטומיצין µg/mL 100. התאים תיקוני-8/SVneo היו בהשתתפות RPMI-1640 בתוספת 5% FBS חום-לא פעיל.
  2. מאפשרים לתאים לשכפל עד שיגיעו למפגש 90-100%. בעזרת ברדס זרימה רקמות סטריליים-תרבות, תשאף התקשורת את הבקבוקון ואת שטיפת התאים עם 10 מ"ל של עקר 1 x באגירה פוספט תמיסת מלח (PBS).
  3. האחות של PBS ולהוסיף 5 מ של 1 x (0.05%) טריפסין-EDTA הבקבוק, מוודא כי תאים מכוסים על ידי טריפסין. הניחו את הבקבוק בחממה מעבדה ומתוחזק על 37 ° C, 5% CO2ו- 95% לחות עד כל התאים יש תלושים מתחתית הבקבוק (כ 5-10 דקות).
  4. להוסיף 10 מ של מדיה ומחוממת טרום הצמיחה הבקבוק כדי לבטל את טריפסין-EDTA.

2. לגרד Assay

  1. בעקבות צעד 1.4, זרע מספר מתאים של תאים לתוך צלחת 24-טוב כדי להשיג 100% הנהרות 48 שעות.
    הערה: זה אפשרי לבצע וזמינותו מאפס עם מגוון של פריסות שונות צלחת. המספר המרבי של וולס מותר על-ידי הכלי להכנת הפצע היא תבנית 96-ובכן.
  2. למחרת (יום לפני assay מאפס), לשנות מדיה פנול אדום מדיה פנויה שיושלם כנדרש, לרבות הפשיטו לתוספי FBS חום-לא פעיל, פחם.
    הערה: מחקרים אחרים המלצות בשימוש במדיה עם ריכוז נמוך FBS (כגון: % 1) כדי למזער את התפשטות תאים, אשר יכולים לשמש חלופה זו פרוטוקול11.
  3. ביום של גירוד וזמינותו, pretreat תאים במשך 30 דקות על-ידי הוספת הטיפול הרצוי המדיה של כל טוב. הניסויים מחולקת לרמות מנוצל הרכב (1 x PBS) ו- 100 ננומטר דקסמתזון מדולל ב- 1 x PBS.
  4. כדי ליצור פצעים אחיד, מקום סטרילי טיפים פיפטה 10 µL על הפינים של הכלי מכונת הפצע. הנמך את הטיפים אל השורה הראשונה של בארות ולהעביר לצלחת לאורך המסלול של הבורא הפצע עד קצות פיפטה להגיע לצד השני של הבאר.
    1. להעביר את הצלחת חזרה לנקודת ההתחלה, המאפשר את הטיפים פיפטה לגעת ללא הרף התחתון של הלוח כדי להבטיח קבוע פצע לאורך הקוטר של הבאר. להסיר, להחליף את העצות סטרילי µL 10 פיפטה ולהוריד את הטיפים אל השורה הבאה של בארות.
  5. חזור על שלב 2.4 עד כל בארות שרוטים.
    הערה: אם כלי להכנת הפצע אינו זמין, הפצעים יכולים להיווצר על ידי גירוד ידנית במרכז הבארות עם טיפ פיפטה 10 µL.
  6. בזהירות תשאף מדיה ותרחץ בעדינות תאים פעמיים עם 1 x PBS. לאחר שטיפה סופית, להוסיף שהושלם פנול אדום ללא תשלום, הפשיטו או נמוך-FBS מדיה עם הטיפול הרצוי או רכב (בהמלצת בשלב 2.3).
    הערה: תיקוני-8/SVneo תאים יש לחפוף שהושלם פנול אדום מדיה, כמו כביסה עם 1 x PBS יגרום תאים לנתק.
  7. מקם את הצלחת 24-ובכן המכיל שרוט בארות םלצה אוטומטיות, בצילום מואץ (ראה טבלה של חומרים) שוכן חממה מעבדה ומתוחזק על 37 ° C, 5% CO2ו- 95% לחות. התמונה בארות במרווחי זמן קבועים לפי הצורך כדי לאפשר תאים כדי להשלים ריפוי הפצע (למשל, כל 2 h עבור 72 h).
  8. לחשב את הפצע בצפיפות ורוחב על-ידי התוכנה המשויכים םלצה אוטומטיות, בצילום מואץ (ראה טבלה של חומרים). כדי לחשב את אחוז השינוי בגודל הפצע יחסית לגודלו של הפצע מתחיל, הגדר את רוחב הפצע בזמן 0 שווה ל- 100%. לחלק את גודל הפצע כל timepoint הבאים לפי גודל הפצע בזמן 0, להכפיל ב- 100 כדי להשיג את האחוז (איור 1).

3. פלישת Assay

  1. בשלב הבא 1.4, זרע מספר מתאים של תאים לתוך צלחות 6-טוב כדי לאפשר תאים להגיע למפגש 90% בח' 48 תאים תחזוקה חממה מעבדה מוגדר כ- 37 מעלות צלזיוס, 5% CO2ו- 95% לחות.
  2. למחרת, לשנות מדיה פנול אדום מדיה פנויה שיושלם כנדרש, לרבות הפשיטו לתוספי FBS חום-לא פעיל, פחם.
    הערה: יכול להיות pretreated תאים בשלב זה בהתאם תכנון ניסויים.
  3. בשלב זה, למקם את בקבוקון מטריצה חוץ-תאית 10 מ"ג/מ"ל (ראה טבלה של חומרים) על קרח, ולתת לזה להפשיר במקרר למשך הלילה.
  4. למחרת, הפלישה מראש מגניב assay מספקת על ידי הנחת לוחות 24-ובכן, תרבית תאים מוסיף, צינורות microcentrifuge, וטיפים פיפטה במקרר (4 ° C) במשך לפחות 2 h עובדים עמם מטריצה חוץ-תאית.
  5. באמצעות ציוד צוננת בשכונה תרביות רקמה, לדלל מטריצה חוץ-תאית 10 מ"ג/מ"ל, 1:1 עם מדיית פנול אדום-חינם, ללא סרום כדי ריכוז הסופי של 5 מ"ג/מ"ל.
    הערה: שמור תמיד את המניות ואת מטריצה חוץ-תאית מדולל על קרח. היחס של מטריצה חוץ-תאית למדיה ניתן להתאים בהתבסס על מאפייני הקו תא בשימוש וזמינותו.
  6. באמצעות ציוד צוננת בשכונה תרביות רקמה, להוסיף 100 μL של מטריצה חוץ-תאית מדולל התוספות (ראה טבלה של חומרים) הונחו בצלחת 24-. טוב. ודא כי המטריקס היא רמת ללא בועות. מקם את הצלחת 24-ובכן המכיל מצופים מטריצה מוסיף בחממה ב 37 ° C כדי לאפשר המטריקס להקשיח.
  7. להכנות תאים עבור הפלישה assay, לשטוף תאים עם 1 מ"ל של PBS 1 x, וארוקן את PBS, ומוסיפים µL 500 של טריפסין 1 x-EDTA מכל קידוח. מקם את הצלחת 6-ובכן בחממה מעבדה ומתוחזק על 37 ° C, 5% CO2ו- 95% לחות עד כל התאים יש תלושים מהחלק התחתון של הלוח.
  8. ברגע תאים יש תלושים, להוסיף 500 µL של פנול אדום-חינם, ללא סרום מדיה מכל קידוח של תאי trypsinized.
  9. µL 1,000 תאים מנותקת להעביר צינור microcentrifuge ו ספין למטה במשך 5 דקות ב x 400 g ב- 4 מעלות צלזיוס.
  10. האחות מדיה ו resuspend תאים בתקשורת פנול אדום-חינם, ללא סרום (אמצעי אחסון תלויות ריכוז של תאים). ספירת תאים באמצעות תא אוטומטיות מונה (ראה טבלה של חומרים) ולכוונן את העוצמה של התא השעיה על ריכוז סופי של תאי5 5 x 10 מ"ל.
    הערה: Hemocytometer עם מיקרוסקופ עשוי לשמש גם לספור תאים.
  11. להוסיף 600 μL של צמיחה מלאה מדיה הבארות של צלחת 24-ובכן זה ישמש עבור וזמינותו הפלישה.
    הערה: ניתן להוסיף chemoattractants נוספים או טיפולים מדיום הגידול מלאה בתוך הבאר (החדר התחתון). הניסויים מחולקת לרמות הוסיף הרכב (1 x PBS) או 100 ננומטר דקסמתזון מדולל ב- PBS x 1 לתא התחתון.
  12. המקום מצופים מראש להוסיף כל טוב שמכיל מדיום הגידול מלאה שישמש עבור וזמינותו הפלישה. לאחר מכן להוסיף 200 μL של תאים מעל כל הוספה תא מצופה מראש (העליון קאמרית) עבור סכום כולל של עונה 1 פרק 105 תאים.
    הערה: כפקד שלילי עבור זה וזמינותו, ניתן להוסיף אמצעי שווה של פנול אדום-חינם, ללא סרום מדיה (ללא תאים) לתא העליון.
  13. מניחים צלחת 24-ובכן בחממה מעבדה ומתוחזק על 37 ° C, 5% CO2ו- 95% לחות במשך 24 שעות ביממה.
    הערה: תקופת הדגירה 24 שעות היה מותאם עבור התאים מונצחים trophoblast בטרימסטר הראשון, בהמשך בדיקות עשוי להידרש כדי לקבוע תקופת הדגירה נדרש בשורות תאים אחרים.
  14. בעקבות לילה דגירה, שאיבה התקשורת שנותרו מן החדר העליון והתחתון מבלי להפריע את מטריצה חוץ-תאית. . אז, בזהירות להסיר את מטריצה חוץ-תאית ללא פלש תאים מן החלק העליון של תותב עם ספוגית כותנה, מקימה פעמים רבות ככל הדרוש כדי להסיר מטריצה חוץ-תאית.
  15. רחיצת כל להוסיף 3 x עם PBS 1 x, הוספת PBS בשני הצ'יימברס העליון והתחתון של הבאר. האחות PBS לשטוף אחרי זה.
  16. לתקן תאים מצורף צילום תקריב על-ידי הצבת מוסיף לתוך מאה אחוז מתנול קרח למשך 30 דקות ב 4 º C. שטיפת מוסיף 3 x 1-PBS והסר PBS לאחר הגמר לשטוף. כתם התאים המצורפת את הכיסויים 10 דקות בויולט קריסטל 0.2% 20% אתנול.
  17. לשטוף 3 x עם מים יונים, תשאף מים יונים לאחר כביסה הסופי.
  18. מילה נהדרת מוסיף לשעה בטמפרטורת החדר. באמצעות מלקחיים, סכין גילוח, לחתוך בזהירות את הקרום התחתון של הקדמי והר על משטח זכוכית עם הצד התחתון כלפי מעלה. לאפשר הרכבה מדיה לייבוש בטמפרטורת החדר.
  19. להשיג לפחות 4 תמונות ייחודיות של תאים פלש עבור דגימה באמצעות מיקרוסקופ אור עם יעד 20 x. לספור את המספר הכולל של תאים בכל תמונה, לנרמל את מספר התאים כדי לשלוט דגימות להתוות נתונים (איור 2).

4. הפצת Assay

  1. בשלב הבא 1.4, לספור תאים trypsinized מן הבקבוק באמצעות מונה הניתן תא אוטומטיות, זרע לתוך צלחות 6-ובכן-צפיפות של 2 x 105 תאים לכל טוב בתקשורת צמיחה רגיל.
  2. מקום תאים חממה מעבדה ומתוחזק על 37 ° C, 5% CO2ו- 95% לחות במשך 4 שעות או עד תאים יש דבקה.
  3. שינוי מדיה פנול אדום חינם מדיה בתוספת כנדרש, לרבות חום-לא פעיל, פחם הפשיטו לתוספי FBS ולהוסיף הטיפול הרצוי. הניסויים מחולקת לרמות הוסיף הרכב (1 x PBS) או 100 ננומטר דקסמתזון מדולל ב- 1 x PBS. למקם את הצלחות 6-ובכן חממה מעבדה ומתוחזק על 37 ° C, 5% CO2ו- 95% לחות.
  4. להסיר מדיה ולהחליף עם מדיה חדשה, טיפול כל 48 שעות.
  5. לאחר 24, 48 או 72 h טיפול, לשטוף תאים עם 1 מ"ל של 1 x PBS ולהוסיף 500 µL של טריפסין-EDTA מכל קידוח. מקום 6-ובכן צלחת החממה עד תאים יש מנותקת צלחת.
  6. ברגע תאים יש מנותקת לצלחת, להוסיף 500 µL התקשורת החופשית פנול אדום שהושלם לבטל את הפעלתה של טריפסין.
  7. להוסיף 5 µL של תאים trypsinized µL 5 של Trypan blue בשפופרת נפרד ומערבבים על ידי pipetting.
  8. לספור תאים מכל קידוח ב שכפל באמצעות מונה הניתן תא אוטומטית.
  9. ממוצע מספר התאים לכל במעגן בכל נקודת זמן עלילה כפונקציה של הזמן (איור 3).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

הקווים תא מונצחים trophoblast בטרימסטר הראשון האנושית Sw.71, תיקוני-8/SVneo שימשו בניסויים אלה כדי לקבוע את התפקיד של glucocorticoids trophoblast תא ההעברה12. Glucocorticoids שימשו בניסויים אלה כפי שהם לאחרונה הוכחו לשנות פונקציות trophoblast, למרות טיפולים אלטרנטיביים יכול להיות בשימוש12. שתי שורות תאים שטופלו הרכב (1 x PBS) או 100 ננומטר של דקסאמתאזון glucocorticoid סינתטי (דקס) עבור כל הניסויים. צפיפות הפצע וגודל נמדדו כל שעתיים במשך 72 h...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

הליך זה מתבסס על שימוש ההעברה הפלישה מבחני לכלול קצב התפשטות תאים כמו תורם פוטנציאלי להבדלים נמדד בתנועת התא trophoblast. נעשה שימוש יחד, מבחני במבחנה אלה הן שיטות פשוטה ויעילה שיכול לשמש כדי לזהות המסלולים הסלולר המסדירים trophoblast ההעברה. כפי שתואר לעיל, ניתן לטפל trophoblast תאים עם הורמונים, ציטוקינים, גורמי גדילה או מולקולות אחרות כדי לקבוע את ההשפעה שלהם על התנועה trophoblast. לחלופין, חלבונים היעד עשוי להיות מרוקנים מתאי התירי את תפקיד פונקציונלי שלהם ב- trophoblast תנועתיות. זיהוי מאפננים מפתח של הגירה trophobl...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

המחברים אין לחשוף.

תודות

המחברים מודים ד ר גיל מור על מתן התאים Sw.71. מחקר זה נתמך על ידי פרס אלברט מלומד מק'קרן כדי ייגמר בתיקו

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
0.4% טריפאן כתם כחולThermo Fisher Scientific15250-061
0.5% Trypsin-EDTALife Technologies15400-054
1.0 M HEPESAmericanBioAB06021-00100
10 מ"מ MEM חומצות אמינו לא חיוניותLife Technologies11140-050
100 מ"מ נתרן פירובטLife Technologies11360-070
מוסיף צלחת 24 בארותקורנינג3422מכילים מסנני פוליקרבונט עם 8 μ m גודל נקבוביות
פחם דקסטרן מופשט FBSGemini Bio-Products100-119
Countess II אוטומטי מונה תאיםתרמו פישר מדעיAMQAX1000
קריסטל סגולסיגמא אולדריץ'C0775
ציטוסיל 60תרמו פישר מדעי8310-4
דקסמתזון (Dex; 1, 4-pregnadien-9α-fluoro-16α-methyl-11β, 17, 21-triol-3, 20-dione; ≥ 98% TLC)סטרלואידיםP0500-000
DMEM / חזיר ' s F12Life Technologies11330-032
סרום בקר עובריSigma AldrichF2442
IncuCyte 24-well ImageLock PlatesEssen BioScience4365אם אתה משתמש במערכת ההדמיה IncuCyte Zoom, תאי זרע על לוחות IncuCyte ImageLock. ללוחות אלה יש סמנים פידוציאליים בתחתית הלוח המשמשים כהתייחסות להדמיה חוזרת בשדה ראייה קבוע.
תוכנת IncuCyteEssen BioScience2010A Rev2
IncuCyte מערכת ZOOMEssen BioScienceN/Aתמונות בדיקת שריטות נלכדו ונותחו באמצעות ההגדרה המוגדרת מראש " פצע שריטה" במערכת IncuCyte ZOOM. ניתן להשתמש גם במיקרוסקופים אחרים של זמן-lapse.
מטריג'ל ממברנה מטריקסבקטון דיקינסון 356231גורם גדילה מופחת, ללא פנול אדום
מיקרו שקופיותVWR International, LLC48311-7003
זכוכית כיסוי מיקרוסקופפישר סיינטיפיק12-545-E
אולימפוס IX71 מיקרוסקופ הפוךאולימפוסIX71
פניצילין (10,000 יחידות/מ"ל)/סטרפטומיצין (10,000 ומיקרו; g/mL)Life Technologies151-40-122
ללא פנול-אדום-DMEM/Ham's F12Life Technologies11039-021
כלי לייצור פצעים חצי אוטומטיEssen BioScienceN/A

מקורות

  1. Ji, L., et al. Placental trophoblast cell differentiation: Physiological regulation and pathological relevance to preeclampsia. Molecular Aspects of Medicine. 34 (5), 981-1023 (2013).
  2. Caniggia, I., Winter, J., Lye, S., Post, M. Oxygen and placental development during the first trimester: implications for the pathophysiology of pre-eclampsia. Placenta. 21, S25-S30 (2000).
  3. Norwitz, E. R. Defective implantation and placentation: laying the blueprint for pregnancy complications. Reproductive Biomedicine Online. 13 (4), 591-599 (2006).
  4. Ness, R. B., Sibai, B. M. Shared and disparate components of the pathophysiologies of fetal growth restriction and preeclampsia. American Journal of Obstetrics & Gynecology. 195 (1), 40-49 (2006).
  5. Knöfler, M. Critical growth factors and signalling pathways controlling human trophoblast invasion. The International Journal of Developmental Biology. 54 (2-3), 269-280 (2010).
  6. Huber, A. V., Saleh, L., Bauer, S., Husslein, P., Knöfler, M. TNFα-Mediated Induction of PAI-1 Restricts Invasion of HTR-8/SVneo Trophoblast Cells. Placenta. 27 (2), 127-136 (2006).
  7. Nadeem, L., et al. Nodal Signals through Activin Receptor-Like Kinase 7 to Inhibit Trophoblast Migration and Invasion. The American Journal of Pathology. 178 (3), 1177-1189 (2011).
  8. Onogi, A., et al. Hypoxia inhibits invasion of extravillous trophoblast cells through reduction of matrix metalloproteinase (MMP)-2 activation in the early first trimester of human pregnancy. Placenta. 32 (9), 665-670 (2011).
  9. Straszewski-Chavez, S. L., et al. The isolation and characterization of a novel telomerase immortalized first trimester trophoblast cell line, Swan 71. Placenta. 30 (11), 939-948 (2009).
  10. Graham, C. H., et al. Establishment and characterization of first trimester human trophoblast cells with extended lifespan. Experimental Cell Research. 206 (2), 204-211 (1993).
  11. Liang, C. C., Park, A. Y., Guan, J. L. In vitro scratch assay: a convenient and inexpensive method for analysis of cell migration in vitro. Nature Protocols. 2 (2), 329-333 (2007).
  12. Kisanga, E. P., Tang, Z., Guller, S., Whirledge, S. Glucocorticoid signaling regulates cell invasion and migration in the human first-trimester trophoblast cell line Sw. 71. American Journal of Reproductive Immunology. , e12974(2018).
  13. Berthois, Y., Katzenellenbogen, J. A., Katzenellenbogen, B. S. Phenol red in tissue culture media is a weak estrogen: implications concerning the study of estrogen-responsive cells in culture. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 83 (8), 2496-2500 (1986).
  14. Cummings, B. S., Schnellmann, R. G. Measurement of cell death in mammalian cells. Current Protocols in Pharmacology. , Chapter 12, Unit 12 18 (2004).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

במבחני חוץ גופית כדי להעריך את ההעברה הפלישה, התפשטות של שורות תאים מונצחים Trophoblast בטרימסטר הראשון אנושי
צור קשר
המלצה לספרייה

פרטיות

תנאי שימוש

מדיניות

2026 © זכויות יוצרים MyJoVE Corporation. כל הזכויות שמורות.