הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

אינדוקציה הלם מדמם מתוקננת מונחה על ידי שחמצן מוחין וניטור הומודינמיקה מורחבת בחזירים

7K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/59332

⸱

21 במאי 2019

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Anesthesiology, University Medical Center of the Johannes Gutenberg-University

במאמר זה

סיכום

הלם מדמם הוא סיבוך חמור בחולים פצועים קשה, אשר מוביל לאספקת חמצן מסכנת חיים. אנו מציגים שיטה סטנדרטית כדי לגרום להלם מדמם באמצעות נסיגה דם בחזירים כי הוא מונחה על ידי הומודינמיקה והחמצן מוחין מיקרו.

תקציר

מתוך הסיבות העיקריות. למוות חמור בנוגע לפציעה אובדן נפח הדם וספקיות החמצן יכולים להוביל לאספקת חמצן מספקת ולכשל איברים בלתי הפיך. המוח מפעיל רק את היכולות פיצוי מוגבל והוא בעיקר בסיכון גבוה של נזק ארוי חמור. מאמר זה ממחיש את האינדוקציה העצמית של הלם מדמם מסכן חיים במודל חזירי באמצעות נסיגה דם מחושב. אנו נכייל הלם אינדוקציה מונחה על ידי הספקטרוסקופיית כמעט אינפרא אדום וניטור מורחב המודינמיקה כדי להציג כשל במחזור הדם מערכתית, כמו גם מחסור בחמצן במחזור הדם המוח. בהשוואה למודלים דומים המתמקדים בעיקר באמצעי ההסרה המוגדרים מראש עבור אינדוקציה זעזועים, גישה זו מדגישה את הטיטור באמצעות הכישלון של מאקרו ומיקרו מחזור.

מבוא

אובדן דם מסיבי הוא בין הגורמים העיקריים של מקרי מוות הקשורים לפציעה1,2,3. אובדן הנוזלים של נוזלי הדם והחמצן מוביל לכשל הומודינמי ולאספקת חמצן חמורה ועלול לגרום לכשל איברים בלתי הפיך ומוות. רמת החומרה של הלם מושפע מגורמים נוספים כמו היפותרמיה, coagulopathy ו חמצת4. במיוחד את המוח, אבל גם את הכליות חוסר קיבולת פיצוי בשל הביקוש חמצן גבוה וחוסר יכולת של הדור אנרגיה אנאירובית נאותה5,6. למטרות טיפוליות, פעולה מהירה ומיידית היא מרכזית. בפרקטיקה הקלינית, החייאה מנוזל עם פתרון אלקטרוליט מאוזן היא האפשרות הראשונה לטיפול, ואחריו המינהל של מרוכז תא דם אדום פלזמה קפוא טרי. Thrombocyte תרכיזים, catecholamines, אופטימיזציה של קרישה ומצב חומצה בסיס תמיכה בטיפול כדי להחזיר את התנאים הפיזיולוגיים נורמלי לאחר טראומה מתמשכת. קונספט זה מתמקד בשיקום הומודינמיקה ובמחזור המקרו. עם זאת, מספר מחקרים מראים כי מיקרופיוז מחזור הדם אינו מתאושש במקביל עם מחזור המקרו. במיוחד, הפרזיה מוחית נשאר לקוי ואספקת חמצן נוספת עלולה להתרחש7,8.

השימוש במודלים לבעלי חיים מאפשר למדענים להקים אסטרטגיות של רומן או ניסיוני. האנטומיה המקבילה, ההומולוגיה והפיזיולוגיה של החזירים והאדם מאפשרים מסקנות לגבי גורמים פתולוגיים ספציפיים. שני המינים יש מערכת מטבולית דומה ותגובה טיפולים פרמקוקולוגי. זהו יתרון גדול בהשוואה מודלים בעלי חיים קטנים שבו הבדלים בנפח הדם, הומודינמיקה, והפיזיולוגיה הכוללת להפוך את זה כמעט בלתי אפשרי לחקות תרחיש קליני9. יתר על כן, מורשה ציוד רפואי מתכלים ניתן להשתמש בקלות במודלים חזירי. בנוסף, ניתן בקלות להשיג חזירים מספקים מסחריים, אשר מאפשר מגוון גבוה של גנטיקה ופנוטיפים והוא עלות הפחתת10. המודל של נסיגה דם באמצעות הצינורית של הספינה הוא די נפוץ11,12,13,14,15.

במחקר זה, אנו להאריך את הרעיון של הלם מדמם אינדוקציה באמצעות נסיגה דם עורקים עם מדויק של כישלון הומודינמיקה וליקוי חמצון מוחין. הלם מדמם מושגת אם מדד הלב ומתכוון לחץ עורקי יורד מתחת 40% של הערך הבסיסי, אשר הוכח לגרום להתדרדרות ניכרת של רווית חמצון האזור המוח8. מדידת דופק פלט הלב (PiCCO) משמש עבור ניטור הומודינמיקה רציפה. ראשית, המערכת צריכה להיות מכויל על ידי התחבורה תרמוקסארי, אשר מאפשר את החישוב של מדד הלב של תוכן המים extravascular הריאות ואת נפח הקצה העולמי דיאסטולי. לאחר מכן, מדד הלב מתמשך מחושב על ידי ניתוח מתאר הדופק ומספק גם פרמטרים דינאמיים מטעינת כגון לחץ הדופק וריאציה עוצמת קו.

טכניקה זו מבוססת היטב בהגדרות קליניות ונסיוניות. ספקטרוסקופיית כמעט אינפרא-אדום (NIRS) היא שיטה קלינית ומבוססת לניטור שינויים באספקת חמצן מוחית בזמן אמת. החיישנים העצמיים מחוברים למצח השמאלי והימני ומחשבים את החמצון המוחית באופן לא פולשני בקליפת המוח הקדמית. שני אורכי גל של אור אינפרא אדום (700 ו 900 ננומטר) הם נפלטים מזוהה על ידי חיישנים לאחר שמשתקף מרקמת קליפת המוח. כדי להעריך את תכולת החמצן המוחית, התרומות של דם עורקי וורידים מחושבות ביחסים 1:3 ומעודכנות במרווחי זמן של 5. הרגישות לעומק 1-4 ס מ היא ירידה אקספוננציאלית ומושפעת הרקמה החדרה (למשל, עור ועצם), למרות הגולגולת הוא שקוף לאור אינפרא אדום. הטכניקה מקלה על פעולות טיפוליות מהירה כדי למנוע מהחולים מפני תוצאות שליליות כמו הזיות או ארוי המוח פציעה משמש כפרמטר היעד במקרה של לקויי תפוקת הלב16,17. השילוב של שתי הטכניקות במהלך ההלם הניסיוני מאפשר את הטיטור המדויק של מיקרו-מחזור, כמו גם ליקוי מוחי מוחין, כדי ללמוד את האירוע הזה סכנת חיים.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

הניסויים בפרוטוקול זה אושרו על ידי ועדת הטיפול בבעלי חיים מוסדיים (Landesuntersuchungsamt Rheinland-Pfalz, קובלנץ, גרמניה; יו"ר: ד ר סילביה אייץ-וולף; מספר סימוכין: 23 177-07/G 14-1-084; 02.02.2015). הניסויים נערכו בהתאם למחקרי בעלי חיים המדווחים על בעלי ההנחיות בנושא Vivo. המחקר תוכנן ונערך בין נובמבר 2015 ומארס 2016. לאחר מחקר הספרות המורחבת, המודל חזיר נבחר כמודל מבוסס היטב עבור הלם מדמם. שבעה חזירים זכריים ממחוקים (לועפה סוס) עם משקל ממוצע של 28 ± 2 ק"ג ועידן של 2-3 חודשים נכללו בפרוטוקול. החיות טיפלו על ידי מגדל מקומי שהומלץ על ידי הוועדה הממלכתית לטיפול בבעלי חיים מוסדיים. בעלי החיים הוחזקו בסביבתם הידועה זמן רב ככל האפשר כדי למזער את הלחץ. מזון, אבל לא מים נדחתה 6 שעות לפני שהניסוי נקבע, כדי להפחית את הסיכון לשאיפה. קורס הזמן המייצג מוצג באיור 1.

1. הרדמה, צנרור, ואוורור מכני

  1. הרגעה חזירים עם הזרקה משולבת של קטמין (4 מ"ג · ק"ג-1) ו azaperone (8 מ"ג · ק"ג-1) בצוואר או שריר הגלוטיל עם מחט עבור הזרקת שרירי (1.2 מ"מ). ודא שהחיות נשארות יציבות עד לקביעת ההרדמה.
    זהירות: כפפות הן הכרחיות לחלוטין בעת טיפול בבעלי חיים.
  2. להעביר את החיות. המסוכצות למעבדה
    הערה: בעלי החיים נרדמים עמוקות ואינם ערים בזמן הטיפול הרגיל, כמו כאשר הם מורמות לתוך כלוב התחבורה. במסגרת זו, זמן ההובלה היה בערך 20 דקות עם ואן מיוחד להובלת חיות.
  3. נטר את רוויית החמצן ההיקפית (SpO2) עם חיישן החתוכים לזנב החזיר או לאוזן מיד לאחר ההגעה.
  4. לחטא את העור עם תמיסת חיטוי החסר צבע ולחכות 3 דקות לפני החדרת צנתר וריד היקפי (1.2 מ"מ) לתוך וריד האוזן. ואז, לגרום הרדמה על ידי הזרקה ורידי של פנטניל (4 μg · ק"ג-1) ו ההצעת (3 מ"ג · ק"ג-1).
  5. כאשר כל הרפלקסים נעדרים הנשימה הספונטנית פג, מניחים את החזירים במיקום פרקדן על אלונקה ולתקן אותם עם תחבושות.
    הערה: רמות מתאימות של הרדמה צריך להיות מאושר על ידי חוקר מנוסה על ידי העדר רפלקס העפעף ותגובות אחרות גירויים חיצוניים.
  6. מיד להתחיל אוורור פולשני עם מסיכת אוורור כלב (בגודל 2). השתמש בפרמטרי האוורור הבאים: inspiratory משבר חמצן (FiO2) = 1.0; שיעור הנשימה = 14-16 min-1; שיא inspiratory הלחץ < 20 ס מ H2o, חיובי בסופו של דבר לחץ (ציוץ) = 5 ס"מ h2O.
  7. לשמור על הרדמה באמצעות אינפוזיה רציפה של פנטניל (0.1-0.2 μg · ק"ג-1· h-1) ו ההצעת (8-12 מ"ג · ק"ג-1· h-1) ולהתחיל אינפוזיה של התמיסה אלקטרוליט מאוזנת (5 מ"ל · ק"ג-1· h-1).
  8. להקל על צנרור אנקנה על ידי יישום של מרפה שרירים (atracurium 0.5 mg · ק"ג-1).
  9. אבטחו את דרכי הנשימה באמצעות צנרור עם צינורית אנדוקנה משותפת (ID 6-7) ומבואה. השתמש בהאנדוסקופ משותף עם להב של Macintosh (גודל 4). שני אנשים מקלים על התהליך.
    1. אדם 1: לתקן את הלשון בחוץ עם פיסת רקמה ולפתוח את האף עם היד השנייה.
    2. אדם 2: לבצע ביצוע לרינגוסקופיה.
    3. אדם 2: כאשר האפיגלוטטיס נכנס לתוך הנוף, להעביר את ventrally הסקופ. להרים את אפיגלוטיס ולוודא מיתרי הקול גלויים.
      הערה: אם האפיגלוטטיס אינו מזיז את הדורסלי, הוא נדבק אל הפאלאטונים הרכים ויכול להיות מגוייס בקצה הצינור. לחלופין, ניתן להשתמש בלהב עם גודל אחר (3 או 5) או סוג (להב מילר).
  10. הזיזו את הצינור בזהירות דרך מיתרי הקול.
    הערה: הנקודה הצרה ביותר של קנה הנשימה היא לא על רמת מיתרי הקול אלא subglottic. אם הכנסת הצינור אינה אפשרית, נסה לסובב את השפופרת או להשתמש בשפופרת קטנה יותר.
  11. משוך את הבואה מתוך הצינור, להשתמש במזרק 10 מ ל כדי לחסום את השרוול עם 10 מ ל של אוויר, ולשלוט על הלחץ השרוול עם מנהל השרוול (30 ס"מ H2O).
  12. התחל אוורור מכני לאחר הצינור מחובר למכונת הנשמה (ציוץ = 5 ס"מ H2O; נפח הגאות = 8 מ"ל · ק"ג-1; FiO2 = 0.4; יחס השראה לתפוגה = 1:2; קצב הנשימה = משתנה כדי להגיע לקצה הגאות והטוב2 של ≪ 6 kPa).
    הערה: הימנע תנודות של CO2 כדי למזער את השפעות הנשימה על המוח perfusion.
  13. ודא כי מיקום הצינור הוא נכון על ידי הנשיפה רגילה ותקופתית של CO2 דרך capnography, ולבדוק את האוורור דו צדדי באמצעות כפייה.
    הערה: אם הצינור ממוקם בצורה שגויה, את האינפלציה האוויר לתוך הקיבה במהירות צורות הבליטה גלוי בקיר הבטן, אפילו לפני הקפיגרפיה מותקן. במקרה זה, החלפת הצינורית והחדרת צינורית הקיבה הכרחית בהחלט.
  14. עם שני אנשים, במקום צינור הקיבה לתוך הבטן כדי למנוע ריפלוקס והקאות.
    1. אדם 1: לתקן את הלשון בחוץ עם פיסת רקמה ולפתוח את האף עם היד השנייה.
    2. אדם 2: לבצע לאקגוסקופיה של הגרון חזירי.
    3. אדם 2: המחש את הוושט.
    4. אדם 2: לדחוף את צינור הקיבה בתוך הוושט עם זוג מלקחיים Magill עד נוזל הקיבה מנוקז.
      הערה: . לפעמים, הדמיה זה לא קל במקרה זה, להעביר את האנדוסקופ dorsally לצינור ולדחוף אותו ventrally לפתוח את הוושט. במהלך התהליך, גוף החיה מכוסה בשמיכות כדי למנוע היפותרמיה. אם טמפרטורת הגוף של בעל החיים יורדת, השתמש במערכת חימום כדי לייצב את הטמפרטורה ברמה הפיזיולוגית (עיין בטבלת החומרים). טמפרטורת הגוף מוצגת על המסך של PiCCO.

2. מכשור

  1. תחבושות להשתמש כדי למשוך בחזרה את הרגליים האחוריות כדי להחליק את קפלי באזור הירך עבור צנתור כלי.
  2. להכין את החומרים הבאים: אחד 5 מזרק mL, 1 10 mL מזרק, 1 50 mL מזרק, אחד המחט Seldinger מבושים (2 מ"מ, 2.7 מ"מ, 2.7 מ"מ), הנחיה לנרתיקים, קטטר ורידי מרכזי עם שלוש יציאות (2.3 מ"מ, 30 ס מ) עם חוט הנחיה, ו PiCCO קטטר (1.67 מ"מ, 20 ס מ).
  3. לחטא את האזור האינרישתי עם חיטוי צבעוני, לחכות 2 דקות, ולנגב את חיטוי עם רקמה סטרילית. חזור על הליך זה 3x. לאחר הפעם השלישית, אל תסיר את החיטוי.
  4. למלא את כל הקטטרים עם פתרונות מלוחים.
  5. להחיל ג'ל אולטרסאונד על הבדיקה אולטרסאונד. מכסים את האזור האינרירינלים עם כיסוי סטרילי מדורגים ולסרוק את כלי הירך הימני עם אולטרסאונד. השתמש בטכניקת דופלר להבחנה בין העורק לווריד18.
  6. בהיר אדום דם פועם מאשרת את עמדת המחט שאפו. נתק את המזרק והכנס את. חוט ההנחיה לעורק הירך הימני
  7. המחש את ציר האורך של וריד הירך הימנית והכנס את המחט Seldinger תחת שאיפה קבועה עם מזרק 5 mL.
  8. מנושף דם כהה אדום. ובלתי פועם
  9. המחש את עורק הירך הימני בסדר ולעבור לתצוגה האורך של העורק על ידי סיבוב 90 מעלות בדיקה.
  10. ניקוב עורק הירך הימני תחת הדמיה אולטרסאונד עם מחט Seldinger תחת שאיפה קבועה עם מזרק 5 mL.
    הערה:     הטכניקה המודרכת-אולטראסאונד משויכת לאובדן דם נמוך באופן משמעותי, לטראומה ברקמות ולצריכת זמן מאשר שיטות אחרות של גישה לכלי דם19,20.
    1. אם המיקום הנכון של המחט בכלי הדם השונים לא ניתן להקים בוודאות, לקחת את הבדיקות הדם ולנתח את תכולת הגז בדם עם מנתח גז (לראות את הטבלה של חומרים). רמת חמצן גבוהה היא סימן טוב של דם עורקי, ורמת חמצן נמוכה היא סימן לדם ורידים.
  11. הכנס את חוט ההנחיה עבור קטטר הורידים המרכזי לתוך וריד הירך הימנית לאחר ניתוק המזרק ובכך לנתק את המחט Seldinger.
  12. להמחיש את שני כלי הזכות עם אולטרסאונד כדי לשלוט על מיקום התיל הנכון.
  13. לדחוף את הנדן מבוא העורקים (2 מ"מ) על חוט הנחיה לתוך העורק הימני ולאבטח את העמדה עם שאיפה דם.
  14. השתמש בטכניקת Seldinger כדי למקם את קו הורידים המרכזי לתוך וריד הירך הימני. , מרוקן את כל הנמלים. ומוריד אותם בתמיסה מלוחים
  15. לבצע את ההליך אותו בצד השמאלי השני כדי להוסיף את הנרתיקים מבוא אחרים בטכניקת Seldinger לתוך עורק הירך השמאלי (2.7 מ"מ) ו וריד הירך (2.7 מ"מ).
  16. לחבר את הנדן הימני מבוא בעורק ואת קטטר הורידים המרכזי עם שתי מערכות מתמר למדידה של הומודינמיקה פולשנית, ולמקם הן התמרה ברמת הלב כדי לקבל ערכים מתאימים.
  17. החלף את שלושת הסטופי-העצירות של שני ההתמרים הפתוחים לאטמוספירה כדי לכייל את המערכות ל -0 כפי שנקבע בהוראות הפעולה.
    הערה: זה הכרחי לחלוטין למנוע בועות אוויר וכתמי דם במערכות כדי להפיק ערכים הגיוני.
  18. החליפו את כל החליטות לשמירה על ההרדמה מהעורק ההיקפי ועד לקו הורידים המרכזי.
  19. קח ערכים בסיסיים (הומודינמיקה, ספירומטריה, NIRS (ראה סעיף 4) ו-PiCCO (ראה סעיף 3) לאחר 15 דקות של התאוששות.
  20. התחל בהלם מדמם (ראה סעיף 5).

3. מדידת PiCCO

הערה: לציוד PiCCO, עיין בטבלת החומרים.

  1. הכנס את הצנתר PiCCO לתוך נדן הימני מבומר.
    הערה: ברפואה הקלינית, הקטטרי PiCCO ממוקמים ישירות על ידי טכניקת סלנגר. עם זאת, מיקום באמצעות נדן מבואה הוא אפשרי גם.
  2. לחבר את הצנתר עם חוט העורקים של מערכת PiCCO ואת מתמר העורקים ישירות עם יציאת PiCCO. לאחר מכן, כייל מכייל כמתואר בשלב 2.17.
  3. לחבר את יחידת מדידת הורידים של מערכת PiCCO עם הנרתיק השמאלי של הורידים.
    הערה: יש צורך לחבר את הבדיקות ורידי העורקים במרחק מסוים זה מזה. אחרת, את המדידה יהיה מופרע, כי היישום של תמיסת מלח קר לתוך מערכת הורידים ישפיע על המדידה העורקים. לפרטים נוספים על PiCCO, ר' מאיר וסוטנר21.
  4. הפעל את מערכת PiCCO וודא שמטופל חדש נמדד.
  5. הזן את גודל ומשקלו של בעל החיים והחלף את הקטגוריה למבוגרים.
  6. הזן את שם הפרוטוקול והמזהה והזן יציאה.
  7. הגדר את עוצמת הזריקה ל-10 mL.
    הערה: הנפח של פתרון ההזרקה שנבחרה יכול להיות מגוון. אמצעי אחסון גבוה יותר הופך את הערכים הנמדדים לחוקיים יותר. בחרה באמצעי אחסון קטן כדי למנוע השפעות הומודילול באמצעות יישום חוזר ונשנה.
  8. . היכנסו ללחץ הורידים המרכזי
  9. פתח את העצירות שלוש כיוון לאטמוספירה, לחץ על אפס עבור כיול מערכת, ולחץ על היציאה.
  10. כיול את המדידה הרציפה של תפוקת הלב כמתואר בהמשך ולחץ על TD (תרמודילול). הכינו תמיסת מלח פיזיולוגית עם טמפרטורה של 4 ° c במזרק של 10 מ ל ולחצו על התחל.
  11. הכנס 10 מ ל של התמיסה הקרה מלוחים במהירות ובהתמדה לתוך יחידת מדידת הורידים והמתן עד להשלמת המדידה והמערכת מבקשת חזרה.
  12. חזור על הליך זה עד ששלוש מדידות יושלמו.
  13. תן למערכת לחשב את הממוצע של כל הפרמטרים ולחץ על יציאה.
  14. לאחר כיול מלא, הפעל מיד את המדידה. כדי לנטר השראה בהלם, התמקד באינדקס הלב של הפרמטר PiCCO הנגזר.

4. רוויית חמצון אזורית מוחית

הערה: כדי שהציוד יפקח על חמצון אזורי מוחין, עיין בטבלת החומרים.

  1. לגלח את המצח של החזיר עם תער חד פעמי ומים ולתקוע שני חיישנים עצמית חסיד (לראות את הטבלה של חומרים) עבור nirs אל המצח של חזיר.
  2. חבר את מגבר הקדם למסך וחבר את מחברי כבל החיישנים למגבר הקדם.
  3. סגרו את מנגנון הנעילה יחידות פרה וחברו את החיישנים לכבלי החיישנים.
    הערה: כדי להקליט נתוני זמן-אמת, כונן הבזק מסוג USB חייב להיות מחובר לצג ה-NIRS.
  4. הפעל את הצג, לחץ על המטופל החדש, הזן את שם המחקר, ולחץ על Done.
  5. . בדוק את האות הנכנס כאשר האות יציב, לחץ על תפריט בסיסי ולחץ על הגדרת תוכניות בסיסיות. אם התוכנית הבסיסית כבר הוזנה, אשר את התוכנית הבסיסית החדשה על-ידי לחיצה על כן ולחץ על סימן האירוע.
  6. בחר באירוע עם לחצני החיצים בלוח המקשים ועם האירוע הבא; בחר את האירוע 3 אינדוקציה ולחץ על בחר אירוע.
    הערה: אם יש צורך במידע נוסף, עיין במדריך למבצע של מערכת ה-NIRS22.

5. אינדוקציה הלם מדמם

  1. להתחבר נדן שמאלה מבועם עם מזין כדרך העצים. חבר נמל אחד של הפקק התלת-כסוף עם מזרק 50 mL ואחד עם בקבוק אינפוזיה ריק.
    הערה: לחילופין, הדם הנסוג ניתן לאסוף בשקיות מדורגים עבור עירוי אוטומטי מאוחר יותר. זהו יתרון גדול של נסיגה דם מבוקרת.
  2. למדוד ולתעד את הפרמטרים המדויק הפונקציה ולחשב 40% של מדד הלב ומתכוון לחץ עורקי כמטרות הומודינמיקה. הגדר את האירוע 93 דם אובדן במערכת nirs כמתואר בשלב 4.6.
    הערה: הלם מדמם מושגת אם מדד הלב ומתכוון לחץ עורקי יורד מתחת 40% הערך הבסיסי. שקיעת חמצן באזור המוח (crSO2) בירידה של 20% עדיפה לתאר ליקוי מיקרוסירקולציה. אובדן הדם הממוצע כדי להשיג את זה שקרים בתוך מגוון של 25-35 mL · kg-1.
  3. מתיף 50 מ ל של דם לתוך המזרק ומחליף את הסטופפין התלת-כיוון. לדחוף את הדם לתוך הבקבוק הריק.
  4. שים לב לנפח הדם שהוסר.
  5. נטר את לחץ הדם העורקי, את מדד הלב, ואת ה-crSO2 מקרוב. חזרו על נסיגת הדם עד להשגת לחץ הדם המיועד והמדד הקרדיולוגי (אחרי 20-30 דקות).
  6. הגדר את האירוע 97 לחץ דם במכשיר nirs כמתואר בשלב 4.6.
    הערה: אל תיסוג מהר מדי את הדם, כי זה נושא את הסיכון לכשל מיידי במחזור הדם. לאחר סיום הליך אינדוקציה הלם, בעלי חיים ניתן להשתמש עבור התערבויות טיפוליות שונות.

6. סוף הניסוי והמתת החסד

  1. להזריק 0.5 מ"ג של פנטניל לתוך קו הורידים המרכזי ולחכות 5 דקות.
  2. להזריק 200 מ"ג של ההצעת לתוך קו הורידים המרכזי והמתת החיים עם 40 mmol אשלגן כלוריד.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

לאחר הפעלת האינדוקציה הלם, ניתן לרשום זמן קצר של פיצוי. עם הסרת דם מתמשך, לעיל סיבולת הדם הקרדיולוגית, כפי שהוא מפוקח על ידי ירידה משמעותית של crSO2, מדד הלב, מדד הפנים בית החזה, ואת מדד הקצה הגלובלי הדיאסטולי נפח (איור 2 , איור 3, ואיור 4), מתרחש. יתרה מזאת, טכיקרדיה משמעותית וירידה בלחץ הדם העורקי נצפו כביטויים נפוצים של זעזוע מדמם (איור 2). וריאציה של עוצמת...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

הפרוטוקול מתאר שיטה אחת לגרימת זעזוע מדמם באמצעות דימום עורקי מבוקר בחזירים המודרכת על ידי הומודינמיקה מערכתית, כמו גם על ידי פגיעה מוחית במחזור הדם. תנאי הלם הושגו על ידי נסיגה דם מחושב של 25-35 mL ק"ג-1 ואישר על ידי המורכב מורכב של פרמטרים פונדקאית המציין כישלון משמעותי במחזור הדם. אם לא מטופל, הליך זה היה קטלני בתוך 2 h ב 66% של בעלי חיים, אשר מדגיש את חומרת ואת השגות של המודל. החייאה הנוזלים הולמים, מצד שני, התייצב מחדש את זרימת הדם ואישר את הפטנטיות לחקות תרחיש קליני8. עם זאת, פחות...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

התקן NIRS סופק ללא תנאי על ידי מדטרוניק, ארה ב, לצורכי מחקר ניסיוני. אלכסנדר זייברט, אנדריאס גרסיה-ברדון, ואריק ק. הרטמן קיבל את התואר המורה להכשרת קורסי הכשרה לרופא ממדטרוניק. אף אחד מהמחברים לא מדווח על קונפליקטים פיננסיים או אחרים.

תודות

המחברים רוצים להודות לדאגמר דיראבונסקי על התמיכה הטכנית המעולה שלה.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
3-way-stopcock כחולBecton Dickinson Infusion Therapy AB הלסינגבורג, שוודיה394602מינהל התרופות
3-way-stopcock אדוםBecton Dickinson Infusion Therapy AB הלסינגבורג, שוודיה394605מינהל תרופות / אינדוקציה להלם
AtracuriumHikma Pharma GmbH , MartinsriedAM03AC04*צינורית הרדמה
20 גרםBecton Dickinson S.A. Carretera Mequinenza Fraga, ספרד301300גישה לכלי הדם
Datex Ohmeda S5GE Healthcare Finland Oy, הלסינקי, פינלנד-מוניטורהמודינמי
Desinfection Schü לקה & Mayr GmbH, גרמניה104802Desinfection 
Heidelberger Verlä 75CMFresenius Kabi Deutschland GmbH2873112  מתן תרופות/השראת הלם
INVOS 5100C CerebralMedtronic PLC, ארה"ב-מוניטורלחמצון אזורי מוחי 
INVOS חיישנים למבוגרים של אוקסימטריה מוחית/סומטיתMedtronic PLC, ארה"ב20884521211152ניטור החמצון האזורי של המוח 
צינור אנדוטרכיאליTeleflex Medical Sdn. Bhd, מלזיה112482אינטובציה
מכניס צינור אנדוטרכיאלי  Wirutec GmbH (Sulzbach, גרמניה) 5033062Intubation
Engströ m CarestationGE Heathcare, MadisonUSA-Ventilator
FentanylJanssen-Cilag GmbH, NeussAA0014*כפפות הרדמה
פול הרטמן, היידנהיים, גרמניה9422131הגנה עצמית
Incetomat-line 150 ס"מFresenius, Kabi GmbH, באד הומבורג, גרמניה9004112מינהל התרופות
KetamineHameln Pharmaceuticals GmbH, Zofingen, SchweizAN01AX03*Sedation
LaryngoscopeTeleflex Medical Sdn. Bhd, מלזיה671067-000020
מערכת ניטור לחץ לוגיSmith- Medical GmbH,  מיניאפוליס, ארה"בMX9606מוניטור המודינמי
Logicath 7 Fr 3 לומן 30 ס"מSmith- Medical GmbH,  מיניאפוליס, ארה"בMXA233x30x70-Eגישה לכלי דם/מינהל תרופות
Masimo Radical 7Masimo Corporation, אירווין, ארה"ב-מוניטורהמודינמי
מסכה לכלבים מאוורריםהנרי שיין, מלוויל, ארה"ב730-246אוורור
מזרק פרפוזור מקורי 50 מ"ל Luer LockB.Braun Melsungen AG, Melsungen, גרמניה8728810Fמינהל תרופות
דילול תרמי של PICCO. F5/20 ס"מ EW MAQUET Cardiovascular GmbH, Rastatt, גרמניהPV2015L20-A  מוניטור המודינמי
סט מבוא נדן מלעורי 8,5 und 9 Fr, 10 ס"מ עם שסתום המוסטזיס אינטגרלי/יציאה צדדיתArrow international inc., רידינג, ארה"בAK-07903גישה לכלי דם/אינדוקציה הלם
Perfusor FM BraunB.Braun Melsungen AG, Melsungen, גרמניה8713820מינהל התרופות
אשלגן כלוריFresenius, Kabi GmbH, באד הומבורג, גרמניה6178549המתת חסד
פרופופול 2%Fresenius, Kabi GmbH, באד הומבורג, גרמניה  AN01AX10*הרדמה
  תפוקת לב מתאר דופק (PiCCO2) Pulsion Medical Systems, פלדקירכן,גרמניה-מוניטורהמודינמי
Sonosite Micromaxx UltrasoundsystemFujifilm, Sonosite Bothell, Bothell, ארה"ב -גישה לכלי הדם
נירוסטה מקינטוש גודל 4טלפלקס רפואי Sdn. Bhd, Perak,  Malaysia670000Intubation
SterofundinB.Braun Melsungen AG, Melsungen, גרמניהAB05BB01*עירוי אלקטרוליטים מאוזן
Stresnil 40 מ"ג/מ"ל   Lilly Germany GmbH, ויסבאדן, גרמניה QN05AD90הרגעה
10 מ"לBecton Dickinson S.A. Carretera Mequinenza Fraga, ספרד309110למתן תרופות
2 מ"לBecton Dickinson S.A. Carretera Mequinenza Fraga, Spain300928למתן תרופות
20 מ"לBecton Dickinson S.A. Carretera Mequinenza Fraga, ספרד300296תרופה מתן
מזרק 5 מ"לBecton Dickinson S.A. Carretera Mequinenza Fraga, ספרד309050מינהל תרופות
קטטר ורידי 22 GB.Braun Melsungen AG, Melsungen, גרמניה4269110S-01גישה לכלי הדם
*ATC:  כימיקל טיפולי אנטומי / סיווג מינון יומי מוגדר 
אינטובציה מזרק מזרק מזרק

מקורות

  1. Kutcher, M. E., et al. A paradigm shift in trauma resuscitation: evaluation of evolving massive transfusion practices. JAMA Surgery. 148 (9), 834-840 (2013).
  2. Allen, B. S., Ko, Y., Buckberg, G. D., Sakhai, S., Tan, Z. Studies of isolated global brain ischaemia: I. A new large animal model of global brain ischaemia and its baseline perfusion studies. European Journal of Cardio-Thoracic Surgery. 41 (5), 1138-1146 (2012).
  3. Noll, E., et al. Comparative analysis of resuscitation using human serum albumin and crystalloids or 130/0.4 hydroxyethyl starch and crystalloids on skeletal muscle metabolic profile during experimental haemorrhagic shock in swine: A randomised experimental study. European Journal of Anaesthesiology. 34 (2), 89-97 (2017).
  4. Tisherman, S. A., Stein, D. M. ICU Management of Trauma Patients. Critical Care Medicine. , (2018).
  5. Nielsen, T. K., Hvas, C. L., Dobson, G. P., Tonnesen, E., Granfeldt, A. Pulmonary function after hemorrhagic shock and resuscitation in a porcine model. Acta Anaesthesiologica Scandinavica. 58 (8), 1015-1024 (2014).
  6. Bogert, J. N., Harvin, J. A., Cotton, B. A. Damage Control Resuscitation. Journal of Intensive Care Medicine. 31 (3), 177-186 (2016).
  7. Gruartmoner, G., Mesquida, J., Ince, C. Fluid therapy and the hypovolemic microcirculation. Current Opinion in Critical Care. 21 (4), 276-284 (2015).
  8. Ziebart, A., et al. Effect of gelatin-polysuccinat on cerebral oxygenation and microcirculation in a porcine haemorrhagic shock model. Scandinavian Journal Trauma Resuscitation Emergency Medicin. 26 (1), 15(2018).
  9. Bassols, A., et al. The pig as an animal model for human pathologies: A proteomics perspective. Proteomics Clinical Applications. 8 (9-10), 715-731 (2014).
  10. Alosh, H., Ramirez, A., Mink, R. The correlation between brain near-infrared spectroscopy and cerebral blood flow in piglets with intracranial hypertension. Journal of Applied Physiology. 121 (1985), 255-260 (2016).
  11. Hartmann, E. K., et al. Ventilation/perfusion ratios measured by multiple inert gas elimination during experimental cardiopulmonary resuscitation. Acta Anaesthesiologica Scandinavica. 58 (8), 1032-1039 (2014).
  12. Hartmann, E. K., Duenges, B., Baumgardner, J. E., Markstaller, K., David, M. Correlation of thermodilution-derived extravascular lung water and ventilation/perfusion-compartments in a porcine model. Intensive Care Medicine. 39 (7), 1313-1317 (2013).
  13. Hartmann, E. K., et al. An inhaled tumor necrosis factor-alpha-derived TIP peptide improves the pulmonary function in experimental lung injury. Acta Anaesthesiologica Scandinavica. 57 (3), 334-341 (2013).
  14. Ortiz, A. L., et al. The influence of Ringer's lactate or HES 130/0.4 administration on the integrity of the small intestinal mucosa in a pig hemorrhagic shock model under general anesthesia. Journal of the Veterinary Emergency and Critical. 27 (1), 96-107 (2017).
  15. Ziebart, A., et al. Low tidal volume pressure support versus controlled ventilation in early experimental sepsis in pigs. Respiratory Research. 15, 101(2014).
  16. Hoffman, G. M., et al. Postoperative Cerebral and Somatic Near-Infrared Spectroscopy Saturations and Outcome in Hypoplastic Left Heart Syndrome. The Annals of Thoracic Surgery. 103 (5), 1527-1535 (2017).
  17. Hickok, R. L., Spaeder, M. C., Berger, J. T., Schuette, J. J., Klugman, D. Postoperative Abdominal NIRS Values Predict Low Cardiac Output Syndrome in Neonates. World Journal for Pediatric and Congenital Heart Surgery. 7 (2), 180-184 (2016).
  18. Weiner, M. M., Geldard, P., Mittnacht, A. J. Ultrasound-guided vascular access: a comprehensive review. Journal of Cardiothoracic and Vascular Anesthesia. 27 (2), 345-360 (2013).
  19. Kumar, A., Chuan, A. Ultrasound guided vascular access: efficacy and safety. Best Practice & Research: Clinical Anaesthesiology. 23 (3), 299-311 (2009).
  20. Lamperti, M., et al. International evidence-based recommendations on ultrasound-guided vascular access. Intensive Care Medicine. 38 (7), 1105-1117 (2012).
  21. Mayer, J., Suttner, S. Cardiac output derived from arterial pressure waveform. Current Opinion in Anesthesiology. 22 (6), 804-808 (2009).
  22. Medtronic. Operations Manual INVOS ® System, Model 5100C. , http://www.wemed1.com/downloads/dl/file/id/7947/product/10495/manual_for_mo_s_5100c.pdf (2013).
  23. Wani, T. M., Rafiq, M., Akhter, N., AlGhamdi, F. S., Tobias, J. D. Upper airway in infants-a computed tomography-based analysis. Paediatric Anaesthesia. 27 (5), 501-505 (2017).
  24. Tuna Katircibasi, M., Gunes, H., Cagri Aykan, A., Aksu, E., Ozgul, S. Comparison of Ultrasound Guidance and Conventional Method for Common Femoral Artery Cannulation: A Prospective Study of 939 Patients. Acta Cardiologica Sinica. 34 (5), 394-398 (2018).
  25. Teeter, W. A., et al. Feasibility of basic transesophageal echocardiography in hemorrhagic shock: potential applications during resuscitative endovascular balloon occlusion of the aorta (REBOA). Cardiovascular Ultrasound. 16 (1), 12(2018).
  26. Kontouli, Z., et al. Resuscitation with centhaquin and 6% hydroxyethyl starch 130/0.4 improves survival in a swine model of hemorrhagic shock: a randomized experimental study. European Journal of Trauma and Emergency Surgery. , (2018).
  27. Nikolian, V. C., et al. Improvement of Blood-Brain Barrier Integrity in Traumatic Brain Injury and Hemorrhagic Shock Following Treatment With Valproic Acid and Fresh Frozen Plasma. Critical Care Medicine. 46 (1), e59-e66 (2018).
  28. Williams, T. K., et al. Endovascular variable aortic control (EVAC) versus resuscitative endovascular balloon occlusion of the aorta (REBOA) in a swine model of hemorrhage and ischemia reperfusion injury. The Journal of Trauma and Acute Care Surgery. 85 (3), 519-526 (2018).
  29. Aly, S. A., et al. Cerebral tissue oxygenation index and lactate at 24 hours postoperative predict survival and neurodevelopmental outcome after neonatal cardiac surgery. Congenital Heart Disease. 12 (2), 188-195 (2017).
  30. Sorensen, H. Near infrared spectroscopy evaluated cerebral oxygenation during anesthesia. The Danish Medical Journal. 63 (12), (2016).
  31. Cem, A., et al. Efficacy of near-infrared spectrometry for monitoring the cerebral effects of severe dilutional anemia. Heart Surgery Forum. 17 (3), E154-E159 (2014).
  32. Edmonds, H. L. Jr, Ganzel, B. L., Austin, E. H. 3rd Cerebral oximetry for cardiac and vascular surgery. Seminars in Cardiothoracic and Vascular Anesthesia. 8 (2), 147-166 (2004).
  33. Murkin, J. M., et al. Monitoring brain oxygen saturation during coronary bypass surgery: a randomized, prospective study. Anesthesia & Analgesia. 104 (1), 51-58 (2007).
  34. Hong, S. W., et al. Prediction of cognitive dysfunction and patients' outcome following valvular heart surgery and the role of cerebral oximetry. European Journal of Cardio-Thoracic Surgery. 33 (4), 560-565 (2008).
  35. Al Tayar, A., Abouelela, A., Mohiuddeen, K. Can the cerebral regional oxygen saturation be a perfusion parameter in shock? Journal of Critical Care. 38, 164-167 (2017).
  36. Torella, F., Cowley, R. D., Thorniley, M. S., McCollum, C. N. Regional tissue oxygenation during hemorrhage: can near infrared spectroscopy be used to monitor blood loss? Shock. 18 (5), 440-444 (2002).
  37. Yao, F. S., Tseng, C. C., Ho, C. Y., Levin, S. K., Illner, P. Cerebral oxygen desaturation is associated with early postoperative neuropsychological dysfunction in patients undergoing cardiac surgery. Journal of Cardiothoracic and Vascular Anesthesia. 18 (5), 552-558 (2004).
  38. Slater, J. P., et al. Cerebral oxygen desaturation predicts cognitive decline and longer hospital stay after cardiac surgery. The Annals of Thoracic Surgery. 87 (1), 36-44 (2009).
  39. Brodt, J., Vladinov, G., Castillo-Pedraza, C., Cooper, L., Maratea, E. Changes in cerebral oxygen saturation during transcatheter aortic valve replacement. Journal of Clinical Monitoring and Computing. 30 (5), 649-653 (2016).
  40. Yoshimura, A., et al. Altered cortical brain activity in end stage liver disease assessed by multi-channel near-infrared spectroscopy: Associations with delirium. Scintific Reports. 7 (1), 9258(2017).
  41. Douds, M. T., Straub, E. J., Kent, A. C., Bistrick, C. H., Sistino, J. J. A systematic review of cerebral oxygenation-monitoring devices in cardiac surgery. Perfusion. 29 (6), 545-552 (2014).
  42. Forman, E., et al. Noninvasive continuous cardiac output and cerebral perfusion monitoring in term infants with neonatal encephalopathy: assessment of feasibility and reliability. Pediatric Research. 82 (5), 789-795 (2017).
  43. Tweddell, J. S., Ghanayem, N. S., Hoffman, G. M. Pro: NIRS is " standard of care " for postoperative management. Seminars in Thoracic and Cardiovascular Surgery: Pediatric Cardiac Surgery Annual. 13 (1), 44-50 (2010).
  44. Lewis, C., Parulkar, S. D., Bebawy, J., Sherwani, S., Hogue, C. W. Cerebral Neuromonitoring During Cardiac Surgery: A Critical Appraisal With an Emphasis on Near-Infrared Spectroscopy. Journal of Cardiothoracic and Vascular Anesthesia. 32 (5), 2313-2322 (2018).
  45. Thudium, M., Heinze, I., Ellerkmann, R. K., Hilbert, T. Cerebral Function and Perfusion during Cardiopulmonary Bypass: A Plea for a Multimodal Monitoring Approach. Heart Surgery Forum. 2 (1), E028-E035 (2018).
  46. Putzer, G., et al. Monitoring of brain oxygenation during hypothermic CPR - A prospective porcine study. Resuscitation. 104, 1-5 (2016).
  47. Weenink, R. P., et al. Detection of cerebral arterial gas embolism using regional cerebral oxygen saturation, quantitative electroencephalography, and brain oxygen tension in the swine. Journal of Neuroscience Methods. 228, 79-85 (2014).
  48. Mader, M. M., et al. Evaluation of a New Multiparameter Brain Probe for Simultaneous Measurement of Brain Tissue Oxygenation, Cerebral Blood Flow, Intracranial Pressure, and Brain Temperature in a Porcine Model. Neurocritical Care. , (2018).
  49. Mikkelsen, M. L. G., et al. The influence of norepinephrine and phenylephrine on cerebral perfusion and oxygenation during propofol-remifentanil and propofol-remifentanil-dexmedetomidine anaesthesia in piglets. Acta Veterinaria Scandinavica. 60 (1), 8(2018).
  50. Nelskyla, A., et al. The effect of 50% compared to 100% inspired oxygen fraction on brain oxygenation and post cardiac arrest mitochondrial function in experimental cardiac arrest. Resuscitation. 116, 1-7 (2017).
  51. Klein, K. U., et al. Intraoperative monitoring of cerebral microcirculation and oxygenation--a feasibility study using a novel photo-spectrometric laser-Doppler flowmetry. European Journal of Trauma and Emergency Surgery. 22 (1), 38-45 (2010).
  52. Ziebart, A., et al. Pulmonary effects of expiratory-assisted small-lumen ventilation during upper airway obstruction in pigs. Anaesthesia. 70 (10), 1171-1179 (2015).
  53. Reisz, J. A., et al. All animals are equal but some animals are more equal than others: Plasma lactate and succinate in hemorrhagic shock-A comparison in rodents, swine, nonhuman primates, and injured patients. The Journal of Trauma and Acute. 84 (3), 537-541 (2018).
  54. Smith, D. M., Newhouse, M., Naziruddin, B., Kresie, L. Blood groups and transfusions in pigs. Xenotransplantation. 13 (3), 186-194 (2006).
  55. Boysen, S. R., Caulkett, N. A., Brookfield, C. E., Warren, A., Pang, J. M. Splenectomy Versus Sham Splenectomy in a Swine Model of Controlled Hemorrhagic. Shock. 46 (4), 439-446 (2016).
  56. Wade, C. E., Hannon, J. P. Confounding factors in the hemorrhage of conscious swine: a retrospective study of physical restraint, splenectomy, and hyperthermia. Circulatory Shock. 24 (3), 175-182 (1988).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

אינדוקציה הלם מדמם מתוקננת מונחה על ידי שחמצן מוחין וניטור הומודינמיקה מורחבת בחזירים
צור קשר
המלצה לספרייה

פרטיות

תנאי שימוש

מדיניות

2026 © זכויות יוצרים MyJoVE Corporation. כל הזכויות שמורות.