Method Article

שיטות מחקר לכלורופלסט: בדיקת מיקוד, מיקום ואינטראקציות של חלבוני כלורופלסטים

DOI:

10.3791/59935

August 15th, 2019

In This Article

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

כלורופלסטים הם האברונים שמגדירים את הצמחים1. יחד עם פונקציות מטבוליות, התפתחותיות ואיתות רבות נוספות, כלורופלסטים אחראים לפוטוסינתזה – התהליך שבו אנרגיית אור השמש מנוצלת להנעת פעילות תאית של החיים. כתוצאה מכך, כלורופלסטים חיוניים, לא רק לצמחים אלא גם למגוון מערכות אקולוגיות התלויות בצמחים, ולחקלאות. כלורופלסטים מורכבים מאלפי חלבונים שונים, שרובם מקודדים בגרעין ומיובאים מהציטוזול לפני שהם מנותבים פנימית לאחד ממספר תאים תוך-אברניים מובחניםבבירור 1. כדי להשיג הבנה מלאה יותר של פיתוח כלורופלסטים ותפקודיו, ולאפשר אסטרטגיות ביוטכנולוגיות הכוללות מניפולציה של כלורופלסטים המתמודדות עם אתגרים גלובליים הקשורים לביטחון תזונתי או ביואנרגיה, יהיה חיוני לקבוע את המיקוד, המיקום והאינטראקציות של חלבוני כלורופלסט חשובים. אוסף שיטות זה מתאר סט של טכניקות חשובות ומשלימות שניתן להשתמש בהן להשגת מטרות אלו. האוסף מתמקד בעיקר בצמח הדגם הנפוץ Arabidopsis thaliana (גרגר תלה), אך השיטות עשויות להיות מותאמות ומותאמות גם על אורגניזמים אחרים.

האוסף כולל תיאורים של שתי טכניקות שונות לניתוח ייבוא חלבונים מקודדים בגרעין לכלורופלסטים לאורך מעטפת הממברנה הכפולה. המאמר של לינג וג'רוויס2 מתאר שיטה חוץ-גופית שבה כלורופלסטים מבודדים מודגרים עם חלבון קדם-מזומן רדיואקטיבי. מידת ספיגת החלבון הקדום של הכלורופלסטים נקבעת על ידי ניטור שינוי גודל החלבון המתרחש כתוצאה מחיתוך פפטיד מעבר (רצף מוביל מכוון), באמצעות SDS-PAGE ודימות פוספור. השיטה המוצגת היא פיתוח של גישה ששימשה לחקר ייבוא חלבון כלורופלסט במבחנה במשך כמה עשורים, ומשלבת שלבים נוספים המאפשרים להעריך את תגובתיות מנגנון הייבוא לתנאי מאמץ שחווה הצמח5. מצד שני, המאמר של לי ואח' מתאר שיטת in vivo המבוססת על ביטוי זמני של חלבון קדם-כימרי, הנושא תחום חלבון פלואורסצנטי, בתאים שלמים (פרוטופלסטים). במבחן זה, ניתן לעקוב אחר היקף ייבוא חלבון כלורופלסט בשתי דרכים שונות: על ידי ניטור מיקום ועוצמת אות הפלואורסצנציה באמצעות מיקרוסקופיית פלואורסצנציה; ועל ידי ניתוח שינוי גודל החלבון שמתרחש כתוצאה מפיצול פפטידי מעבר באמצעות אימונובלוטינג. שתי השיטות הללו משלימות זו את זו, ויכולות להניב תוצאות משכנעות כאשר משמשות יחד במקביל5.

לאחר שחלבון מיובא דרך המעטפת אל הכלורופלסט והוסר מהפפטיד המעבר שלו, הוא עשוי לקבל את הצורה הסופית שלו בסטרומה (התא המימי הפנימי הראשי של האברון), או להפעיל אחד ממספר מסלולי מיון פנימיים1. כאתר של קומפלקסים פוטוסינתטיים נפוצים מאוד, ממברנות התילקואידים הן יעד מרכזי למיון פנימי כזה; למעשה, מיקוד חלבוני תילקואידים כולל מסלולים מרובים ושונים מבחינה מכנית. המאמר של אשר ואחרים.7 מתאר מגוון שיטות במבחנה שמאפשרות לחקור מסלולי טרנסלוקציה שונים של חלבוני תילקואידים. שיטות אלו כוללות דגירה של תילקואידים מבודדים עם חלבון מקדים מסומן רדיואקטיבי, ובמקרים מסוימים תמצית סטרומלית מרוכזת. המידה שבה החלבון נספג על ידי התילקואידים מנוטרת על ידי הערכת חיתוך האות המטרה, והגנה על החלבון מפני פרוטאז תרמליזין חיצוני, באמצעות SDS-PAGE ודימות פוספור. כמובן, התילקואידים אינם תת-התא היחיד של הכלורופלסטים, ולעיתים רצוי שתהיה אפשרות להעריך גם תאים אחרים. בהקשר זה, המאמר של Bouchnak ואחרים, חשוב במיוחד, שכן הוא מתאר שיטות לתת-פרקציה של כלורופלסטים ליצירת דגימות טהורות מאוד התואמות לממברנות המעטפת, הסטרומה והתילקואידים. לאחר ההכנה, ניתן לנתח שברים אלו באמצעות אימונובלוטינג ו/או ספקטרומטריית מסה, במטרה לספק שפע של מידע על מיקום תת-איברוני חלבוני כלורופלסט9.

לגבי ניתוח אינטראקציות חלבון-חלבון והרכבות מורכבות רב-חלבונים, מתוארות באוסף שתי שיטות שונות. המאמר של Shanmugabalaji ואחרים מציג שיטה לטיהור אפיניות של קומפלקסים מולטי-חלבונים של כלורופלסטים. טכניקה זו כוללת ניתוח של צמחים טרנסגניים המבטאים רכיב בקומפלקס הרלוונטי שתוכנן לשאת תג זיקה (תג טיהור זיקה טנדם, או תג TAP). היכולת של תג זה להיקשר חזק למטריצה אחרת אינרטית מנוצלת כחלק מאסטרטגיית הטיהור. השיטה המוצגת מתמקדת במיוחד בטיהור מנגנון ייבוא חלבוני כלורופלסטים (הכולל קומפלקסים מולטי-חלבונים הנקראים TOC ו-TIC המוטמעים בממברנותהמעטפת 1), אך בעיקרון ניתן להתאים אותה לחקר כל אחת מהרכבות המולטי-חלבונית האחרות הקיימות בכלורופלסטים11. המאמר של Rantala ואחרים מתאר גישה משלימה לאפיון מורכב המבוססת על אלקטרופורזה בתנאים טבעיים. הטכניקה, כפי שמוצגת כאן, כוללת שחרור קומפלקסים פוטוסינתטיים מתילקואידים מטוהרים באמצעות אבקה עדינה ולא יונית, ואחריה הפרדה באמצעות כחול טבעי (BN)-PAGE. הרזולוציה הראשונית של הקומפלקסים עשויה ללוות בממד שני של אלקטרופורזה בתנאי דנטורינג, וזה מאפשר המחשה של הרכיבים הבודדים של כל קומפלקס שזוהו בממד הראשון. כמו בשיטת TAP, ניתן להתאים בהצלחה את הגישה הטבעית הזו ללימוד קומפלקסים חלבונים אחרים בתוך האברון13,14. בכל אחת מהגישות, ניתן לנתח את הקומפלקסים המטוהרים במגוון דרכים, כולל באמצעות אימונובלוטינג וספקטרומטריית מסה.

יחד, המאמרים הכלולים באוסף שיטות זה מציגים סט עוצמתי של טכניקות משלימות, שבשילוב עם משאביםקיימים 15,16, עשויות לשמש לשיפור משמעותי של הבנתנו את ההיבטים השונים של ביוגנזה ותפקוד כלורופלסטים, במיוחד אלה הקשורים קשר הדוק לחרוטאום האברון. מכיוון שכלורופלסטים אחראים לרוב הייצור הפוטוסינתטי הראשוני ביבשה, ויש להם תפקידים חיוניים בתגובות הצמחים לסביבה (כולל לחצים ביוטיים ואביוטיים), האברונים המדהימים הללו יישארו בהכרח מוקד מרכזי למחקר יסודי ויישומי ברחבי העולם בשנים רבות.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

כלורופלסטים הם האברונים שמגדירים את הצמחים1. יחד עם פונקציות מטבוליות, התפתחותיות ואיתות רבות נוספות, כלורופלסטים אחראים לפוטוסינתזה – התהליך שבו אנרגיית אור השמש מנוצלת להנעת פעילות תאית של החיים. כתוצאה מכך, כלורופלסטים חיוניים, לא רק לצמחים אלא גם למגוון מערכות אקולוגיות התלויות בצמחים, ולחקלאות. כלורופלסטים מורכבים מאלפי חלבונים שונים, שרובם מקודדים בגרעין ומיובאים מהציטוזול לפני שהם מנותבים פנימית לאחד ממספר תאים תוך-אברניים מובחניםבבירור 1. כדי להשיג הבנה מלאה יותר של פיתוח כלורופלסטים ותפקודיו, ולאפשר אסטרטגיות ביוטכנולוגיות הכוללות מניפולציה של כלורופלסטים המתמודדות עם אתגרים גלובליים הקשורים לביטחון תזונתי או ביואנרגיה, יהיה חיוני לקבוע את המיקוד, המיקום והאינטראקציות של חלבוני כלורופלסט חשובים. אוסף שיטות זה מתאר סט של טכניקות חשובות ומשלימות שניתן להשתמש בהן להשגת מטרות אלו. האוסף מתמקד בעיקר בצמח הדגם הנפוץ Arabidopsis thaliana (גרגר תלה), אך השיטות עשויות להיות מותאמות ומותאמות גם על אורגניזמים אחרים.

האוסף כולל תיאורים של שתי טכניקות שונות לניתוח ייבוא חלבונים מקודדים בגרעין לכלורופלסטים לאורך מעטפת הממברנה הכפולה. המאמר של לינג וג'רוויס2 מתאר שיטה חוץ-גופית שבה כלורופלסטים מבודדים מודגרים עם חלבון קדם-מזומן רדיואקטיבי. מידת ספיגת החלבון הקדום של הכלורופלסטים נקבעת על ידי ניטור שינוי גודל החלבון המתרחש כתוצאה מחיתוך פפטיד מעבר (רצף מוביל מכוון), באמצעות SDS-PAGE ודימות פוספור. השיטה המוצגת היא פיתוח של גישה ששימשה לחקר ייבוא חלבון כלורופלסט במבחנה במשך כמה עשורים, ומשלבת שלבים נוספים המאפשרים להעריך את תגובתיות מנגנון הייבוא לתנאי מאמץ שחווה הצמח5. מצד שני, המאמר של לי ואח' מתאר שיטת in vivo המבוססת על ביטוי זמני של חלבון קדם-כימרי, הנושא תחום חלבון פלואורסצנטי, בתאים שלמים (פרוטופלסטים). במבחן זה, ניתן לעקוב אחר היקף ייבוא חלבון כלורופלסט בשתי דרכים שונות: על ידי ניטור מיקום ועוצמת אות הפלואורסצנציה באמצעות מיקרוסקופיית פלואורסצנציה; ועל ידי ניתוח שינוי גודל החלבון שמתרחש כתוצאה מפיצול פפטידי מעבר באמצעות אימונובלוטינג. שתי השיטות הללו משלימות זו את זו, ויכולות להניב תוצאות משכנעות כאשר משמשות יחד במקביל5.

לאחר שחלבון מיובא דרך המעטפת אל הכלורופלסט והוסר מהפפטיד המעבר שלו, הוא עשוי לקבל את הצורה הסופית שלו בסטרומה (התא המימי הפנימי הראשי של האברון), או להפעיל אחד ממספר מסלולי מיון פנימיים1. כאתר של קומפלקסים פוטוסינתטיים נפוצים מאוד, ממברנות התילקואידים הן יעד מרכזי למיון פנימי כזה; למעשה, מיקוד חלבוני תילקואידים כולל מסלולים מרובים ושונים מבחינה מכנית. המאמר של אשר ואחרים.7 מתאר מגוון שיטות במבחנה שמאפשרות לחקור מסלולי טרנסלוקציה שונים של חלבוני תילקואידים. שיטות אלו כוללות דגירה של תילקואידים מבודדים עם חלבון מקדים מסומן רדיואקטיבי, ובמקרים מסוימים תמצית סטרומלית מרוכזת. המידה שבה החלבון נספג על ידי התילקואידים מנוטרת על ידי הערכת חיתוך האות המטרה, והגנה על החלבון מפני פרוטאז תרמליזין חיצוני, באמצעות SDS-PAGE ודימות פוספור. כמובן, התילקואידים אינם תת-התא היחיד של הכלורופלסטים, ולעיתים רצוי שתהיה אפשרות להעריך גם תאים אחרים. בהקשר זה, המאמר של Bouchnak ואחרים, חשוב במיוחד, שכן הוא מתאר שיטות לתת-פרקציה של כלורופלסטים ליצירת דגימות טהורות מאוד התואמות לממברנות המעטפת, הסטרומה והתילקואידים. לאחר ההכנה, ניתן לנתח שברים אלו באמצעות אימונובלוטינג ו/או ספקטרומטריית מסה, במטרה לספק שפע של מידע על מיקום תת-איברוני חלבוני כלורופלסט9.

לגבי ניתוח אינטראקציות חלבון-חלבון והרכבות מורכבות רב-חלבונים, מתוארות באוסף שתי שיטות שונות. המאמר של Shanmugabalaji ואחרים מציג שיטה לטיהור אפיניות של קומפלקסים מולטי-חלבונים של כלורופלסטים. טכניקה זו כוללת ניתוח של צמחים טרנסגניים המבטאים רכיב בקומפלקס הרלוונטי שתוכנן לשאת תג זיקה (תג טיהור זיקה טנדם, או תג TAP). היכולת של תג זה להיקשר חזק למטריצה אחרת אינרטית מנוצלת כחלק מאסטרטגיית הטיהור. השיטה המוצגת מתמקדת במיוחד בטיהור מנגנון ייבוא חלבוני כלורופלסטים (הכולל קומפלקסים מולטי-חלבונים הנקראים TOC ו-TIC המוטמעים בממברנותהמעטפת 1), אך בעיקרון ניתן להתאים אותה לחקר כל אחת מהרכבות המולטי-חלבונית האחרות הקיימות בכלורופלסטים11. המאמר של Rantala ואחרים מתאר גישה משלימה לאפיון מורכב המבוססת על אלקטרופורזה בתנאים טבעיים. הטכניקה, כפי שמוצגת כאן, כוללת שחרור קומפלקסים פוטוסינתטיים מתילקואידים מטוהרים באמצעות אבקה עדינה ולא יונית, ואחריה הפרדה באמצעות כחול טבעי (BN)-PAGE. הרזולוציה הראשונית של הקומפלקסים עשויה ללוות בממד שני של אלקטרופורזה בתנאי דנטורינג, וזה מאפשר המחשה של הרכיבים הבודדים של כל קומפלקס שזוהו בממד הראשון. כמו בשיטת TAP, ניתן להתאים בהצלחה את הגישה הטבעית הזו ללימוד קומפלקסים חלבונים אחרים בתוך האברון13,14. בכל אחת מהגישות, ניתן לנתח את הקומפלקסים המטוהרים במגוון דרכים, כולל באמצעות אימונובלוטינג וספקטרומטריית מסה.

יחד, המאמרים הכלולים באוסף שיטות זה מציגים סט עוצמתי של טכניקות משלימות, שבשילוב עם משאביםקיימים 15,16, עשויות לשמש לשיפור משמעותי של הבנתנו את ההיבטים השונים של ביוגנזה ותפקוד כלורופלסטים, במיוחד אלה הקשורים קשר הדוק לחרוטאום האברון. מכיוון שכלורופלסטים אחראים לרוב הייצור הפוטוסינתטי הראשוני ביבשה, ויש להם תפקידים חיוניים בתגובות הצמחים לסביבה (כולל לחצים ביוטיים ואביוטיים), האברונים המדהימים הללו יישארו בהכרח מוקד מרכזי למחקר יסודי ויישומי ברחבי העולם בשנים רבות.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

היישום המסחרי של מחקר המחבר מכוסה בבקשות פטנט GB1803833.1, GB1803834.9, GB1815206.6 ו-US 16/643507.

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

המחקר במעבדתו של המחבר ממומן על ידי מועצת המחקר לביוטכנולוגיה ומדעי החיים (BBSRC; מקורות מענקים BB/N006372/1, BB/R005591/1, BB/R009333/1, BB/R016984/1).

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Biogenesis and homeostasis of chloroplasts and other plastids. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 14 (12), 787-802 (2013).">Jarvis, P., López-Juez, E. Biogenesis and homeostasis of chloroplasts and other plastids. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 14 (12), 787-802 (2013).
  2. Analysis of protein import into chloroplasts isolated from stressed plants. Journal of Visualized Experiments. (117), (2016).">Ling, Q., Jarvis, P. Analysis of protein import into chloroplasts isolated from stressed plants. Journal of Visualized Experiments. (117), (2016).
  3. A simple method for isolating import-competent Arabidopsis chloroplasts. FEBS Letters. 529 (2-3), 215-220 (2002).">Aronsson, H., Jarvis, P. A simple method for isolating import-competent Arabidopsis chloroplasts. FEBS Letters. 529 (2-3), 215-220 (2002).
  4. A method for isolating a high yield of Arabidopsis chloroplasts capable of efficient import of precursor proteins. Plant Journal. 27 (1), 59-65 (2001).">Fitzpatrick, L. M., Keegstra, K. A method for isolating a high yield of Arabidopsis chloroplasts capable of efficient import of precursor proteins. Plant Journal. 27 (1), 59-65 (2001).
  5. Regulation of chloroplast protein import by the ubiquitin E3 ligase SP1 is important for stress tolerance in plants. Current Biology. 25 (19), 2527-2534 (2015).">Ling, Q., Jarvis, P. Regulation of chloroplast protein import by the ubiquitin E3 ligase SP1 is important for stress tolerance in plants. Current Biology. 25 (19), 2527-2534 (2015).
  6. Studying protein import into chloroplasts using protoplasts. Journal of Visualized Experiments. (142), (2018).">Lee, J., Kang, H., Hwang, I. Studying protein import into chloroplasts using protoplasts. Journal of Visualized Experiments. (142), (2018).
  7. Isolation of physiologically active thylakoids and their use in energy-dependent protein transport assays. Journal of Visualized Experiments. (139), (2018).">Asher, A., Ganesan, I., Klasek, L., Theg, S. M. Isolation of physiologically active thylakoids and their use in energy-dependent protein transport assays. Journal of Visualized Experiments. (139), (2018).
  8. Preparation of chloroplast sub-compartments from Arabidopsis for the analysis of protein Localization by immunoblotting or proteomics. Journal of Visualized Experiments. (140), (2018).">Bouchnak, I., Moyet, L., Salvi, D., Kuntz, M., Rolland, N. Preparation of chloroplast sub-compartments from Arabidopsis for the analysis of protein Localization by immunoblotting or proteomics. Journal of Visualized Experiments. (140), (2018).
  9. AT_CHLORO: the first step when looking for information about subplastidial localization of proteins. Methods in Molecular Biology. 1829, 395-406 (2018).">Salvi, D., et al. AT_CHLORO: the first step when looking for information about subplastidial localization of proteins. Methods in Molecular Biology. 1829, 395-406 (2018).
  10. Affinity purification of chloroplast translocon protein complexes using the TAP tag. Journal of Visualized Experiments. (141), (2018).">Shanmugabalaji, V., Douet, V., Agne, B., Kessler, F. Affinity purification of chloroplast translocon protein complexes using the TAP tag. Journal of Visualized Experiments. (141), (2018).
  11. A Ycf2-FtsHi heteromeric AAA-ATPase complex is required for chloroplast protein import. Plant Cell. 30 (11), 2677-2703 (2018).">Kikuchi, S., et al. A Ycf2-FtsHi heteromeric AAA-ATPase complex is required for chloroplast protein import. Plant Cell. 30 (11), 2677-2703 (2018).
  12. Analysis of thylakoid membrane protein complexes by blue native gel electrophoresis. Journal of Visualized Experiments. (139), (2018).">Rantala, M., Paakkarinen, V., Aro, E. M. Analysis of thylakoid membrane protein complexes by blue native gel electrophoresis. Journal of Visualized Experiments. (139), (2018).
  13. Characterization of the preprotein translocon at the outer envelope membrane of chloroplasts by blue native PAGE. Plant and Cell Physiology. 47 (3), 363-371 (2006).">Kikuchi, S., Hirohashi, T., Nakai, M. Characterization of the preprotein translocon at the outer envelope membrane of chloroplasts by blue native PAGE. Plant and Cell Physiology. 47 (3), 363-371 (2006).
  14. Stable megadalton TOC-TIC supercomplexes as major mediators of protein import into chloroplasts. Plant Journal. 92 (2), 178-188 (2017).">Chen, L. J., Li, H. M. Stable megadalton TOC-TIC supercomplexes as major mediators of protein import into chloroplasts. Plant Journal. 92 (2), 178-188 (2017).
  15. Methods in Molecular Biology. JM, W. alker 775, Humana Press. New York City. 432(2011).">Jarvis, R. P. Methods in Molecular Biology. JM, W. alker 775, Humana Press. New York City. 432(2011).
  16. Methods in Molecular Biology. JM, W. alker 774, Humana Press. New York City. 374(2011).">Jarvis, R. P. Methods in Molecular Biology. JM, W. alker 774, Humana Press. New York City. 374(2011).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Chloroplast Protein ImportProtein LocalizationProtein InteractionsThylakoid MembranesSubcellular FractionationAffinity PurificationBlue Native PAGEFluorescence MicroscopyImmunoblottingSDS PAGE

Related Articles