הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

לנטינגיו CRISPR/Cas9 בתיווך הגנום עריכה לחקר התאים המטפאות במודלים למחלות

11.6K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/59977

⸱

3 באוקטובר 2019

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Hematovascular Biology Center, Robert M. Berne Cardiovascular Research Center, University of Virginia School of Medicine

במאמר זה

סיכום

תיאר הם פרוטוקולים עבור עריכת הגנום יעיל מאוד של גזע המטפאות מורקיים ומחולל קדמון (HSPC) על ידי מערכת CRISPR/Cas9 כדי לפתח במהירות מערכות מודל העכבר עם המטפאות ספציפיים שינויים גנים.

תקציר

מניפולציה גנים בתאי גזע המטבטיים באמצעות גישות הטרנסגנזה קונבנציונאלי יכול לגזול זמן רב, יקר, ומאתגר. נהנה מהתקדמות בטכנולוגיה לעריכת הגנום, מערכות משלוח וירוסים-מתווכת טרנסגנטית, שיטה יעילה וחסכונית מתוארת כאן כי קובע עכברים שבו הגנים מניפולציות במיוחד בתאי גזע המטפאות. השימוש בווירוסים משמשים כדי להפוך את Cas9-הביטוי השושלת-שלילי בתאי מח עצם עם מדריך RNA (gRNA) מיקוד גנים ספציפיים גן כתבת הקרינה האדומה (RFP), אז תאים אלה הם מושתלים לתוך לC57BL/6 עכברים. עכברים המושתלים עם הבעת וירוס לבטא gRNA לא המיקוד משמשים כפקדים. בתאום מראש של תאי גזע המטבטיים מוערכים על-ידי ניתוח ציטומטלי של דם היקפי של RFP-חיוביים. באמצעות שיטה זו, ~ 90% התמרה של תאים מיאלואיד ו ~ 70% של תאי הלימפה ב 4 שבועות לאחר ההשתלה ניתן להשיג. דנ א גנומית מבודדת מתאי דם RFP-חיוביים, וחלקים של ה-DNA באתר ממוקד מוגברת על ידי PCR כדי לאמת את עריכת הגנום. פרוטוקול זה מספק הערכה של תפוקה גבוהה של גנים המטפאות-רגולציה וניתן להרחיב למגוון מודלים של מחלת העכבר עם מעורבות תא המטפאות.

מבוא

מחקרים רבים ב המטולוגיה ואימונולוגיה להסתמך על הזמינות של עכברים מהונדסים גנטית, כולל עכברים קונבנציונאלי ומותנה/להקיש החוצה להשתמש בעכבר מערכת ספציפיים מנהלי המערכת כגון Mx1-היצור, ו-מונה, ואחרים . אחת,שתיים, שלוש,ארבע,חמש אסטרטגיות אלה דורשות הקמתה של זנים העכבר החדש, אשר יכול להיות זמן רב והורדה פיננסית. בעוד ההתקדמות המהפכנית בטכנולוגיית עריכת הגנום אפשרו את הדור של זנים העכבר החדש כמה ש3-4 חודשים עם המומחיות הטכנית המתאימה6,7,8,9 , הרבה יותר זמן נדרש כדי להגביר את מושבת העכבר לפני ניסויים רודפים. בנוסף, הליכים אלה יקרים. לדוגמה, מעבדת ג'קסון מפרטת את המחיר הנוכחי של שירותי הדור של עכברים שיצאו לשלב ב-$16,845 לכל מאמץ (כמו בדצמבר 2018). לכן, שיטות חסכוניות יותר ויעילות יותר מאשר גישות קונבנציונאלי מורגניים הינה יתרון רב יותר.

באשכולות באופן קבוע הכולל מרווח קצר הכולל/החלבון CRISPR המשויך החלבונים 9 (CRISPR/Cas9) הטכנולוגיה הובילה לפיתוח כלים חדשים עבור מהירה ויעילה RNA מבוססי, רצף ספציפי הגנום עריכה. התגלתה במקור כמנגנון החיסון בקטריאלי אדפטיבית להרוס את ה-DNA הפתוגן הפולש, crispr/Cas9 מערכת שימש ככלי כדי להגדיל את האפקטיביות של עריכת הגנום בתאים איקריוטית ודגמי בעלי חיים. מספר גישות המועסקים לשדר CRISPR/Cas9 מכונות לתאי גזע המטפאות (כלומר, אלקטרופורציה, נוקלאופיקציה, ליפופה, משלוח נגיפי, ועוד).

כאן, מערכת הנגיף מועסק כדי לשנות את התאים בשל יכולתה להדביק ביעילות Cas9-הבעת הפנים מורה בתאי גזע וחבילה יחד מדריך RNA ביטוי בונה, היזמים, רצפי רגולציה, וגנים לקודד חלבונים של כתב פלורסנט (כלומר, GFP, RFP). באמצעות שיטה זו, vivo gene לשעבר לעריכה של תאי גזע העכבר המטפאות הושג, ואחריו החוקה מוצלחת של מח עצם בעכברים לקרינה לעבר לבידוד10. וקטור לווירוס מועסק עבור מחקר זה מבטא את Cas9 ו GFP הכתב גנים מן היזם ליבה משותפת EF1a עם הכניסה הפנימי ריבוזומזיט במעלה מהגן העיתונאי. רצף ה-RNA המנחה מתבטא מיזם U6 נפרד. מערכת זו משמשת לאחר מכן כדי ליצור מוטציות הכניסה והמחיקה של המועמד השבטיים גנים מנהלי התקן Tet2 ו Dnmt3a10. עם זאת, יעילות התמרה באמצעות שיטה זו נמוכה יחסית (~ 5%-10%) בשל גודל גדול של הוספת וקטור (13 kbp) כי מגביל את היעילות התמרה ומפחית סיכוייו וירוס במהלך הייצור.

במחקרים אחרים, זה הוכח כי גודל גדול יותר של רנ א ויראלי שלילית משפיע על ייצור וירוס ויעילות התמרה. לדוגמה, גידול של 1 kb בגודל ההכנסה מדווח כדי להקטין את ייצור וירוסים על-ידי ~ 50%, ואת יעילות התמרה תפחית ליותר מ 50% בתאי גזע המטפאות11. לכן, זה יתרון כדי להקטין את הגודל של הכנס ויראלי ככל האפשר כדי לשפר את היעילות של המערכת.

הגרעון הזה יכול להתגבר על ידי שימוש בעכברים Cas9 טרנסגניים, שבו החלבון Cas9 מתבטא בצורה חוקתית או inducible בדרך12. העכברים כמובן/Cas9 טוק-in העכבר מבטא Cas9 endonuclease ו-EGFP מן היזם הקאג ב Rosa26 לוקוס באופן מקום. Thus, בונה עם sgRNA תחת השליטה של היזם U6 ו RFP גן העיתונאי תחת השליטה של היזם הליבה EF1a ניתן להעביר באמצעות וקטור הווירוס כדי להשיג את עריכת הגנום. בעזרת מערכת זו, הגנים של תאי גזע המטבטיים נערכו בהצלחה, מראה היעילות של ~ 90% התמרה. כך, פרוטוקול זה מספק שיטה מהירה ואפקטיבית ליצור עכברים שבו מוטציות גנים ממוקדות מוצגים לתוך המערכת המטתית. בעוד המעבדה שלנו היא בעיקר באמצעות סוג זה של טכנולוגיה כדי ללמוד את התפקיד של המטופאות שבטיים בתהליכי מחלות לב וכלי דם13,14,15, זה חל גם על מחקרים של המטולוגית ממאירות16. יתר על כן, פרוטוקול זה ניתן להרחיב לניתוח של איך מוטציות DNA ב HSPC השפעה מחלות אחרות או תהליכים התפתחותיים במערכת המטפאות.

כדי להקים מערכת חזקה וקטורית וקטורי, סיכוייו גבוהה ויראלי מניות ותנאים אופטימיזציה עבור התמרה והשתלת תאים המטפאות נדרשים. בפרוטוקול, הוראות מסופקות על הכנת מניות סיכוייו גבוהה ויראלי בסעיף 1, אופטימיזציה של תנאי התרבות של תאי גזע המטפי מורטין בסעיף 2, שיטות השתלת מח עצם בסעיף 3, והערכה בתיאום מקטע 4.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

כל ההליכים הכרוכים בנושאי בעלי חיים אושרו על-ידי הוועדה המוסדית לטיפול בבעלי חיים (IACUC) באוניברסיטת וירג.

1. יצירה וטיהור של חלקיקי וירוס

הערה: לאחר חלקיקי וירוס המכילים את מדריך מיטבי RNA ניתן לייצר על ידי הפרוטוקולים המפורטים המסופקים על ידי Addgene: < https://media.addgene.org/cms/files/Zhang_lab_LentiCRISPR_library_protocol.pdf) >. שיטות מיטוב להכנה גבוהה ולאחסון של וירוסים, נדונים במקום אחר17,18. בקצרה, הנגיף מופק על ידי שיתוף משותף של וקטור בינוני וקטורי psPAX2, ו-pMD2. G לתוך התאים HEK 293T. התרבות הסופרנטאנט נאסף ב-48 h לאחר ההעברה ומרוכז על ידי מעבר-החצייה. סיכוייו של הנגיף נקבע על-ידי שיטת המבוסס על qpcr הזמינה באופן מסחרי. הליך זה צריך להתבצע בקבינט השני של מחלקת הבטיחות.

  1. הכינו פתרון 1:200 של קולגן (0.0005%) ב-1x PBS.
  2. מעיל לוחית 6 היטב עם פתרון קולגן ו דגירה ב 37 ° צ', 5% CO2 עבור ~ 30 דקות.
  3. 293T בתאי הזרע בצפיפות של 1 x 106 תאים לכל טוב ומודטה ב 37 ° c, 5% CO2 עבור ~ 2 h.
  4. כדי להכין את התערובת של שלוש מפלסי הפלסטיק עבור אחד היטב, לשלב 0.9 μg של וקטור לווירוס, 0.6 μg של psPAX2, ו 0.3 μg של pMD2. G, לאחר מכן להשיג נפח כולל של 10 μL על ידי הוספת מים מיובים. התאם סכומים בהתאם למספר הבארות. הכמות והיחס של כל פלסמיד צריך להיות ממוטבת יותר כדי להתאים את צורכי החוקרים.
  5. בקפידה להוסיף 50 μL של 1 x PBS ו 5 μL של מדולל פיי מקסימום (1.0 mg/mL) כדי התערובת הפלבאמצע ו הדגירה של 15 דקות בטמפרטורת החדר (RT) (טבלה 1).
  6. הוסף 1 mL של DMEM לתערובת.
  7. מוסיף מדיה מ 6 צלחת הבאר, להוסיף 1 מ ל של תערובת פלביניים, ו דגירה ב 37 ° צ', 5% CO2 עבור ~ 3 h.
  8. החלף את המדיה עם 2 מ ל של DMEM טרי ו-הדגירה ב 37 ° c, 5% CO2 עבור 24 שעות.
  9. הוסף 1 מ ל של DMEM טרי ו-הדגירה ב 37 ° צ', 5% CO2 עבור 24 שעות נוספות (הזמן הדגירה הכולל הוא 48 h).
  10. העבר את התרבות supernatant לצינור 50 mL ו צנטריפוגה ב 3,000 x g עבור 15 דקות כדי להסיר את כל התאים צף בחינם.
  11. סנן את הסופרנטנט באמצעות מסנן של 0.45 יקרומטר.
  12. העבר את הפילטרט לצינורות צנטריפוגה פוליפרופילן.
  13. Ultracentrifuge ב 4 ° צ' ו 72,100 x g ב rמקסימום עבור 3 h.
  14. . משאיר מאחורי הגלולה הלבנה
  15. השהה מחדש את הגלולה עם 100 μL של מדיום הרחבת תא המטפאות ללא האנטנה.
  16. לשמור על 10 μl סדרת מחלקים כדי למדוד את סיכוייו נגיפי ולאחסן את כל סדרת מחלקים הנותרים בשעה-80 ° צ' עד הנדרש.
  17. Titrate את הווירוס עם שיטת qPCR מבוסס על פי הוראות היצרן באמצעות 10 μL ויראלי ויראלית.

2. בידוד והתמרה של שושלת היוחסין-תאים שליליים מתוך מח עצם העכבר (איור 1A)

הערה: בדרך כלל, כדי לבודד מספיק תאים, זוגות של הטיה, femurs, ו humeri הם קוצרים מכל עכבר. ניתן גם לקצור את עצמות האגן והשדרה כמקור לתאים שליליים.

  1. בידוד תאי מח עצם
    1. המתת חסד 8-10 שבוע הזכר CRISPR/Cas9 טוק-בעכברים על ידי 5% isof ane ואחריו פריקה צוואר הרחם, ואז לחטא את העור שלהם עם 70% אתנול.
    2. באמצעות ניתוח מספריים, לעשות חתך רוחבי בעור ממש מתחת לצלעות ולקלף את העור בשני הכיוונים כדי לחשוף את הרגליים והזרועות.
    3. הפרד בזהירות את הגפיים התחתונות מעצם הירך על ידי הפסקת המפרק הירך. חותכים לאורך ראש הירך כדי להסיר את עצם הירך לחלוטין מהמותן. לנתק את הברך ולחתוך במפרק כדי להפריד את עצם הירך ואת השוקה, תוך שמירה על עצמות העצם ללא פגע. להסיר את מפרק הקרסול ולקלף את הרגל ואת השריר המיותר.
    4. משתמש בחתך מספריים, לחתוך מעבר לכתף כדי לנתק את הגפיים העליונות. וחותכים במפרק המרפק. כדי לקצור את עצם הזרוע
    5. השתמש במגבונים תאית-סיבים כדי להסיר בזהירות את השרירים מן העצמות, הטייה, ו humeri. נקוט באמצעי זהירות נוספים כדי להבטיח שהעצמות לא ישברו במהלך תהליך זה.
    6. 50 מניחים את העצמות הבודדות לתוך צינורית RPMI mL בעלת מיקום מקומי, ומניחים על קרח.
      הערה: יש לבצע את השלבים הבאים בארון ברמה של בטיחות II.
    7. להעביר את העצמות לתוך מאכל סטרילי, 100 מ"מ התרבות.
    8. אחוז את העצם עם מלקחיים קהה, ושימוש במספריים לבתר, לחתוך בזהירות את שני האפיסים.
      הערה: חיתוך מספיק יוביל לריקון לא שלם של מח עצם, בעוד חיתוך אגרסיבי מדי יגרום לאובדן תאים.
    9. מילוי מזרק של 10 מ ל עם קרח קר RPMI, ושימוש 22 גרם מחט, לשטוף את מח העצם מן הפיר לתוך צלחת חדשה 100 mm התרבות.
      הערה: עצמות יהפכו ללבנים ושקופים אם פיר העצם התרוקן היטב. אם לא, לחתוך מחדש את קצות העצם ולשטוף שוב.
    10. לאחר כל מח העצם נאסף, לעשות השעיה תא יחיד על ידי העברת מח העצם מספר פעמים דרך מזרק 10 מ ל עם מחט 18 G. חזור על 10x כדי להבטיח השעיה לתא בודד.
    11. מסנן תא מושעה דרך מסננת תא 70 יקרומטר לתוך צינורית חרוט 50 mL.
    12. צנטריפוגה ב 310 x g עבור 10 דקות ב 4 ° c.
    13. לאחר מכן, השאר את הסופרנטאנט והשהה מחדש את כדוריות התאים בנפח מתאים של מאגר הפרדות ממוטב עבור תהליך הפרדת התא הבא.
  2. בידוד והתמרה וירוס של תאים שליליים
    הערה: השושלת העכבר-תאים שליליים מבודדים במח העצם של עכברים Cas9 טרנסגניים3, או זנים אחרים של עכברים, באמצעות ערכת המחסור השושלת על פי הוראות היצרן. בדרך כלל, שלילי-תאים שליליים חשבון עבור 2%-5% של התאים השלמה של מח עצם, ואת הטוהר הוא בדרך כלל גדול יותר מ 90% בעקבות בידוד. השושלת המבודדת-תאים שליליים הם מתורבתים ללא סרום-בינונית הרחבת התא בינוני שיושלם עם 20 ng/mL רקומביננטי murine TPO ו 50 ng/mL רקומביננטי murine SCF, אז התמרה עם וקטור לווירוס עבור 16 h בריבוי של זיהום (מע) = 100.
    1. לבידוד תאים שליליים של השושלת, השתמש בערכת המחסור בתא היוחסין לפי הוראות היצרן.
    2. לאחר בידוד להשהות את שושלת היוחסין-תאים שליליים 1 מ ל של סרום ללא ההטיות הרחבת התא בינוני.
    3. הזרע את התאים לתוך 6 צלחת הבאר בצפיפות של 1.5 x 106 תאים/mL (5 x 105 השושלת-תאים שליליים/עכבר.)
    4. הוסף רקומביננטי murine TPO ו SCF לתוך בארות בריכוזים הסופיים של 20 ng/mL ו 50 ng/mL, בהתאמה.
    5. התאים טרום הדגירה ב 37 ° צ' ב 5% CO2 עבור ~ 2 h.
    6. הוסף להוסיף וירוס ב-מוי = 100, 4 μg/mL polybrene, ו פניצילין/סטרפטומיצין כדי בארות ו-דגירה ב 37 ° צ', 5% CO2 עבור 16-20 h (איור 1b).
    7. ביום למחרת, לאסוף את התאים המתמרים לתוך 15 מ"ל שפופרת חרוטי ו צנטריפוגה ב 300 g עבור 10 דקות.
    8. והשהה מחדש את הגלולה ב-200 μL של RPMI לכל עכבר. שמור את התאים ב-RT עד השתלת לתוך עכברים (סעיף 3).

3. השתלת תאים שעברו התמרה לעכברים שעברו הקרינה

  1. ביום של השתלת מח עצם, הנמען במקום עכברים לתוך כלוב עוגה של שמונה פרוסות ולחשוף אותם לשתי מינונים של הקרנה הגוף כולו (550 Rad/מינון, סה כ המינון = 1100 Rad), עם כ 4 h בין הפעלה הקרנה.
  2. לאחר המפגש ההקרנה השני, הכנס התמרה שושלת-תאים שליליים לכל עכבר הנמען מורדם דרך מקלעת רטרו מסלולית וריד (200 μL בסך הכל) באמצעות מזרק אינסולין (איור 1C).
  3. לאחר הקרנה, עכברים צריכים להיות שוכנו בכלובים מעוקר וסיפק עם תזונה רכה ושתיית מים שנוספו עם אנטיביוטיקה עבור 14 ד.
  4. ב 3-4 שבועות לאחר השתלת מח עצם, לנתח דם היקפי כדי לבדוק את החרט של תאי תורם התמרה (סעיף 4).

4. הערכת כימנות של דם היקפי

  1. עכברים מורדם עם 5% isofלינה ולקבל דגימת דם מווריד מסלולית רטרו באמצעות צינורות קפילר, ולאסוף אותו לצינורות K2edta (הנפח בצינור נימי אחד מספיקה לצורך הבאות).
  2. העברה 20 μL של דם מצינורות K2EDTA לתוך 5 מ"ל התחתון עגול פוליסטירן מבחנות, ולשים על קרח.
  3. הוסף 1.5 mL של מאגר לפירוק RBC כדי לסדר כדוריות דם אדומות. מודקון למשך 5 דקות על הקרח.
  4. כדי לנטרל את מאגר הליזה, לשטוף דגימות עם מאגר FACS (1.5 mL/לדוגמה).
  5. צנטריפוגה ב 609 x g ב rמקסימום עבור 5 דקות ב 4 ° c. . מחק את הסופרנטאנט
  6. מודלת את התאים עם קוקטייל של נוגדנים חד שבטיים (מדולל ב-100 μL FACS מאגר/דגימה) ב RT עבור 20 דקות בחושך. רשימה מלאה של נוגדנים מסופקת בסעיף החומרים לעיל.
  7. שטוף את התאים פעם אחת עם מאגר FACS (2 mL/דוגמה). צנטריפוגה ב 609 x g ב rmax (1,800 rpm) עבור 5 דקות ב 4 ° c. . מחק את הסופרנטנט לחלוטין
  8. תקן את התאים עם פאראפורמלדהיד המכיל מאגר קיבעון (100 μL/tube) עבור 10 דקות ב-4 ° c.
  9. שטוף את התאים פעם אחת עם מאגר FACS (3 מ ל/דגימה). צנטריפוגה ב 609 x g ב rmax (1,800 rpm) עבור 5 דקות ב 4 ° c. . מחק את הסופרנטנט לחלוטין
  10. להשעות את הגלולה ב 400 μL של מאגר FACS.
  11. שמרו את הדגימות ב -4 ° צ' עד לניתוח על ידי שטהזרימה.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

באמצעות הפרוטוקול המתואר לעיל, כ 0.8-1.0 x 108 תאים מח עצם לכל עכבר הושגו. מספר שושלת היוחסין-תאים שליליים שאנו משיגים הוא כ 3 x 106 תאים לכל עכבר. בדרך כלל, התשואה של שושלת מח העצם-תאים שליליים הוא 4%-5% מזה של תאים גרעיניים מח העצם הכולל.

כימריזם של תאי התמרה (RFP-חיובי) מוערך על ידי הסיילנסות של דם היקפי (איור 2A,B). בלאד מבודד מווריד רטרו-מסלולית וסמנים מתא...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

היתרון של פרוטוקול זה הוא יצירת מודלים בעלי חיים מחסה מוטציות ספציפיות בתאי המטפאות באופן מהיר וחסכוני מאוד בהשוואה לגישות העכבר הקונבנציונלי הטרנסגניים. נמצא כי מתודולוגיה זו מאפשרת את הדור של עכברים עם תא המטפאות מניפולציות גנים בתוך חודש 1. בפרוטוקול זה קיימים מספר שלבים קריטיים המחייבים שיקולים נוספים.

הקרנת רצף gRNA

מומלץ לבדוק gRNAs ב מבחנה כדי להעריך את יעילות העריכה לפני התנהלות בניסויים vivo. היעילות של gRNAs נבדק באמצעות תא ללא שעתוק מבחנה...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

. למחברים אין מה לגלות

תודות

S. S. היה נתמך על ידי האגודה האמריקנית לצדק בתר-דוקטורט 17POST33670076. ק. ו. נתמך על ידי NIH מענקים R01 HL138014, R01 HL141256, ו R01 HL139819.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
RPMI בינוני 1640 (1X)Gibco11875-093
סולפאמתוקסזול בינוני והזרקת טרימתופריםTEVA0703-9526-01
1/2 סמ"ק מזרק אינסולין במינון נמוךEXELINT26028אספקה
כללית 293T תאיATCCCRL-3216--קו תאים
APC-אנטי-עכבר Ly6C (Clone AL-21)BD Biosciences560599נוגדנים
APC-Cy7-anti-mouse CD45R (RA3-6B2)BD Biosciences552094נוגדנים
BD Luer-Lok מזרקים חד פעמיים, 10 מ"לBD309604אספקה כללית
BD Microtainer צינורות איסוף דם, K2EDTA הוסיףBD Bioscience365974אספקה כללית
BD מחט Precisionglide, 18 גרםBD305195אספקה כללית
BD מחט Precisionglide, 22 ג' BD305155אספקה כללית
BV510-אנטי עכבר CD8a (שיבוט 53-6.7)Biolegend100752נוגדנים
BV711-אנטי-עכבר CD3e (שיבוט 145-2C11)Biolegend100349נוגדנים
קולגן מעור עגלסיגמא-אולדריץ'9007-34-5אספקה כללית
קורנינג קוסטאר אולטרה-נמוך מצורף מרובה בארות צלחת, 6 בארות Millipore SigmaCLS3471אספקה כללית
CRISPR/Cas9 עכברים דפוקיםבמעבדת ג'קסון028555עכבר
DietGel 76AClear H2O70-01-5022אספקה כללית
Dulbecco' s Modified Eagle' s בינוני (DMEM) - גלוקוז גבוהסיגמא אולדריץ' D6429בינוני
eBioscience 1X RBC מאגר ליזהתרמו פישר מדעי00-4333-57תמיסה
פלקון 100 מ"מ צלחת תרבית תאים מטופלת TCמדעי החיים353003אספקה כללית
פלקון 5 מ"ל מבחנה פוליסטירן תחתון עגולהחיים352054אספקה כללית
פלקון 50 מ"ל חרוטי צינורות צנטריפוגהפישר סיינטיפיק352098אספקה כללית
Falcon 6 Well Clear Flat Bottom TC-Assisted Multiwell Cell Culture Plate מדעי החיים353046אספקה כללית
פישרברנד מיקרוהמטוקריט צינורות נימיים תרמופישר סיינטיפיק22-362566אספקה כללית
פישרברנד מסנני תאים סטריליים, 70 μ mפישר סיינטיפיק22363548אספקה כללית
FITC-anti-mouse CD4 (Clone RM4-5)Invitrogen11-0042-85מאגר
קיבועBD Bioscience554655Solution
Guide-it Compete sgRNA מערכות סינון Clontech632636Kit
Isothesia (Isoflurane) תמיסת הנרישיין29404
פתרון Lenti-X qRT-PCR ערכת טיטרציה ערכת Takara631235
שושלת ערכת דלדול תאים, עכברMiltenyi Biotec130-090-858ערכת
Millex-HV יחידת מסנן מזרק, 0.45 מ"מMillipore SigmaSLHV004SL אספקה
כללית PBS pH7.4 (1X)Gibco10010023
PE-Cy7-anti-mouse CD115 (Clone AFS98)eBioscience25-1152-82נוגדנים
PEI MAXPolysciences24765-1תמיסה
תערובת פניצילין-סטרפטומיציןלונזה17-602Fתמיסת
PerCP-Cy5.5-anti-mouse Ly6G (Clone 1A8)BD Biosciences560602נוגדנים
pLKO5.sgRNA.EFS.tRFP Addgene57823פלסמיד
pMG2DAddgene12259פלסמיד
זיהום פוליברן/מגיב טרנספקציהסיגמא אולדריץ'TR-1003-Gתמיסת
צינורות צנטריפוגה פוליפרופילןBECKMAN COULTER326823אספקה כללית
psPAX2 Addgene12260פלסמיד
RadDisk – מכרסם Irradiator דיסקBraintree מדעיIRD-P Mאספקה כללית
עכבר רקומביננטי SCFPeprotech250-03פתרון
עכבר, רקומביננטי TPO פפרוטק 315-14פתרון
StemSpan SFEMSTEMCELL Technologies09600
פתרון TOPO TA ערכת שיבוט לריצוף עם One Shot TOP10 מוכשר כימית E.coliThermo fisher ScientificK457501 ערכת
Zombie Aqua Fixable Viability KitBioLegend423102Solution 
מדעי נוגדנים Solution תמיסת

מקורות

  1. Sasaki, Y., et al. Defective immune responses in mice lacking LUBAC-mediated linear ubiquitination in B cells. EMBO Journal. 32, 2463-2476 (2013).
  2. Ogilvy, S., et al. Transcriptional regulation of vav, a gene expressed throughout the hematopoietic compartment. Blood. 91, 419-430 (1998).
  3. Meyer, S. E., et al. DNMT3A Haploinsufficiency Transforms FLT3ITD Myeloproliferative Disease into a Rapid, Spontaneous, and Fully Penetrant Acute Myeloid Leukemia. Cancer Discovery. 6, 501-515 (2016).
  4. Kuhn, R., Schwenk, F., Aguet, M., Rajewsky, K. Inducible gene targeting in mice. Science. 269, 1427-1429 (1995).
  5. Cole, C. B., et al. PML-RARA requires DNA methyltransferase 3A to initiate acute promyelocytic leukemia. Journal of Clinical Investigation. 126, 85-98 (2016).
  6. Yang, H., et al. One-step generation of mice carrying reporter and conditional alleles by CRISPR/Cas-mediated genome engineering. Cell. 154, 1370-1379 (2013).
  7. Wang, H., et al. One-step generation of mice carrying mutations in multiple genes by CRISPR/Cas-mediated genome engineering. Cell. 153, 910-918 (2013).
  8. Quadros, R. M., et al. Easi-CRISPR: a robust method for one-step generation of mice carrying conditional and insertion alleles using long ssDNA donors and CRISPR ribonucleoproteins. Genome Biology. 18, 92(2017).
  9. Miura, H., Quadros, R. M., Gurumurthy, C. B., Ohtsuka, M. Easi-CRISPR for creating knock-in and conditional knock-out mouse models using long ssDNA donors. Nature Protocols. 13, 195-215 (2018).
  10. Sano, S., et al. CRISPR-Mediated Gene Editing to Assess the Roles of Tet2 and Dnmt3a in Clonal Hematopoiesis and Cardiovascular Disease. Circulation Research. 123, 335-341 (2018).
  11. Cante-Barrett, K., et al. Lentiviral gene transfer into human and murine hematopoietic stem cells: size matters. BMC Research Notes. 9 (312), (2016).
  12. Chu, V. T., et al. Efficient CRISPR-mediated mutagenesis in primary immune cells using CrispRGold and a C57BL/6 Cas9 transgenic mouse line. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 113, 12514-12519 (2016).
  13. Fuster, J. J., et al. Clonal hematopoiesis associated with TET2 deficiency accelerates atherosclerosis development in mice. Science. 355, 842-847 (2017).
  14. Sano, S., et al. Tet2-Mediated Clonal Hematopoiesis Accelerates Heart Failure Through a Mechanism Involving the IL-1beta/NLRP3 Inflammasome. Journal of the American College of Cardiology. 71, 875-886 (2018).
  15. Sano, S., Wang, Y., Walsh, K. Clonal Hematopoiesis and Its Impact on Cardiovascular Disease. Circulatory Journal. 71, 875-886 (2018).
  16. Heckl, D., et al. Generation of mouse models of myeloid malignancy with combinatorial genetic lesions using CRISPR-Cas9 genome editing. Nature Biotechnology. 32, 941-946 (2014).
  17. Jiang, W., et al. An optimized method for high-titer lentivirus preparations without ultracentrifugation. Scientific Reports. 5, 13875(2015).
  18. Cribbs, A. P., Kennedy, A., Gregory, B., Brennan, F. M. Simplified production and concentration of lentiviral vectors to achieve high transduction in primary human T cells. BMC Biotechnology. 13, 98(2013).
  19. Brinkman, E. K., Chen, T., Amendola, M., van Steensel, B. Easy quantitative assessment of genome editing by sequence trace decomposition. Nucleic Acids Research. 42, e168(2014).
  20. Sentmanat, M. F., Peters, S. T., Florian, C. P., Connelly, J. P., Pruett-Miller, S. M. A Survey of Validation Strategies for CRISPR-Cas9 Editing. Scientific Reports. 8, 888(2018).
  21. Akcakaya, P., et al. In vivo CRISPR editing with no detectable genome-wide off-target mutations. Nature. 561, 416-419 (2018).
  22. Bae, S., Park, J., Kim, J. S. Cas-OFFinder: a fast and versatile algorithm that searches for potential off-target sites of Cas9 RNA-guided endonucleases. Bioinformatics. 30, 1473-1475 (2014).
  23. Kosicki, M., Tomberg, K., Bradley, A. Repair of double-strand breaks induced by CRISPR-Cas9 leads to large deletions and complex rearrangements. Nature Biotechnology. 36, 765-771 (2018).
  24. El-Brolosy, M. A., et al. Genetic compensation triggered by mutant mRNA degradation. Nature. 568, 193-197 (2019).
  25. Ma, Z., et al. PTC-bearing mRNA elicits a genetic compensation response via Upf3a and COMPASS components. Nature. 568, 259-263 (2019).
  26. Gilbert, L. A., et al. CRISPR-mediated modular RNA-guided regulation of transcription in eukaryotes. Cell. 154, 442-451 (2013).
  27. Qi, L. S., et al. Repurposing CRISPR as an RNA-guided platform for sequence-specific control of gene expression. Cell. 152, 1173-1183 (2013).
  28. Zhou, H., et al. In vivo simultaneous transcriptional activation of multiple genes in the brain using CRISPR-dCas9-activator transgenic mice. Nature Neuroscience. 21, 440-446 (2018).
  29. Fuster, J. J., Walsh, K. Somatic Mutations and Clonal Hematopoiesis: Unexpected Potential New Drivers of Age-Related Cardiovascular Disease. Circulatory Research. 122, 523-532 (2018).
  30. Kahn, J. D., et al. PPM1D truncating mutations confer resistance to chemotherapy and sensitivity to PPM1D inhibition in hematopoietic cells. Blood. , (2018).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

תאי גזע המטופואטייםציטומטריה של זרימההשתלת מוח עצםתאים שליליים לשושלתגן דוחה RFPמדידת titer ויראליניתוח דם היקפיPCR ל-DNA גנומי
לנטינגיו CRISPR/Cas9 בתיווך הגנום עריכה לחקר התאים המטפאות במודלים למחלות
צרו קשר
המליצו לספרייה

פרטיות

תנאי שימוש

מדיניות

זכויות יוצרים © 2026 MyJoVE Corporation. כל הזכויות שמורות.