הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

מודל מתוקננת של פרוזדורים המוח ותמיכה מתקדמים בחיים הלב בחזירים

7.9K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/60707

⸱

30 בינואר 2020

 ,  ,  ,  , 
1Department of Anesthesiology, University Medical Center of the Johannes Gutenberg-University

במאמר זה

סיכום

החייאה ודפיברילציה הם האפשרויות הטיפוליות היעילות היחידה במהלך דום לב הנגרמת על ידי פרפור פרוזדורים. מודל זה מציג משטר מתוקננת כדי לגרום, להעריך, ולטפל במצב פיזיולוגי זה במודל חזירי, ובכך לספק גישה קלינית עם הזדמנויות שונות עבור איסוף נתונים וניתוח.

תקציר

החייאה לאחר דום לב, ללא תלות ממוצא שלה, הוא נתקל בקביעות חירום רפואי בבתי חולים, כמו גם הגדרות טרום קלינית. מבחנים אקראיים פוטנציאליים במקצועות האדם קשה לעצב ומבחינה אתית, אשר התוצאה היא חוסר הראיות מבוססי טיפולים. המודל המוצג בדו ח זה מייצג את אחד הגורמים השכיחים ביותר למעצרים בלב, פרפור פרוזדורים, בהגדרה סטנדרטית במודל בעל חיים גדול. זה מאפשר תצפיות שונות והתערבויות טיפוליות מגוונות בתנאים מדויקים קלינית, ולכן הקלה על הדור של ראיות טובות ובסופו של דבר את הפוטנציאל לטיפול רפואי משופר.

מבוא

דום לב והחייאה (החייאה) נתקלים באופן קבוע במקרי חירום רפואיים במחלקות בית החולים, כמו גם עבור תרחישים של ספק חירום טרום קלינית1,2. בעוד היו מאמצים נרחבים לאפיין את הטיפול האופטימלי עבור מצב זה3,4,5,6, הנחיות בינלאומיות והמלצות מומחה (g., erc ו ilcor) בדרך כלל להסתמך על ראיות בדרגה נמוכה בשל העדר מבחנים אקראיים פוטנציאליים3,4,5,7,8,9. זה חלק בשל הסתייגויות אתיות ברור לגבי פרוטוקולים החייאה אקראי בניסויים אנושיים10. עם זאת, זה עשוי גם להצביע לקראת חוסר הדבקות פרוטוקול קפדנית כאשר התעמת עם מצב סכנת חיים ומלחיץ11,12. הפרוטוקול המוצג בדו ח זה נועד לספק מודל החייאה סטנדרטית בהגדרה קלינית מציאותית, אשר מייצרת נתונים פוטנציאליים, פוטנציאלי תוך היותו חוקי ומדויק ככל האפשר, ללא צורך בנושאים אנושיים. זה דבק ההנחיות הנפוצות החייאה, ניתן להחיל בקלות, ומאפשר מחקרים כדי לבחון ולאפיין היבטים שונים והתערבויות בסביבה קריטית אך נשלטת. זה יוביל 1) הבנה טובה יותר של המנגנונים הפתולוגיים בבסיס דום לב פרוזדורים ו 2) ראיות באיכות גבוהה יותר כדי לייעל את אפשרויות הטיפול ולהגדיל את שיעורי ההישרדות.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

הניסויים בפרוטוקול זה אושרו על ידי ועדת הטיפול בבעלי חיים מוסדיים (Landesuntersuchungsamt Rheinland-Pfalz, קובלנץ, גרמניה; יו"ר: ד ר סילביה אייץ-וולף; אישור לא. G16-1-042). הניסויים נערכו בהתאם להנחיות הגעה. שבעה חזירים זכריים מורדם (לועפה סוס) עם משקל ממוצע של 30 ± 2 ק"ג ו 12-16 שבועות בגיל נכללו בפרוטוקול.

1. הרדמה, צנרור, ואוורור מכני13,14

  1. לשמור על בעלי חיים בסביבתם הרגילה זמן רב ככל האפשר כדי למזער את הלחץ. מעכב את המזון 6 שעות לפני הניסוי המתוכנן כדי להפחית את הסיכון לשאיפה, אך לא לסרב לגישה למים.
  2. הרגעה חזירים עם זריקה משולבת של קטמין (4 מ"ג/ק"ג) ו azaperone (8 מ"ג/ק"ג) בצוואר או שריר הגלוטיל עם מחט (20 G) עבור הזרקת שרירי. השאירו את החיות ללא הפרעה באורוות שלהם עד הרגעה מגדיר ב (15-20 דקות).
    התראה: כפפות הכרחיות לחלוטין בעת טיפול בבעלי חיים.
  3. להעביר את החיות. המסוכצות למעבדה זמן ההובלה לא יעלה על זמן ההרדמה האפקטיבי (כאן, 30-60 דקות).
  4. נטר את רוויית החמצן ההיקפית (SpO2) עם חיישן החתוכים לזנב או לאוזן.
  5. לחטא את העור עם חיטוי אלכוהולי לפני החדרת צנתר וריד היקפי (20 G) לתוך וריד האוזן. לרסס את האזור, לנגב את 1x, לרסס שוב, ולתת החיטוי יבש.
  6. טיפול בחוסר כאבים באמצעות הזרקה של פנטניל (4 μg/ק"ג). לגרום הרדמה עם הזרקה ורידית של ההצעת (3 מ"ג/ק"ג)
  7. מניחים את החזיר במצב פרקדן על אלונקה עם מזרן ואקום ולתקן אותו עם תחבושות. החלת מרפה שרירים באמצעות הזרקה ורידית של האציון (0.5 מ"ג/ק"ג)
  8. התחל באופן ישיר אוורור לא פולשני עם מסיכת אוורור כלב (גודל 2). פרמטרי אוורור הם כדלקמן: FiO2 (inspiratory חמצן שבר) = 100%, שיעור הנשימה = 18-20 נשימות/דקות, שיא inspiratory הלחץ = ≪ 20 cmh20, להציץ (הלחץ הסופי בטוח להסביר) = 5 cmh20.
  9. לשמור על הרדמה באמצעות אינפוזיה רציפה של פנטניל (0.1-0.2 מ"ג ק"ג-1 h-1) ו ההצעת (8-12 מ"ג ק"ג-1 h-1). התחילו אינפוזיה רציפה של תמיסת אלקטרוליט מאוזנת (5 מ"ל ק"ג-1 h-1).
  10. אבטחו את דרכי הנשימה באמצעות צנרור עם צינורית אנדוקנה משותפת (ID 6-7) ומבואה. השתמש בהאנדוסקופ משותף עם להב של Macintosh (גודל 4). . שני אנשים נחוצים לשלב הזה
    1. ודא שאדם אחד מתקן את הלשון בחוץ עם פיסת רקמה ופותח את החוטם עם היד השנייה.
      1. להבטיח כי האדם השני מבצע כריתת גוסקופיה של הגרון חזירי. כאשר האפיגלוטטיס נכנס לתוך הנוף, להעביר את ventrally הקול. יש להרים את האפיגלוטיס ומיתרי הקול יהיו גלויים.
        הערה: אם האפיגלוטטיס אינו זז בדרך החוצה, היא תיצמד לפאלאטיית הרך והוא יכול להיות מגוייס בקצה הצינור.
  11. הזיזו את הצינור בזהירות דרך מיתרי הקול.
    הערה: הנקודה הצרה ביותר של קנה הנשימה היא לא על רמת מיתרי הקול אלא subglottic. אם הכנסת הצינור אינה אפשרית, נסה לסובב את הצינור בכיוון השעון או להשתמש בשפופרת קטנה יותר.
  12. . תוציא את הבומה מהצינור השתמש במזרק 10 מ ל כדי לחסום את השרוול עם 10 מ ל של אוויר. שלוט בלחץ השרוול עם מנהל חפתים (30 cmH2O).
  13. הפעל אוורור מכני לאחר חיבור צינור עם מאוורר (להציץ = 5 cmH2O, הגאות נפח = 8 מ ל/ק"ג, fio2 = 0.4, i:e [השראה ליחס התפוגה] = 1:2, שיעור הנשימה = משתנה כדי להשיג שיתוף הקצה-גאות2 של < 6 kPa, בדרך כלל 20-30 ודא כי מיקום הצינור הוא נכון על ידי הנשיפה רגילה ותקופתית של דו תחמוצת הפחמן באמצעות capnography.
  14. בדוק את האוורור הדו באמצעות הסתרה.
    הערה: במקרה של הצבת שגויה של הצינור, הבטן מתמלא במהירות בצורה מהירה לעין בליטה בתוך קיר הבטן. במקרה זה, החלפת מיידית של הצינור והחדרת צינור הקיבה הוא הכרחי. אם צנרור אינו מצליח, חזור לאוורור המסיכה ונסה שפופרת קטנה יותר או מיקום טוב יותר של החוטם.
  15. מניחים צינורית קיבה לתוך הבטן כדי למנוע ריפלוקס והקאות עם שני אנשים.
    1. לתקן את הלשון בחוץ עם פיסת רקמה ולפתוח את האף עם היד השנייה.
      1. ודא כי אדם שני מבצע כריתת גוסקופיה של גרון חזירי ולאחר מכן לדמיין את הוושט. לדחוף את צינור הקיבה בתוך הוושט עם מלקחיים של Magill עד נוזל הקיבה מנוקז.
        הערה: ייתכן שההדמיה תהיה קשה. במקרה זה, להרים את הצינור עם ventrally הלוסקופ לפתוח את הוושט.

2. מכשור

  1. השתמש בתחבושות כדי למשוך בחזרה את הרגליים האחוריות כדי להחליק את קפלי באזור הירך לקבלת כלי קיבול.
  2. הכינו את החומרים הבאים: מזרקים (5 מ ל, 10 מ ל, ו 50 mL), המחט Seldinger מבודים מבודים (6 Fr, 8 fr, 8 Fr), הנחיה לנרתיקים, קטטר ורידי מרכזי עם שלוש יציאות (7 Fr, 30 ס מ) עם הנחיה, צג פלט לב (לוח חומרים), ו קטטר (5 Fr, 20 ס מ
  3. חטא את האזור האינרירינלי (ראה שלב 1.6). חזור על תהליך זה 2x.
  4. ממלאים את כל הקטטרים בתמיסה מלוחים. החלת ג'ל אולטרסאונד על הבדיקה אולטרסאונד. כסו את האזור האינרירינלים. עם כיסוי סטרילי מדורג
  5. לסרוק את כלי הירך הימני עם אולטרסאונד ולהשתמש בטכניקת דופלר כדי לזהות את העורק ואת הווריד15. דמיינו לעצמכם את עורק הירך הימני באופן מכריע. מעבר לנוף האורך של האריריה על ידי סיבוב 90 מעלות בדיקה.
  6. ניקוב עורק הירך הימני תחת הדמיה אולטרסאונד עם מחט Seldinger תחת שאיפה קבועה עם מזרק 5 mL.
    הערה: לדעתנו, אולטרסאונד מונחה הטכניקה של Seldinger קשורה לאיבוד דם באופן משמעותי וטראומה רקמות מאשר שיטות אחרות של גישה כלי דם.
  7. לאשר את עמדת המחט הרצויה על ידי התבוננות בהיר אדום פועם דם. נתק את המזרק והכנס במהירות. את חוט ההנחיה לעורק הירך הימני
  8. דמיינו לעצמכם את ציר האורך של וריד הירך הימנית. הכנס את המחט סלנגר תחת שאיפה קבועה עם מזרק 5 מ ל. . מרוב דם ורידי לא פועם באדום כהה
    הערה: אם המיקום הנכון של המחט בכלי הדם השונים אינו יכול להיות מאושר מבחינה חזותית, לקחת דגימות דם ולנתח את תכולת גז הדם. רמת חמצן גבוהה היא סימן טוב לדם עורקי, בעוד שרוויית חמצן נמוכה מעידה על מיקום העירוי.
  9. הכנס את חוט ההנחיה עבור קטטר הווריד המרכזי לתוך וריד הירך הימנית לאחר ניתוק המזרק. . למשוך את המחט הסלינגר
  10. להמחיש את שני כלי הזכות באמצעות אולטרסאונד כדי לשלוט על מיקום התיל הנכון. לדחוף את הנדן מבוא העורקים (6 Fr) על חוט הנחיה לתוך העורק הימני ולאבטח את העמדה עם שאיפה דם.
    הערה: הצבת המעטפת דרך העור עשויה להיות קשה. זה יכול להיות מועיל לבצע חתך קטן לאורך החוט כדי להקל על המיקום טוב יותר.
  11. השתמש בטכניקה של Seldinger כדי למקם את קו הורידים המרכזי לתוך וריד הירך הימני. , מרוקן את כל הנמלים. ומוריד אותם בתמיסה מלוחים
  12. לבצע את ההליך אותו בצד השמאלי השני כדי להוסיף את הנרתיקים מבוא אחרים בטכניקה של Seldinger לתוך עורק הירך השמאלי (8 Fr) ו וריד הירך (8 Fr).
  13. לחבר את הנדן מבואה הימני העורק ואת קטטר הורידים המרכזי עם שתי מערכות מתמר למדידה של הומודינמיקה פולשנית. מקמו את שני הצדדים ברמת הלב.
  14. העבר את העצירות לכיוון העץ של שתי ההתמרה הפתוחות לאטמוספירה כדי לכייל את המערכת לאפס.
    הערה: יש להימנע מבועות של בועות אוויר וכתמי דם במערכת כדי ליצור ערכים מתקבל על הדעת.
  15. החליפו את כל החליטות לשמירה על ההרדמה מהעורק ההיקפי ועד לקו הורידים המרכזי. קח ערכים בסיסיים (הומודינמיקה, מעקב ופלט אחר ממוניטור הלב; ראה סעיף 3) לאחר התאוששות של 15 דקות.
  16. הפעל פרוזדורים חדרית (ראה סעיף 4).

3. מתאר דופק תפוקת הלב

  1. הכנס את צנתר התרמודילול התרמי לתוך נרתיק העורקים הימני.
    הערה: ברפואה הקלינית, התרמודילול ממוקמים ישירות על ידי הטכניקה של סלנגר. עם זאת, מיקום באמצעות נדן מבואה הוא גם אפשרי. בפרוטוקול המוצע, מעילי פרווה ממוקמים כגישה סטנדרטית לכלי דם לגמישות מירבית במכשור במהלך ניסויים שונים.
  2. לחבר את הצנתר עם התיל העורקי של מערכת לפקח לב. החלף את מתמר העורקים ישירות עם יציאת צג הלב וכייל מכייל כמתואר בשלב 2.14. לחבר את יחידת מדידת הורידים של מערכת צג הלב עם נדן שמאל ורידי מבואר.
    הערה: יש צורך לחבר את הורידים ואת הבדיקות העורקי העורקים ככל האפשר; אחרת, המדידה תהיה מופרעת, כי היישום של מים קרים לתוך מערכת הורידים ישפיע על המדידה העורקים. פרטים נוספים לגבי PiCCO2 סופקו בעבר16.
  3. . תדליק את מערכת מוניטור הלב . תאשר שמטופלת חדשה מוערכת הזן את הגודל והמשקל.
  4. החלף את הקטגוריה למבוגרים. הזן את שם הפרוטוקול והמזהה. לחץ על היציאה.
  5. הגדר את עוצמת הזריקה ל-10 mL.
    הערה: ניתן לשנות את נפח פתרון ההזרקה שנבחר בתוכנה. אמצעי אחסון גבוה יותר הופך את הערכים הנמדדים לחוקיים יותר. אמצעי אחסון קטן נבחר לניסוי זה כדי למנוע השפעות הומודילול.
  6. . היכנסו ללחץ הורידים המרכזי
  7. פתח את הסטופין התלת-כסוף לאטמוספירה.
  8. לחץ על אפס עבור כיול המערכת. לחץ על היציאה.
  9. כיול את מדידת תפוקת הלב הרציפה.
    1. לחץ על TD (תרמודילול). הכינו תמיסת מלוחים פיזיולוגית עם טמפרטורה של 4 ° c במזרק של 10 מ ל. לחץ על התחל.
    2. הכנס 10 מ ל של תמיסת מלח קר במהירות ובהתמדה לתוך יחידת מדידת הורידים. המתן עד להשלמת המדידה והמערכת מבקשת חזרה.
    3. חזור על השלב הקודם עד ששלוש המידות יושלמו. המערכת תחשב את הממוצע של כל הפרמטרים. לחץ על היציאה.
      הערה: מדידות יתחילו מיד לאחר השלמת הכיול. למרות פלט לב מדידות במהלך החייאה אינם מבוצעים באופן קבוע, תוצאות סביר הצליחו להיות אישר לאחר כיולהולם 17,18.

4. פרוזדורים המוח והחייאה מכני

  1. מקום אלקטרודות לתיקון דפיברילטור בתנוחה האחורי הקדמי על הגוף. האלקטרודה האחורי צריכה להיות ממוקמת. על החזה המרכזי השמאלי
    הערה: השתמש בתער כדי להסיר שיער ולכלוך עודפים כדי להקל על הולכה אופטימלית.
  2. חבר את האלקטרודות לדפיברילטור. וצור א. ג. א
  3. לשתק את החזיר. בתוך מזרן הוואקום מרוקן את המזרן כדי למנוע תנועה לא רצויה במהלך החייאה. . שליטה בקיבוע הגפיים
  4. במקום דחיסת החזה המכשיר (כאן, לוקאס -2) סביב החזה ומתחת למזרן ואקום לפי ההמלצות של היצרן. כוונן את משטח הלחץ לשליש התחתון של עצם החזה במצב חציון.
  5. הפעל את התקן דחיסת החזה ("כוח" כפתור) ולהוריד את משטח הלחץ לרמת העור. הגדר את תדירות הדחיסה כ-100/min, אם לא הוגדרה אחרת בפרוטוקול. לחץ על לחצן השהה כדי להכין את התקן הדחיסה עבור החזה.
  6. הכנס צנתר פרפור/צועד לתוך וריד הירך השמאלית דרך נרתיק העירוי.
  7. לנפח את הצנתר הקטטר עם 1-2 mL של אוויר. לאט לדחוף את השרוול מנופח עוד עד שהוא ממוקם ליד האטריום הימני (בדרך כלל על מרחק 50 ס מ).
  8. חבר אלקטרודות קטטר למחולל הספק/פונקציה מספקת. התאימו את הפרמטרים של הפרוזדורים לערכים הרצויים (כאן, 13.8 V עם תדרים בין 50-200 Hz).
  9. הפעל גנרטור ונטר שינויי א. א. להזיז את הקטטר לאט קדימה עד הפרעות בקצב הרוח ניתן לזהות ב-אק ג.
    התראה: מנע מהאלקטרודות הנפרדות בסוף הקטטר לגעת בעור האנושי או אחד בשני כדי למנוע מעגלים קצרים ואולי מצבים של סכנת חיים.
  10. בזהירות לשנות את המיקום קטטר עד פרוזדורים המוח ניתן לזהות.
    הערה: זה יכול להיות קשה כדי לגרום לפרוזדורים מיד. אם מגיע מיקום בו ניתן לראות את אפקטי ה-אק ג, שינוי התדר או הפעלה חוזרת של המחולל והפעלתו יכולים לעתים להועיל.
  11. לאחר פרוזדורים המוח הוא אישר, לכבות את הגנרטור, השטפה את הבלון, ולהסיר את הצנתר פרפור. לשמור על פרפור עם או בלי אוורור זמן רב ככל הנדרש.
  12. התחל בלחיצות חזה מכני על-ידי לחיצה על לחצן ההפעלה בהתקן הדחיסה. כדי להפריע ללחיצות בחזה, לחץ על לחצן השהה בהתקן הדחיסה.
  13. . לנתח דפוסי א. א אם פרוזדורים המוח נמשך, להכין דפיברילציה.
    1. היכנסו למצב ידני בתפריט הדפיברילטור. כוונן את האנרגיה ל-200 J biphasic.
    2. לחץ על לחצן העומס . המתן עד שהאות האקוסטי מופעל כדי לציין ערך הלם מוכן. . הפעל הלם חשמלי
      התראה: רק משתמשים מנוסים צריכים לטפל דפיברילטורים והפרפור פרוזדורים. הזעזועים לא צריך להיות יזם אם יש אינדיקציה כלשהי לחומרים פגומים או שחוקים. החניכה של הלם חשמלי חייבת תמיד להיות מוכרז בבהירות לכל אדם בחדר, והאדם משגר את הדפיברילציה אחראי להבטיח שאיש לא ייגע בבעל החיים או באלונקה לפני שחרור ההלם.
      הערה: כאן, פרוטוקול החייאה מבוסס-מנחה שימש (כלומר, 2 דקות של בדיקות חזה, הערכת אק ג, הלם, 2 דקות של בדיקות חזה, מינהל האדרנלין, וכו '). לקבלת מידע נוסף, התייעץ עם ההנחיות4.
  14. במקרה של חזרה של זרימת הזמן הספונטנית (ROSC), להפסיק את בלחיצות החזה, להמשיך אוורור, ולהחיל ניטור בהרחבה ובמשך זמן רב ככל הנדרש.
    הערה: מינהל תרופות הרדמה עשוי להפריע או לא במהלך החייאה, בהתאם לפרוטוקול. אם הרגעה מופסק, יש להפעיל מחדש את העירוי עם אישור ROSC.
  15. גישה מכוונת מטרה להדרכה של מינהל הנוזלים והקטכולאמין, כמו גם הגדרות הנשימה והאוורור הסטנדרטיות, מומלצות למניעת התדרדרות בשלב ROSC המובילה לכישלון ניסיוני.

5. סוף הניסוי והמתת החסד (במקרה של ROSC)

  1. הכנס 0.5 מ"ג של פנטניל לתוך קו הורידים המרכזי. המתן 5 דקות. הכנס 200 מ"ג של ההצעת לתוך קו הורידים המרכזי.
  2. המתת החיים עם הזרקת אשלגן. בגודל 40 ממול
  3. בצע הסרת איברים/קיבעון או ניתוח לפי הצורך.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

. דום לב הושרה ב -7 חזירים שובו של המחזור הספונטני בעקבות החייאה הושגה ארבעה חזירים (57%) עם ממוצע של 3 ± 1 biphasic defibrillations. חזירים בריאים ומסולרים צריכים להישאר במצב פרקדן ללא רעידות וסימני עצבנות לאורך כל הניסוי כולו. מתכוון לחצים דם עורקים לא צריך לרדת מתחת 50 mmHg לפני החניכה של פרפור פרוזדורים18. לקבלת תוצאות מיטביות, ניתן לבצע ניתוחי גז דם וכל הערכים כולל טמפרטורה צריך להיות מנורמל.

אם מניח...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

כמה בעיות טכניות גדולות לגבי הרדמה במודל חזירי המתואר בעבר על ידי הקבוצה שלנו13,14. אלה כוללים את הימנעות קפדנית של מתח וכאבים מיותרים עבור בעלי חיים, בעיות אנטומיים אפשריים במהלך ניהול דרכי הנשימה, ודרישות כוח אדם ספציפי19.

בנוסף, היתרונות של בדיקת האולטרה-סאונד המודרכים היו מסומנים בעבר ועודנה הגישה המועדפת למניעת נזקים בכלי הדם במהלך המכשור. עם זאת, רק משתמשים מאומנים באופן מקצועי צריך לעבוד עם טכניקה זו כדי ...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

מכשיר לוקאס -2 סופק ללא תנאי על ידי סטרייקר/פיסיופיזיולוגיה-בקרה, רדמונד, WA, ארה ב למטרות ניסוי ניסיוני. לא מחברים מדווחים על ניגודי אינטרסים.

תודות

המחברים רוצים להודות לדאגמר דירונמסקי לקבלת תמיכה טכנית מעולה.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
1 מ'- Kaliumchlorid-Lö סונג 7,46% 20 מ"לFresenius, Kabi Deutschland GmbHאשלגן כלורי
ארטרנול 1 מ"ג/מ"ל 25 מ"לסאנופי-אוונטיס, Seutschland GmbHנוראדרנלין
Atracurium Hikma 50 מ"ג/5 מ"לHikma Pharma GmbH, Martinsriedatracurium
BD Discardit II Spritze 2,5,10,20 מ"לBecton Dickinson S.A. Carretera Mequinenza Fraga
BD Luer ConnectaBecton Dickinson Infusion Therapy AB הלסינגבורג, שוודיה3-way-stopcock
BD Microlance 3 20 GBecton Dickinson S.A. Carretera Mequinenza Fraga, ספרדצינורית
CorPatch אלקטרודות קלותCorPuls, Kaufering, גרמניהאלקטרודות דפיברילטור
Corpuls 3Corpuls, Kaufering, גרמניהדפיברילטור
Datex Ohmeda S5GE Healthcare פינלנד Oy, הלסינקי, פינלנדצג המודינמי
Engströ m CarestationGE Heathcare, Madison USAמכונת הנשמה
Fentanyl-Janssen 0,05 מ"ג/מ"לJanssen-Cilag GmbH, Neussפנטניל
Fü hrungsstab, Durchmesser 4.3Rü מכניס צינור אנדוטרכיאלי
Incetomat-line 150 ס"מFresenius, Kabi Deutschland GmbHפרפוזורלין
קטמין-המלן 50 מ"ג/מ"לHameln Pharmaceuticals GmbHקטמין
לרינגוסקופRü laryngoscope
logicath 7 Fr 3 לומן 30 ס"מ langSmith- Medical Deutschland GmbHצנתר ורידי מרכזי
LUCAS-2Physio-Control/Stryker, רדמונד, וושינגטון, ארה"במכשיר דחיסת חזה
Masimo Radical 7Masimo Corporation Irvine, Ca 92618 ארה"בריווי חמצן היקפי
חיישן חמצן Neofox 300 מיקרון סיביםאוקיינוס אופטיקה לארגו, פלורידה ארה"במדידות pO2 מהירות במיוחד
Ö lsä ure reinst Ph. Eur NF C18H34O2 M0282,47g/mol Dichte 0,9Applichem GmbH Darmstadt, Deutschlandoleic
acid מזרק Perfusor מקורי 50 מ"ל Luer LockB.Braun Melsungen AG, גרמניהperfusorsyringe
Osypka pace, 110 cmOsypka Medical GmbH, Rheinfelden-Herten, גרמניהקטטר קוצב/פרפור
PA-Katheter Swan Ganz 7,5 Fr 110 ס"מEdwards Lifesciences LLC, אירווין קליפורניה, ארה"בPAC
סט מבוא נדן מלעורי 8,5 und 9 Fr, 10 ס"מ עם שסתום המוסטזיס אינטגרלי/יציאה צדדיתArrow international inc. רידינג, פנסילבניה, ארה"בנדן היכרות
Perfusor FM BraunB.Braun Melsungen AG, גרמניהמשאבת מזרק
פרופופול 2% 20 מ"ג/מ"ל (50 מ"ל צלוחות)Fresenius, Kabi Deutschland GmbHpropofol
Radifocus Introducer II, 5-8 FrTerumo Corporation Tokio, יפןנדן מציג
Rü schelit Super Safety Clear >ID 6/ 6,5/7,0 mmTeleflex Medical Sdn. Bhd, מלזיהצינור אנדוטרכיאלי
Seldinger Nadel mit Fixierflü ג'לסמית - רפואי Deutschland GmbHseldinger canula
Sonosite Micromaxx UltrasoundsystemSonosite Bothell, WA, ארה"באולטרסאונד
נירוסטה מקינטוש Grö ß e 4Welsch Allyn69604להב לרינגוסקופ
Stresnil 40 מ"ג/מ"לLilly Deutschland GmbH, Abteilung Elanco בריאותazaperone
Vasofix Safety 22G-16GB.Braun Melsungen AG, גרמניהקטטר ורידי
וולטקראפט דגם 8202וולטקראפט, הירשאו, גרמניהאוסצילוסקופ/מחולל פונקציות
, מזרק ספרד sch sch בעלי חיים

מקורות

  1. Grasner, J. T., et al. EuReCa ONE-27 Nations, ONE Europe, ONE Registry: A prospective one month analysis of out-of-hospital cardiac arrest outcomes in 27 countries in Europe. Resuscitation. 105, 188-195 (2016).
  2. Raffee, L. A., et al. Incidence, Characteristics, and Survival Trend of Cardiopulmonary Resuscitation Following In-hospital Compared to Out-of-hospital Cardiac Arrest in Northern Jordan. Indian Journal of Critical Care Medicine. 21 (7), 436-441 (2017).
  3. Brooks, S. C., et al. Part 6: Alternative Techniques and Ancillary Devices for Cardiopulmonary Resuscitation: 2015 American Heart Association Guidelines Update for Cardiopulmonary Resuscitation and Emergency Cardiovascular Care. Circulation. 132 (18 Suppl 2), S436-S443 (2015).
  4. Callaway, C. W., et al. Part 4: Advanced Life Support: 2015 International Consensus on Cardiopulmonary Resuscitation and Emergency Cardiovascular Care Science With Treatment Recommendations. Circulation. 132 (16 Suppl 1), S84-S145 (2015).
  5. Sandroni, C., Nolan, J. ERC 2010 guidelines for adult and pediatric resuscitation: summary of major changes. Minerva Anestesiology. 77 (2), 220-226 (2011).
  6. Tanaka, H., et al. Modifiable Factors Associated With Survival After Out-of-Hospital Cardiac Arrest in the Pan-Asian Resuscitation Outcomes Study. Annals of Emergency Medicine. , (2017).
  7. Kleinman, M. E., et al. Part 5: Adult Basic Life Support and Cardiopulmonary Resuscitation Quality: 2015 American Heart Association Guidelines Update for Cardiopulmonary Resuscitation and Emergency Cardiovascular Care. Circulation. 132 (18 Suppl 2), S414-S435 (2015).
  8. Link, M. S., et al. Part 7: Adult Advanced Cardiovascular Life Support: 2015 American Heart Association Guidelines Update for Cardiopulmonary Resuscitation and Emergency Cardiovascular Care. Circulation. 132 (18 Suppl 2), S444-S464 (2015).
  9. Olasveengen, T. M., et al. 2017 International Consensus on Cardiopulmonary Resuscitation and Emergency Cardiovascular Care Science With Treatment Recommendations Summary. Circulation. 136 (23), e424-e440 (2017).
  10. Rubulotta, F., Rubulotta, G. Cardiopulmonary resuscitation and ethics. Revista Brasileira de Terapia Intensiva. 25 (4), 265-269 (2013).
  11. McInnes, A. D., et al. The first quantitative report of ventilation rate during in-hospital resuscitation of older children and adolescents. Resuscitation. 82 (8), 1025-1029 (2011).
  12. Maertens, V. L., et al. Patients with cardiac arrest are ventilated two times faster than guidelines recommend: an observational prehospital study using tracheal pressure measurement. Resuscitation. 84 (7), 921-926 (2013).
  13. Ziebart, A., et al. Standardized Hemorrhagic Shock Induction Guided by Cerebral Oximetry and Extended Hemodynamic Monitoring in Pigs. Journal of Visualized Experiments. (147), (2019).
  14. Kamuf, J., et al. Oleic Acid-Injection in Pigs As a Model for Acute Respiratory Distress Syndrome. Journal of Visualized Experiments. (140), (2018).
  15. Weiner, M. M., Geldard, P., Mittnacht, A. J. Ultrasound-guided vascular access: a comprehensive review. Journal of Cardiothoracic and Vascular Anesthesiology. 27 (2), 345-360 (2013).
  16. Mayer, J., Suttner, S. Cardiac output derived from arterial pressure waveform. Current Opinions in Anaesthesiology. 22 (6), 804-808 (2009).
  17. Hartmann, E. K., et al. Ventilation/perfusion ratios measured by multiple inert gas elimination during experimental cardiopulmonary resuscitation. Acta Anaesthesiologica Scandanivica. 58 (8), 1032-1039 (2014).
  18. Ruemmler, R., et al. Ultra-low tidal volume ventilation-A novel and effective ventilation strategy during experimental cardiopulmonary resuscitation. Resuscitation. 132, 56-62 (2018).
  19. Wani, T. M., et al. Upper airway in infants-a computed tomography-based analysis. Paediatric Anaesthesia. 27 (5), 501-505 (2017).
  20. Tuna Katircibasi, M., et al. Comparison of Ultrasound Guidance and Conventional Method for Common Femoral Artery Cannulation: A Prospective Study of 939 Patients. Acta Cardiol Sin. 34 (5), 394-398 (2018).
  21. Hartmann, E. K., et al. Correlation of thermodilution-derived extravascular lung water and ventilation/perfusion-compartments in a porcine model. Intensive Care Medicine. 39 (7), 1313-1317 (2013).
  22. Hartmann, E. K., et al. An inhaled tumor necrosis factor-alpha-derived TIP peptide improves the pulmonary function in experimental lung injury. Acta Anaesthesiol Scand. 57 (3), 334-341 (2013).
  23. Ziebart, A., et al. Low tidal volume pressure support versus controlled ventilation in early experimental sepsis in pigs. Respiratory Research. 15, 101(2014).
  24. Tan, D., et al. Duration of cardiac arrest requires different ventilation volumes during cardiopulmonary resuscitation in a pig model. Journal of Clinical Monitoring and Computing. , (2019).
  25. Kill, C., et al. Mechanical ventilation during cardiopulmonary resuscitation with intermittent positive-pressure ventilation, bilevel ventilation, or chest compression synchronized ventilation in a pig model. Critical Care Medicine. 42 (2), e89-e95 (2014).
  26. Speer, T., et al. Mechanical Ventilation During Resuscitation: How Manual Chest Compressions Affect a Ventilator's Function. Advances in Therapy. 34 (10), 2333-2344 (2017).
  27. Kill, C., et al. Chest Compression Synchronized Ventilation versus Intermitted Positive Pressure Ventilation during Cardiopulmonary Resuscitation in a Pig Model. PLoS ONE. 10 (5), e0127759(2015).
  28. Newell, C., Grier, S., Soar, J. Airway and ventilation management during cardiopulmonary resuscitation and after successful resuscitation. Critical Care. 22 (1), 190(2018).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

מודל מתוקננת של פרוזדורים המוח ותמיכה מתקדמים בחיים הלב בחזירים
צור קשר
המלצה לספרייה

פרטיות

תנאי שימוש

מדיניות

2026 © זכויות יוצרים MyJoVE Corporation. כל הזכויות שמורות.