אנו מתארים טכניקה של אינטובציה אנדוטראצ'י בארנבים שזה עתה נולדו לאחר צנתור ושט עם צינור קיבה.
הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.
במאמר זה
סיכום
תקציר
הארנב שזה עתה נולד הוא מודל שימושי לבעלי חיים עבור פתולוגיות ונהלים שונים. ניהול דרכי הנשימה של הארנב מורכב בשל המאפיינים האנטומיים שלו, וזה מסובך עוד יותר במקרה של התינוק. מבין השיטות השונות לניהול מתקדם של דרכי הנשימה, אינטובציה אנדוטראציאלית היא פחות אגרסיבית מאשר קנה הנשימה, והיא אפשרית יותר מניהול סופרגלוטי בהתחשב בהיעדר מכשירים סופרגלוטיים בגודל כה קטן. כמו הדמיה glottis ישירה קשה מאוד בבעלי חיים בגודל זה, מודל זה אינטובציה עיוורת מוצג כחלופה יעילה, במיוחד עבור ניסויים הדורשים הרדמה ממושכת. בשיטה זו, ביצענו צנרורים עיוורים עם שיעור הצלחה של 90%.
מבוא
האנטומיה המוזרה של מערכת הנשימה של הארנב הופכת את הצנרור האנדוטרצ'יאלי למורכב. חלל הפה הוא עמוק וצר עם מגוון מוגבל של פתח הפה לשון גדולה יחסית, מה שהופך הדמיה ישירה של הגרון קשה אפילו עם השימוש laryngoscope1,2. יתר על כן, אינטובציה של הארנב שזה עתה נולד, שהוא קטן פי 10-20 מהמבוגר, היא אפילו יותר הליך מאתגר. בנוסף למאפיינים אנטומיים אלה, ארנבים נוטים laryngospasm משני למניפולציה של דרכי הנשימה.
מספר טכניקות אינטובציה תוארו בספרות, כגון צנרור קנה הנשימה של הגרון, אינטובציה עיוורת, אינטובציה אוטוסקופ, אינטובציה מדרדרת, אינטובציה אנדוסקופ, קנה הנשימה ואוורור מכשיר סופרגלוטי3,4,5,6,7,8,9. כל הטכניקות הללו בוצעו בהצלחה בארנבים בוגרים; עם זאת, ישנם פרסומים מעטים לגבי ניהול דרכי הנשימה המתקדמות בארנב שזה עתה נולד10. מחקר אחד מתאר ביצוע tracheostomies בבעלי חיים בגיל זה כדי להעריך מכניקת נשימה ונפחי ריאות, אם כי זוהי טכניקה אגרסיבית ובלתי הפיכה11. שיטה זו לצנרור אנדוטראצ'י הוכיחה את עצמה כשיטה יעילה וזולה לניהול דרכי הנשימה בארנבים שזה עתה נולדו.
הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.
פרוטוקול
הליך הצנרור המפורט להלן אושר על ידי הוועדה המוסדית לטיפול ושימוש בבעלי חיים באוניברסיטת ברצלונה (CEEA 180/19)
1. הכנה ניסיונית
- השג את החומרים הבאים: צינור אנדוטראצ'אל פוליוויניל כלוריד (PVC) בקוטר 2 מ"מ, צינור האכלה פוליאוריתן צרפתי 6 (Fr), מלקחיים שטוחים ורחבים לניתוק קצה וחומר סיכה סטרילי (איור 1).
- במהלך תהליכי הצנרור והניתוח, יש לשמור על מצבים סטריליים.
2. הרדמה
- הרדמה את החיה עם 5 מ"ג / קילוגרם xylazine ו 25 מ"ג / קילוגרם קטמין להחיל יחד תוך שרירית ב vastus לרוחב של הארבע ראשי הירך. אגוניסטים אלפא-2 כגון dexmedetomidine יכול לשמש גם במקום xylazine.
- אפשר 3-5 דקות עבור התרופה להגיע לתוקף.
- יש לקרוא את אותה מנה עד להשגת הרדמה עמוקה (דוושה שלילית, רפלקסים פלפבריים וקרנית). באופן אידיאלי, הארנב ישמור על נשימה ספונטנית עד הצנרור.
3. אינטובציה אנדוטרצ'יאלית
- מניחים את הארנב על שמיכה תרמית ב 37 מעלות צלזיוס. מניחים את החיה בהשבתה הגבית עם הראש ביתר לחץ דם. יישר את הראש ישר וקו אמצע ככל האפשר. גליל של ארבעה סנטימטרים העשוי מגזה סטרילית הממוקמת באזור הגב של הצוואר עשוי לעזור להשיג לפחות 45° הרחבה (איור 2).
- השתמש במלקחיים שטוחים ורחבים כדי לפתוח את חלל הפה ברוחב של סנטימטר אחד בקירוב. השתמש מלקחיים עם קצה קהה ורחב כדי למנוע טראומה בפה.
- למדוד את המרחק בין הפה לאזור הבטן (הצלע הראשונה). הצג צינור קיבה פוליאוריתן משומן 6 צרפתית (Fr) לסימן הנמדד מראש ( איור3-4).
- להזיז את צינור ההזנה שמאלה ולתקן עם סרט דבק לשדה הכירורגי.
- הציגו את הצינור אנדוטראצ'אל PVC בקוטר 2 מ"מ, מכוסה בחומר סיכה סטרילי לסימן 3 ס"מ.
- אם יש קשיים בקידום הצינור, להזיז אותו לחלוטין לחבר מחדש עד דאייה חלקה מושגת. הסיכון לטראומה לגרון ולאפיגלוטיס הוא משמעותי עם ניסיונות אינטובציה מרובים. תקן את הצינור באמצעות סרט הדבקה לשדה הכירורגי ( איור5-6).
- חבר את הצינור endotracheal למכונות ההנשמה עם ההגדרות הבאות: נפח גאות ושפל - 10 מ"ל / קילוגרם; קצב נשימה: 40 נשימות / דקה; FiO2 100%, פיפ"א 6.
- אשר את המיקום הנכון של הצינור על ידי זיהוי של CO2 באוויר נושף (ETCO2), הדמיה ישירה של התפשטות בית החזה וערפל של הצינור. ניטור בעל החיים באמצעות אוקסימטריית דופק וניטור ריאות יכול גם להועיל (איור 7).
- בסיום הניסוי, השתמש בפרוטוקול המתת חסד סטנדרטי המורכב וריונית של פנטוברביטל 120-240 מ"ג/ק"ג. מינונים חוזרים עד להפסקת נשימה, היעדר רפלקס ואסטיסול מושגים.
הערה: בניסויים הכירורגיים, החיה חיה במהלך תהליך האוורור ולבסוף מורדמת.
הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.
תוצאות
במעבדה, טכניקה זו מתבצעת על ידי צוות רפואי עם ניסיון בניסויים עם ארנבים ניו זילנד ומומחיות בניהול דרכי הנשימה בילדים. ההליך בוצע על ידי חוקר אחד מכל 10 בעלי חיים עם שיעור הצלחה עולמי של 90%. בעבר, חוקר אחר תרגל אופטימיזציה הן את המיקום של החיה ואת אורך קיבוע הצינור הנכון. אף אחד מבעלי החיים לא צנרר בוושט. ניסיון אחד בלבד (10%) נכשל בגלל הגודל הקטן ביותר של החיה(טבלה 1). לאחר אינטובציה עיוורת כבר התאמן, הצלחה מושגת בניסיון הראשון ברוב המקרים, גם אם ההליך מבוצע על ידי כוח א...
הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.
דיון
ארנבים נמצאים בשימוש נרחב בניסויים בבעלי חיים בשל זמינותם, שיעור רבייה גבוה עם זמנים בין דוריים קצרים, וטיפול קל2. במרכז שלנו, אנו משתמשים בארנבים ניו זילנדים בני 5-7 ימים (Oryctolagus cuniculus) כמודל יילודים כדי לחקור את ההשלכות הנוירולוגיות של ניתוח חוץ-גשמי על המוח המתפתח. כתוצאה מכך, אנו משתמשים בהליכים הדורשים הרדמה עמוקה ועלינו להשתמש בצנרור אנדוטראצ'י לפרקי זמן של עד שעה.
בארנב הבוגר תוארו מספר טכניקות לניהול דרכי הנשימה, בדרך כלל בהקשר כירורגי. כשניסינ...
הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.
גילויים
למחברים אין מה לחשוף.
תודות
עבודה זו נתמכה על ידי מענקים ממכון דה סאלוד קרלוס השלישי [PFIS2017-0224], "בקה רוזה" מהמכון לרפואה של סוסיאדד אספניולה דה קוידאדוס אנטנסיבוס פדיאטריקוס ותוכנית המלומדים הרפואיים של ונדרבילט.
נותני החסות לא היו מעורבים באיסוף, ניתוח או פרשנות של הנתונים.
ברצוננו להודות לאיזבל סאלאס על העזרה הניתנת במעבדת החיות ולמר קארלס פברגה ולגברת ג'מה פרננדז-אסנסיו מצוות הטכנולוגיה האודיו-ויזואלית מבית החולים סנט ג'ואן דה דאו על תמיכתם הטכנית בהקלטת הווידאו ובהפקה.
הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.
חומרים
| שם | חברה | מספר קטלוג | הערות |
|---|---|---|---|
| צינור אנדוטרכיאלי פוליוויניל כלוריד (PVC) בקוטר 2 מ"מ | Vygon | 520.20 | |
| 6 צינור הזנה פוליאוריטן צרפתי | Vygon | 310.06 | |
| הרדמה (קטמין וקסילזין) | |||
| מוניטור רב פרמטרי Intellivue MP5 | Phillips | ||
| מלקחיים לחיתוך קצה רגיל ורחב | LensforVision | AK005 | |
| חומר סיכה סטרילי (Silkospray) | |||
| Servo 900c | Maquet |
מקורות
- Gilroy, B. A. Endotracheal intubation of rabbits and rodents. Journal of the American Veterinary Medical Association. 179 (11), 1295(1981).
- Graham, J. Common procedures in rabbits. The Veterinary Clinics of North America. Exotic Animal Practice. 9 (2), 367-388 (2006).
- Fick, T. E., Schalm, S. W. A simple technique for endotracheal intubation in rabbits. Laboratory Animals. 21 (3), 265-266 (1987).
- Conlon, K. C., et al. Atraumatic endotracheal intubation in small rabbits. Laboratory Animal Science. 40 (2), 221-222 (1990).
- Johnson, D. H. Endoscopic intubation of exotic companion mammals. The Veterinary Clinics of North America. Exotic Animal Practice. 13 (2), 273-289 (2010).
- Falcão, S. C., et al. Technique of blind tracheal intubation in rabbits (Oryctolagus cuniculi) supported by previous maneuver of esophageal cannulization. Acta Cirurgica Brasileira. 26 (5), 352-356 (2011).
- Miura, H., et al. Endotracheal intubation in rabbits. The Japanese Journal of Veterinary Anesthesiology. 19 (1), 25-29 (2012).
- Thompson, K. L., et al. Endotracheal Intubation of Rabbits Using a Polypropylene Guide Catheter. Journal of Visualized Experiments. (129), (2017).
- Comolli, J., et al. Comparison of endoscopic endotracheal intubation and the v-gel supraglottic airway device for spontaneously ventilating New Zealand white rabbits undergoing ovariohysterectomy. Veterinary Record. , 1-8 (2020).
- Hua, S., et al. Effects of different ventilation strategies on lung injury in newborn rabbits. Pediatric Pulmonology. 47 (11), 1103-1112 (2012).
- Kitchen, M. J., et al. The role of lung inflation and sodium transport in airway liquid clearance during lung aeration in newborn rabbits. Pediatric Research. 73 (4-1), 443-449 (2012).
- Boon, M. S., et al. Tubeless tracheotomy for survival airway surgery in the leporine model. The Laryngoscope. 125 (3), 680-684 (2015).
- Dion, G. R., et al. Morbidity and mortality associated with preclinical tracheostomy models. The Laryngoscope. 128 (2), 68-71 (2018).
- Phaneuf, L. R., et al. Tracheal injury after endotracheal intubation and anesthesia in rabbits. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 45 (6), 67-72 (2006).
הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.
הדפסות חוזרות והרשאות
