מאמר שיטה

הדמיית זלוף דופלר לייזר בעכבר הינדלימב

DOI:

10.3791/62012

⸱

18 באפריל 2021

 , 
1Division of Vascular Surgery, University of Washington, 2VA Puget Sound Health Care System

במאמר זה

סיכום

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

כאן, אנו מציגים פרוטוקול המדגים את הטכניקה ואת הפקדים הדרושים עבור הדמיית זלוף דופלר לייזר כדי למדוד את זרימת הדם בעכבר hindlimb.

תקציר

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

התאוששות זרימת הדם היא מדד תוצאה קריטי לאחר איסכמיה אחורית ניסיונית או איסכמיה-רפרופוזיה. הדמיית זלוף דופלר לייזר (LDPI) היא שיטה נפוצה, פולשנית, חוזרת להערכת התאוששות זרימת הדם. הטכניקה מחשבת את זרימת הדם הכוללת ברקמה שנדגמה משינוי דופלר בתדירות שנגרם כאשר לייזר פוגע בתאי דם אדומים נעים. המדידות באות לידי ביטוי ביחידות זלוף שרירותיות, כך שההתבטאות הנגדית שאינה מתערבת ברגל משמשת בדרך כלל כדי לסייע בשליטה על המדידות. עומק המדידה הוא בטווח של 0.3-1 מ"מ; עבור איסכמיה hindlimb, משמעות הדבר היא כי זלוף עורי מוערך. זלוף עורי תלוי במספר גורמים – והכי חשוב טמפרטורת העור וסוכן הרדמה, אשר חייב להיות נשלט בקפידה כדי לגרום קריאות אמינות. יתר על כן, פיגמנטציה שיער ועור יכול לשנות את היכולת של הלייזר להגיע או לחדור הדרמיס. מאמר זה מדגים את הטכניקה של LDPI בעכבר hindlimb.

מבוא

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

כיב העור עם ריפוי פצעים לקוי הוא הגורם המוביל של קטיעות בחולים אנושיים1. ריפוי פצעים נאות דורש רמות גבוהות יותר של זלוף עורקים מהנדרש כדי לשמור על עור שלם, אשר נפגע בחולים עם מחלת עורקים היקפית2,3,4. מספר מצבים ראומטולוגיים וסוכרת אחרים יכולים גם להוביל microcirculation העור מופרע ולא מספיק כדי לרפא פצעים5,6. חולי סוכרת רבים סובלים ממחלת עורקים היקפית בו זמנית, מה שמציב אותם בסיכון גבוה במיוחד לקטיעה. הדמיית זלוף דופלר לייזר (LDPI) משמש במצבים קליניים כדי להעריך את microcirculation העור, כמו גם במצבי מחקר כדי להעריך את זרימת הדם ואת זרימת הדם התאוששות לאחר איסכמיה hindlimb ניסיוני, איסכמיה-reperfusion, דש מיקרוכירורגי7.

מערכת LDPI מקרינה קרן לייזר בהספק נמוך המוסטת על-ידי מראה סריקה כדי לנוע מעל אזור מעניין. זה שונה מזרימה של דופלר לייזר, המספק מדידת זלוף עבור האזור הקטן של הרקמה במגע ישיר עם בדיקה flowmetry8. כאשר קרן הלייזר מקיימת אינטראקציה עם דם נע במיקרו-וסקולטורה, היא עוברת שינוי בתדר דופלר, אשר מובלט על ידי הסורק ומומר ליחידות זלוף שרירותיות. מכיוון ש- LDPI היא טכניקה מבוססת אור, היא מוגבלת מבחינת עומק החדירה ל- 0.3-1 מ"מ, כלומר לרוב זלוף עורי מוערך7. זרימה עורית יכולה להשתנות על ידי טמפרטורת העור ומערכת העצבים הסימפתטית, אשר עשוי להיות מושפע סוכני הרדמה שונים9. מדידות מהלייזר האופטי מושפעות גם מתנאי תאורת הסביבה, פיגמנטציה בעור, וניתן לחסום אותן על ידי פרווה או שיער7.

LDPI היא טכניקת המחקר הנפוצה ביותר לניטור התאוששות זלוף לאחר איסכמיה מכיוון שהיא לא פולשנית, אינה דורשת ניהול ניגודיות, ויש לה זמני סריקה מהירים המאפשרים איסוף נתונים על בעלי חיים מרובים. זה עושה את זה אידיאלי כדי לעזור לקבוע אם טיפולים שמטרתם arteriogenesis טיפולית או אנגיוגנזה יעילים מודלים בעלי חיים קטנים. התאוששות זרימת הדם לאחר איסכמיה hindlimb כפי שנמדד על ידי LDPI בקורלציה היטב עם פיתוח עורק בטחונות כאשר מוערך באמצעים אחרים כגון יציקת Microfil או מיקרו CT10,11. מטרת פרוטוקול זה היא להדגים את ההערכה של זלוף hindlimb באמצעות LDPI.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ניסויים בבעלי חיים בוצעו על פי פרוטוקול שאושר על ידי הוועדה המוסדית לטיפול בבעלי חיים ושימוש בבעלי חיים באוניברסיטת וושינגטון.

1. הכנת סורק

  1. כוונן את גובה הסורק כך שהמרחק לנושא הסרוק יהיה כ- 30 ס"מ.
  2. הפעל את Imager ולהפעיל את התוכנה המשויכת.
  3. פתח את תוכנית המדידה. אם התוכנה מקיימת תקשורת נכונה עם הסורק, תופיע אזהרת הפעלת לייזר אינפרא-אדום.
  4. כייל את המכונה בתקנים שסופקו על-ידי היצרן (לא מוצג בסרטון ויהיה תלוי בדגם הספציפי של המכונה הנמצא בשימוש).
  5. כוונן את הגדרות הסורק כך שיתאימו לחומר הרקע ולהגדרת התאורה בחדר.
    1. הגדר את רמות הרווח DC FLUX ו- CONC, לפי הוראות היצרן (לא מוצג בסרטון).
    2. הגדר את סף הרקע על-ידי הצבעה על קרן הלייזר בחומר הרקע השחור והקש על ערכת BK אוטומטית.

2. הכנת סריקה מראש של העכבר

  1. הקם את תא האינדוקציה isoflurane עם ניקוי מתאים של גז הפסולת.
    הערה: הנחת תא האינדוקציה על משטח חימום תסייע במניעת אובדן טמפרטורת העכבר במהלך אינדוקציה להרדמה.
  2. הפעל את השמיכה ההומאותרמית, הממוקמת באזור הסריקה מתחת למשטח לא רפלקטיבי (במקרה זה בד ניאופרן שחור). הגדר את השמיכה homeothermic כדי לשמור על טמפרטורת הגוף של 37 °C (69 °F).
  3. מקם את גשוש הטמפרטורה עבור השמיכה ההומיותרמית וחומר הסיכה כך שהם מוכנים להכנסה.
  4. מניחים את מסכת ההרדמה ומערכת הטיהור באזור הסריקה.
  5. המשך את העכבר עם מאדה isoflurane. הגדר את קצב החמצן ל 1 L / min של זרימה ולהתאים את isoflurane ל 4% עבור אינדוקציה הרדמה. הפעל את הזרימה לתא האינדוקציה של ההרדמה, וקצב הנשימה של העכבר יאט. הרדמה נאותה מושגת כאשר העכבר מאבד את הרפלקס הימני שלה.
  6. מעבירים את העכבר למסכת הרדמה/חרוט אף עם נבלות גז פסולת מחוברות ומתאימה את הישפולורן ל-1.5%.
    הערה: רמת הרדמה זו היא בדרך כלל מספיק כדי לשמור על העכבר שוכב בשקט יחסית במהלך הסריקה, אבל לא נועד לספק רמות כירורגיות של הרדמה, ולכן עומק ההרדמה אינו נבדק. שינוי רמת איזופלורן גורם לשינויים בקצב הלב, הנשימה והזלוף העורי, ולכן יש להשתמש באחוז עקבי לאורך כל ניסוי קורס הזמן ולכל הנבדקים הניסיוניים. טכניקות הרדמה חלופיות כגון הזרקת IP של קטמין xylazine ניתן להשתמש גם, אבל אותה טכניקת הרדמה יש להשתמש לאורך כל המחקר כמובן זמן כמו הרדמה שונים משפיעים על זלוף עורי באופן שונה.
  7. (אופציונלי בהתאם לאזור הסריקה) אם האזור המתוכנן של עניין להיסרק מכוסה על ידי פרווה, להשתמש גוזם חשמלי קטן או קרם depilatory כדי להסיר את השיער מאזור העניין.
    הערה: יש להסיר לחלוטין את קרם הדפילטורי, ואת עור העכבר מיובש לפני הסריקה.
  8. הנח את העכבר בתנוחת הסריקה המתאימה על המשטח השחור הלא רפטקטיבי המכסה את השמיכה הביתית, ותאשר ששני החלקים האחוריים נשארים על מקור החום לאורך שיווי המשקל והסריקה (איור 1).
    הערה: חשוב לשמור על שתי הרגליים על השמיכה homeothermic כדי למנוע וריאציה אזורית בטמפרטורה.
  9. הכנס את בדיקת הטמפרטורה רקטלית משומנת הקשורים השמיכה הומאותרמית.
  10. השווה את טמפרטורת העכבר לטמפרטורת הסריקה הרצויה (37 °C (67 °F); בערך 5-10 דקות.
  11. בחר הגדרת סורק, שאליה ניתן לגשת מהתפריט העליון או מסמל הגדרת הסורק. התאם את אזור הסריקה על-ידי שינוי קואורדינטות X-Y כך שיתאימו לאזור העניין. מהירות הסריקה תהיה תלויה ברזולוציית הסריקה. רזולוציה גבוהה יותר תגרום לזמנים ארוכים יותר של סריקה. לסריקה חוזרת המתמקדת בזלוף גלובלי, בניגוד לרזולוציה גבוהה יותר המתמקדת בזלוף אנטומי, מהירות סריקה של 4 אלפיות השנייה/פיקסל מתאימה.
    הערה: יש לשקול רזולוציה גבוהה יותר וסריקה אחת אם החוקר מנסה לחקור ישירות את זרימת הערבות המתפתחת (התמונה הטובה ביותר בירך הגחון ובעגל שם הוא קרוב יותר לעור). סריקה חוזרת ונשנית ברזולוציה/מהירות נמוכה יותר (למשל, 4 אלפיות השנייה/פיקסל) מספיקה בעת הערכת זלוף גלובלי לאיבר הקצה של משטח הרגל של העכבר. התוכנה המוצגת בסרטון טוענת באופן אוטומטי את התבנית ששימשה בעבר לסריקת אזור, מהירות ורזולוציה בעת הפעלה מחדש, או שניתן לאחזר אותה מקובץ מאוחסן אם אזורים שונים של עניין משמשים לניסויים שונים.
  12. בשעת ביצוע סריקות חוזרות, בחרו בכרטיסיה 'חזור' ו'סריקת קו'. ניתן לשנות את מספר הסריקות (במקרה זה 3 סריקות) כמו גם את מרווח הזמן לחזרה. הזמן המינימלי עבור מרווח הזמן לחזרה יהיה זמן הסריקה המשוער, המוצג באזור האפור שמימין לתיבה הנקבע על-ידי אזור הסריקה ורזולוציית הסריקה. הוספת מספר שניות מאפשרת למשתמש להשהות את העכבר ולמקם אותו מחדש במידת הצורך בין הסריקות.

3. סריקה

  1. בחרו בכרטיסייה 'סריקת תמונות' ובחרו בלחצן 'סמן'. הלייזר יעבור כדי להתוות את אזור הסריקה. התאם את מיקום העכבר כך שהיעד לסריקה נמצא בתוך האזור המסומן.
    הערה: עבור פנקס רגליים או משטח רגל וסריקת עגל, מיקום נוטה עם hindlimbs המורחבת מספק אזור עקבי יותר של עניין מאשר מיקום סופי. עורק הירך ועורק saphenous ו בטחונות קרובים מאוד לפני השטח הגחוניים של הירך והעגל, ולכן מיקום סופי הוא המועדף אם משתמשים באזורים אלה של עניין.
  2. התחל מדידה חוזרת על-ידי בחירה בסמל סריקה חוזרת ולחץ על לחצן 'הפעל' כדי ליזום את הסריקה.
  3. אשר את מרחק הסריקה בחלון המוקפץ ולחץ על אישור כדי להתחיל בסריקה.
  4. נטר את העכבר במהלך הסריקה לאיתור תנועת עכבר; אם העכבר זז מספיק כדי שהעכבות האחוריות לא יהיו עוד באזור הסריקה באמצע סריקה, הפעל מחדש את הסריקה. וריאציות קטנות בעמדת העכבר האחורי ניתן לאכלס בתוכנת הניתוח.
  5. לפקח על טמפרטורת העכבר במהלך תהליך הסריקה כפי שהוא עשוי להשתנות אפילו עם השימוש בשמיכה הומאותרמית. אם יש שונות רבה מדי בטמפרטורת העכבר, הדבר עלול לגרום לשינוי משמעותי בין הסריקות. בדרך כלל, טווח טמפרטורות של 36.8-37.2 מעלות צלזיוס יגרום לנתונים מקובלים.
  6. שמור את הסריקה שנלכדה תחת החלון שמירה בשם עם שם קובץ הכולל מזהה עכבר ונקודת זמן לניתוח נתונים קל יותר. הזן פרטי עכבר ונקודת זמן אם תרצה בחלון פרטי הנושא.
  7. כבה את isoflurane ולהסיר את גשוש הטמפרטורה רקטלית.
  8. לחטא את הבדיקה טמפרטורת רקטלית עם 70% אתנול כך שהוא מוכן לשימוש בעכבר הבא.
  9. אפשר לעכבר להתאושש מהרדמה עד לנקודה שבה הוא מציג רפלקס ימני על ידי היפוך מהמיקום supine למצב נוטה לפני החזרתו לכלוב.
    הערה: התאוששות יכולה להתבצע גם על שמיכת התחממות עבור isoflurane מאז ההתאוששות היא מהירה מאוד או בכלוב התאוששות מחומם קטמין / xylazine.

4. לכידת נתוני LDPI (איור 3)

  1. פתח את תוכנת סקירת ההדמיה.
  2. עבור לתפריט הקובץ, פתח ואתר את הקובץ שנשמר.
  3. בחר בסמל ההחזר על ההשקעה בסרגל הכלים.
  4. בחרו בלחצן 'הוסף מצולע'.
  5. עקוב אחר אזור העניין (ROI) עבור ה- hindlimb של הפקד באמצעות העכבר. מעקב מצולע אינו חייב להיות מדויק מכיוון שהרקע האפור לא ייכלל בממוצעים המחושבים.
  6. חזור על שלבים 4.3-4.5 עבור hindlimb כירורגי.
  7. בחר בסמל סטטיסטיקה כדי לפתוח את החלון תוצאות סטטיסטיקה של ROIs תמונה (PU).
  8. יצא את התוצאות עבור מצולע 1 (בקרה hindlimb) ומצולע 2 (hindlimb כירורגי) לגליון עבודה איסוף נתונים באמצעות העתקה /הדבקה.

5. ניתוח

  1. לכוד את הנתונים כיחס כירורגי/בקרה עבור כל סריקה.
  2. השתמש בניתוח/בקרה בממוצע עבור כל שלוש הסריקות לאיתור נקודת הנתונים עבור עכבר מסוים זה בנקודת זמן זו. בגלל השונות הביולוגית בתגובה לאיסמיה hindlimb, באופן כללי 8-10 עכברים נדרשים בכל נקודת זמן כדי להשיג תוצאות לשחזור עם ~ 10% שגיאת תקן.
    הערה: לפני מתן אפשרות לעכבר להתאושש מהרדמה, כדאי לבצע ניתוח מהיר של הסריקות החוזרות ונשנות כדי לבדוק אם הנתונים משתנים מדי (למשל, יותר מ-100-150 יחידות זלוף שונות בין סריקות 1-3). שונות גבוהה בין סריקות חוזרות מצביעה על כך שהעכבר לא שוווה לחלוטין במהלך הסריקה (איור 2), וניתן לבצע סריקה חוזרת מבלי לאבד נקודת נתונים, שתתרחש אם התמונות לא ינותח עד למועד מאוחר יותר. ייתכן שיהיה צורך לשנות את לוח הצבעים כדי למטב את הטווח הדינמי של ערכי השטף המוצגים כדי להציג טוב יותר וריאציית סריקה (איור 2).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

LDPI מוצלח אמור לגרום לסריקות חוזרות ונשנות עקביות, עם וריאציה של יחידת זלוף של לא יותר מ- 100-150 (המתאימה לכ- 10% מהזלוף הממוצע הרגיל עבור משטח הרגל של העכבר) בין שלוש הסריקות (איור 2). כפי שמודגם באיור 2, סריקות חוזרות מסייעות לקבוע שהעכבר שוווה כראוי כך שיחס איסכמי/בקרה משקף בצורה הטובה ביותר את זרימת הדם הבסיסית לעומת שונות בזלוף עורי הנגרמת על ידי שינוי טמפרטורה. שימוש בסריקות בודדות עבור נקודות נתונים יגדיל את השונות שתוביל לצורך בעכברים ניסיוניים יותר. כ...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

טכניקה עקבית היא קריטית להשגת תוצאות אמינות עם LDPI. יש להשתמש באותם הרדמה, הגדרות טמפרטורה, מיקום העכבר ואזור העניין לאורך כל קורס הזמן. חומרי הרדמה שונים יגרמו לערכי זלוף גבוהים או נמוכים יותר9. הרדמה Isoflurane נוח בגלל הופעתה המהירה, כמו גם בטיחות כללית. אחוז עקבי של isoflurane יש להשתמש כעומק של הרדמה עם סוכן vasodilatory זה עשוי לשנות את זלוף העור. אם אזור העניין כולל פרווה, אז אותה שיטה של הסרת שיער יש להשתמש בכל פעם, כמו עכברים depilated כימית יהיו ערכי זלוף גבוהים יותר מאשר עכברים שפרוותם...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

לד"ר טאנג אין ניגודי אינטרסים לחשוף.

תודות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

עבודה זו בוצעה עם השימוש במתקנים ומשאבים במרכז הבריאות VA Puget Sound. העבודה היא של המחבר ואינה משקפת בהכרח את עמדת או המדיניות של המחלקה לענייני חיילים משוחררים או ממשלת ארצות הברית. ד"ר טאנג ממומן כיום באמצעות VA (הצטיינות 5 I01 BX004975-02).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
שחור שאינו רפלקטיביחנות בדים, ניאופרן שחור מומלץ על ידי חברת
מיכל F/airA.M. Bickford Inc80120
שמיכה הומותרמית עם בדיקת מתכת קשיחההרווארדמגיע גם עם בדיקה גמישה, אבל זה פחות עמיד
מכונת הרדמה איזופלורןDragerיצרנים מרובים
תא אינדוקציה איזופלורןVetEquip9414442 ליטר תא
מור לייזר דופלר צילום זלוףMoor InstrumentsMoorLDI2-IRצילום ברזולוציה גבוהה יותר (MoorLDI2-HIR)
חרוטיצרנים מרובים יצרנים Nair
מיכליצרנים
Surgilubeמפיצים
חומר מכשיר אף הרדמה של עכבר חמצן מספר מרובים

מקורות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Varma, P., Stineman, M. G., Dillingham, T. R. Epidemiology of limb loss. Physical Medicine and Rehabilitation Clinics of North America. 25 (1), 1-8 (2014).
  2. Farber, A. Chronic Limb-Threatening Ischemia. New England Journal of Medicine. 379 (2), 171-180 (2018).
  3. Abularrage, C. J., et al. Evaluation of the microcirculation in vascular disease. Journal of Vascular Surgery. 42 (3), 574-581 (2005).
  4. Houben, A., Martens, R. J. H., Stehouwer, C. D. A. Assessing Microvascular Function in Humans from a Chronic Disease Perspective. Journal of the American Society of Nephrology. 28 (12), 3461-3472 (2017).
  5. Mahe, G., Humeau-Heurtier, A., Durand, S., Leftheriotis, G., Abraham, P. Assessment of skin microvascular function and dysfunction with laser speckle contrast imaging. Circulation: Cardiovascular Imaging. 5 (1), 155-163 (2012).
  6. Murray, A. K., Herrick, A. L., King, T. A. Laser Doppler imaging: a developing technique for application in the rheumatic diseases. Rheumatology (Oxford). 43 (10), 1210-1218 (2004).
  7. Greco, A., et al. Repeatability, reproducibility and standardisation of a laser Doppler imaging technique for the evaluation of normal mouse hindlimb perfusion. Sensors (Basel). 13 (1), 500-515 (2012).
  8. Sonmez, T. T., et al. A novel laser-Doppler flowmetry assisted murine model of acute hindlimb ischemia-reperfusion for free flap research. PLoS One. 8 (6), 66498(2013).
  9. Gargiulo, S., et al. Effects of some anesthetic agents on skin microcirculation evaluated by laser Doppler perfusion imaging in mice. BMC Veterinary Research. 9, 255(2013).
  10. Ankri-Eliahoo, G., Weitz, K., Cox, T. C., Tang, G. L. p27(kip1) Knockout enhances collateralization in response to hindlimb ischemia. Journal of Vascular Surgery. 63 (5), 1351-1359 (2016).
  11. McEnaney, R. M., Shukla, A., Madigan, M. C., Sachdev, U., Tzeng, E. P2Y2 nucleotide receptor mediates arteriogenesis in a murine model of hind limb ischemia. Journal of Vascular Surgery. 63 (1), 216-225 (2016).
  12. Padgett, M. E., McCord, T. J., McClung, J. M., Kontos, C. D. Methods for Acute and Subacute Murine Hindlimb Ischemia. Journal of Visualized Experiments. (112), e54166(2016).
  13. Niiyama, H., Huang, N. F., Rollins, M. D., Cooke, J. P. Murine model of hindlimb ischemia. Journal of Visualized Experiments. (23), e1035(2009).
  14. Chalothorn, D., Faber, J. E. Strain-dependent variation in collateral circulatory function in mouse hindlimb. Physiological Genomics. 42 (3), 469-479 (2010).
  15. Helisch, A., et al. Impact of mouse strain differences in innate hindlimb collateral vasculature. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 26 (3), 520-526 (2006).
  16. Faber, J. E., et al. Aging causes collateral rarefaction and increased severity of ischemic injury in multiple tissues. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 31 (8), 1748-1756 (2011).
  17. Forrester, K. R., Stewart, C., Tulip, J., Leonard, C., Bray, R. C. Comparison of laser speckle and laser Doppler perfusion imaging: measurement in human skin and rabbit articular tissue. Medical & Biological Engineering & Computing. 40 (6), 687-697 (2002).
  18. Briers, J. D. Laser Doppler, speckle and related techniques for blood perfusion mapping and imaging. Physiological Measurement. 22 (4), 35-66 (2001).
  19. Heeman, W., Steenbergen, W., van Dam, G., Boerma, E. C. Clinical applications of laser speckle contrast imaging: a review. Journal of Biomedical Optics. 24 (8), 1-11 (2019).
  20. Nguyen, T., Davidson, B. P. Contrast Enhanced Ultrasound Perfusion Imaging in Skeletal Muscle. Journal of Cardiovascular Imaging. 27 (3), 163-177 (2019).
  21. Zaccagnini, G., et al. Magnetic Resonance Imaging Allows the Evaluation of Tissue Damage and Regeneration in a Mouse Model of Critical Limb Ischemia. PLoS One. 10 (11), 0142111(2015).
  22. Penuelas, I., et al. PET as a measurement of hindlimb perfusion in a mouse model of peripheral artery occlusive disease. Journal of Nuclear Medicine. 48 (13), 1216-1223 (2007).
  23. Jia, Y., Qin, J., Zhi, Z., Wang, R. K. Ultrahigh sensitive optical microangiography reveals depth-resolved microcirculation and its longitudinal response to prolonged ischemic event within skeletal muscles in mice. Journal of Biomedical Optics. 16 (8), 086004(2011).
  24. Turaihi, A. H., et al. Combined Intravital Microscopy and Contrast-enhanced Ultrasonography of the Mouse Hindlimb to Study Insulin-induced Vasodilation and Muscle Perfusion. Journal of Visualized Experiments. (121), e54912(2017).
  25. Liu, C., et al. Enhanced autophagy alleviates injury during hindlimb ischemia/reperfusion in mice. Experimental and Therapeutic Medicine. 18 (3), 1669-1676 (2019).
  26. Liu, D. L., Svanberg, K., Wang, I., Andersson-Engels, S., Svanberg, S. Laser Doppler perfusion imaging: new technique for determination of perfusion and reperfusion of splanchnic organs and tumor tissue. Lasers in Surgery and Medicine. 20 (4), 473-479 (1997).
  27. Jing, Y., Bai, F., Chen, H., Dong, H. Using Laser Doppler Imaging and Monitoring to Analyze Spinal Cord Microcirculation in Rat. Journal of Visualized Experiments. (135), e56243(2018).
  28. Zhang, D., Li, S., Wang, S., Ma, H. An evaluation of the effect of a gastric ischemia-reperfusion model with laser Doppler blood perfusion imaging. Lasers in Medical Science. 21 (4), 224-228 (2006).
  29. Fitzal, F., et al. Circulatory changes after prolonged ischemia in the epigastric flap. Journal of Reconstructive Microsurgery. 17 (7), 535-543 (2001).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

בקש הרשאה לשימוש חוזר בטקסט או באיורים של מאמר JoVE זה

בקש הרשאה

תגיות

מאמרים קשורים