הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

בדיקת הימנעות מקונפליקט מכני למדידת התנהגות כאב בעכברים

3.8K צפיות

DOI:

10.3791/63454

18 בפברואר 2022

במאמר זה

סיכום

הבדיקה המכנית למניעת קונפליקטים משמשת כקריאה לא רפלקסיבית של רגישות לכאב בעכברים, שבה ניתן להשתמש כדי להבין טוב יותר תגובות רגשיות-מוטיבציוניות במגוון מודלים של כאב עכברים.

תקציר

הכאב מורכב הן מממדים חושיים (nociceptive) והן מממדים רגשיים (לא נעימים). במודלים פרה-קליניים, כאב הוערך באופן מסורתי באמצעות מבחנים רפלקסיביים המאפשרים מסקנות לגבי המרכיב הנוציפטי של הכאב, אך מספקים מידע מועט על המרכיב הרגשי או המוטיבציוני של הכאב. פיתוח מבחנים הלוכדים את מרכיבי הכאב הללו הם אפוא חשובים מבחינה תרגומית. לפיכך, חוקרים צריכים להשתמש במבחנים התנהגותיים לא רפלקסיביים כדי לחקור את תפיסת הכאב ברמה זו. הימנעות מקונפליקט מכני (MCA) היא בדיקת התנהגות לא רפלקסיבית מרצון מבוססת, לחקר תגובות מוטיבציה לגירוי מכני רעיל בפרדיגמה של 3 תאים. שינוי בהעדפת המיקום של העכבר, כאשר הוא מתמודד עם גירויים רעילים מתחרים, משמש כדי להסיק את אי הנעימות הנתפסת של אור בהיר לעומת גירוי מישושי של כפות הרגליים. פרוטוקול זה מתווה גרסה שונה של בדיקת MCA שבה חוקרי כאב יכולים להשתמש כדי להבין תגובות רגשיות-מוטיבציוניות במגוון מודלים של כאב עכברים. אף על פי שלא תוארו כאן באופן ספציפי, נתוני ה-MCA לדוגמה שלנו משתמשים באדג'ובנט התוך-פלנטרי השלם של פרוינד (CFA), בפגיעה עצבית שנחסכה (SNI) ובמודל שבר/יציקה כמודלים של כאב כדי להמחיש את הליך ה-MCA.

מבוא

כאב הוא חוויה מורכבת עם מרכיבים חושיים ורגשיים. הפחתה בסף תפיסת הכאב ורגישות יתר לגירויים תרמיים ו/או מכניים הם מאפיינים מרכזיים של חוויה זו, שמבחני התנהגות כאב מעוררי גירוי יכולים ללכוד (כמו מבחן רגישות החום של Hargreaves ומבחן פון פריי של רגישות מכנית)1,2. למרות שמבחנים כאלה נותנים תוצאות חזקות וניתנות לשחזור, הם מוגבלים על ידי הסתמכותם על נסיגה רפלקסיבית מגירוי מרושע נתפס. זה הטיל ספק בהסתמכות מתמשכת של מחקרי כאב על בדיקות אלה בלבד. לשם כך, חוקרי כאב בוחנים כבר מספר שנים מבחנים התנהגותיים חלופיים/משלימים לשימוש במודלים של כאב מכרסמים במאמץ ללכוד יותר מהמרכיבים הרגשיים ו/או המוטיבציוניים של הכאב. אמצעים לא מעוררים, רצוניים או לא רפלקסיביים אלה (למשל, ריצת גלגלים, פעילות מחילה, העדפת מקום מותנית 3,4,5) מיושמים בניסיון לשפר את יכולת התרגום של מחקר כאב פרה-קליני.

הבדיקה למניעת קונפליקט מכני (MCA) תוארה במקור על ידי Harte et al. בשנת 20166, משמשת בעיקר בחולדות 7,8, ומייצגת שינוי של גישה קודמת - פרדיגמת ההימנעות ממקום בריחה. בגישה זו, גירוי מזיק של הכפה האחורית מבוצע בתא רצוי (כהה) אחרת כדי להניע התנהגות תכליתית של החיה כדי לברוח / למנוע גירוי כזה 9,10. במקום להסתמך על גירוי ידני של הכפה האחורית על ידי משקיף, מבחן ה-MCA מאלץ את העכברים לנהל משא ומתן על גירוי שעלול להיות מזיק כדי להימלט מסביבה מרתיעה ולהגיע לתא החשוך. הקונפליקט/ההימנעות שמעניקים לבדיקה את שמה נובעת משני המניעים המתחרים הללו: לברוח מאזורים מוארים היטב ולהימנע מגירוי מרושע של כפות הרגליים. בדיקת MCA גם חולקת תכונות עם בדיקות העדפת מקום מותנות, שבהן השילוב של שיכוך כאבים עם רמזים סביבתיים מניע שינויים בהתנהגות המשקפים העדפה להקשר משכך הכאבים/מתגמל11.

ביסודו של דבר, כל המבחנים הללו חולקים גישה דומה: שימוש בשינוי בהעדפתו של בעל חיים לסביבה מרתיעה אחת על פני אחרת כאינדיקטור למצב הרגשי/מוטיבציוני שלהם. מבחן MCA הוא פרדיגמה של 3 תאים המורכבת מתא מואר בהיר ואחריו תא אמצעי כהה עם בדיקות גובה מתכווננות ותא שלישי כהה ללא כל גירויים מרתיעים. עכבר לא מרוסן הוא בדרך כלל מוטיבציה לברוח לחדר חשוך, בהתחשב בסלידה המולדת של מכרסמים מאור בהיר12. בדוגמה זו, המוטיבציה הטבעית לברוח מסביבה מוארת בבהירות מתגברת על חוסר ההתאמה להיתקל בגירוי כפות אחוריות (בדיקות הגובה המתכווננות), המתרחש אך ורק בסביבה החשוכה. לעומת זאת, עכבר החווה כאב (עקב דלקת או נוירופתיה, למשל) עשוי לבחור לבלות זמן רב יותר בסביבה המוארת, שכן יש מוטיבציה להימנע מחוויית המישוש הלא נעימה של הגשושיות המכניות בהגדרת רגישות יתר מתמשכת למישוש.

מאמר זה מתאר גרסה שונה של בדיקת MCA. התאמנו את השיטה המקורית (שבוצעה בחולדות6) לשימוש בעכברים. כמו כן, הפחתנו את מספר גבהי הגשושית שנבדקו משישה לשלושה (0, 2 ו-5 מ"מ מעל גובה הרצפה) על מנת לייעל את איסוף הנתונים. גישה זו נבדקה על פני מודלים רבים של כאב, ואומתה באמצעות משככי כאבים ידועים, מה שמצביע על כך שרגישות יתר לכאב ו/או השינויים הרגשיים והמוטיבציוניים הנלווים מניעים שינויים אלה בהתנהגות. גישה זו מהירה יחסית לניצוח וניתנת להתאמה בהשוואה לאמצעים אחרים שאינם רפלקסיביים, שיכולים לקחת ימים רבים של הרגלה ואימון 1,2. בשילוב עם מדדים אחרים של כאב, MCA יכול לייצר תובנות חשובות על ההיבטים הרגשיים והמוטיבציוניים של הכאב.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

כל הניסויים שכללו שימוש בעכברים והנהלים שבוצעו בהם אושרו על ידי ועדות הטיפול והשימוש בבעלי חיים המוסדיים של מרכז הסרטן MD Anderson ואוניברסיטת סטנפורד, בהתאם קפדנית למדריך של המכונים הלאומיים לבריאות לטיפול ושימוש בחיות מעבדה.

1. בניית MCA

  1. מבנה תא 1 עם הממדים הבאים: 125 מ"מ x 125 מ"מ x 125 מ"מ (רוחב x עומק x גובה) מתוך אקריליק לבן אטום בעובי 3 מ"מ המשמש לדפנות, לרצפה, לתקרה. השתמשו באקריליק שקוף בעובי 3 מ"מ לקיר הפונה לחזית. הדביקו את כל הצדדים יחד זמן רב מראש באמצעות דבק אקרילי ייעודי.
    אזהרה: דבק אקרילי נחשב לחומר מסוכן (דליק, אדים מזיקים, עלולים להזיק אם נבלעים, עלולים לגרות את העור או העיניים). יש להשתמש בדבקים כאלה רק בהתאם להוראות היצרן (כלומר, עם PPE מתאים באזור מאוורר היטב).
  2. חברו את המכסה של תא 1 עם ציר, כך שניתן יהיה להכניס את העכברים בקלות לתוכם ולשלוף אותם מהתא. חברו סרט דיודה פולט אור (LED) הדבקה עצמית למשטח הפנימי של המכסה כדי לספק תאורה של כ-4800 לוקס.
  3. סגור את תא 1 משאר ה- MCA על ידי החלקת יריעת אקריליק אטומה לתוך ומחוץ למקומה.
  4. בנה את תא הבדיקה של MCA, תא 2, כתא לא מואר באורך 270 מ"מ המיוצר מאקריל אדום כהה שקוף (בעובי 3 מ"מ) מכל הצדדים, עם מכסה צירי למעלה. הניחו רשת של 13 על 31 של חורים בקוטר 2 מ"מ על רצפת תא 2 שדרכה ניתן לבלוט מערך של בדיקות קהות עם קצוות בקוטר 0.5 מ"מ (למשל, סיכות מפה קהות).
    הערה: סיכות קהות עם בלוק נייר זכוכית של 120 חצץ או דומה. נקו אותם במים חמים עם חומר ניקוי לפני שהם מחוטאים בחומר חיטוי ספוריצידלי.
  5. התאימו את גובה הגשושיות על ידי הצבת יריעות אקריליות נוספות מתחת ללוח הבסיס של הגשושית (איור 1). באמצעות גישה זו, להגדיר את המכשיר עם שלוש הגדרות: 0 מ"מ, 2 מ"מ, ו 5 מ"מ גובה בדיקה.
  6. כחלופה לסיכות מפה קהות או חומרים דומים, השתמש בקבצי המדפסת התלת-ממדית כדי להדפיס את רצפת תא 2 ואת לוחית הבדיקה (ראה קובץ משלים 1: SpikeBed-MCA.stl המתייחס לבדיקות המכניות, וקובץ משלים 2: MCA_baseplate.stl המהווה את רצפת תא 2).
    הערה: אם הדפסה תלת-ממדית אינה זמינה, הדביקו סיכות מפה ליריעה אקרילית באמצעות אותו דבק אקרילי המשמש לבניית דפנות המכשיר.
  7. הדפס עם חומר רחיץ וניתן להתאמה ביולוגית, כגון ניילון 12 פלסטיק או דומה (מומלץ).
  8. מבנה תא 3 עם הממדים הבאים: 125 מ"מ x 125 מ"מ x 125 מ"מ כקופסת אקריליק אדומה כהה שקופה לא מוארת (מכל הצדדים), הממוקמת בקצה הנגדי לחדר 1. מניחים מכסה ציר על החדר, בדומה לתאים 1 ו-2. תא זה משמש כאזור מילוט חשוך מהגשושיות המכניות בתא 2.

2. הרגלה ובדיקה של MCA בעכבר

  1. כמו בכל הניסויים הכוללים תוצאות התנהגותיות בבעלי חיים, הקפידו על אקראיות וסנוור מתאימים לאורך כל הדרך כדי למזער את ההטיה הפוטנציאלית.
    הערה: התוצאות הייצוגיות נוצרו על ידי שימוש בעכברי C57BL/6J זכרים ונקבות בני 8-12 שבועות (מספר הזן של מעבדות ג'קסון 000664). העכברים שוכנו חברתית, עד 5 לכל כלוב, עם גישה למזון ולמים ad libitum ומחזור אור של 07:00 שעות עד 19:00 שעות. MCA התקיים בתקופת האור, בין השעות 09:00 ל-12:00.
  2. יום אחד לפני הבדיקה הבסיסית המתוכננת, התאקלמו בעכברים ליחידת ה-MCA למשך 5 דקות (מינימום) עד 15 דקות (מקסימום) עם בני זוגם בכלוב כדי להקל על החקירה החברתית של המכשיר כולו.
  3. לאורך כל התהליך, יש לוודא כי נוריות ה-LED בתא 1 כבויות, המחסום בין תאים 1 ו-2 נותר פתוח, והגששים מוגדרים לגובה של אפס (כלומר, לא בולטים דרך רצפת תא 2).
  4. בצע בדיקה בסיסית של עכברים (אופציונלי) אם המחקר משלב חיות בקרה שליליות (כלומר, ניתוח בושה או בקרות הזרקה לרכב). אם תרצה בכך, השתמש במבחן בסיסי כדי לא לכלול חריגות שלא טופלו שלעולם אינן חוצות לתא 2, אם כי זה לא הוכח כהכרחי. אם נעשה בהם שימוש, דווח על כל הקריטריונים להחרגה ועל מספר העכברים שאינם נכללים.
    1. לפני תחילת הבדיקה, הגדר מצלמת וידאו המסוגלת להקליט קטעי וידאו של 1080p על חצובה עם מבט הצידה של כל מכשיר ה- MCA. התאם את שדה הראייה כך שה- MCA ימלא את התמונה המוקלטת.
    2. לאחר תחילת ההקלטה, החזק לוח מחיקה יבש כף יד בשדה הראייה של המצלמה כדי לתייג את תחילת הסרטון עם מידע מזהה על ריצת הניסוי של החיה (למשל, מזהה עכבר, גובה בדיקה, תאריך, נקודת זמן וכו ').
    3. עבור הריצה הראשונה, הגדר את גובה הגשושית לאפס. העבירו את העכבר לבדיקה מהכלוב הביתי שלו לתא 1 עם דלת המחסום במקומה. הפעל טיימר הנראה בצילומים המוקלטים.
      הערה: הטיימר מבטיח שהמרווחים בין החלקים השונים של הבדיקה יהיו עקביים בין הריצות.
    4. לאחר 10 שניות, הפעל את התא 1 נוריות. לאחר שהעכבר נמצא בתא המואר במשך 20 שניות, משכו את המחסום בין התאים 1 ו-2.
    5. התבונן בבעל החיים במשך 2 דקות. מדוד את העיכובים ו/או זמני השהייה באמצעות שעון עצר בזמן שהבדיקה נמשכת. לחלופין, ניתן לנתח את קטעי הווידאו לאחר השלמת הבדיקה.
      הערה: מסיבות של תפוקה והימנעות מחשיפה ממושכת לגירויים מרתיעים, הניתוק נקבע על 2 דקות.
    6. מדוד אחת או יותר מכמה תוצאות שימושיות שזוהו (ראה להלן; איור 1). מומלץ לנתח את כל 5 מדדי התוצאה בעת תחילת הבדיקה, על מנת לוודא אילו היבטים של התנהגות שונים במערך ניסוי נתון.
      1. אפשרות I: הקלט את ההשהיה לערך הראשון לתא 2. אפשרות II: הקלט את ההשהיה כדי לחצות יותר ממחצית הדרך על פני תא 2. אפשרות ג': רשום את זמן השהייה הכולל בתא 2. אפשרות IV: הקלט את ההשהיה כדי להגיע לתא 3 (בריחה). אפשרות V: בדומה לאפשרות II, רשמו את זמן השהייה הכולל בכל תא תוך 2 דקות והמירו אותם לפרופורציות.
        הערה: מכיוון שכל ניסוי הוא ייחודי ועשוי להיות מושפע מגורמים ביולוגיים ומשינויים התנהגותיים הייחודיים למודל המחלה, חוקרים יכולים להתנסות במדדים אלה ואחרים בידיהם.
    7. לאחר השלמת הבדיקה, החזירו את העכבר לכלוב הביתי שלו, נקו את תאי ה-MCA עם 70% אתנול ואפשרו לו להתייבש לחלוטין.
      הערה: בדרך כלל ניתן לנקות בולי צואה מהתא בקלות יחסית עם מגבות נייר לפני אתנול / חומר חיטוי. אם יש צורך בניקוי יסודי יותר, ניתן לפרק את התאים 2 ו-3 ולשקוע במי סבון חמים.
    8. לאחר הפעלת כל העכברים בקבוצה כאשר גובה הבדיקה מוגדר לאפס, הכנס יריעה של 3 מ"מ של אקריליק מתחת ללוח הבסיס של הבדיקה המכנית וחזור על שלבים 2.4.2 עד 2.4.7 עם גובה בדיקה של 2 מ"מ.
    9. לאחר הפעלת כל העכברים עם גובה הבדיקה מוגדר ל -2 מ"מ, הכנס יריעה שנייה של 3 מ"מ של אקריליק מתחת ללוח הבסיס של הבדיקה וחזור על צעדים 2.4.2 עד 2.4.7 עם גובה בדיקה של 5 מ"מ.
      הערה: ניתן לבדוק קבוצה של 8 עכברים תוך כ-2 שעות באמצעות גישה זו. השתמש בגדלים של קבוצות קטנות יותר אם נדרש תזמון מדויק יותר לאחר התרופה (למשל, לניסוי קורס בזמן סמים).
    10. בצעו ניקוי סופי עם חומר חיטוי בסוף בדיקת הבדיקה.
  5. בדיקה חוזרת לאחר גרימת רגישות יתר לכאב ו/או עם טיפול תרופתי.
  6. השווה את הביצועים של כל עכבר בנקודת ההתחלה לביצועים שלו לאחר ההשריה של הכאב. להעריך את ההשפעה של התערבות פרמקולוגית על ידי השוואת בעלי חיים שטופלו ברכב עם בעלי חיים שטופלו בתרופות באותה נקודת זמן.
  7. בצע ניתוח סטטיסטי לא פרמטרי (לדוגמה, מבחן Mann Whitney U) אם בעלי חיים מגיעים לניתוק של 2 דקות מבלי לספק את מדד התוצאה הרצוי, וכתוצאה מכך נתונים לא רציפים.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

בדיקת MCA שימשה בהצלחה עם מספר מודלים של כאב עכברים שונים מבחינה מכניסטית. איור 2 מציג נתונים שבהם מדד התוצאה של הבחירה היה חציית נקודת האמצע של תא 2 (איור 2A). הנתונים המתקבלים על ידי שימוש בנקודת אמצע הדרך לעומת הבריחה לחדר 3 דומים מאוד, ~ 40 שניות למחצית הדרך לעומת ~ 45 שניות לבריחת תא 3 במודל פגיעה עצבית (SNI) של כאב נוירופתי עם גובה בדיקה 5 מ"מ13.

במודל הכאב הדלקתי המושרה על-ידי CFA, הזרקת כפה אחורית מבוקר...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

כמו בכל המבחנים ההתנהגותיים, טיפול נכון, אקראיות ועיוורון לטיפול בבעלי חיים הם חיוניים לאורך כל הדרך. בהתחשב בתשומות הרב-גורמיות להתנהגויות מורכבות ולקבלת החלטות, חובה על בעלי חיים להיות מטופלים, מורגלים ונבדקים באופן עקבי ככל האפשר תוך מזעור המצוקה. יש להקפיד גם לשחזר את תזמון מיקום העכבר בתא 1, הדלקת נורות ה-LED והסרת המחסום, שכן ההבדלים כאן עלולים להשפיע על ההתנהגות הבאה.

יש לציין כי מדדי התוצאה השונים המתוארים באיור 1A קשורים זה בזה. לדוגמה, עכבר הנכנס לחדר 2...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

למחברים אין ניגודי עניינים רלוונטיים לחשוף.

תודות

GM נתמכת על ידי מלגת בוגר NDSEG. VLT נתמכת על ידי מענק NIH NIGMS #GM137906 וקרן ריטה אלן. AJS נתמך על ידי מענקי משרד ההגנה W81XWH-20-1-0277, W81XWH-21-1-0197, וקרן ריטה אלן. אנו מודים לד"ר Alexxai Kravitz בבית הספר לרפואה של אוניברסיטת וושינגטון על תכנון והפיכת קבצי המדפסת התלת-ממדית לזמינים באופן חופשי עבור רצפת החדר 2 וצלחת הבדיקה.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
32.8ft 3000K-6000K נורות LED לבנות מתכווננות, נורות קלטת LED סופר בהירות הניתנות לעמעום עם 600 SMD 2835 נוריותLeproמק"ט: 410087-DWW-USלתא תאורה 1. https://www.lepro.com/32ft-dimmable-tunable-white-led-strip-lights.html
'מיטת דוקרן' מודפסת בתלת מימד ו'תא 2 קומה'ShapewaysN/Aאופציונלי, לבדיקות מכניות כחלופה לסיכות מפה קהות.
70% אתנולN/Aלניקוי MCA בין עכברים.
ציר אקרילי 2TAP פלסטיקN/Aלחיבור מכסי תא לקירות האחוריים. https://www.tapplastics.com/product/plastics/handles_hinges_latches/acryl_hinge_2/122
יריעת אקריליק יצוקה של Chemcast, פלסטיק שקוףTAPבעובי 3 מ"מ. לקיר הקדמי של תא 1. https://www.tapplastics.com/product/plastics/cut_to_size_plastic/acrylic_sheets_cast_clear/510
Chemcast יצוק אקריליק בצבע שקוף, שקוף אדום כהה - 50%פלסטיק TAPבעובי 3מ"מ. 50% העברת אור. לקירות ומכסים של תאים 2 ו -3. https://www.tapplastics.com/product/plastics/cut_to_size_plastic/acrylic_sheets_transparent_colors/519
Chemcast שקוף & אקריליק יצוק בצבע אטום, שלט לבן אטום - 0.1%פלסטיק TAPבעובי 3 מ"מ. לקירות צד ומכסה תא 1. https://www.tapplastics.com/product/plastics/cut_to_size_plastic/acrylic_sheets_color/341
חומר חיטוי (למשל קווטלי קוואט)מעבדות מחקר פרמקליות, בע"מ65020Fלחיטוי MCA בסוף מפגש בדיקה.
מחיקה יבשה של טושים ולוחN/Aשוניםכדי להוסיף מידע ניסיוני לתחילת קטעי הווידאו.
סיכות מפהשונותN/Aאופציונלי, לבדיקות מכניות. השתמש בנייר זכוכית כדי להקהות נקודות חדות לפני השימוש. ניתן להשתמש במקום חלקים מודפסים בתלת מימד.
מגבות ניירשונותN/Aלניקוי/חיטוי MCA.
SCIGRIP Weld-On #3 אקריליק צמנטTAP פלסטיקN/Aלהרכבת יריעות אקריליות לתאים והדבקת צירים. https://www.tapplastics.com/product/repair_products/plastic_adhesives/weld_on_3_cement/131
שעון עצרשוניםN/Aלהקלטת זמני שהייה / זמני שהייה בזמן אמת או מווידאו מוקלט.
טיימרשוניםN/Aכדי להבטיח הפעלת LED, הסרת מחסום והשלמת הבדיקה מתוזמנים באופן עקבי.
מצלמת וידאושונותHDRCX405 מצלמת וידיאו Handycamכדי להקליט את התנהגות העכבר במכשיר MCA. ניתן להחליף בכל מצלמת וידאו ברמה צרכנית המסוגלת לרזולוציית 1080p.
חצובהFamallN/Aכל חצובה שיכולה להחזיק את המצלמה בגובה הספסל להקלטת קטעי MCA מקובלת.
שונים

מקורות

  1. Hargreaves, K., Dubner, R., Brown, F., Flores, C., Joris, J. A new and sensitive method for measuring thermal nociception in cutaneous hyperalgesia. Pain. 32 (1), 77-88 (1988).
  2. Chaplan, S. R., Bach, F. W., Pogrel, J. W., Chung, J. M., Yaksh, T. L. Quantitative assessment of tactile allodynia in the rat paw. Journal of Neuroscience Methods. 53 (1), 55-63 (1994).
  3. Sheahan, T. D., et al. Inflammation and nerve injury minimally affect mouse voluntary behaviors proposed as indicators of pain. Neurobiology of Pain. 2, 1-12 (2017).
  4. Wodarski, R., et al. Cross-centre replication of suppressed burrowing behaviour as an ethologically relevant pain outcome measure in the rat: a prospective multicentre study. Pain. 157 (10), 2350-2365 (2016).
  5. King, T., et al. Unmasking the tonic-aversive state in neuropathic pain. Nature Neuroscience. 12 (11), 1364-1366 (2009).
  6. Harte, S. E., Meyers, J. B., Donahue, R. R., Taylor, B. K., Morrow, T. J. Mechanical Conflict System: A Novel Operant Method for the Assessment of Nociceptive Behavior. PLoS One. 11 (2), 0150164(2016).
  7. Pahng, A. R., Edwards, S. Measuring Pain Avoidance-Like Behavior in Drug-Dependent Rats. Current Protocols in Neuroscience. 85 (1), 53(2018).
  8. Odem, M. A., et al. Sham surgeries for central and peripheral neural injuries persistently enhance pain-avoidance behavior as revealed by an operant conflict test. Pain. 160 (11), 2440-2455 (2019).
  9. LaBuda, C. J., Fuchs, P. N. A behavioral test paradigm to measure the aversive quality of inflammatory and neuropathic pain in rats. Experimental Neurology. 163 (2), 490-494 (2000).
  10. LaBuda, C. J., Fuchs, P. N. Morphine and gabapentin decrease mechanical hyperalgesia and escape/avoidance behavior in a rat model of neuropathic pain. Neuroscience Letters. 290 (2), 137-140 (2000).
  11. Vichaya, E. G., et al. Motivational changes that develop in a mouse model of inflammation-induced depression are independent of indoleamine 2,3 dioxygenase. Neuropsychopharmacology. 44 (2), 364-371 (2019).
  12. Hascoët, M., Bourin, M., Nic Dhonnchadha, B. A. The mouse light-dark paradigm: a review. Progress in Neuropsychopharmacology & Biological Psychiatry. 25 (1), 141-166 (2001).
  13. Shepherd, A. J., Mohapatra, D. P. Pharmacological validation of voluntary gait and mechanical sensitivity assays associated with inflammatory and neuropathic pain in mice. Neuropharmacology. 130, 18-29 (2018).
  14. Huck, N. A., et al. Temporal Contribution of Myeloid-Lineage TLR4 to the Transition to Chronic Pain: A Focus on Sex Differences. Journal of Neuroscience. 41 (19), 4349-4365 (2021).
  15. Pitzer, C., La Porta, C., Treede, R. D., Tappe-Theodor, A. Inflammatory and neuropathic pain conditions do not primarily evoke anxiety-like behaviours in C57BL/6 mice. European Journal of Pain. 23 (2), 285-306 (2019).
  16. Sieberg, C. B., et al. Neuropathic pain drives anxiety behavior in mice, results consistent with anxiety levels in diabetic neuropathy patients. Pain Reports. 3 (3), 651(2018).
  17. Meuwissen, K. P. V., van Beek, M., Joosten, E. A. J. Burst and Tonic Spinal Cord Stimulation in the Mechanical Conflict-Avoidance System: Cognitive-Motivational Aspects. Neuromodulation. 23 (5), 605-612 (2020).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

עכברי התנהגות כאבבדיקה לא-רפלקסיביתתגובת כאב מוטיבציוניתפרדיגמת שלוש התאיםגירוי מכני נוקסימדידת זמן השהיה לבריחהפגיעה בעצב עם שריד (Spared Nerve Injury)עזרת פרוינד מלאה (Complete Freund's Adjuvant)מודל קיבוע שבר