מאמר שיטה

טכניקות דיסקציה ודגימה היסטולוגית של הלב במודלים של בעלי חיים גדולים למחלות לב וכלי דם

DOI:

10.3791/63809

⸱

16 ביוני 2022

 , 
1Department of Pathology, University of Agricultural Sciences and Veterinary Medicine Cluj-Napoca

במאמר זה

סיכום

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

בשל האנטומיה המורכבת, פרוטוקול דיסקציה וקציר הניתן לשחזור עקבי עבור דגימות לב יכול להיות מאתגר ליישום. כתב יד זה מציג את המרכיבים המרכזיים של כמה פרוטוקולים סטנדרטיים של דיסקציה לבבית, המדגישים הן את גישות הבדיקה הגסה והן את אתרי הדגימה המשמשים בדרך כלל לבדיקה היסטופתולוגית.

תקציר

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

הבדיקה והדגימה ברוטו הסטנדרטיים הם מרכיבים מרכזיים בשכפול ובהצלחה של מחקרים ניסיוניים במחלות לב וכלי דם שבוצעו בבעלי חיים גדולים. בהתחשב באנטומיה המורכבת של הלב, ההבדלים הבין-מיניים וסוגי התגובות המפצות והפתולוגיות, פרוטוקולים עקביים מאתגרים ליישום. השימוש בפרוטוקולי דיסקציה מרובים מותאם בדרך כלל לניסיונו של הפרוסקט, והעדפה אישית ממשיכה להיות מקור לשונות ניסיונית ובין-תחומית. כאן, המטרה היא להציג את המאפיינים האנטומיים העיקריים וציוני דרך, פרוטוקולי דיסקציה ותקני דגימה היסטולוגיים של הלב בכמה מינים נפוצים (כולל כלבים, חזירים, רועים וחתולים) כמודלים של מחלות לב וכלי דם.

שני פרוטוקולי בדיקה ברוטו סטנדרטיים מוצגים כאן. ראשית, שיטת הזרימה-החוצה, העוקבת אחר כיוון זרימת הדם הפיזיולוגי דרך הלב וכלי הדם הגדולים (המשמשת לעתים קרובות בכלבים, רועים וחזירים), ושנית, טכניקת הדיסקציה בת ארבעת התאים (המודגמת בחתולים). שתי הטכניקות יכולות להיות מותאמות לכל מין בנסיבות ניסיוניות מסוימות. פרוטוקולי הדגימה כוללים את כל תחומי העניין (צומת סינואטריאלי, חדרים, מחיצה בין-חדרית, אטריה, שסתומים ואבי העורקים), ואם הם מבוצעים כראוי, משפרים הן את יכולת השכפול והן את האמינות של מחקרים ניסיוניים.

מבוא

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

בשל האנטומיה המורכבת והקפדנות המוקדמת, שעלולות להפריע להערכת עובי דופן הלב, הבדיקה הגסה של הלב מאתגרת ונוטה למספר טעויות טכניות או פרשנות. זה מוגבר על ידי וריאציות מורפולוגיות interspecific ועל ידי העובדה כי פתולוגיות לב קליניות, גדולות רבות (כולל מקרים מוקדמים של מחלות לב כליליות, פיברוזיס, דלקת עורקים, עמילואידוזיס) אינם קשורים לכל שינוי גס, להיות, למעשה, פתולוגיות היסטולוגיות. דיסקציה מתוקננת ופרוטוקול קצירת דגימות היסטולוגית יכולים להביא עקביות בין משקיפים, ובמקביל, השוואה ושכפול של מחקרים ניסיוניים של מחלות לב וכלי דם.

הדגימות נאספו משני כלבים (Canis lupus familiaris) (בולדוג צרפתי זכר בן 3, ונקבה מעורבת בת 8), חתול (Felis catus) (ילד בן 6, זכר אירופי קצר שיער), חזיר בית (Sus scrofa domesticus) (בן שנה, זכר לבן גדול) ופרה (שור בוס) (בן חודשיים, נקבת הולשטיין). לכל אחד מהמינים הנבחרים יש שימוש מיוחד כמודל קרדיווסקולרי למחלה אחרת; לדוגמה, כלבים הם מודל מועדף למודלים של הפרעות קצב; חתולים מועדפים לקרדיומיופתיה היפרטרופית (HCM), שכן זהו המין עם השכיחות הגבוהה ביותר של HCM; חזירים משמשים מודל לאוטם שריר הלב חריף; ו ruminants משמשים כמודל לשכרות בשל חשיפתם לרעלים שניתן למצוא בקלות על כרי דשא11.

בכתב יד זה מוצגים פרוטוקול נמק אחד ושני פרוטוקולי דיסקציה של הלב, שנועדו לשפר את הבדיקה הגסה וההיסטולוגית של הלב במחלות לב וכלי דם ניסיוניות. הפרוטוקולים המתוארים פותחו על סמך מידע מספרי לימוד וטרינריים 1,2,4,5,6,7,8,9,10,11,12, ספרות כתבי עת 3,13,14, מסמכים רשמיים 15 וסמינרים מקוונים 16 ,17. הדגימות ששימשו במחקר זה נקטפו מ-cadavers שהוגשו למחלקת הפתולוגיה של USAMV Cluj-Napoca לאבחון שגרתי של נתיחה שלאחר המוות.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

פרוטוקול הניסוי קיבל הסכמה ביו-אתית (מס '311 משנת 2022) ואושר על ידי ועדת הביואתיקה של האוניברסיטה למדעי החקלאות והרפואה הווטרינרית קלוז'-נאפוקה, בהתאם הן לחקיקה הלאומית (חוק מס '43 משנת 2014) והן האירופית (הנחיית האיחוד האירופי מס' 63 משנת 2010). עיין בטבלת החומרים לקבלת פרטים על כל החומרים והמכשירים המשמשים בפרוטוקול זה.

1. פרוטוקול נמק

הערה: מומלץ להשתמש באותו פרוטוקול נמק עבור כל המינים המוצגים בשל גישה קלה יותר אליו כאשר הוא מבוצע 2,12. השלבים הבאים מייצגים את הנמק המבוצע בכלב בגודל בינוני. התאם את השלבים בעת ביצוע נמק בנושאים שונים.

  1. שקלו את הנושא והניחו אותו על שולחן הנמק בצדו השמאלי (איור 1A). המשך לבדיקה החיצונית של הנושא (על ידי בדיקה ומישוש של cutis ו רירית, תוך ציון כל השינויים בצבע, עקביות, ונפח).
  2. השתמשו בסכין (או באזמל) ובצעו חתך של 7 ס"מ בבית השחי הימני (איור 1A).
  3. אתרו את הצומת הקוקסו-פמורלי (איור 1A,B). פתחו את הקפסולה בסכין. חותכים את הרצועה של ראש עצם הירך (איור 1B).
  4. השתמשו בסכין כדי להרחיב את חתך העור בבית השחי לסימפיזה המנדיבולרית ובאופן קאודלי לפרינאום (איור 1B).
  5. הסר את העור עם האזמל וחשוף את דופן בית החזה והבטן מקו האמצע הגחוני לרמה של תהליכים רוחביים בחוליות (איור 1B).
  6. עם האזמל והמלקחיים, ליצור דש דרך דופן הבטן, ventrocaudal לקשת costal ימין. פתחו את חלל הבטן בעזרת מספריים – עקבו אחר ההיבט הקאודאלי של ההיפוכונדריה הימנית (איור 1B).
  7. מרחיבים את החתך לאורך אזור הפראלומבר הימני עד לפסגה האיליאק החיצונית. לאחר מכן, להאריך את החתך עד החדרת הערווה של לינאה אלבה.
  8. בקצרה, לבחון את איברי הבטן באתרם (על ידי ציון כל השינויים בצבע, עקביות, נפח, ומיקום של האיברים).
  9. בעזרת האזמל והמלקחיים, נקבו את הסרעפת בנקודה הגבוהה ביותר (איור 1B).
  10. הזן את חלל החזה על ידי הסרת כלוב הצלעות הימני עם שני חלקים אורכיים באמצעות מלקחיים חיתוך עצם. חתך את הקטע הסחוסי parasternal של הצלעות. לאחר מכן, חתכו את המקטע הגבי של הצלעות, פרוקסימלי למפרקים הקוסטוברטליים (איור 1C).
  11. בחנו את הלב באתרו (איור 1C). שימו לב לגודל, למיקום, לצבע, לקשרים עם הרקמות הסמוכות, ועל ידי מישוש, כל שינוי בעקביות9.
    הערה: אם קיימת פקקת או מחלת לב מולדת, יש לנתח את הלב באתרו (גישה זו מאפשרת בדיקה מלאה של כלי הדם הגדולים).
  12. השתמש מספריים כדי לבחון ולפתוח את חלל קרום הלב עם חתך אורך מהבסיס אל קצה הלב. יש לבחון את חלל קרום הלב ואת האפיקרדיום (תוך שימת לב לשינויים בצבע, בעקביות ובנפח)12.
  13. שחררו את הלב עם מספריים, מניבים חלקים רוחביים של אבי העורקים, תא המטען הריאתי, ושני הוורידים. חותכים את הווריד הנבוב העליון לפחות 1 ס"מ מעל הכניסה לאטריום הימני כדי לשמר את crista terminalis11,13.
  14. בחנו את קווי המתאר החיצוניים של האיבר, את הופעת האפיקרדיום, את הופעת שריר הלב על ידי שקיפות האפיקרדיום ואת המראה החיצוני של כלי הדם הגדולים (איור 2A).
    הערה: באופן כללי, הפתיחה והבדיקה של קרום הלב מציגות כמה הבדלים בין המינים. בדיקת חלל קרום הלב מתחילה בבדיקה והערכה חיצונית באמצעות שקיפות קרום הלב של התוכן הכולל של קרום הלב 1,2. אצל חתול או כלב, קרום הלב מכיל בדרך כלל כ-0.25 מ"ל/ק"ג של נוזל דק, צלול, שקוף עד צהוב בהיר9. אם יש כל effusions פתולוגי, הם צריכים להיאסף עם מזרק סטרילי או צינור vacutainer.

2. פרוטוקול דיסקציה

הערה: מספר טכניקות נמק משמשות ללב, שלכל אחת מהן מספר יתרונות. עבור פרוטוקול זה נבחרו שתיים מהטכניקות הנפוצות ביותר: 1) "שיטת הזרימה-החוצה", המאפשרת בדיקה טובה יותר של השסתומים והאנדוקרדיום והיא פרוטוקול המשמש את רוב המינים 2,11,12,16, ו-2) טכניקת "דיסקציה של ארבעה תאים"/"מישור אקוקרדיוגרפי", המשמשת בדרך כלל לחתולים או לכלבים קטנים1, 17.

  1. "שיטת זרימה יוצאת" לנתיחה לבבית 2,11,12,16
    1. מקמו את הלב עם פני הפרוזדור כלפי מעלה (איור 2A).
    2. השתמשו במספריים ובמלקחיים חסרי שיניים כדי לחתוך באופן נרחב מהווריד הנבוב הקאודאלי אל האטריום הימני (איור 2B). המשך את החתך לתוספת האוריקולרית הימנית כדי לחשוף את צומת crista terminalis/sinoatrial (צומת SA). בדוק את שסתום tricuspid מן הנוף הגבי.
    3. חתכו מקטע מהאטריום הימני עד לצומת שבין החדר הימני למחיצת הבין-חדרית (איור 2C). הצג את השסתום האטריובנטריקולרי הימני.
    4. חתך את הקיר החופשי של החדר הימני לאורך המחיצה הבין-חדרית. המשיכו את המקטע עד למקור הגזע הריאתי (איור 2C,D).
    5. בחנו ביסודיות את השסתומים האטריו-ונטריולריים הימניים, כולל הגידים הכורדיים, ואת השרירים הפפילריים (איור 2D). חותכים את הקורדייה.
    6. הניחו מלקחיים דרך תא המטען הריאתי וחתכו את תא המטען לאורכו (איור 2E). לבחון את דרכי היציאה הריאתיות, את מקור תא המטען הריאתי ואת השסתומים החצי-לונאריים.
    7. חתכו את האטריום השמאלי מהוורידים הריאתיים לקצה האוריקל השמאלי (איור 2F). בדוק את המסתם הביקוספיד (המיטרלי) מהראייה הגבית.
    8. הניחו את הלב כאשר המחיצה הבין-חדרית פונה כלפי מטה (איור 2F). בצע חתך גדול בדופן החופשית של החדר מבסיס החדר ועד לקצה הלב. הצג את השסתום האטריובנטריקולרי השמאלי לחלוטין.
    9. חותכים את גיד המיתרים של סף השסתום האטריובנטריקולרי השמאלי.
    10. הניחו מלקחיים דרך מערכת היציאה של החדר השמאלי והשתמשו בה כהנחיה לפתיחת אבי העורקים (איור 2G).
    11. השתמש בתמיסת מלח כדי להסיר את כל קרישי הדם. לאחר הסרת כל קרישי הדם, הערך והשווה את משקל הלב מול מסת הגוף או טבלאות משקל לב סטנדרטיות (טבלה 1)11,13.
    12. שוקלים את הלב.
    13. אם רק צומת ה-SA הוא נקודת העניין, לאחר בדיקת החדר השמאלי, מקם את כל הלב כולו ב-10% פורמלין בעל מאגר נייטרלי (NBF) למשך 24 שעות, וחתוך את האטריום הימני כדי לדגום את ה-crista terminalis.
      הערה: בטכניקה זו, ניתן להעריך בקלות את החדרים השמאלי והימני. היחס בין עובי דופן החדר השמאלי והימני הוא 3:1, עם הבדלים קטנים לפי מינים וגזע; עבור לב העובר החייתי, היחס הוא 1:112.

3. פרוטוקול דגימה להיסטולוגיה16

  1. בעזרת אזמל, בצעו שני חתכים אורכיים מקבילים (במרחק של כ-5 מ"מ זה מזה) המערבים את האטריום הימני, את המסתם הטריקוספיד ואת הדופן החופשית של החדר הימני (איור 2I)
  2. בצעו שני חתכים מקבילים אורכיים (במרחק של כ-5 מ"מ זה מזה) המערבים את האטריום השמאלי, המסתם המיטרלי, השריר הפפילרי הגבי והחדר השמאלי (איור 2H).
  3. בתוך השליש העליון הגבי של הלב, חתך רוחבי את בסיס הלב בעקבות קו, כולל המחיצה הבין-חדרית, האטריום הימני, אבי העורקים, המסתם האאורטלי והמסתם הטריקוספידי (איור 2J).
  4. צרו שני חתכים מקבילים אורכיים המערבים את בסיס אבי העורקים ואת המחיצה הבין-חדרית (איור 2J).
  5. חתכו את האטריום הימני סביב ה-crista terminalis , וספקו מספר מקטעים מקבילים המכוונים באופן רוחבי על ציר האורך של הקריסטה (במרחק של כ-3-4 מ"מ זה מזה) כדי לקבל שש חתיכות של צומת ה-SA (איור 3, איור 4I ואיור 5H).
  6. לקצץ את הרקמות המתקבלות בקלטות היסטולוגיות.
    הערה: פרוטוקול חסימה מומלץ: שלב 3.1.-בלוק היסטולוגי 1 (איור 6 מציג את השקופית המתקבלת מבלוק זה.), שלב 3.2.-בלוק היסטולוגי 2 (איור 7 מציג את השקופית המתקבלת מבלוק זה), שלב 3.4.-בלוק היסטולוגי 3 (איור 8 מציג את השקופית המתקבלת מבלוק זה), שלב 3.5.-בלוק היסטולוגי 4 (איור 9 מציג את השקופית המתקבלת מבלוק זה).
  7. לטבול את הרקמות ב 10% NBF במשך 48 שעות לפחות.

4. דגימת עורקים כליליים 3,10,14

  1. השתמשו במלקחיים ובאזמל כדי לנתח את העורקים הכליליים מהחריץ הפרה-קונלי הלבבי (איור 4K). לתקן את העורק הכלילי לילה ב 10% NBF.
  2. במידת הצורך, יש להסיר את החישוב כראוי בתערובת של 1:1 של 8% חומצה פורמית וחומצה הידרוכלורית.
  3. בצע חתכים רוחביים מרובים במרווחים של 3 מ"מ. מניחים את החלקים בקלטת ולאחר מכן מכניסים את הקלטת ל-10% NBF עד להטמעה.
    הערה: חזירים יכולים לשמש כמודל לב לבני אדם, במיוחד כשמדובר במחלת לב כלילית. לפיכך, דגימות משלימות ומקטעים היסטולוגיים של עורקים כליליים מומלצים 3,10,14.

5. טכניקת כריתת "ארבעת החדרים"/"מישור אקוקרדיוגרפי" של הלב 1,17

הערה: טכניקת הדיסקציה בת ארבעת התאים מורכבת מחתך מהבסיס אל קצה הלב כדי לקבל את התצוגה הסטנדרטית1. טכניקת "ארבעה תאים" מיושמת בצורה הטובה ביותר על רקמות קבועות.

  1. הכניסו את כל הלב ל-10% NBF למשך 48 שעות לפחות.
  2. לאחר שהלב מקובע ב-10% NBF במשך 48 שעות לפחות (איור 10A), הניחו שני מלקחיים ישרים חסרי שיניים, אחד דרך האטריום-אטריום-טריקוספיד השסתום הימני של הגולגולת, והשני דרך הווריד הריאתי-אטריום-מסתם מיטרלי-מיטרלי-חדר שמאלי (איור 10B).
  3. השתמשו ברווח שבין זרועות המלקחיים כהנחיה ללהב החיתוך מהבסיס ועד לקצה הלב (איור 10C). ספק מקטע אורך נוסף במרחק של כ-5 מ"מ מהמקטע המתואר בשלב 5.2. על קטע הלב, הכולל את אבי העורקים.
  4. עם חתך רוחבי, להפריד לחלוטין את בסיס הלב מן apex. מניחים כל מקטע רקמה בקלטת היסטולוגית.
    הערה: פרוטוקול חסימה מומלץ: הבלוק ההיסטולוגי הלבבי 5 (איור 11A מראה את השקופית המתקבלת מבלוק זה), הבלוק ההיסטולוגי של בסיס הלב 6 (איור 11B מציג את השקופית המתקבלת מבלוק זה).
  5. מניחים את הקסטות ב-10% NBF עד להטמעה. לתקן את כל דגימות הלב ב 10% NBF (יותר מ 10 פעמים נפח של רקמה), לעבד אותם באופן שגרתי בשעוות פרפין, חתך בעובי 4 מיקרומטר, וכתם עם כתם hematoxylin ו eosin (כתם H&E) בעקבות פרוטוקול10 שתואר קודם לכן.
    הערה: אם יש חשד לדלקת שריר הלב, "יש לשמור על פיסת רקמת לב טרייה בתנאים סטריליים עם חומר כירורגי סטרילי ומיכל דגימה סטרילי למחקרים מיקרוביולוגיים ונגיפיים"13.

6. תיעוד מצולם

הערה: תיעוד הצילום הוא שלב אופציונלי בבדיקת נמק. עם זאת, צילום והקלטות וידאו חיוניים כדי שיהיה "תיעוד מדויק של אנטומיה נורמלית ולא תקינה"3.

  1. לתיעוד צילומי נכון, צלמו תמונות דיגיטליות תוך ביצוע "דיסקציה מתקדמת של רקמות הלב"13. עיין בהנחיות לתיעוד צילומי ותצלום15 מבט כללי קדמי ואחורי; פרוסת הלב; וכל הנגעים החשודים.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

פרוטוקול זה שימש להדמיית תכונות אנטומיות ולאיסוף דגימות לבדיקה היסטולוגית של הלב בארבעה מינים שונים (כלב, חתול, חזיר ופרה). פרוטוקול הנמק חזר על עצמו בכל אחד מהמינים שהוזכרו לעיל, אך הומחש רק בכלבים. פרוטוקול הנמק מתחיל בבדיקה חיצונית מקיפה של הגוף (איור 1A) (כולל העור, בלוטות הלימפה הניתנות לבדיקה והרירית החיצונית), מדידת המשקל הכולל, וניקוד המצב הכללי של החיה. לאחר הבדיקה החיצונית, הנמק ממשיך עם מעטפת חלקית של הגוף (מכוונת לבדיקה יסודית של השרירים התת-קרקעיים והשטחיים) ועם פתיחת חללי הגוף ...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

בעת ביצוע הפרוטוקול הנוכחי, יש לשקול בזהירות מספר שלבים קריטיים לקבלת תוצאות עקביות. בבעלי חיים צעירים, מדידות הלב שונות מאלו של מבוגרים (כולל עובי דופן החדר), ובאופן כללי, הלב מייצג חלק גדול יותר ממשקל הגוף11,12. ניתן לכמת את מידת ההיפרטרופיה החדרית על ידי הפעלת נוסחת משקל כללית, היחס בין החדר השמאלי בתוספת מחיצה חלקי משקל החדר הימני החופשי, אשר, בתנאים רגילים, צריך להיות 2.8-4.0 בבעלי חיים בוגרים (טבלה 1). אם יחס זה עולה על 4.0...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

למחברים אין ניגודי עניינים לחשוף.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
תמיסת מלח 0.9%B. BRAUN MELSUNGEN AGלשטיפת כל הדם, וקרישי דם מהלב.
10% פורמלין ניטרלי חומצי (NBF)  Q Path11699404חומרים לאיסוף דגימות היסטופתולוגיה.
מלקחיים לחיתוך עצםHELEN SRLLS109HVמכשיר יציב לחיתוך עצם.
קרש חיתוךAmbition86304למניפולציה קלה יותר, וחיתוך האיברים.
תמיסת הסרת אבדןThermo Scientific TBD-26764004תערובת 1:1 של 8% חומצה פורמית וחומצה הידרוכלורית.
מצלמה דיגיטליתCanon Inc.PowerShot SX540 HSלתיעוד צילומי ווידאוגרפי.
מלקחייםMKD-Medicale15-430מכשירי דיסקציה.
קלטות היסטולוגיות  Q Path720-2215חומרים לאיסוף דגימות היסטופתולוגיה.
מידות: 3 ופעמים; 2.5 ופעמים; 0.4 ס"מ
סכיןTEHNO FOOD COM SERV SRLD2006/15להב חד לחיתוך רקמות רכות.
כפפות לטקסציוד הגנה MKD-MedicaleSANTEX-S.
מסכהMKD-Medicale21221ציוד הגנה.
צלחות פטריMKD-Medicale0598-1Vחומרים לאיסוף דגימות בדיקה נלוות.
מקבלי פלסטיקקורנינג גוסליןTP200-02חומרים לאיסוף דגימות היסטופתולוגיה.
סולםESPERANZAMEEKS008לשקילת האיברים.
עסקאות סולם לבן72לשקילת הנושאים.
אזמלMKD-Medicale10322Eלהב חד לחיתוך רקמות רכות.
מספרייםMKD-Medicale13-260מכשירי דיסקציה.
קרצוףMKD-Medicale410100-52ציוד הגנה.
מזרקיםMKD-Medicale10573EUחומרים לאיסוף דגימות בדיקה נלוות.
W04479004

מקורות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Ashworth, M. Pathology of Heart Disease in the Fetus, Infant and Child: Autopsy, Surgical and Molecular Pathology. , Cambridge University Press. Cambridge. (2019).
  2. Barone, R. Anatomie Comparée des Mammifères Domestiques: Angiologie. Vigot, , Lyon. (2011).
  3. Basso, C., et al. Guidelines for autopsy investigation of sudden cardiac death: 2017 update from the Association for European Cardiovascular Pathology. Virchows Archiv. 471 (6), 691-705 (2017).
  4. Bishop, S. P. Chapter 37 - Necropsy Techniques for the Heart and Great Vessels. Textbook of Canine and Feline Cardiology: Principles and Clinical Practice,.2nd ed. Fox, P. R., Sisson, D., Moïse, N. S. , W. B. Saunders. Philadelphia, PA. 846-848 (1999).
  5. Joseph, D. R. The ratio between the heart-weight and body weight in various animals. Journal of Experimental Medicine. 10 (4), 521-522 (1908).
  6. Keenan, C. M., Vidal, J. D. Standard morphologic evaluation of the heart in the laboratory dog and monkey. Toxicologic Pathology. 34 (1), 67-74 (2006).
  7. Latimer, H. B. Variability in body and organ weights in the newborn dog and cat compared with that in the adult. The Anatomical Record. 157 (3), 449-456 (1967).
  8. Lee, J. C., Taylor, F. N., Downing, S. E. A comparison of ventricular weights and geometry in newborn, young, and adult mammals. Journal of Applied Physiology. 38 (1), 147-150 (1975).
  9. McDonough, S. P., Southard, T. Necropsy Guide for Dogs, Cats, and Small Mammals. , John Wiley & Sons. 9(2016).
  10. Prophet, E. B., Mills, B., Arrington, J. B., Sobin, L. H. Laboratory Methods in Histotechnology. , Armed Forces Institute of Pathology-American Registry of Pathology. Washington, DC. 29-58 (1992).
  11. Robinson, W. F., Robinson, N. A. Chapter 1 - Cardiovascular System. Jubb, Kennedy & Palmer's Pathology of Domestic Animals, 6th ed. Grant Maxie, M., Saunders, W. B. 3, 12-49 (2016).
  12. Tabaran, A. F. Autopsie et Medecine Legale: Guide de Travaux Pratiques. , Academic Press. 21-86 (2020).
  13. Autopsypathology.net. , Available from: http://autopsypathology.net/wpcontent/uploads/2016/02/rcpath_cardiacdeath_jul2015.pdf (2021).
  14. Pathology.ucla.edu. , Available from: http://pathology.ucla.edu/workfiles/Education/Residency%20Program/Gross%20Manual/Endomyocardial%20Biopsy%20(EMB).pdf (2021).
  15. Arbeitsgruppen Sudden Cardiac Death. , Available from: http://www.sgrm.ch/medizin/arbeitsgruppen/sudden-cardiac-death.html (2021).
  16. Toxpath.org. , Available from: https://www.toxpath.org/Trimming-N-Collection-Training.asp (2021).
  17. YouTube.com. , Available from: httpswwwyoutubecomwatchvxkJ2WGqi2Qw&t2494s (2021).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

בקש הרשאה לשימוש חוזר בטקסט או באיורים של מאמר JoVE זה

בקש הרשאה

תגיות

Heart DissectionHistological SamplingLarge Animal ModelsCardiovascular DiseasesGross ExaminationInflow Outflow MethodFour Chamber DissectionHeart AnatomyCardiac Tissue SamplingSinoatrial Node

מאמרים קשורים