מאמר שיטה

ניתוח שחבור טרום RNA: ממדע בסיסי למחקר יישומי

1.8K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/64630

⸱

12 בספטמבר 2022

במאמר זה

תקציר

מאמרים שנדונו:

Voss, P. G., Haudek, K. C., Patterson, R. J., Wang, J. L. השלמה של פעילות שחבור על ידי קומפלקס snrnp של גלקטין-3-u1 על חרוזים. כתב העת לניסויים חזותיים. (166), e61990 (2020).

וונג, ג'יי., מרטלי, וו., שארמה, ס. בדיקה סלולרית מבוססת כתב לניטור יעילות השחבור. כתב העת לניסויים חזותיים. (175), e63014 (2021).

van der Feltz, C. מבחני ACT1-CUP1 קובעים את הרגישויות הספציפיות למצע של מוטציות spliceosomal בשמרים ניצנים. כתב העת לניסויים חזותיים. (184), e63232 (2022).

Carvalho, F. A., Barros, M. R. A., Girotto, T. P. F., Perona, M. G., Oliveira, C. C. ניצול גרפיקס לזיהוי אינטראקטורים חולפים של תת-קומפלקסים של saccharomyces cerevisiae spliceosome. כתב העת לניסויים חזותיים. (165), e61994 (2020).

Basei, F. L., Moura, L. A. R., Kobarg, J. שימוש בכלי המיניגן E1a לחקר שינויים בשחבור mRNA. כתב העת לניסויים חזותיים. (170), e62181 (2021).

Gatti da Silva, G. H., Coltri, P. P. מבחן מדווח לניתוח הבשלת מיקרו-רנ"א אינטרוני בתאי יונקים. כתב העת לניסויים חזותיים. (184), e63498 (2022).

מאמר מערכת

אחד המניעים העיקריים של פנוטיפים של תאים באיקריוטים הוא ביטוי גנים. הבקרה על ביטוי הגנים חיונית ומסתמכת על מספר חלבונים ורנ"א, החל משעתוק ועד לתהליכי תרגום1. שינויים לאורך שלבים אלה יכולים לעורר מספר מחלות שונות. עיבוד ושחבור RNA מהווים קבוצה חשובה של תגובות האחראיות ליצירת מולקולות RNA בוגרות 2,3,4,5. שחבור מסיר אינטרונים ומצטרף לאקסונים כדי ליצור מולקולת RNA בוגרת המסוגלת לבצע פעילויות פונקציונליות ומבניות. היעילות ושיעורי השחבור משפיעים מאוד על הפנוטיפים שנצפו בתנאים שונים6.

השחבור מבוצע על ידי מנגנון מקרומולקולרי מורכב בשם spliceosome, המורכב מחמישה snRNAs ויותר מ-100 חלבונים 5,7. בנוסף לרכיבי חלבון הליבה, לספלייסאוזומים יש חלבונים טרנס-אקטיביים, שעשויים להשפיע ישירות על ויסות תהליך זה 8,9. חשיבות השחבור באה לידי ביטוי בספקטרום הרחב של מחלות הנגרמות על ידי שינויים בתהליך זה, כולל הפרעות ניווניות, מחלות נוירומוסקולריות ומספר סוגים של סרטן 3,10,11. חקר דינמיקת שחבור והרכבת שחבור יכול להשפיע מאוד על הבנת הביולוגיה של הפרעות אלו.

הרכבת Spliceosome מתחילה באסוציאציה של U1 snRNP עם אזור ספציפי של הקדם-mRNA ששועתק לאחרונה, אתר החיבור 5' 5,8. ההתאמה והזיהוי היעילים של אתרי אחוי 5' על ידי U1 snRNA לא רק מגדירים את אתרי החיבור שיש להשתמש בהם, אלא גם שולטים אילו פרה-RNAs יחוברו ראשונים, או בצורה יעילה יותר 6,12,13. השימוש באתרי חיבור שונים יכול ליצור איזופורמים חלופיים מרובים של RNA בוגרים מאותו גן. שחבור אלטרנטיבי הוא מקור עיקרי למגוון פרוטאומי, המאפשר יצירת RNA וחלבונים הנדרשים במהלך ההתפתחות או בתאים ורקמות שונות14,15. תעתיקי RNA חלופיים יכולים ליצור איזופורמים של חלבון קטומים או לא פונקציונליים, שעלולים לגרום למחלות10,16. לכן, למרכיבי החלבון של קומפלקס U1 snRNP יש תפקיד רגולטורי חשוב בשחבור1. גלקטין-1 וגלקטין-3 (Gal1 ו-Gal3) הם מרכיבים של U1 snRNP17,18. Voss et al.19 מציעים שיטת פיצול תמצית גרעינית להשגת קומפלקסים מועשרים ב-Gal3-U1 snRNP המסוגלים להציל פעילות שחבור בתאים שהתרוקנו מ-U1. ניתוח זה תורם להבנת המנגנון של קשר Gal3 לספלייסוזומים, וניתן להשתמש בגישות דומות כדי לחקור חלבונים מווסתים פוטנציאליים אחרים.

הקישור של U1 snRNP לאתרי חיבור 5' הוא מתווך חשוב של נאמנות שחבור20. מוטציות באתרי החיבור 5' הן קריטיות וגורמות לאובדן זיווג U1 snRNP, וכתוצאה מכך פגמי שחבור2. סיסטיק פיברוזיס, למשל, נגרמת על ידי אתר חיבור 5' מוטנטי בגן CFTR21. Wong et al.22 מתארים שיטה לפיצוי על מוטציות באתר חיבור 5' עם מוטציות משלימות ב-U1 snRNAs. הגישה מקדמת בהצלחה הכללת אקסון, מייצרת RNA בוגרים וכתוצאה מכך חילוץ מפגמי שחבור. בנוסף להצעת טיפול אפשרי מבוסס RNA למחלות אלה, גישה זו יכולה להיות שימושית לניתוח רצפים רגולטוריים בודדים ב-pre-mRNAs23.

הנאמנות של אסוציאציה של U1 snRNA לאתרי חיבור נחקרת גם במערכת מודל השמרים על ידי ואן דר פלץ24. השמרים הניצנים Saccharomyces cerevisiae היו בשימוש נרחב כדי לחקור קינטיקה של שחבור והרכבת שחבור25. קינטיקה של שחבור והרכב השחבור נשמרים היטב באיקריוטים, ושמרים שימשו באופן נרחב לניטור היווצרותם של קומפלקסי ביניים במהלך ההרכבה26. בדיקת המדווח ACT1-CUP1 מבוססת על ביטוי של זוג גנים: ACT1, המכיל אינטרון אחד עם רצפי אתרי חיבור אופטימליים, ו-CUP1, המבטא כלאטור נחושת, המגן על התא מפני הנזק שנגרם על ידי יון מתכת זה. CUP1 מתבטא רק אם ACT1 מחובר כהלכה, ולכן נוצרת מערכת המדווח27. ניתן לנטר את צמיחת התאים בתנאים עם ריכוזי נחושת שונים כדי לטפל ביעילות השחבור של רצפי אינטרונים שונים או באמצעות חלבונים רגולטוריים שונים. ואן דר פלץ24 מציג שיטה לניתוח ההשפעות של חלבון רגולטורי שחבור באמצעות מערכת דיווח זו ומבחני כדאיות נחושת. ניתן להשתמש בגישה דומה לתכנון וריאציות ברצפי אינטרונים בשילוב עם חלבונים שונים כדי לטפל בהצלחת שחבור בשמרים.

בנוסף לאסוציאציה של snRNP, קשירת החלבונים חיונית במהלך הרכבת spliceosome1. השליטה בפעילות הספלייסוזום תלויה ישירות בהרכב החלבון שלו ובאינטראקציות המתרחשות במהלך היווצרותו. המאפיינים המבניים והתפקודיים של רכיבי החלבון חשובים להפעלת הקומפלקס 5,7. Carvalho et al.28 משתמשים בגישה המבוססת על שיטת Grafix, המסתמכת על קישור צולב של חלבון בלתי הפיך בניתוח שיפוע גליצרול. ניתוח זה מתייחס להרכב החלבונים ולאינטראקציות החולפות המתרחשות במהלך ההרכבה, שיכולות להיות קריטיות להרכבת הקומפלקס הפעיל ולהצלחת השחבור. ניתוח של קומפלקסים מקרומולקולריים דינמיים אחרים בגישה זו יכול להיות שימושי מאוד ולספק תובנות לגבי ארגון ואינטראקציות חלבון.

הכימיה ומהירות השחבור מושפעות גם מהאסוציאציה הדינמית של רכיבי השחבור השונים8. לאחרונה, השימוש במעכבי שחבור של מולקולות קטנות גילה כי ניתן לעכב שלבים ספציפיים במבחנה עקב המהירות המופחתת של תגובות שחבור 29,30. Basei et al.31 מציגים שיטה לניתוח שחבור חלופי על השפעת הגורם הרגולטורי של השחבור, Nek4. השכיחות של איזופורמים של תעתיק המובילים לפנוטיפים פרו-או אנטי-גידוליים בתאי HEK293 באמצעות מיניגן מטופלת. ויסות שגוי של שחבור או שימושים שונים באתרי חיבור עלולים להוביל ליצירת תעתיק חלופי, ולגרום לסוגים שונים של סרטן16. השימוש במודולטורים או מעכבי שחבור במהלך הטיפול יכול לקבוע את בחירת אתרי החיבור, ובכך להגדיר את האיזופורמים האלטרנטיביים שנוצרו, בין אם פרו-גידוליים או אנטי-גידוליים. פקליטקסל וציספלטין משמשים כיום כחומרים כימותרפיים. עם השימוש במיניגן E1A, מטופלות ההשפעות של תרופות אלו בשחבור אלטרנטיבי. ניתוח שחבור חלופי באמצעות מיניגנים הוא אסטרטגיה חשובה לניטור ההשפעות של חלבונים טרנס-אקטיביים ושינויי שחבור על טיפול ושימוש בתרופות ספציפיות.

בקו זה, דווח על מיקרו-RNA אינטרוני (miRNAs) רבים הקשורים לפנוטיפים גידוליים32,33. הבקרה והוויסות של סינתזת miRNA אינטרונית וביוגנזה יכולים להיות קשורים לשליטה בתגובות שחבור. miRNAs יכולים לווסת את היציבות והשכיחות של mRNAs בתאים, ולהשפיע על יציבות ה-RNA ועל קצב התרגום34. גאטי דה סילבה וקולטרי35 מתארים מערכת דיווח להערכת ביוגנזה והתבגרות של miRNA אינטרוני, אשר יכולה להיות קשורה ישירות לשינויים בפנוטיפים התאיים ולקביעת מאפיינים פרו-או אנטי-גידוליים. עם אפנון החלבון הרגולטורי שחבור HuR, המערכת מאפשרת ניתוח של הביוגנזה והפעילות התפקודית של miRNA אונקוגני אינטרוני.

ניתוח שחבור קדם-רנ"א והבשלה של רנ"א שונים בתאים ספציפיים יהיו חיוניים להבנה ולפירוש של מידע גנומי. שמרים ויונקים נשמרים, ומחקר בסיסי יכול לשפר את השימוש בשיטות השונות המיושמות בטיפולים ובביו-רפואה. למרות הכמות הגדולה של נתונים גנומיים הזמינים כיום, הביטוי של מידע זה בפנוטיפים עשוי להיות ספציפי לתא ותלוי בעיבוד RNA ושחבור. הבנת הרגולציה המורכבת של תהליך זה תהיה חיונית למחקר עתידי.

גילויים

למחבר אין מה לחשוף.

תודות

המחבר מודה למענק Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado de São Paulo (FAPESP) מספר 2019/21874-5, ולאוניברסיטת סאו פאולו על תמיכה מתמשכת במחקר.

מקורות

  1. Wahl, M. C., Will, C. L., Lührmann, R. The spliceosome: design principles of a dynamic RNP machine. Cell. 136 (4), 701-718 (2009).
  2. Scotti, M. M., Swanson, M. S. RNA mis-splicing in disease. Nature Reviews Genetics. 17 (1), 19-32 (2016).
  3. Singh, R. K., Cooper, T. A. Pre-mRNA splicing in disease and therapeutics. Trends in Molecular Medicine. 18 (8), 472-482 (2012).
  4. Staley, J. P., Guthrie, C. Mechanical devices of the spliceosome: Motors, clocks, springs, and things. Cell. 92 (3), 315-326 (1998).
  5. Wilkinson, M. E., Charenton, C., Nagai, K. RNA splicing by the spliceosome. Annual Review of Biochemistry. 89, 291(2020).
  6. Fu, X. D., Ares, M. Context-dependent control of alternative splicing by RNA-binding proteins. Nature Reviews Genetics. 15 (10), 689-701 (2014).
  7. Zhang, X., et al. An atomic structure of the human spliceosome. Cell. 169 (5), 918-929 (2017).
  8. Will, C. L., Lührmann, R. Spliceosome structure and function. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 3 (7), 003703(2011).
  9. Jurica, M. S., Moore, M. J. Pre-mRNA splicing: Awash in a sea of proteins. Molecular Cell. 12 (1), 5-14 (2003).
  10. Coltri, P. P., dos Santos, M. G. P., da Silva, G. H. G. Splicing and cancer: Challenges and opportunities. Wiley Interdisciplinary Reviews: RNA. 10 (3), 1527(2019).
  11. Havens, M. A., Duelli, D. M., Hastings, M. L. Targeting RNA splicing for disease therapy. Wiley Interdisciplinary Reviews: RNA. 4 (3), 247-266 (2013).
  12. Pandit, S., et al. Genome-wide analysis reveals SR protein cooperation and competition in regulated splicing. Molecular Cell. 50 (2), 223-235 (2013).
  13. Wang, Y., et al. A complex network of factors with overlapping affinities represses splicing through intronic elements. Nature Structural and Molecular Biology. 20 (1), 36-45 (2013).
  14. Kornblihtt, A. R., et al. Alternative splicing: A pivotal step between eukaryotic transcription and translation. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 14 (3), 153-165 (2013).
  15. Lee, Y., Rio, D. C. Mechanisms and regulation of alternative pre-mRNA splicing. Annual Review of Biochemistry. 84, 291(2015).
  16. Dvinge, H., Kim, E., Abdel-Wahab, O., Bradley, R. K. RNA splicing factors as oncoproteins and tumour suppressors. Nature Reviews Cancer. 16 (7), 413-430 (2016).
  17. Vyakarnam, A., Dagher, S. F., Wang, J. L., Patterson, R. J. Evidence for a role for galectin-1 in pre-mRNA splicing. Molecular and Cellular Biology. 17 (8), 4730-4737 (1997).
  18. Dagher, S. F., Wang, J. L., Patterson, R. J. Identification of galectin-3 as a factor in pre-mRNA splicing. Proceedings of the National Academy of Sciences. 92 (4), 1213-1217 (1995).
  19. Voss, P. G., Haudek, K. C., Patterson, R. J., Wang, J. L. Complementation of splicing activity by a galectin-3-u1 snrnp complex on beads. Journal of Visualized Experiments. (166), e61990(2020).
  20. Shao, W., Kim, H. -S., Cao, Y., Xu, Y. -Z., Query, C. C. A U1-U2 snRNP interaction network during intron definition. Molecular and Cellular Biology. 32 (2), 470-478 (2012).
  21. Michaels, W. E., Pena-Rasgado, C., Kotaria, R., Bridges, R. J., Hastings, M. L. Open reading frame correction using splice-switching antisense oligonucleotides for the treatment of cystic fibrosis. Proceedings of the National Academy of Sciences. 119 (3), 2114886119(2022).
  22. Wong, J., Martelly, W., Sharma, S. A reporter based cellular assay for monitoring splicing efficiency. Journal of Visualized Experiments. (175), e63014(2021).
  23. Hamid, F. M., Makeyev, E. v A mechanism underlying position-specific regulation of alternative splicing. Nucleic Acids Research. 45 (21), 12455-12468 (2017).
  24. vander Feltz, C. ACT1-CUP1 assays determine the substrate-specific sensitivities of spliceosomal mutants in budding yeast. Journal of Visualized Experiments. (184), e63232(2022).
  25. Plaschka, C., Newman, A. J., Nagai, K. Structural basis of nuclear pre-mRNA splicing: Lessons from Yeast. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 11 (5), 032391(2019).
  26. Stevens, S. W., Abelson, J. Yeast pre-mRNA splicing: methods, mechanisms, and machinery. Methods in Enzymology. 351, 200-220 (2002).
  27. Lesser, C. F., Guthrie, C. Mutational analysis of pre-mRNA splicing in Saccharomyces cerevisiae using a sensitive new reporter gene, CUP1. Genetics. 133 (4), 851-863 (1993).
  28. Carvalho, F. A., Barros, M. R. A., Girotto, T. P. F., Perona, M. G., Oliveira, C. C. Utilization of grafix for the detection of transient interactors of saccharomyces cerevisiae spliceosome subcomplexes. Journal of Visualized Experiments. (165), e61994(2020).
  29. Effenberger, K. A., Urabe, V. K., Jurica, M. S. Modulating splicing with small molecular inhibitors of the spliceosome. Wiley Interdisciplinary Reviews: RNA. 8 (2), 1381(2017).
  30. Corrionero, A., Miñana, B., Valcárcel, J. Reduced fidelity of branch point recognition and alternative splicing induced by the anti-tumor drug spliceostatin A. Genes and Development. 25 (5), 445-459 (2011).
  31. Basei, F. L., Moura, L. A. R., Kobarg, J. Using the e1a minigene tool to study mrna splicing changes. Journal of Visualized Experiments. (170), e62181(2021).
  32. Volinia, S., et al. A microRNA expression signature of human solid tumors defines cancer gene targets. Proceedings of the National Academy of Sciences. 103 (7), 2257-2261 (2006).
  33. Lu, J., et al. MicroRNA expression profiles classify human cancers. Nature. 435 (7043), 834-838 (2005).
  34. Bartel, D. P. Metazoan microRNAs. Cell. 173 (1), 20-51 (2018).
  35. Gatti da Silva, G. H., Coltri, P. P. A reporter assay to analyze intronic microRNA maturation in mammalian cells. Journal of Visualized Experiments. (184), e63498(2022).

הדפסות חוזרות והרשאות

גלה מאמרים נוספים

Splicing ActivityGalectin-3U1 SnRNP ComplexSplicing EfficiencySpliceosomal MutantsBudding YeastTransient InteractorsSaccharomyces CerevisiaeE1a Minigene ToolIntronic MicroRNA Maturation