Method Article

עדכון סטטוס CryoEM ופיתוחים חדשניים

DOI:

10.3791/65021

March 3rd, 2023

In This Article

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

מאמרים שנדונו:

Truong, C. D. et al. הכנת דגימה בשיטה חד-שכבתית ליפידים למחקרים קריסטלוגרפיים אלקטרונים. כתב העת לניסויים חזותיים. (177), e63015 (2021).

ג'ונסון, מ.ק., גרנט, א.ג., שמידט-קרי, א. טכניקת כתם הקילוף: שיטת הכנת דגימה cryo-EM להפרדת שכבות בודדות מדגימות ביולוגיות רב שכבתיות או מרוכזות. כתב העת לניסויים חזותיים. (184), e64099 (2022).

Chang, Y.-C., Chen, C.-Y., Tsai, M.-D. הכנת רשתות דגימה בטמפרטורה גבוהה עבור cryo-EM. כתב העת לניסויים חזותיים. (173), e62772 (2021).

Kang, M.-H., Lee, M., Kang, S., Park, J. ייצור שבב בתבנית מיקרו עם עובי מבוקר למיקרוסקופ אלקטרונים קריוגני בתפוקה גבוהה. כתב העת לניסויים חזותיים. (182), e63739 (2022).

Bieber, A., Capitanio, C., Wilfling, F., Plitzko, J., Erdmann, P. S. הכנת דגימה על ידי כרסום קרן יונים ממוקדת בקורלציה תלת מימדית לטומוגרפיה קריו-אלקטרונית ברזולוציה גבוהה. כתב העת לניסויים חזותיים. (176), e62886 (2021).

DiCecco, L.-A. et al. קידום הדמיה ברזולוציה גבוהה של מכלולי וירוסים בנוזל וקרח. כתב העת לניסויים חזותיים. (185), e63856 (2022).

Kumar, A., P, S., Gulati, S., Dutta, S. תוכנת רכישת נתונים ידידותית למשתמש, בעלת תפוקה גבוהה ואוטומטית לחלוטין למיקרוסקופ קריו-אלקטרונים של חלקיק יחיד. כתב העת לניסויים חזותיים. (173), e62832 (2021).

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

עוד לפני הענקת פרס נובל לשנת 2017 על מיקרוסקופ אלקטרונים קריו-אלקטרונים (cryoEM) של מולקולות ביולוגיות, התחום עורר התרגשות. מהפכת הרזולוציה הייתה בעיצומה, והביולוגיה המבנית חיפשה את cryoEM כשיטת אפיון המתקרבת לתקן הזהב של קריסטלוגרפיה בקרני רנטגן1. בשלב מוקדם, תחום ה-cryoEM כלל בעיקר נתונים שנוצרו על ידי מיקרוסקופי אלקטרונים להעברת קריו (cryoTEMs). כעת, ככל שהתקדמו המיקרוסקופים, מכשירי הכנת הדגימות ושיטות הכנת הדגימות, סוגי הנתונים שנוצרו הפכו מגוונים יותר. CryoEM כבר לא שמור לאפיון חלבונים על ידי cryoTEM. התחום גדל וכולל כעת נתונים שנוצרו ממיקרוסקופי אלקטרונים סורקים בהקפאה וקרן יונים ממוקדת (cryoSEM/FIB). ההשפעה מורגשת באופן נרחב יותר במספר דיסציפלינות, כולל מחקר הדמיה על מולקולות, תאים, רקמות וחומרים סינתטיים כגון הידרוג'לים.

התקדמות ביכולות ההדמיה הייתה כוח מניע בפיתוח cryoEM. שיפורים במצלמות, גלאים ועיבוד תמונה סללו את הדרך להדמיה עם פחות קלט אנרגיה, מה שמאפשר לדגימות ביולוגיות עדינות לשרוד את תהליך ההדמיה. ב-TEMs, החשיפה לאלומה במינון נמוך תורגמה ליישום של טומוגרפיה שבה דגימה בודדת מצולמת שוב ושוב במספר זוויות כדי ליצור שחזור תלת מימד 2,3. ההתקדמות ב-SEM/FIB הביאה גם לרזולוציה משופרת תוך שימוש בפחות אנרגיה. חשוב לציין, זה הוביל להדמיה משופרת של דגימות לא מוליכות, מה שמתורגם להדמיה בנפח טוב יותר ב-SEM/FIBs 4,5. שיפורים אלה קידמו את כל הדמיית המיקרוסקופ האלקטרונים הביולוגית, אך הם שיפרו במיוחד את הדמיית הקריו, שבה הדגימות עדינות ואין בהן מתכות כבדות נוספות כדי לשפר את הניגודיות.

ככל שיכולות ההדמיה התקדמו, כך גם מכשירי הכנת הדגימות. בהכנת דגימת cryoEM, השלב הראשון הוא זיגוג מוצלח של הדגימות. דגימות מיובשות מוקפאות ליצירת קרח אמורפי, ובכך נמנעות הנזק שנגרם על ידי היווצרות גבישי קרח. האסטרטגיות המובילות הן הקפאת צלילה באתאן נוזלי למולקולות ותאים קטנים או הקפאה בלחץ גבוה (HPF) לדגימות גדולות יותר בעובי של עד כמה מאות מיקרונים. ההתקדמות בטכנולוגיית הקפאת צלילה מאפשרת לכידה טובה יותר של מולקולות בכל הכיוונים על ידי הפחתת ההרכבה העצמית לאורך ממשק האוויר/מים6. בנוסף, ההתקדמות בטכנולוגיית HPF מאפשרת גירוי אור וחשמלי של דגימות רגעים לפני הקפאה7. לאחרונה פותחה טכנולוגיית HPF חדשה שיכולה להתממשק עם מיקרוסקופ פלואורסצנטי, ומאפשרת עיכוב זמן קצר (<2 שניות) בין הדמיית הקרינה של תאים חיים לבין הקפאת HPF8.

ההתקדמות הנ"ל המריצתה את תחום ה-cryoEM והעניקה השראה לפיתוח שיטות חדשות. הייתה גם התחדשות של טכניקות מבוססות. כאן, אנו מציגים אוסף של שיטות המתמקדות בקידום cryoEM במטרה להפיץ אסטרטגיות אלו לתחום המחקר המתרחב במהירות.

בעוד שהשיפורים ביכולות ההדמיה ובמכשירי הכנת הדגימה היוו כוח מניע מרכזי מאחורי ההתקדמות בתחום ה-cryoEM, מכשול מרכזי במחקר זה ממשיך להיות הכנה מעשית של דגימות. Truong et al.9 מציגים שיטה המנצלת את היווצרות השומנים החד-שכבתיים בממשק האוויר/מים. שכבת שומנים נוצרת על רשת TEM ומשמשת כפיגום לחלבוני הממברנה המעניינים. עבור דגימות ממברנה מרובות או מוערמות, Johnson et al.10 מציגים אסטרטגיה "לקלף" את השכבות העודפות, ולהשאיר שכבה אחת על הרשת המתאימה להדמיית TEM. במאמר אחר, Chang et al.11 מכירים בכך שחלק מהחלבונים תלויים בטמפרטורה וכי המבנה הרלוונטי נצפה בטמפרטורות גבוהות. הם מתארים שיטת הקפאת צלילה שונה המאפשרת ליישם דגימות על הרשת בטמפרטורות גבוהות תוך השגת קרח זגוגי לאחר הקפאת צלילה. כדי לשלוט עוד יותר בתהליך הכנת רשת קריו, Kang et al.12 מציגים שיטה בעלת תפוקה גבוהה לייצור שבבים מיקרו-דפוסיים עבור רשתות TEM שבהן לנקבוביות יש עומק הניתן לשליטה. שיטה זו עשויה לספק משתנה נוסף לשליטה בעובי הקרח האמורפי במהלך הכנת הרשת.

המתאם בין שיטות הדמיה מרובות הוא בעל השפעה. Bieber et al.13 מתארים זרימת עבודה של קריו שבה רשת קפואה מצולמת במיקרוסקופ פלואורסצנטי קריו כדי לאתר אזור פלואורסצנטי מעניין. לאחר מכן הרשת מועברת ל-cryoSEM/FIB, שם משתמשים ב-fiducials כדי ליישר את תמונת הקרינה עם תמונת ה-SEM, ובכך לאפשר לאזור הפלואורסצנטי להיות ממוקד לכרסום FIB. אזור המטרה מדולל לכמה מאות ננומטרים, ולאחר מכן הרשת מועברת ל-cryoTEM לטומוגרפיה על מיקום המטרה המדולל. DiCecco et al.14 מדגימים מתאם בין TEM נוזלי ל-cryoTEM, ובכך מתקרבים למטרה של צימוד נתוני cryoTEM ברזולוציה גבוהה עם נתוני TEM של מולקולות בתנועה דינמית.

רכישה אוטומטית של מערכי נתונים גדולים היא גם תחום עניין. יש למקסם את זמן המכשירים היקר, ואוטומציה היא צעד מפתח. Kumar et al.15 מתארים את הגדרת הקליק אחר קליק של תוכנת איסוף נתונים אוטומטית להדמיית cryoTHEM.

ככל שתחום ה-cryoEM ממשיך להתפתח, נראה התקדמות נוספת בהכנת הדגימות, וההשפעה של cryoEM תורגש באופן נרחב על פני דיסציפלינות נוספות. חלק מההתקדמות לא תכלול טכניקות חדשות אלא חיזוק של טכניקות קיימות. הטכניקות יהיו מהירות יותר, קלות יותר וחזקות יותר, עם תפוקה גבוהה יותר. ככל שהאוטומציה מגדילה את תפוקת הנתונים, תחומי הפיתוח העיקריים יהיו בניתוח תמונות ועיבוד נתונים. יתר על כן, בינה מלאכותית תשחק תפקיד חשוב. עלינו לצפות לראות הפחתה בעלויות המכשור ובטביעת הרגל, מה שיאפשר לטכנולוגיה זו להיות נגישה יותר, אם כי פיתוחים אלה עשויים להיות איטיים יותר להתממש.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

למחברים אין מה לחשוף.

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

אנו מודים לכל המחברים על תרומתם לאוסף זה ולעמיתינו על ההתקדמות המתמשכת בתחום זה. עבודה זו נתמכה בחלקה על ידי מענק התמיכה של מכון קוך (ליבה) P30-CA14051 מהמכון הלאומי לסרטן. אנו מודים למרכז הביוטכנולוגיה של מכון קוך רוברט א. סוונסון (1969) על התמיכה הטכנית, במיוחד למתקן הליבה של חומרי ננוטכנולוגיה של פיטרסון (1957).

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Kühlbrandt, W. The resolution revolution. Science. 343 (6178), 1443-1444 (2014).
  2. McEwen, B. F., Marko, M. The emergence of electron tomography as an important tool for investigating cellular ultrastructure. Journal of Histochemistry & Cytochemistry. 49 (5), 553-563 (2001).
  3. Dover, S. D., Elliott, A., Kernaghan, A. K. Three-dimensional reconstruction from images of tilted specimens: the paramyosin filament. Journal of Microscopy. 122, 23-33 (1981).
  4. Schertel, A., et al. Cryo FIB-SEM: Volume imaging of cellular ultrastructure in native frozen specimens. Journal of Structural Biology. 184 (2), 355-360 (2013).
  5. Wu, G. H., et al. Multi-scale 3D cryo-correlative microscopy for vitrified cells. Structure. 28 (11), 1231-1237 (2020).
  6. Darrow, M. C., Moore, J. P., Walker, R. J., Doering, K., King, R. S. Chameloen: Next generation sample preparation for cryoEM based on Spotiton. Microscopy and Microanalysis. 25, 994-995 (2019).
  7. Watanabe, S., et al. Ultrafast endocytosis at Caenorhabditis elegans neuromuscular junctions. Life. 2, 00723(2013).
  8. Heiligenstein, X., et al. HPM live μ for a full CLEM workflow. Methods in Cell Biology. 162, 115-149 (2021).
  9. Truong, C. D., et al. Sample preparation using a lipid monolayer method for electron crystallographic studies. Journal of Visualized Experiments. (177), e63015(2021).
  10. Johnson, M. C., Grant, A. J., Schmidt-Krey, I. The peel-blot technique: A cryo-EM sample preparation method to separate single layers from multi-layered or concentrated biological samples. Journal of Visualized Experiments. (184), e64099(2022).
  11. Chang, Y. -C., Chen, C. -Y., Tsai, M. -D. Preparation of high-temperature sample grids for cryo-EM. Journal of Visualized Experiments. (173), e62772(2021).
  12. Kang, M. -H., Lee, M., Kang, S., Park, J. Fabrication of micro-patterned chip with controlled thickness for high-throughput cryogenic electron microscopy. Journal of Visualized Experiments. (182), e63739(2022).
  13. Bieber, A., Capitanio, C., Wilfling, F., Plitzko, J., Erdmann, P. S. Sample preparation by 3D-correlative focused ion beam milling for high-resolution cryo-electron tomography. Journal of Visualized Experiments. (176), e62886(2021).
  14. DiCecco, L. -A., et al. Advancing high-resolution imaging of virus assemblies in liquid and ice. Journal of Visualized Experiments. (185), e63856(2022).
  15. Kumar, A., P, S., Gulati, S., Dutta, S. User-friendly, high-throughput, and fully automated data acquisition software for single-particle cryo-electron microscopy. Journal of Visualized Experiments. (173), e62832(2021).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

CryoEMSample PreparationLipid Monolayer MethodElectron CrystallographyPeel blot TechniqueHigh temperature Sample GridsMicro patterned ChipHigh throughput Cryogenic Electron Microscopy3D correlative Focused Ion Beam MillingCryo electron TomographyVirus Assemblies ImagingAutomated Data Acquisition SoftwareSingle particle Cryo electron Microscopy

Related Articles