מאמר שיטה

ביסוס מודל דלקת קרנית חמורה בחולדות המבוסס על גרידת אפיתל בקרנית בשילוב תפרי קרנית

1.3K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/67305

⸱

22 בנובמבר 2024

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Ophthalmology, the Affiliated Hospital of Guizhou Medical University, 2School of Clinical Medicine, Guizhou Medical University, 3The Second People's Hospital of Guiyang City, 4Department of Biomedical Sciences, School of Infection, Inflammation and Immunology, College of Medicine and Health, University of Birmingham

* These authors contributed equally

במאמר זה

סיכום

פיתחנו מודל חולדה של דלקת קרנית חמורה באמצעות גרידת אפיתל בקרנית בשילוב עם תפרים בקרנית. המחקר העריך דפוסי דלקת בקרנית, התפשטות אפיתל ושינויים בתאי גזע לימבליים בתנאים דלקתיים.

תקציר

דלקת בקרנית, במיוחד דלקת קרנית חמורה, ממלאת תפקיד משמעותי בהתפתחות תפקוד לקוי של תאי גזע לימביים בקרנית. בניית מודלים מתאימים של בעלי חיים יכולה לעזור לנו להתמקד בהשפעות של דלקת חמורה על תאי גזע לימבליים בקרנית. מסיר חלודה בקוטר 2 מ"מ שימש להסרת אפיתל הקרנית המרכזי של חולדות Sprague Dawley (SD) כדי ליצור פציעה. לאחר מכן, הסטרומה המרכזית של הקרנית נתפרה בתפרי ניילון כדי לגרום לדלקת מתמשכת. באופן זה נבנה מודל דלקת בקרנית עם שחיקה של אפיתל מרכזי בקרנית ותפירת סטרומה מרכזית, שגרמה לדלקת קרנית חמורה. נצפו השינויים בדלקת הקרנית ובמצב תאי הגזע הלימבליים לאחר 1, 3 ו-7 ימים לאחר המודל. ביוםהשלישי לאחר המודל, לימבוס הקרנית של החולדות היה בצקתי חמור, עם ניאו-וסקולריזציה ברורה והיפרפלזיה מקומית, שהם סימנים אופייניים למחסור בתאי גזע לימבליים. ביום השביעי, בצקת הקרנית החמירה בהדרגה, והניאו-וסקולריזציה המשיכה להתגבר. באמצעות תגובת שרשרת פולימראז שעתוק הפוך כמותי (RT-qPCR) וצביעה אימונופלואורסצנטית, מצאנו כי הגורמים הדלקתיים של אפיתל הקרנית היו מווסתים באופן משמעותי, התמיינות האפיתל של הקרנית הייתה חריגה, תאי הגזע של אפיתל הקרנית הופחתו משמעותית, וגם התפשטות התאים והגזע פחתו. לכן, מודל זה מדגים שדלקת חמורה יכולה לגרום לנזק לתאי גזע לימבליים מבלי לפגוע ישירות בתאי הגזע הלימבליים. המודל מועיל להתבוננות בהשפעות של דלקת חמורה על המנגנונים הביולוגיים של תאי גזע ומספק פלטפורמה אידיאלית לחקר המנגנונים של תפקוד לקוי של תאי גזע אפיתל בקרנית הנגרם על ידי דלקת.

מבוא

תפקוד לקוי של תאי גזע לימבליים (LSCD) מאופיין במומים אפיתליים מתמשכים, כלי דם בקרנית, דלקת כרונית, צלקות ולחמית של הקרנית 1,2. זה יכול לנבוע מדלדול או תפקוד לקוי של תאי גזע לימבליים לאחר מחלות קשות על פני העין, כגון כוויות כימיות, כוויות תרמיות, תסמונת סטיבנס-ג'ונסון ופגיעה יאטרוגנית הנגרמת מניתוחי עיניים 2,3,4. המנגנונים הפתוגניים של LSCD כוללים בעיקר שינויים בתאי גזע והפרעות במיקרו-סביבה של תאי גזע 5,6, המשפיעים על ההומאוסטזיס של אפיתל הקרנית 2,7. ישנם שני סוגים עיקריים של שינויי גורל בתאי גזע לימבליים ב-LSCD: 1) פוטנציאל ההתמיינות הכיוונית של תאי גזע אפיתל בקרנית הופך להיות לא תקין, מה שמוביל להתמיינות שלהם לתאי אפיתל של העור. עדות לכך היא ירידה בביטוי של גורם שעתוק ספציפי לתאי אפיתל בקרנית Pax6 וקרטין ספציפיים לקרנית Krt12 ו-Krt3, לצד עלייה משמעותית בביטוי של סמני מטפלזיה אפיתל קשקשיים הקשורים לעור Krt10, Krt1 ו-Sprr1b8; 2) פגיעה במשטח העין הורסת ישירות תאי גזע לימבליים בקרנית, וכתוצאה מכך נמק או אפופטוזיס, וכתוצאה מכך גורמת לשגשוג רקמת הלחמית המכסה את הקרנית9. דווח כי במהלך התפתחות LSCD, תאים דלקתיים כגון מקרופאגים, נויטרופילים ותאים דנדריטיים גדלים משמעותית במיקרו-סביבת תאי הגזע של הקרנית. בהתאמה, ציטוקינים כגון אינטרפרון-גמא (IFN)-γ, גורם נמק גידול (TNF)-α, אינטרלוקין (IL)-1β וחלבונים דלקתיים מקרופאגים (MIP)-1α/β מראים גם הם עליות משמעותיות10.

מודלים שונים של LSCD הוקמו, כולל אלה המושרים על ידי תפרים, פציעות כימיות ואיתור בנזלקוניום כלוריד11. לכל אחד מהדגמים הללו היתרונות והחסרונות שלו. פגיעות כימיות עלולות לפגוע בכל פני העין ולהרוס ישירות תאי גזע לימבלים12. בנזלקוניום כלוריד מתפקד באופן דומה לפגיעות כימיות אך השפעתו איטית יחסית13. מודל תפר הקרנית יכול לגרום לתגובה דלקתית יציבה וארוכת טווח, אך התגובה הדלקתית קלה יחסית ואינה יכולה לגרום ל-LSCD.

כדי לחקור את תפקיד ומנגנוני הדלקת בהתפתחות LSCD בקרנית, הוקם מודל של בעלי חיים המשלב גרידה של אפיתל הקרנית המרכזי עם תפרים בקרנית. מודל זה גורם לדלקת מתמשכת של אפיתל הקרנית מבלי לפגוע ישירות בתאי גזע לימבליים.

פרוטוקול

כל הנהלים תאמו את הנחיות ARVO לשימוש בבעלי חיים במחקר עיניים וראייה ואושרו על ידי ועדת האתיקה של בעלי חיים של האוניברסיטה הרפואית של גוויג'ואו (אישור מס' 2305192). החולדות שוכנו במרכז החיות של האוניברסיטה הרפואית של גוויג'ואו, תוך הקפדה על תקנות ניהול בעלי חיים רלוונטיות.

1. בחירת בעלי חיים

  1. השתמש בחולדות Sprague-Dawley (SD) נקבות בגילאי 7-8 שבועות. ודא שאין נגעים במשטח העין בבדיקת מנורת חריץ.
  2. עקר את המכשירים באמצעות מעקר מהיר. המכשירים הנדרשים כוללים מסיר טבעת חלודה בקרנית, טוש דגימת עור בגודל 2 מ"מ, מחזיקי מחטים, סכינים בשכבת צלחת, מספריים כירורגיים לעיניים ומלקחיים.
  3. להרדים חולדות עם 1.25% טריברומו-אתנול באמצעות הזרקה תוך צפקית במינון של 0.3 מ"ל לכל 100 גרם משקל גוף. העריכו את עומק ההרדמה על ידי צביטת הבוהן. יש לטפטף טיפה אחת של טיפות עיניים טרופיקמיד להרחבת האישונים. יש למרוח טיפות עיניים bupivacaine hydrochloride על העין. השתמש במשחת סיכה לעיניים על העין הנגדית כדי לשמור על לחות.
  4. לחטא את העור והשיער סביב העיניים עם יודופור.
  5. קבע את מודל הדלקת.
    1. הנח את החולדה במצב דקוביטוס לרוחב. חשוף את גלגל העין תחת מיקרוסקופ הפעלה.
    2. הקרנית המרכזית סומנה באמצעות סמן דגימת עור בגודל 2 מ"מ, ואפיתל הקרנית המרכזי המסומן גורד באמצעות מסיר טבעת חלודה בקרנית.
    3. הנח שלושה תפרי קרנית של 120 מעלות באמצעות חוט ניילון 10-0, מחזיק מחט ומספריים ומלקחיים כירורגיים לעיניים במרחק של כ-3 מ"מ מהלימבוס, אל תחדור לקרנית 14,15.
  6. יש למרוח משחת עיניים אופלוקסצין בסוף ההליך למניעת זיהום.
  7. התבונן וצלם את הקרניתביום הראשון,השלישי והשביעי לאחר הניתוח באמצעות מנורת חריץ מוגדלת פי 10. רשום את התסמינים כגון ריפוי אפיתל בקרנית, היפרמיה של הלחמית, בצקת בקרנית, היפרמיה לימבלית וניאו-וסקולריזציה של הקרנית.

2. חישוב המדד הדלקתי

  1. לחשב את האינדקס הדלקתי של משטח העין לאחר קביעת מודל החיות.
    1. ציון גודש בגוף הרירי באופן הבא: אין גודש (0 נקודות); נוכחות של גודש פחות מ -1 מ"מ (נקודה אחת); היפרמיה בין 1 מ"מ ל -2 מ"מ (2 נקודות); היפרמיה בין 1 מ"מ ל -2 מ"מ (3 נקודות).
    2. ציון בצקת מרכזית בקרנית באופן הבא: ללא בצקת (0 נקודות); בצקת עם נראות קשתית ברורה (נקודה אחת); בצקת עם ראות קשתית לא ברורה (2 נקודות); בצקת עם הקשתית לא נראית (3 נקודות).
    3. ציון בצקת בקרנית פרה-מרכזית באופן הבא: ללא בצקת (0 נקודות); בצקת עם נראות קשתית ברורה (נקודה אחת); בצקת עם ראות קשתית לא ברורה (2 נקודות); בצקת עם הקשתית לא נראית (3 נקודות).
    4. חשב את מדד הדלקת על ידי הוספת כל הציונים וחלוקתו ב-9.

3. הערכת ניאו-וסקולריזציה של הקרנית

  1. התבונן בניאו-וסקולריזציה של הקרנית עם מנורת חריץ.
    1. נתח ועבד תמונות באמצעות תוכנת עיבוד תמונה של מנורת חריץ16.
    2. רשום את הצמיחה של ניאו-וסקולריזציה של הקרנית בכל נקודת זמן תצפית, ומדוד את הניאו-וסקולריזציה הארוכה ביותר של הקרנית לכיוון מרכז הקרנית עם עקמומיות מינימלית.
    3. דרג אותם באופן הבא: כיתה 0: אווסקולרי; כיתה 1: מיקרו (<1 מ"מ); דרגה 2: קל (1 מ"מ עד 1.5 מ"מ); דרגה 3: בינוני (>1.5 מ"מ עד 2 מ"מ); דרגה 4: חמור (>2 מ"מ).

4. ניתוח הביולוגיה של המודל

  1. הכן דגימות עיניים קפואות.
    1. להרדים את החולדה עם 4-5% איזופלורן ולהמית אותה על ידי פריקת צוואר הרחם.
    2. במצב דקוביטוס לרוחב, הרם את גלגל העין של החולדה כלפי חוץ בעזרת פינצטה מיקרו וחתוך את הלחמית לאורך כיפת העין העליונה והתחתונה בעזרת מספריים.
    3. חתוך את עצב הראייה, תוך שימת לב לשמירה על שלמות אפיתל הקרנית.
    4. יבש את כתמי הדם והמים על משטח גלגל העין עם נייר פילטר והכניס אותם לקופסת ההטבעה עם מדיום הטמעה בטמפרטורת חיתוך אופטימלית (OCT).
    5. הסר את הבועות בקופסת ההטבעה בעזרת פיפטה של 200 מיקרוליטר, הקפיא אותה באמצעות חנקן נוזלי ולאחר מכן שמור את הדגימות המוטבעות במקרר בטמפרטורה נמוכה במיוחד.
  2. הכן חלקים קפואים של גלגלי העיניים.
    1. לפני הכנת החלק הקפוא, יש לקרר את הקריוסטט לכ-28 מעלות צלזיוס ואת מחזיק הדגימה ל-26 מעלות צלזיוס.
    2. מוציאים את הדגימות הקפואות מהמקפיא הקר ומניחים אותן בקריוטום למשך כשעה.
    3. מצננים מראש את הדגימה הקפואה בקריוטום למשך 10 דקות. סמן את הדגימה בעיפרון, קבע אותה על כרית הדגימה עם OCT, וקבע אותם יחד על מתלה החיתוך לאחר הקירור.
    4. התאם את המיקום והכיוון של הדגימה הקפואה ותקן אותה. ראשית, חותכים קטעים של 20 מיקרומטר עד שרואים את הקרנית המרכזית. לאחר מכן, השג חתכים של 6 מיקרומטר על ידי חיתוך רציף ואסוף את החלקים על שקופיות ההדבקה שהוכנו מראש.
    5. סמן את השם, החומר, זמן המקטע, השם ומספר הרקמה בשקופית. מניחים אותו בטמפרטורת החדר (RT) למשך כ -30 דקות.
    6. לאחר ייבוש החלקים, הכניסו אותם לקופסה ושמרו אותם במקרר בטמפרטורה נמוכה במיוחד לשמורה.
  3. בצע צביעת המטוקסילין ואאוזין.
    1. הסר את החלקים הקפואים שהוכנו מראש מהמקרר בטמפרטורה נמוכה במיוחד והנח אותם במכסה האדים ב-RT לייבוש.
    2. תקן את החלקים באמצעות 4% פרפורמלדהיד למשך 15 דקות ב-RT. שטפו את הדגימות עם 1x PBS למשך 5 דקות.
    3. הנח את חלקי הדגימה המכילים שקופיות על מחזיק שקופיות וטבל אותם לתוך גליל הצבע עם תמיסת צבע המטוקסילין ב-RT למשך 5 דקות.
    4. שטפו לאט את הדגימה המכילה שקופיות במי ברז כדי לשטוף את הצבע הצף, הכניסו אותם למיכל הצבע עם 0.1% אלכוהול חומצה הידרוכלורית, והוציאו אותם במהירות לאחר 1-2 שניות.
    5. שטפו לאט את הדגימה במי ברז למשך 15 דקות.
    6. הסר את הדגימה מהמים וטבל את השקופיות במיכל הצבע של אאוזין; השאירו ב-RT למשך 3 דקות.
    7. שטפו לאט את הדגימה במי ברז, שטפו את עודפי הצבע ובצעו התייבשות אלכוהול שיפוע באמצעות 75% אלכוהול, 80% אלכוהול, 95% אלכוהול, 100% אלכוהול (אחד) ו-100% אלכוהול (שניים). מסדרים את החלקים בכל ריכוז למשך 2 דקות.
    8. הפוך את הדגימות לשקופות למשך 2 דקות בקסילן (1) וקסילן (2) בהתאמה.
    9. יבש את הדגימה במכסה האדים, אטום את החלקים באמצעות חומר איטום והיזהר לא לייצר בועות.
    10. מקם את השקופיות בתיבת שקופיות ב- RT. דמיין את המקטעים באמצעות מיקרוסקופ.
  4. בצע צביעה אימונופלואורסצנטית.
    1. הסר את החלקים הקפואים והנח אותם בקופסה ב-RT במכסה האדים לייבוש.
    2. סמן את שם הנוגדן שיוכתם בשקופית הזכוכית הריקה של הדגימה הקפואה.
    3. תקן את הדגימות עם 4% פרפורמלדהיד ב-RT למשך 15 דקות. כמות קטנה של מי ברז נוספה לקופסה כדי למנוע את התייבשות הדגימה.
    4. הסר את הקיבוע הפרפורמלדהיד ושטוף את הדגימה שלוש פעמים עם מאגר PBS 1x. היזהר לא לשטוף את הדגימה.
    5. יבש את הנוזל סביב קטע הרקמה, כסה את הדגימה בתמיסת קרום התא (0.2% TritonX-100), ודגר ב-RT למשך 20 דקות.
    6. הסר את תמיסת קרום התא ושטוף את החלקים שלוש פעמים למשך 5 דקות כל אחד עם מאגר PBS 1x.
    7. יבש את חלקי הרקמה, כסה את הדגימה בתמיסת חסימת אימונופלואורסצנציה (2% BSA), ודגר ב-RT למשך שעה.
    8. יש להכין את הנוגדן והמדלל העיקרי (1% BSA) במהלך הדגירה לפי הוראות היצרן.
    9. הסר את הנוזל החוסם וייבש את הדגימה בעזרת משאבת יניקה. מוסיפים את הנוגדן הראשוני המוכן, מכסים את הקופסה ומדגרים אותו במקרר של 4 מעלות צלזיוס למשך הלילה (מדגרים כ-12-16 שעות) הרחק מהאור.
    10. השליכו את הנוגדן העיקרי ושטפו את הדגימה ארבע פעמים למשך 10 דקות כל אחת ב-PBS.
    11. במהלך שלב הניקוי, הכינו את דילול הנוגדנים המשני לפי הוראות היצרן.
    12. הסר PBS, יבש את הדגימה והוסף את הנוגדן המשני המוכן לדגימה. כסו את הדגימה ודגרו ב-RT למשך שעה אחת מהאור.
    13. הסר את הנוגדן המשני, שטוף את הדגימה 4 פעמים עם מאגר PBS 1x למשך 10 דקות כל אחד, וכסה את כל השקופית במאגר PBS 1x.
    14. הסר PBS, יבש את הדגימה ואטום את החלקים באמצעי הרכבה המכיל DAPI, וודא שאין בועות אוויר. עוטפים את השקופיות בנייר כסף ושומרים אותן בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס הרחק מאור.
    15. צלם תמונות עם מערכת מיקרוסקופ לייזר קונפוקלי או עם מערכת מצלמות מיקרוסקופ פלואורסצנטי זקוף (מהירות סריקה: 4 מיקרון/פיקסל, רזולוציית סריקה: 1024 x 1024).
  5. הכנת תרחיף חד-תאית של אפיתל קרנית החולדה
    1. לאחר המתת חסד, יש להסיר את גלגלי העיניים בעזרת פינצטה ספוגה ב-75% אלכוהול ולהכניס אותם לתמיסת המלח המאוזנת של 1x Hanks' (HBSS) המכילה 10% סרום בקר עוברי (FBS) ו-10% פניצילין-סטרפטומיצין שהוכן מראש.
    2. נקו את גלגלי העיניים והשתמשו ב-1x HBBS המכיל 10% FBS ו-10% פניצילין-סטרפטומיצין פעמיים למשך 5 דקות כל אחד.
    3. הסר את הלחמית לאורך השוליים הסקלרליים; השאירו את השוליים הסקלריים על כ -1 מ"מ. שוב, שטפו את רקמת הקרנית פעמיים עם 1x HBBS המכיל 10% FBS ו-10% פניצילין-סטרפטומיצין.
    4. העבירו את רקמת הקרנית הנקייה למדיום אפידרמיס הורמונלי (SHEM) המכיל 2U/mL של Dispase II. סגור את החותם והנח אותו בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס למשך 14-16 שעות.
    5. הכינו זוג פינצטה, פינצטה ללא שיניים, מכשיר לשחזור קשתית ומעקר כירורגי.
    6. תחת מיקרוסקופ כירורגי, הפרד בעדינות את אפיתל הקרנית לאורך קצה הקרנית.
    7. שטפו את אפיתל הקרנית עם 1x HBSS המכיל 10% פניצילין-סטרפטומיצין למשך 5 דקות.
    8. מעבירים את רקמת האפיתל של הקרנית לצינור צנטריפוגה של 1.5 מ"ל המכיל 200 מ"ל טריפסין ודוגרים באינקובטור 5% CO2, 37 מעלות צלזיוס. כל 5 דקות, יש לנער את צינור הצנטריפוגה שלוש פעמים כדי לעכל את יריעת האפיתל של הקרנית לתרחיף חד-תאי.
    9. הוסף כמות שווה של מדיום SHEM כדי לעצור את פעולת תמיסת העיכול של טריפסין ולהניח אותו ב-RT.
  6. תרבית שיבוט של תאי אפיתל בקרנית
    1. הכן תאי טרופובלסטים.
      1. כאשר צפיפות הצמיחה של תאי עכבר NIH 3T3 מגיעה ל-80-90%, השליכו את מדיום תרבית התאים. הוסף 10 מ"ג/מ"ל NIH 3T3 מדיום תרבית מיטומיצין מוכן מראש ודגירה בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס למשך 2.5 שעות.
      2. הסר את המדיום, שטוף תאים עם 1x HBSS, החלף במדיום תאי NIH 3T3 חדש והמשך בדגירה בחממת CO2 (5% CO2, 37 °C).
    2. הכן את תרחיף תאי האפיתל בקרנית וספור את התאים לפי היחס הנדרש.
    3. בזמן הכנת תרחיף תאי האפיתל בקרנית, עבד תאי NIH 3T3 שטופלו במיטומיצין.
      1. יש להשליך את הסופרנטנט, לשטוף תאים עם 1x HBSS, להוסיף 1 מ"ל של תמיסת טריפסין-EDTA ולדגור ב-RT למשך 2-3 דקות.
      2. הוסף כמות שווה של מדיום אפיתל הורמונלי משלים (מדיום SHEM: DMEM/F12, גורם גדילה אפידרמלי של עכבר 10 ננוגרם/מ"ל [EGF], 10 מיקרוגרם/מ"ל אינסולין-טרנספרין-סלניום [ITS], 5% FBS, 1% פניצילין-סטרפטומיצין, 0.5% דימתיל סולפוקסיד [DMSO], 0.5 מ"ג/מ"ל הידרוקורטיזון), פיפטה בעדינות ליצירת תרחיף תאים וספירת התאים.
    4. השתמש בצלחת של 12 בארות והוסף 0.5 מ"ל מדיום SHEM לכל באר.
    5. מערבבים תאי אפיתל קרנית עם תאי NIH 3T3 בצפיפות של 500 תאי אפיתל קרנית/ס"מ2 ו-5 x 105 תאי NIH 3T3/ס"מ2. הוסף 1 מ"ל של מדיום SHEM לכל באר.
    6. מוסיפים 1 מ"ל מתערובת התאים לכל באר ופיפטה בעדינות כדי לפזר את התאים באופן שווה.
    7. דגירה בחממה (5% CO2, 37 מעלות צלזיוס), החלפת המדיום כל 2-3 ימים. תרבות למשך 12-14 יום.
  7. מכתים סגול קריסטל
    1. לאחר כ -12 יום, כאשר שיבוטי אפיתל הקרנית עומדים להתמזג, הסר את מדיום התרבות והוסף 1 מ"ל של תמיסת פרפורמלדהיד 4% לכל באר, מכסה את התאים לחלוטין. תקן את התאים למשך 15 דקות ב-RT.
    2. הסר 4% פרפורמלדהיד ושטוף את הבארות שלוש פעמים עם 1x PBS למשך 5 דקות כל אחת.
    3. הסר 1x PBS buffer והוסף תמיסת צבע סגול קריסטל 0.4% לכל באר. כתם למשך 30 דקות ב-RT.
    4. הסר או מחזר את תמיסת הצבע הסגול קריסטל ושטוף אותה שלוש פעמים עם 1x PBS למשך 10 דקות כל אחת.
    5. יבש את הבארות באוויר ב-RT עד לייבוש יסודי.
    6. השתמש במערכת צילום מיקרוסקופ זקוף רגילה (מהירות סריקה: 4 מיקרון/פיקסל, רזולוציית סריקה: 1024 x 1024).
  8. מיצוי mRNA של הקרנית
    1. אסוף מספריים עיניים, מספריים לקרנית, מלקחיים עם שיניים, מגרד אפיתל חשמלי של הקרנית, טריזול, צינורות צנטריפוגה 1.5 מ"ל ללא RNase וקופסת קרח.
    2. רכישת אפיתל
      1. להרדים את החולדה עם 4-5% איזופלורן ולהמית אותה לאחר פריקת צוואר הרחם. הנח את החיה במצב רוחבי. חתוך את שפם העכבר במספריים לעיניים כדי למנוע חסימת הנוף.
      2. הניחו את החולדה מתחת למיקרוסקופ כירורגי והתאימו אותה לגובה מתאים כדי להתמקד בגלגל העין. השתמש במלקחיים עם שיניים כדי לדחוף ולחשוף בעדינות את גלגל העין. הרם את הלחמית של החולדה והשתמש במגרד אפיתל קרנית חשמלי נקי כדי לגרד את השטח המרכזי של 2 מ"מ של אפיתל הקרנית.
      3. אוספים את אפיתל הקרנית המגורד בעזרת מלקחיים נקיים ומשוננים מרוססים באלכוהול. הנח את הרקמה שנאספה לתוך צינור צנטריפוגה המכיל 1 מ"ל טריזול.
      4. עבדו במהירות האפשרית כדי לשטוף את הרקמה שנאספה בצינור צנטריפוגה של 50 מ"ל המכיל מים דו-יוניים. סופגים עודפי מים עם נייר פילטר. יש לרסס עם 75% אלכוהול ולהמשיך לשלב הבא.
      5. הרם שוב את הלחמית של החולדה באמצעות מלקחיים עם שיניים. השתמש במספריים של הקרנית כשהצד הקעור כלפי מעלה כדי לחתוך את הלחמית לאורך הלימבוס, ולהשאיר כ-0.5 מ"מ של לחמית לבנה.
      6. מגרדים את אפיתל הקרנית בטווח של 2 מ"מ בלימבוס הקרנית באמצעות המגרד החשמלי. אסוף את הרקמה כמתואר קודם. אסוף את אפיתל הקרנית המרכזי משלושה גלגלי עיניים ואת האפיתל הלימלי משלושה גלגלי עיניים.
      7. הנח את הרקמות שנאספו בצינורות ריאגנטים נפרדים של 1 מ"ל טריזול למיצוי RNA. בצע את כל הפעולה על קרח כדי לשמור על שלמות ה-RNA. המשך מיד לשלבים הבאים או אחסן את הדגימות במקפיא בטמפרטורה נמוכה במיוחד בטמפרטורה של -80 מעלות צלזיוס לשימוש מאוחר יותר.
    3. הפשירו את הדגימה על קרח, השתמשו בהומוגנייזר רקמות קולי כדי ליז את התאים. הגדר את עוצמת ההומוגנייזר האולטראסוני ל-25%, זמן ל-2 שניות לכל פרץ, זמן מרווח ל-5 שניות והזמן הכולל ל-2 דקות. תן לזה לעמוד על קרח במשך 10 דקות.
    4. הוסף כלורופורם (1/5 מהנפח הכולל, כ-200 מיקרוליטר) לכל דגימה, ערבב היטב על ידי היפוך למשך 30 שניות, וצנטריפוגה ב-400 x גרם למשך 10 דקות ב-4 מעלות צלזיוס.
    5. משקעי RNA
      1. לאחר הצנטריפוגה, הנוזל בתוך צינור הצנטריפוגה מרובד לשלושה חלקים. השכבה השקופה העליונה היא RNA, השכבה העכורה הלבנה האמצעית היא DNA וחלבונים, והשכבה התחתונה היא טריזול. פיפטה בזהירות כ -500 מיקרוליטר מהשכבה השקופה העליונה לתוך צינור צנטריפוגה חדש של 1.5 מ"ל, נזהר לא לשאוב את המשקעים הלבנים בשכבה האמצעית. אם נשאבים בטעות, חזור על הצנטריפוגה כדי לאסוף שוב את השכבה השקופה.
      2. הוסף כמות שווה של איזופרופנול מקורר מראש לצינור הצנטריפוגה המכיל את השכבה השקופה, כ-500 מיקרוליטר, הפוך את הצינור מספר פעמים כדי לערבב היטב, ולאחר מכן הכניס אותו מיד למקפיא בטמפרטורה נמוכה במיוחד של -80 מעלות צלזיוס למשך 20-30 דקות. צעד זה נועד להאיץ את משקעי ה-RNA.
    6. הוצא את הדגימה, ומיד צנטריפוגה ב-400 x גרם למשך 10 דקות ב-4 מעלות צלזיוס. כמות קטנה של משקעים לבנים ומתקלפים נראית בתחתית צינור הצנטריפוגה; השליכו את הסופרנטנט.
    7. הוסף 70% אתנול מוכן מראש ומקורר קרח לכל צינור. צנטריפוגה מיד ב-4 מעלות צלזיוס בצנטריפוגה מקוררת ב-400 x גרם למשך כ-10 דקות; חזור על השלבים לעיל פעם אחת כדי לשטוף היטב את המשקעים. בשלב זה, יש לעקר מראש את מכסה המנוע באור UV למשך 15 דקות.
    8. לאחר הסרת צינורות הצנטריפוגה והשלכת הסופרנטנט, צנטריפוגה שוב בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס בכ-250 x גרם למשך 2 דקות. השתמש בקצה פיפטה של 200 מיקרוליטר כדי לשאוב בזהירות את עודפי האלכוהול מהצד שממול למשקעים, ולייבש בצורה יסודית ככל האפשר. מניחים בקולט אדים מעוקר מראש UV לייבוש, מייבשים את המשקעים באוויר למשך כ-15 דקות.
    9. הכן את התמיסה על ידי הוספת 1 מ"ל של מעכב RNase ל-40 מ"ל של מי דיאתיל פירוקרבונט (DEPC). הוסף כמות מתאימה של תערובת מעכבי מים/RNase של DEPC, כ-20-30 מיקרוליטר, כדי להמיס את הדגימה. אם יש הרבה משקעים, הוסף 30-50 מיקרוליטר.
  9. PCR שעתוק הפוך
    1. ודא שהפריטים הבאים קיימים: מכונת PCR, צינורות צנטריפוגה 1.5 מ"ל ללא RNase, צינורות PCR של 0.2 מ"ל, אמבט קרח או קופסת קרח, פיפטה וטיפים ללא RNase.
    2. מדוד את ריכוז ה-RNA באמצעות ספקטרופוטומטר מיקרו-נפח. עבור כל דגימה, ודא ש-1 מיקרוגרם של RNA מתווסף למערכת התגובה.
    3. למערכת השעתוק ההפוכה נפח כולל של 20 מיקרוליטר. חשב את הכמות הכוללת של ריאגנטים הדרושים על סמך מספר הדגימות. מערבבים לפי היחס המצוין בהוראות.
    4. הכן את מערכת התגובה על קרח, מערבל אותה וצנטריפוגה קצרה. דגירה בטמפרטורה של 42 מעלות צלזיוס למשך 15 דקות ובטמפרטורה של 90 מעלות צלזיוס למשך 30 שניות.
    5. השתמש ב-cDNA המתקבל מתהליך השעתוק ההפוך ישירות לניתוח PCR כמותי בזמן אמת או לאחסן במקרר -80 מעלות צלזיוס.
  10. תגובת PCR כמותית בזמן אמת
    1. השתמש בערכת ריאגנטים PCR כמותיתבזמן אמת 17 עם מערכת תגובה של 10 μL. השתמש ברצפי הפריימר המוצגים בטבלה 1.
    2. הוסף את מערכת התגובה שתוארה לעיל לצלחת של 96 בארות או לצינור בעל שמונה רצועות במיוחד עבור RT-PCR. ודא שהדגימות מעורבבות היטב. בדוק אם יש בועות בצינורות לפני הנחתם על מכונת ה-PCR.
    3. הגבירו את הגן באמצעות מחזור ה-PCR (95 מעלות צלזיוס למשך 5 דקות), 40 מחזורים (95 מעלות צלזיוס למשך 10 שניות, 60 מעלות צלזיוס למשך 30 שניות), והשלימו את הנתונים כדי לחשב את ערך ה-2-ΔΔ Ct. עיבוד, ניתוח ושרטוט הנתונים באמצעות תוכנת ניתוח נתונים מתאימה.

תוצאות

כפי שמוצג באיור 1A, באמצעות תצפית עם מנורת חריץ, מצאנו שהריפוי של אפיתל הקרנית נפגע. בנסיבות רגילות, אפיתל הקרנית המרכזי היה נרפא לחלוטין תוך 24-48 שעות לאחר ההסרה, אך בכריתת האפיתל המרכזי של הקרנית בשילוב עם מודל תפרים, כלי דם חדשים המשיכו להתקיים. ביום השלישי לאחר הקמת המודל, נצפו בצקת לימבלית משמעותית בקרנית וניאו-וסקולריזציה, עם סימנים אופייניים למחסור בתאי גזע לימביים בקרנית שהופיעו באופן מקומי. עם הזמן, ביום השביעי, הריפוי עדיין לא הושלם. מדד הדלקת בקרנית הוערך באמצעות גודש רירי, בצקת קרנית פרה-מרכזית ובצקת מרכזית בקרנית. בצקת בקרנית החמירה בהדרגה, ודלקת הקרנית (איור 1A) המשיכה להידרדר. בנוסף, ניאו-וסקולריזציה של הקרנית היא אינדיקטור לדלקת. עם התקדמות הדלקת, ניאו-וסקולריזציה של הקרנית (איור 1B) ומדד הדלקת (איור 1C) הראו עלייה מתמשכת.

ביצענו הקפאה על רקמות העיניים 7 ימים לאחר יצירת הדגם. צביעת המטוקסילין ואאוזין (איור 2A) הראתה עיבוי של האפיתל בלימבוס ובקרנית המרכזית, כאשר סידור האפיתל איבד את המורפולוגיה הרגילה שלו, מה שמעיד על היפרפלזיה לא טיפוסית. סטרומה הקרנית נראתה בצקתית, עם חדירה משמעותית של תאים דלקתיים. באמצעות צביעה אימונופלואורסצנטית PMN ו-ED1 (איור 2B), נצפתה עלייה ניכרת בחדירה של נויטרופילים ומקרופאגים. המחקר העריך גורמים דלקתיים באמצעות IL-1β (איור 2C) ו-MIP-1α (איור 2D), ומצא כי IL-1β הגיע לשיא ביום השלישי וירד בהדרגה לאחר מכן, בעוד ש-MIP-1α עלה ברציפות לאורך זמן.

דלקת כרונית מובילה בדרך כלל לסדרה של חוסרים בתאי גזע לימבליים, כגון הפחתת ויסות Pax6, ביטוי מופחת של Krt12 ומטפלזיה קשקשית של אפיתל הקרנית. כדי לוודא אם המודל שפותח במחקר זה יכול לגרום לשינויים אלה בפנוטיפ האפיתל של הקרנית, בוצעה צביעה אימונופלואורסצנטית עבור Krt12 (איור 3A) ו-Pax6 (איור 3B) על אפיתל הקרנית. ביטוי Krt12 ירד עם דלקת ממושכת, כאשר רק תאים בודדים חיוביים ל-Krt12 נצפו ביום 7, וביטוי Pax6 הופחת משמעותית באפיתל הקרנית. ברמת ה-mRNA, רמות הביטוי של סמני אפיתל קרנית תקינים Krt12 (איור 3C) ו-Pax6 (איור 3D) הופחתו משמעותית ביום 7. עם זאת, רמות הביטוי של סמני מטפלזיה קשקשית Krt10 (איור 3E) ו-Sprr1b (איור 3F) עלו באופן משמעותי ביום 7.

השתמשנו בסמן ההתפשטות Ki67 כדי לצבוע את אפיתל הקרנית, והתוצאות הראו ירידה משמעותית במספר תאי האפיתל של הקרנית החיוביים ל-Ki67 ביום השביעי (איור 4A). הסטטוס של תאי גזע אפיתל בקרנית הוערך באמצעות הסמן הספציפי לתאי גזע לימבליים בקרנית ABCG2 (איור 4B) וסמן תאי האב האפיתל P63 (איור 4C). רמות ABCG2 ו-P63 היו נמוכות משמעותית מאלו בקבוצה הרגילה. בנוסף, השתמשנו בתקן הזהב לתאי גזע, שיטת התרבית המשובטת כדי להעריך שינויים בתאי גזע לימבליים בקרנית במהלך תהליך זה. ראינו שקצב ההיווצרות המשובטת של תאי גזע לימבליים בקרנית (איור 4D) ירד ביום השלישי וירד באופן משמעותי ביום השביעי, כאשר השטח הממוצע של שיבוטים נעשה קטן יותר ורק כמה הולוקלונים נראים ביום השביעי. יעילות יצירת המושבה (CFE) הושגה על ידי ספירת שיבוטי התאים הנראים בשדה המיקרוסקופ של צלחת התרבית. ה-CFE (איור 4E) הצביע על ירידה הדרגתית במספר תאי הגזע הלימבליים בקרנית בתנאים דלקתיים. זה מצביע על כך שדלקת חמורה במודל זה מובילה לדלדול תאי גזע אפיתל לימבליים בקרנית, ותהליך זה אינו גורם לטרנספורמציה פנוטיפית של תאי הגזע הלימבליים בקרנית אלא מציג בעיות בהתמיינות או חידוש עצמי.

מודל הדלקת ששימש במחקר זה הביא לשינויים בקרנית האופייניים ל-LSCD, כולל חדירה נרחבת של תאים דלקתיים לתוך הקרנית, דיספלזיה של אפיתל הקרנית, ושיבוש או ירידה בביטוי של Pax6 ו-Krt12 בפנוטיפ האפיתל הרגיל של הקרנית. בנוסף, חלה עלייה משמעותית בביטוי Krt10 mRNA. לסיכום, מודל ניסיוני זה מתאים היטב לחקר ההתמיינות החריגה של תאי גזע אפיתל בקרנית הנגרמת על ידי דלקת.

figure-results-1
איור 1: הקמת מודל הדלקת. כדי לחקור את ההשפעות של דלקת חמורה על תאי גזע אפיתל בקרנית, הוקם מודל דלקת חמורה. (A) אחרי השראת המודל, הקרנית נצפתה באמצעות צילום מנורת חריץ. שלושה ימים לאחר המודל, לימבוס קרנית החולדה היה בצקתי חמור, עם ניאו-וסקולריזציה ברורה והיפרפלזיה מקומית, שהם סימנים אופייניים למחסור בתאי גזע לימבליים בקרנית. ביום השביעי, בצקת הקרנית החמירה בהדרגה, והניאו-וסקולריזציה המשיכה לגדול. עם התקדמות הדלקת, (B) ניאו-וסקולריזציה של הקרנית ו-(C) מדד הדלקת הראו עלייה מתמשכת. *p < 0.05, ****P < 0.0001. אנא לחץ כאן לצפייה בגרסה גדולה יותר של איור זה.

figure-results-2
איור 2: התגובה הדלקתית לאחר המודל. התגובה הדלקתית הנגרמת על ידי המודל בקרנית הוערכה. (A) צביעת המטוקסילין ואאוזין של גלגל העין הראתה שבמהלך התהליך הדלקתי, גם האפיתל הלימבלי וגם האפיתל המרכזי של הקרנית התעבו, וסידור האפיתל של הקרנית איבד את המורפולוגיה הרגילה שלו, והראה סימנים של היפרפלזיה לא טיפוסית. (B) סמן המקרופאגים ED1 (ירוק) וסמן הנויטרופילים PMN (אדום) גדלו באופן משמעותי. RT-qPCR הראה עלייה משמעותית בגורמי דלקת אפיתל בקרנית (C) IL-1β ו-(D) MIP-1α. כחול מייצג צביעה גרעינית עם DAPI, סרגל קנה מידה = 50 מיקרומטר; עמ' < 0.001. אנא לחץ כאן לצפייה בגרסה גדולה יותר של איור זה.

figure-results-3
איור 3: שינויים פנוטיפיים של תאים בתנאים דלקתיים. צביעה חיסונית עבור (A, אדום) KRT12 באפיתל הלימבלי ו-(B) PAX6. (C) רמות ביטוי ה-mRNA של KRT12 מראות ירידה משמעותית ככל שהדלקת מתקדמת. (D) ביטוי mRNA PAX6 חושף פיזור חריג וירידה ניכרת באפיתל הלימבלי בתנאים דלקתיים. לעומת זאת, ביטוי mRNA של (E) Krt10 וסמן האפיתל הקרנית המובחן באופן חריג (F) Sprr1b גדל באופן משמעותי במהלך דלקת. כחול מייצג צביעה גרעינית עם DAPI, סרגל קנה מידה = 50 מיקרומטר; **p < 0.01, ***p < 0.001, ****p < 0.0001. אנא לחץ כאן לצפייה בגרסה גדולה יותר של איור זה.

figure-results-4
איור 4: שינויים בתאי גזע לימבליים במצב דלקתי. תמונות אימונופלואורסצנטיות של (A, אדום) Ki67 ממחישות שינויים בתאים מתרבים לאחר השראת דלקת. ביטוי ה-mRNA של סמן תאי הגזע (B) ABCG2 מופחת משמעותית. סמן תאי האב (C) p63 מתבטא גם הוא. (D) תמונות צביעת סגול קריסטל ו-(E) CFE מראות ירידה במספר תאי הגזע הלימבליים בתנאים דלקתיים. כחול מציין גרעינים מוכתמים ב-DAPI; סרגל קנה המידה הוא 50 מיקרומטר; *p < 0.05, **p < 0.01, ***P < 0.001, ****P < 0.0001. אנא לחץ כאן לצפייה בגרסה גדולה יותר של איור זה.

שם פריימררצף פריימר
TNF-aקדימה5'-TCAGTTCCATGGCCCAGAC-3'
הפוך5'-GTTGTCTTTGAGATCCATCCATT-3'
IL-1βקדימה5'-CCTCGTCCTAAGTCACTCGC-3'
הפוך5'-GGCTGGTTCCACTAGGCTTT-3'
פקס6קדימה5'-GTGTTCAGTGCAGAGCCTTC-3'
הפוך5'-TTCACCGTTGCTGTTCACTG-3'
צרפתקדימה5'-AGCTAACGCGGAACTGGAAA-3'
הפוך5'-CTCTCCGCTCTCTTGGTGAGGT-3'
צרפתקדימה5'-TCCGGGATCTGGAAGAGTCAA-3'
הפוך5'-TTGGGTAAGCTTTGCTAAGTGGAA-3'
ספר1בקדימה5'-CCATCCCAAGGCACCTGAG-3'
הפוך5'-TGCTGGTATGGTGATGGAGT-3'
אקטיןקדימה5'-CACCCGGAGTACAACCTTC-3'
הפוך5'-CCCATACCACACACACC-3'

טבלה 1: רצף הפריימרים המשמשים ל-RT-PCR כמותי.

דיון

דלקת ממלאת תפקיד מפתח בהתפתחות מחסור בתאי גזע לימביים18, אך המנגנונים וההשפעות הספציפיים שלה דורשים חקירה נוספת. כדי לטפל בבעיה זו, גרמנו ל-LSCD על ידי גירוד אפיתל הקרנית המרכזי ותפירת הסטרומה המרכזית של הקרנית כדי לגרום לדלקת חמורה בקרנית. צפינו באבולוציה של דלקת בקרנית ובמצב תאי הגזע הלימבליים בימים 1, 3 ו-7 לאחר המודל. ביום השלישי לאחר המודל, נצפו בצקת משמעותית של לימבוס החולדה, ניאו-וסקולריזציה ניכרת והתפשטות מוגברת של רקמות מקומיות, שהם מאפיינים אופייניים למחסור בתאי גזע לימבליים. ביום השביעי, בצקת הקרנית התגברה עוד יותר, ומספר כלי הדם החדשים המשיך לעלות. באמצעות טכניקות צביעה של RT-qPCR ואימונופלואורסצנטיות, ראינו כי ביום השביעי לאחר המודל, רמות הביטוי של סמן מקרופאגים ED1, סמן נויטרופילים PMN וגורמים דלקתיים אפיתל מרכזי בקרנית MIP-1α ו-IL-1β היו גבוהות באופן משמעותי. במהלך התקדמות הדלקת, הדמיית הצביעה החיסונית ורמות ביטוי ה-mRNA הקשורות של גורם השעתוק הספציפי לתאי אפיתל הקרנית Pax6 וקרטין Krt12 ספציפי לקרנית הופחתו באופן משמעותי. ביטוי ה-mRNA של סמן מטפלזיה אפיתל קשקשי הקשור לעור Krt10 וסמן אפיתל הקרנית Sprr1b גדל במהלך התקדמות הדלקת, מה שמעיד על התמיינות חריגה. ביטוי ה-mRNA של סמן תאי הגזע ABCG2 ירד משמעותית. סמן תא מבשר p63 התבטא גם הוא. תמונות צביעת סגול קריסטל ו-CFE הראו כי בתנאים דלקתיים, מספר תאי הגזע הלימבליים פחת. ניתוח מקיף הצביע על כך ששבעה ימים לאחר המודל, גורמים דלקתיים באפיתל הקרנית עלו משמעותית, ההתמיינות של אפיתל הקרנית הייתה חריגה, מספר תאי הגזע של אפיתל הקרנית ירד משמעותית, ויכולת התפשטות התאים ומאפייני תאי הגזע ירדו.

מודל זה גורם לדלקת בקרנית מבלי לפגוע ישירות בתאי הגזע של האפיתל הלימבלי, ובכך מקדם מחקר על ההשפעות והמנגנונים של דלקת בקרנית על תאי גזע אפיתל לימבליים. ברקמות אפיתל, כולל אפיתל הקרנית, תכנות מחדש של תאי גזע מתבטא בטרנסדיפרנציאציה של אפיתל. תהליך זה קשור קשר הדוק לדלקת ומאופיין בהתמיינות חריגה הנגרמת על ידי ציטוקינים שונים, גורמי גדילה וגורמים מסיסים אחרים במיקרו-סביבה 19,20,21,22. במצב דלקתי, במיוחד במצבים דלקתיים מתמשכים לטווח ארוך, כגון תסמונת העין היבשה ומחלות אחרות על פני העין 23,24,26, ניתן לתכנת מחדש את אפיתל הקרנית לאפיתל העור, מצב המכונה מטפלזיה קשקשית. מעבר זה כרוך בהיחלשות או אובדן של סמנים ספציפיים לאפיתל הקרנית Krt12, המוחלפים בסמנים ספציפיים לעור Krt10 ו-Sprr1b27,28. המודל המתואר בפרוטוקול זה מציג תופעות דומות. בתחילה, תאי גזע לימבליים מופעלים, ולאחר מכן, תחת דלקת מתמשכת, מתרחשת מטפלזיה קשקשית של אפיתל הקרנית. צפינו בתאי אפיתל קשקשיים טיפוסיים באפיתל הקרנית, המאופיינים בביטוי מופחת של Krt12 ו-Pax6 וביטוי מוגבר של Krt10 ו-Sprr1b (סמנים של מטפלזיה קשקשית). דלקת מוקדמת הגבירה את התפשטות אפיתל הקרנית, בעוד שבשלבים מאוחרים יותר נרשמה ירידה בשגשוג. בהתאם למה שמצאנו במחקרים שלנו על LSCD שנגרם על ידי תסמונת סטיבנס-ג'ונסון או אנירידיה מולדת, סמני תאי הגזע הלימבליים ABCG2 ותקן הזהב להערכת תאי גזע, יעילות יצירת המושבה, הופחתו משמעותית. עם זאת, התאים המשובטים שמרו על היכולת להתמיין לתאי אפיתל קרנית בוגרים. במחקרים קודמים, מטפלזיה קשקשית של אפיתל הקרנית נצפתה בתרביות ממשק אוויר-נוזל, אך תאי הגזע של אפיתל הקרנית עדיין הראו פוטנציאל להתמיין לפנוטיפ אפיתל קרנית רגיל ויכולת התפשטות מוגברת. זה דומה מאוד למחקר הנוכחי שלנו29.

לכן, מודל המחקר שפותח בפרוטוקול זה מאשר כי דלקת חמורה עלולה להוביל לנזק לתאי גזע לימבליים מבלי לפגוע ישירות בנישת תאי הגזע הלימבליים. ממצא זה מועיל מאוד להתבוננות בהשפעות של דלקת חמורה על המנגנונים הביולוגיים של תאי גזע לימבליים ומספק פלטפורמה ניסויית אידיאלית לחקר מנגנוני LSCD הנגרמים על ידי דלקת בקרנית.

עם זאת, למודל זה יש מגבלות. חולדות מורדמות עוברות גירוד מכני של אפיתל הקרנית ואחריו תפירת קרנית, שניהם פרוצדורות פולשניות עם סיכונים גבוהים לזיהום תוך ניתוחי ולאחר הניתוח30. יתר על כן, דקיקות קרנית החולדה הופכת אותה למועדת לניקוב במהלך התפירה, מה שדורש מיומנות גבוהה של המפעיל.

לכן, עלינו לשים לב לנקודות הבאות במהלך ההליך: (i) ניקיון וחיטוי: יש לעקר את כל המכשירים לפני הניתוח. יש לתת טיפות עיניים אנטיביוטיות יום לפני וביום ההליך כדי להפחית את הסיכון לזיהום. מכיוון שתפר הקרנית הוא גוף זר שעלול לגרום לדלקת וזיהום, יש להקפיד על טכניקה אספטית קפדנית, ולהמשיך בטיפות עיניים אנטיביוטיות במשך שלושה ימים לאחר הניתוח. (ii) טיפול בקרנית החולדה: קרנית החולדה דקה יחסית ונוטה לנקב במהלך התפירה. השתמש במלקחיים עם שיניים כדי להחזיק את הלחמית בצד הנגדי של מקום התפר כדי לייצב את גלגל העין ולהקל על הניתוח. הנח את התפר במרחק של כ-1.5-2 מ"מ מלימבוס הקרנית, שם הקרנית עבה יותר ונוטה פחות לנקב תוך הימנעות מנזק לתאי הגזע הלימבליים. (iii) הסרת אפיתל הקרנית: מגרד הטרפין של הקרנית ומגרד האפיתל של הקרנית יכול להסיר במהירות את אפיתל הקרנית וקל לתפעול, אך הוא חד למדי ועלול לפגוע בסטרומה או לגרום לנקב. שלוט בעוצמת הכוח במהלך ההסרה כדי למנוע ניקוב. כדי להבטיח אחידות באזור ההסרה, השתמש בטוש עגולכדי לסמן את האזור לפני הסרת אפיתל הקרנית.

גילויים

למחברים אין מה לחשוף.

תודות

מחקר זה נתמך בחלקו על ידי פרויקטי המדע והטכנולוגיה המחוזיים של גוויג'ואו (QKHJC-ZK [2024]ZD043), קרן המדע המחוזית של פוג'יאן לחוקרים צעירים מצטיינים (2023J06053 [ל-S.O]); הקרן למדעי הטבע של סין (מס' 82101084 [ל-S.O.] ומועצת המלגות של סין (CSC, 202306310049 [ל-Y.W.]).

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
קו תפרים 10-0Alcon, Inc., ארה"ב8065698001
2 מ"מ טרפין קרניתSuzhou XVI Vision Company, סיןhttp://www.66vision.com/
20 μ L, 100 μ L, 1 מ"ל ראשי אקדח פיפטה, צלחות תרבית צלחת תרבית תאים, צינורות צנטריפוגהגואנגג'ואו Jiete ביולוגית ושות', בע"מ, סיןhttps://www.jetbiofil.com/index.html-20
-80 & deg; מקרר Cחברת צ'ינגדאו Haier, סיןhttps://www.haier.com/cn/
מזרק 10 מ"ל  Zhejiang Condelai Medical Device Co., Ltd., סיןhttps://en.kdlchina.com/zhejiang/25.html
לדבוק בשקופיתחברת ShiTai188105
אלכוהול אמילןשנחאי. Macklin Biochemical, סיןhttp://www.macklin.cn/products/
Anti-CytokertinAbcam, בריטניהab76318
נוגדן נגד קרטין 12 EPR17882Abcam, בריטניהab185627
נוגדן Anti-PAX6Abcam, בריטניהab195045
שקופיות נגד הפשטה, תלושי כיסויג'יאנגסו Shitai ציוד ניסיוני ושות', בע"מ. סיןhttps://cn.citotest.com/
אוטוקלאבהיראיאמה, יפןhttps://hirayama.com.cn/about/
Avertinשנחאי אלאדין טכנולוגיה ביוכימית, סיןhttps://www.aladdin-e.com/zh_cn/A111225.html
כלורופורםשנחאי הנדסה ביולוגית ושות', בע"מ, סיןhttps://www.siobp.com/web
חממת תנור CO2,, מגרסה קולית, צנטריפוגהThermo Fisher Technologies Inc., ארה"בhttps://www.thermofisher.cn/cn/zh/home.html
מיקרוסקופ קונפוקלישנחאי Qinxiang Scientific Instrument Co., Ltd., סיןhttps://www.clinx.cn/about
מלקחיים אפיתל קרניתSuzhou XVI Vision Company, סין53418D
DAPIVector. בע"מ, ארה"בH-1000
מים DEPC  Shanghai Biological Engineering Co., Ltd., Chinahttps://www.siobp.com/web
קרם עיניים Dicuro (קרם עיניים ofloxacin)תאגיד התרופות סנטיאן, יפןhttps://www.santen.com/asia
D-KSFM, מדיום תרבית, נוגדן כפול ו-PBSThermo Fisher Scientific, Inc., ארה"בhttps://www.thermofisher.cn/cn/zh/home.html
ED1AbD Serote c, בריטניה 
MCA341GA איזון אלקטרונישנחאי Ohaus חברת ביוטכנולוגיה, סיןhttp://shbio.com/company
מארז הממברנהParafilm, Inc., ארה"https://www.sigmaaldrich.cn
רצועת בדיקת נתרן פלואורסצאין שימשה ברפואת עינייםטיאנג'ין ג'ינגמינג פיתוח טכנולוגיה חדשה ושות 'בע"מ, סיןhttps://www.eworldtrade.com/c/jingmingtechnological/
מערכת מיקרוגרפית ניגודיות פאזה הפוכה פלואורסצנטיתTE-2000U, ניקון, יפןhttps://www.microscopyu.com/museum/eclipse-te2000-inverted-microscope
צנטריפוגה שולחנית קפואהאפנדורף, גרמניהhttps://www.eppendorf.sh.cn 
מסגרת גיליון זכוכיתשיאמן טיאנג'ינג ביוטכנולוגיה ושות', בע"מ, סיןhttp://www.tagene.net/
H-1200 עם חומר איטום DAPIXiamen Juin Biotechnology Co., Ltd., סיןhttps://www.bosonbio.com.cn/
ערכת צביעהHE Auragene, סיןhttp://jushengwu.com/a048/
ערכת תמיסת צבע Hematoxylin-eosinAURAGEN, ארצות הבריתP032IH
איזון אלקטרוני דיוק גבוה ונמוךSdolis, גרמניהhttps://www.solisinverters.com/global
Isopropanolשנחאי Sinopharm ריאגנטים כימיים ושות', בע"מ, סיןhttps://en.reagent.com.cn/
Ki-67 נוגדןAbcam, בריטניהab16667
חנקן נוזליXiamen Yidong Gas Co., Ltd., סיןhttps://www.china.tdk.com.cn/tdk_chn_en/tdk_xiamen/
מחזיק מיקרו-ידSuzhou XVI Vision Company, סיןhttp://www.66vision.com/
אבקת מולטיפורמלדהידSigm, אמריקהhttps://www.sigmaaldrich.cn
צנטריפוגה בטמפרטורה רגילה 46Eppendorf, גרמניהhttps://www.thermofisher.cn
OCTשנחאי Maokang ביוטכנולוגיה ושות', בע"מ, סין4583
מערכת מיקרוגרפית ביולוגית רגילהEclipse 50i, ניקון, יפןhttps://www.microscope.healthcare.nikon.com/zh_CN/products/upright-microscopes/eclipse-ni-series
PBSשנחאי אנג'ין ביוטכנולוגיה ושות', בע"מ, סיןSH30256.01
PCR, ומנגנון הכורBiometra Thermocycler, גרמניהhttps://www.analytik-jena.com/products/life-science/pcr-qpcr-thermal-cycler/thermal-cycler-pcr/biometra-tone-series/
פיפטות של מפרטים שוניםחברת אפנדורף, גרמניהhttps://www.eppendorf.com/cn-zh/
פריימרים עבור Rt-PCRשנחאי ביו-טק ושות', בע"מ
Promeaine hydrochloride 0.5% טיפות עינייםAlcon, Inc., ארה"בhttps://www.alcon.com/about-us
נוגדן PMN עכברושפיצג'רלד, ארצות הברית20R-PR020
בזמן אמת פלואורסצנטי כמותי PCRיישומי ביוסיסטמס,  ערכתhttps://www.thermofisher.cn
TAKARA, יפןhttps://www.takarabiomed.com.cn/
מנורת חריץTOPCON, יפןhttps://topconchina.cn/
מלקחיים חלקיםSuzhou XVI Vision Company, סיןhttp://www.66vision.com/
קופסת דגימהLambolid (Fuzhou) Biotechnology Co., Ltd., סיןhttp://chuangdianbio.com/
ספסל SupercleanNew Plus Pi Art High Technology Company Limited, סינגפורhttps://www.hi-p.com/
מלקחיים עם שינייםSuzhou XVI Vision Company, סיןhttp://www.66vision.com/
טיפות עיניים Toppicamide (Medol)Alcon, Inc., ארה"בhttps://www.alcon.com/about-us
חלבון קורט חומצת גרעין בודק הריכוזThermo Fisher Technologies Inc., ארה"בhttps://www.thermofisher.cn/cn/zh/home.html
TrizolInvitrogen ארצות הבריתhttps://www.fishersci.com/us/en/brands/IIAM0WMR/invitrogen.html
Zeiss, עם מיקרוסקופ כירורגיCarl ZEIS, גרמניהhttps://www.zeiss.com/corporate/en/about-zeiss.html
/ב תמלול הפוך ארצות הברית

מקורות

  1. Ang, L. P., Tan, D. T. Ocular surface stem cells and disease: Current concepts and clinical applications. Ann Acad Med Singap. 33 (5), 576-580 (2004).
  2. Mao, Y., et al. Downregulation of p38 MAPK signaling pathway ameliorates tissue-engineered corneal epithelium. Tissue Eng Part A. 28 (23-24), 977-989 (2022).
  3. Sprogyte, L., Park, M., Di Girolamo, N. Pathogenesis of alkali injury-induced limbal stem cell deficiency: A literature survey of animal models. Cells. 12 (9), 1294(2023).
  4. He, X., et al. Lacrimal gland microenvironment changes after obstruction of lacrimal gland ducts. Invest Ophthalmol Vis Sci. 63 (3), 15(2022).
  5. Le, Q., Chauhan, T., Deng, S. X. Diagnostic criteria for limbal stem cell deficiency before surgical intervention- A systematic literature review and analysis. Surv Ophthalmol. 65 (1), 32-40 (2020).
  6. Li, W., Hayashida, Y., Chen, Y. T., Tseng, S. C. Niche regulation of corneal epithelial stem cells at the limbus. Cell Res. 17 (1), 26-36 (2007).
  7. Ou, S. K., et al. The role of ectodysplasin a on the ocular surface homeostasis. Int J Mol Sci. 23 (24), 12(2022).
  8. Lin, S., et al. Limbal stem cell dysfunction induced by severe dry eye via activation of the p38 MAPK signaling pathway. Am J Pathol. 193 (11), 1863-1878 (2023).
  9. Jiang, G. J., Li, B. B., Fan, T. J. Timolol induces necroptosis, apoptosis and senescence concentration-dependently in rabbit limbal stem cells in vitro. Life Sci. 277, 119453(2021).
  10. Castro-Munozledo, F. Review: Corneal epithelial stem cells, their niche and wound healing. Mol Vis. 19, 1600-1613 (2013).
  11. Atalay, E., et al. Animal models for limbal stem cell deficiency: A critical narrative literature review. Ophthalmol Ther. 13 (3), 671-696 (2024).
  12. Delic, N. C., Cai, J. R., Watson, S. L., Downie, L. E., Di Girolamo, N. Evaluating the clinical translational relevance of animal models for limbal stem cell deficiency: A systematic review. Ocul Surf. 23, 169-183 (2022).
  13. Lin, Z., et al. A mouse model of limbal stem cell deficiency induced by topical medication with the preservative benzalkonium chloride. Invest Ophthalmol Vis Sci. 54 (9), 6314-6325 (2013).
  14. Ye, J., et al. Biomimetic nanocomplex based corneal neovascularization theranostics. J Control Release. 374, 50-60 (2024).
  15. Zhu, H. M., et al. A synergistic therapy with antioxidant and anti-VEGF: Toward its safe and effective elimination for corneal neovascularization. Adv Healthc Mater. 13 (5), 10(2024).
  16. Yu, J. W., et al. In vivo assembly drug delivery strategy based on ultra-small nanoparticles: Toward high drug permeation and accumulation for CNV treatment. Chem Eng J. 450, 137968(2022).
  17. Wu, H., et al. A SU6668 pure nanoparticle-based eyedrops: Toward its high drug accumulation and long-time treatment for corneal neovascularization. J Nanobiotechnol. 22 (1), 290(2024).
  18. Long, Q., et al. A novel tissue-engineered corneal epithelium based on ultra-thin amniotic membrane and mesenchymal stem cells. Sci Rep. 14 (1), 17407(2024).
  19. Giroux, V., Rustgi, A. K. Metaplasia: Tissue injury adaptation and a precursor to the dysplasia-cancer sequence. Nat Rev Cancer. 17 (10), 594-604 (2017).
  20. Herfs, M., Hubert, P., Delvenne, P. Epithelial metaplasia: Adult stem cell reprogramming and (pre)neoplastic transformation mediated by inflammation. Trends Mol Med. 15 (6), 245-253 (2009).
  21. Slack, J. M. Metaplasia and transdifferentiation: From pure biology to the clinic. Nat Rev Mol Cell Biol. 8 (5), 369-378 (2007).
  22. Slack, J. M., Tosh, D. Transdifferentiation and metaplasia--switching cell types. Curr Opin Genet Dev. 11 (5), 581-586 (2001).
  23. Wang, S., et al. Impact of chronic smoking on meibomian gland dysfunction. PLoS One. 11 (12), e0168763(2016).
  24. Wu, Y., et al. Evolution of therapeutic strategy based on oxidant-antioxidant balance for fuchs endothelial corneal dystrophy. Ocul Surf. 34, 247-261 (2024).
  25. Li, Y., et al. Meibomian gland alteration in patients with systemic lupus erythematosus. Lupus. 31 (4), 407-414 (2022).
  26. Zhang, Y., et al. Histopathology-based diagnosis of Mooren's ulcer concealed beneath the pterygium on eye. J Histotechnol. 45 (4), 195-201 (2022).
  27. Tseng, S. C., Hatchell, D., Tierney, N., Huang, A. J., Sun, T. T. Expression of specific keratin markers by rabbit corneal, conjunctival, and esophageal epithelia during vitamin A deficiency. J Cell Biol. 99 (6), 2279-2286 (1984).
  28. Espana, E. M., et al. Characterization of corneal pannus removed from patients with total limbal stem cell deficiency. Invest Ophthalmol Vis Sci. 45 (9), 2961-2966 (2004).
  29. Li, W., et al. Air exposure induced squamous metaplasia of human limbal epithelium. Invest Ophthalmol Vis Sci. 49 (1), 154-162 (2008).
  30. Marino, G. K., et al. Epithelial basement membrane injury and regeneration modulates corneal fibrosis after pseudomonas corneal ulcers in rabbits. Exp Eye Res. 161, 101-105 (2017).

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

RT qPCR
ביסוס מודל דלקת קרנית חמורה בחולדות המבוסס על גרידת אפיתל בקרנית בשילוב תפרי קרנית
צור קשר
המלצה לספרייה

פרטיות

תנאי שימוש

מדיניות

2026 © זכויות יוצרים MyJoVE Corporation. כל הזכויות שמורות.