הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

פיצול רקמת שומן חדשני להפיכת שומן לרכיבים מיוחדים

1.5K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/68152

⸱

11 ביולי 2025

 ,  , 
1Department of Plastic and Cosmetic Surgery, Nanfang Hospital, Southern Medical University

במאמר זה

סיכום

כאן, אנו מציגים פרוטוקול שיכול להפוך רקמת שומן אוטולוגית לחומרים מרכיבי שומן שונים בעלי תכונות ותפקודים פיזיקוכימיים שונים.

תקציר

השתלת רקמת שומן אוטולוגית מסורתית משמשת בדרך כלל להגדלת נפח והתחדשות רקמות. עם זאת, התכונות הפיזיקליות והביולוגיות האחידות של שתלי שומן מובילות לרוב לביצועים לא אופטימליים בתרחישים מגוונים של מטופלים ודרישות מרובות פנים. בהרחבה על היסודות של השתלת שומן אוטולוגית, אנו מציגים גישה חלוצית הנקראת השתלת רכיבי שומן אוטולוגיים. תפיסה חדשנית זו משלבת פרוטוקול שתוכנן בקפידה שמטרתו להמיר רקמת שומן אוטולוגית למערך מגוון של רכיבי שומן, שכל אחד מהם מאופיין בתכונות פיזיקוכימיות ייחודיות המותאמות ליישומים ספציפיים בהקשרים קליניים מגוונים. באמצעות סדרה של שיטות פיזיקליות, ניתן להפוך את רקמת השומן לקומפלקס מטריצת שומן (AMC) המספק תמיכה קשיחה מספקת, שומן בצפיפות גבוהה (HDF) למילוי נוסף, ג'ל Stromal Vascular Fraction (SVF) להזרקות קטנות ו/או מדויקות, ושבר קולגן שומני (ACF) לקמטים עדינים ו/או צרכי הצערת פנים. לרכיבי השומן המובהקים הללו יש מאפיינים אינהרנטיים המתאימים לאסטרטגיות השתלה מדויקות וממוקדות, הנותנות מענה לדרישות הניואנסים של צרכי המטופל האישיים. פרוטוקול הפיצול החדשני של רקמת השומן מראה פוטנציאל גדול במהפכה בהשתלת רקמת שומן. הוא מציע פרספקטיבה ומתודולוגיה חדשה להשתלה מעודנת ומותאמת יותר.

מבוא

השתלת רקמת שומן אוטולוגית היא טכניקה בשימוש נרחב לשיפור נפח והתחדשות רקמות, המונעת על ידי התקדמות בהכנת אתר תורם, מיצוי שומן, עיבוד והשתלה 1,2,3,4. עם זאת, התכונות הפיזיקליות והביולוגיות האחידות של שתלי שומן מסורתיים מגבילות לעתים קרובות את יעילותן במתן מענה לצרכים קליניים מגוונים5. כדי להתגבר על מגבלות אלה, צוות המחקר שלנו פיתח פרוטוקול חדשני לפיצול רקמת שומן, ההופך שומן אוטולוגי לרכיבים מיוחדים בעלי תכונות ותפקודים פיזיקוכימיים מובחנים.

המטרה העיקרית של הפרוטוקול היא לפרק רקמת שומן אוטולוגית לרכיבים מיוחדים - קומפלקס מטריצת שומן (AMC), ג'ל שבר כלי דם סטרומלי (SVF) ושבר קולגן שומני (ACF), כל אחד מהם נועד להתמודד עם אתגרים קליניים ספציפיים. על ידי מתן רכיבים בעלי תכונות ייחודיות, כגון קשיחות משופרת, צפיפות תאים גבוהה ותכשירים עשירים בקולגן, הפרוטוקול מאפשר אסטרטגיות השתלה מדויקות וממוקדות 6,7,8,9,10,11.

השתלת שומן מסורתית, למרות שהיא יעילה להגדלת נפח, לרוב לא מצליחה לעמוד בדרישות הניואנסים של תרחישים קליניים מורכבים. ספיגת השומן הבלתי צפויה שלו מובילה לשיקום נפח לא יציב. יתרה מכך, בשל התכונות הפיזיקליות והביולוגיות האחידות של שתלי שומן מסורתיים, הם אינם יכולים לספק מילוי ממוקד לאזורים עם דרישות השתלה ספציפיות, כגון תמיכה מבנית, ביצוע הזרקות מדויקות לשטח קטן והשגת גירוי קולגן ממוקד. בעיות אלו מחייבות לעתים קרובות ניתוחים מרובים, ובכך מגבירות את הכאב והנטל הכלכלי של המטופלים 1,2,5. פרוטוקול פיצול זה מטפל במגבלות אלו על ידי העשרת רקמת השומן באופן ספציפי בתוכן בעל ערך מיוחד מרקמת השומן המסורתית. באמצעות תהליך זה, אנו יוצרים רכיבי רקמת שומן בעלי תכונות מותאמות אישית, ובכך מציעים לרופאים ערכת כלים רב-תכליתית לטיפול מותאם אישית. בהשוואה לחומרי מילוי סינתטיים או השתלת שומן מסורתית, הגישה משתמשת ברקמות אוטולוגיות, מבטלת את הסיכון לדחייה חיסונית ומבטיחה תאימות ביולוגית3. בנוסף, תהליך הפיצול יוצר רכיבים בעלי תכונות ייחודיות, כגון AMC, המספק תמיכה מבנית וכולל קצב ספיגה נמוך; SVF-gel, המספק זריקות מדויקות ומאופיין בצפיפות גבוהה של תאי שבר כלי דם סטרומליים; ו-ACF, פיגום חלבון קולגן המסוגל לשחרור מבוקר של גורמי שומן, המראה פוטנציאל ליישומים קליניים בהצערת העור 7,9,11. גישה זו גם מפחיתה את הצורך בפרוצדורות חוזרות על ידי שיפור שימור השתלים ושביעות רצון המטופלים10,12.

הרעיון של פיצול רקמות ביולוגיות כדי לייעל את התוצאות הטיפוליות מבוסס היטב, כפי שניתן לראות בהפרדת הדם לפלזמה, כדוריות דם אדומות וטסיות דם ליישומים רפואיים ממוקדים. בשנים האחרונות, המחקר והיישומים הקליניים של רכיבי רקמת השומן מתקדמים בהדרגה 13,14,15,16,17,18. פרוטוקול פיצול שומן זה מתבסס על עיקרון זה, ומבודד רכיבים בעלי תכונות ייחודיות לשימוש קליני מותאם אישית. רופאים יכולים לקבוע את ההתאמה של שיטה זו על ידי התחשבות בצרכים האנטומיים של המטופל, התוצאות הרצויות (למשל, הגדלת נפח, תמיכה מבנית או הצערת העור) והציוד הזמין. פרוטוקול זה יעיל במיוחד למקרים הדורשים בקרה מדויקת על תכונות השתל, כגון הצערת פנים, תיקון צלקות או הליכי שחזור מורכבים 7,10,12.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

מחקר זה אושר על ידי מועצת הביקורת האתית בבית החולים Nanfang, גואנגג'ואו, סין. רקמת השומן נאספה מתורמים בריאים שנתנו הסכמה מדעת בכתב להשתתף במחקר. כל הניסויים בבעלי חיים אושרו על ידי הוועדה המוסדית לטיפול ושימוש בבעלי חיים של בית החולים נאנפאנג ובוצעו בהתאם להנחיות המועצה הלאומית לבריאות ומחקר רפואי (סין).

1. הכנת שומן

  1. הרדמה כללית וחדירת נוזלים מתנפחים
    1. הכניסו את המטופל להרדמה כללית. במהלך שלב האינדוקציה התוך-ורידית, יש לתת שילוב של פרופופול (2 מ"ג/ק"ג), פנטניל (1.5 מיקרוגרם/ק"ג) ורוקורוניום (0.6 מ"ג/ק"ג), ולאחר מכן לשמור על עומק ההרדמה באמצעות סבופלורן (1.5%) ורמיפנטניל (0.1 מיקרוגרם/ק"ג/דקה). לאורך ההליך, התאם באופן דינמי את תוכנית ההרדמה על סמך ניטור BIS (ערך יעד 40-60), פרמטרים של מחזור הדם (MAP >65 מ"מ כספית) ו-EtCO2 (35-45 מ"מ כספית).
    2. הנח את המטופל במצב שכיבה עם ריפוד מגן בנקודות לחץ וחטא את אתר הניתוח בקפדנות עם אלכוהול כלורהקסידין. הקפידו על פרוטוקולים אספטיים כדי למזער את הסיכון לזיהום.
    3. הסתנן לרקמה התת עורית של אזור שאיבת השומן (כגון הבטן או הירך) עם נוזל גידול המכיל 0.06% לידוקאין ו-0.001% אפינפרין באמצעות מזרק של 20 מ"ל. שמור על יחס של 2:1 בין חדירה לנפח הצפוי של מיצוי השומן, תוך התאמת נפח ההזרקה הכולל בהתאם למאפיינים האנטומיים הספציפיים של המטופל וגודל אזור הטיפול.
    4. בדוק את אפקט ההרדמה כדי לאשר חדירת נוזל גידול מלאה. לפני השלב הבא, יש לדקור או לצבוט את אזור שאיבת השומן. אם המטופל מרגיש לחץ קל בלבד, ההסתננות מספיקה, ומאפשרת איסוף שומן עם פחות אי נוחות.
  2. קצירת שומן
    1. השתמש בצינורית מרובת יציאות 3 מ"מ עם חורי צד חדים בקוטר 1 מ"מ לאיסוף שומן. בצע את הפעולה בלחץ יניקה של -0.75 אטמוספירה כדי למזער את הנזק לרקמת השומן ולהבטיח את שלמותם וחיותם של תאי השומן שנאספו.
  3. הכנת שומן קולמן
    1. אפשר לשומן שנאסף, המונח במזרק של 60 מ"ל, לעמוד בשקט למשך 10 דקות כדי לאפשר לרכיבים הנוזליים להתיישב בתחתית המיכל.
    2. השליכו בזהירות את החלק הנוזלי בתחתית ואספו את שכבת השומן העליונה, הטהורה יחסית כדי להסיר זיהומים כמו דם ונוזל גום.
    3. שמור את השומן שנאסף במזרק של 60 מיליליטר ובצנטריפוגה ב-1,200 x גרם למשך 3 דקות בטמפרטורת החדר כדי לרבד עוד יותר את הרכיבים.
    4. לאחר הצנטריפוגה, השליכו שוב את החלק הנוזלי בתחתית. שמור על שכבת השומן העליונה, המוגדרת כשומן קולמן, ב -60-
      מזרק מיליליטר.
  4. איסוף דגימות שומן בצפיפות גבוהה ונמוכה
    1. העבירו את 2/3 העליונים של שומן קולמן למבחנה של 20 מ"ל, והגדירו אותו כשומן בצפיפות נמוכה (LDF).
    2. העבירו את 1/3 השומן התחתון הנותר של קולמן למבחנה נוספת של 20 מ"ל, והגדירו אותו כשומן בצפיפות גבוהה (HDF).

2. מיצוי רכיבים

  1. הכנת קומפלקס מטריצת שומן (AMC).
    1. העבירו את ה- HDF דרך מכשיר סינון עם שרוול ושלוש מסננות פנימיות (מרווח מסך מסנן 1.5 מ"מ).
    2. אסוף את הרקמה המצורפת וייבש אותה בשקית סינון של 100 רשת מוקפת בגזה. קבע את נקודת הקצה על ידי התבוננות ברקמה כשהיא נאספת בעזרת מלקחיים; כאשר אין טיפות נוזל ברורות נופלות על איסוף המלקחיים, זה מצביע על כך שההתייבשות השיגה את האפקט הרצוי. המוצר הסופי זוהה כ-AMC. אחסן את יתרת ה-HDF לשימוש עתידי.
  2. מיצוי ג'ל מחלק כלי דם סטרומלי (SVF)
    1. תחליב מכני של LDF: מתחלב מכנית את ה-LDF על ידי העברתו בין שני מזרקים המחוברים על ידי מחבר Luer-Lok נקבה לנקבה בקוטר פנימי של 1.4 מ"מ בקצב של 10 מ"ל לשנייה למשך דקה אחת.
    2. צנטריפוגה ה-LDF המתחלב ב-1,600 x גרם למשך 3 דקות. אוספים את השכבה האמצעית, הדומה לחומר דמוי ג'ל, כ- SVF-gel.
  3. ייצור שבר קולגן שומני (ACF)
    1. ריסוק של LDF: ריסוק ה-LDF במחלץ ACF מיוחד ב-30,000 סל"ד למשך 60 שניות לקבלת תרחיף שומן.
    2. סינון: מעבירים את תרחיף השומן למזרקים של 20 מ"ל. חבר אותו למסנן חד כיווני של 0.25 מ"מ, דחוף את הבוכנה ואסוף את המסנן במזרק נוסף של 20 מ"ל. לאחר מכן, חבר את המזרק הזה למסנן חד כיווני של 0.15 מ"מ, דחוף שוב את הבוכנה ואסוף את המסנן הסופי במזרק שלישי של 20 מ"ל. לאחר מכן, צנטריפוגה את תרחיף השומן ב-3,000 x גרם למשך 3 דקות.
    3. אוספים את החלק המוצק בתחתית כ-ACF.

3. בדיקת מרכיבי שומן

  1. בדיקת קשיחות
    1. השתמש בהתקן עם חיישן מדידת כוח בעל טווח של 0 N עד 225 N ומפעיל אלקטרומגנטי המאפשר תנועה צירית של 6 מ"מ.
    2. מהדקים כל דגימת רקמה (שומן AMC וקולמן) ומפעילים עומס מוקדם של 25 - 30 N כדי למנוע רפיון ולגרום להתארכות. הגדר את טעינת הרמפה ל-8 מ"מ לשנייה ורשום את הכוח הגבוה ביותר שהושג לפני שהדגימה נקרעה אלקטרונית. לאחר מכן המכשיר מחשב את נוקשות הרקמות.
  2. המטוקסילין ואאוזין (HE) וצביעת מאסון
    1. תקן את הדגימות ב-4% פרפורמלדהיד כדי לשמר את המבנה שלהן. התייבש בשיפוע אתנול כדי להסיר מים, הנחוצים לתהליך ההטבעה שלאחר מכן.
    2. הטמיעו את הדגימות בפרפין, תהליך שמקל על חיתוך הדגימות לחלקים דקים. לאחר מכן, חתכו את הדגימות המוטבעות בפרפין.
    3. צבעו את החלקים בכתמי הטריכרום של HE ו-Masson. בדוק את הדגימות באמצעות מיקרוסקופ אלקטרונים סורק (SEM).
  3. מחקרי השתלות
    1. בחר 70 עכברים עירומים ברמת SPF בריאותית, במשקל 15 - 18 גרם ובני 4 - 6 שבועות (ללא קשר למין). שמור את העכברים בהתאם להנחיות המוסדיות, שוכנים בכלובים בודדים עם מחזור אור/חושך של 12 שעות, ומסופקים עם מזון ומים סטנדרטיים אד ליביטום.
    2. להרדים עכברים על ידי הזרקה תוך-צפקית של נתרן פנטוברביטל (50 מ"ג/ק"ג). בדוק את עומק ההרדמה באמצעות רפלקס צביטת הבוהן. יש למרוח משחת עיניים למניעת יובש.
    3. הזרקו 0.3 מ"ל של רקמת AMC או שומן מוכנה (שומן קולמן בקבוצת הביקורת) לרקמות התת עוריות של כל עכבר, המשמשות כבסיס להשתלת השומן. עקוב אחר בעלי החיים עד שהם חוזרים להכרה ולאחר מכן העביר אותם לכלובים שלהם.
    4. בימים 7, 14, 30, 60 ו-90 לאחר ההשתלה, קצרו את השתלים על ידי הפרדתם בזהירות מהרקמה שמסביב. מדוד את נפחיהם. שיעור השמירה של השתלים הוגדר כדלקמן:
      שיעור שימור (%) = נפח השתל בזמן הקציר/נפח שומן הזרקה (0.3 מ"ל כאן) x 100%.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

באמצעות פרוצדורות מכניות שונות שבוצעו במהלך התהליך הכירורגי, הפכנו בהצלחה רקמת שומן לרכיבי שומן מובהקים בעלי מאפיינים שונים. הם, ברצף, ה-AMC שמספק תמיכה חזקה בשפע (איור 1A), ה-HDF למילוי נוסף (איור 1B), ה-SVF-gel להזרקות מדויקות באזורים קטנים (איור 1C), וה-ACF לטיפול בקמטים עדינים או בצורכי שיקום פנים (איור 1D). המאפיינים והיעילות של החומרים המרכיבים את השומן AMC, SVF-gal ו-ACF נבדקו ביסודיות.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

פרוטוקול פיצול רקמת שומן זה כולל מספר שלבים קריטיים המבטיחים בידוד מוצלח של רכיבים מיוחדים. ראשית, הצנטריפוגה של רקמת השומן שנקטפה מפרידה אותה לשומן בצפיפות גבוהה (HDF) ושומן בצפיפות נמוכה (LDF), כל אחד עם הרכבים מובהקים של מטריצה תאית וחוץ-תאית (ECM)23,24. HDF, עשיר בתאי שומן ברי קיימא ותאי שבר כלי דם סטרומלי (SVF), מעובד עוד יותר כדי להשיג את קומפלקס מטריצת השומן (AMC), המספק תמיכה מבנית בשל תכולת הקולגן הגבוהה שלו

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

המחברים מצהירים שאין להם ניגוד אינטרסים.

תודות

עבודה זו נתמכה על ידי הקרן הלאומית למדעי הטבע של סין (מענקים 81801932, 81901976, 81971852, 81772101 ו-81901975).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
0.001% אפינפריןסיגמא-אולדריץ'E4375
0.06% לידוקאיןסיגמא-אולדריץ'L5647
3 מ"מ Multiport CannolaTulip Medical Products, סן דייגו, קליפורניה, ארה"ב/
50 מ"ל צינורות צנטריפוגהקורנינג430829
BOSE ElectroForce מכשיר לבדיקת עומסBose Corporation/
קולגנאזוורת'ינגטון ביוכימיLS004176
נקבה לנקבה Luer-Lok ConnectorBD Biosciences309628
מכשיר סינון עם שרוול ומסננותבהתאמה אישית (שנחאי Tiangong Instruments Co., Ltd.)/
GauzeMedline IndustriesMDS093944
ערכת צביעה המטוקסילין/אאוזין ערכת צביעהסיגמא-אולדריץ'HT110116
Masson's Trichrome'HT15
עכברים עירומיםSouthern Mdical/
מלח פוספט-חוצץ (PBS)Thermo Fisher Scientific
מסך מסנן נירוסטה עגול עגול 10010023 (0.15 מ"מ)שנחאי Tiangong מכשירים ושות', בע"מ/
מסך מסנן נירוסטה עגול (0.25 מ"מ)שנחאי Tiangong מכשירים ושות', בע"מ/
מעוקר 100 רשת תיק סינוןשנחאי Tiangong מכשירים ושות', בע"מ/
שבר כלי דם סטרומלי (SVF)-מחלץ ג'לשנחאי Tiangong מכשירים ושות', בע"מ/
TrypsinThermo Fisher Scientific25200056
ערכת ניתוח כתמים מערבייםBio-Rad1705061
ערכת סיגמא-אולדריץ אוניברסיטת

מקורות

  1. Simonacci, F., Bertozzi, N., Grieco, M. P., Grignaffini, E., Raposio, E. Procedure, applications, and outcomes of autologous fat grafting. Ann Med Surg. 20, 49-60 (2017).
  2. Strong, A. L., Cederna, P. S., Rubin, J. P., Coleman, S. R., Levi, B. The Current State of Fat Grafting: A Review of Harvesting, Processing, and Injection Techniques. Plast Reconstr Surg. 136 (4), 897-912 (2015).
  3. Evans, B. G. A., Gronet, E. M., Saint-Cyr, M. H. How Fat Grafting Works. Plast Reconstr Surg Glob Open. 8 (7), e2705(2020).
  4. Costanzo, D., Romeo, A., Marena, F. Autologous Fat Grafting in Plastic and Reconstructive Surgery: An Historical Perspective. Eplasty. 22, e4(2022).
  5. Suszynski, T. M., Sieber, D. A., Van Beek, A. L., Cunningham, B. L. Characterization of adipose tissue for autologous fat grafting. Aesthetic Surg J. 35 (2), 194-203 (2015).
  6. He, Y., et al. Human adipose liquid extract induces angiogenesis and adipogenesis: a novel cell-free therapeutic agent. Stem Cell Res Ther. 10 (1), 252(2019).
  7. Li, Y., et al. Adipose matrix complex: a high-rigidity collagen-rich adipose-derived material for fat grafting. Aging. 13 (11), 14910-14923 (2021).
  8. Zhu, H., et al. Improving Low-Density Fat by Condensing Cellular and Collagen Content through a Mechanical Process: Basic Research and Clinical Applications. Plast Reconstr Surg. 148 (5), 1029-1039 (2021).
  9. Yao, Y., et al. Adipose Extracellular Matrix/Stromal Vascular Fraction Gel: A Novel Adipose Tissue-Derived Injectable for Stem Cell Therapy. Plast Reconstr Surg. 139 (4), 867-879 (2017).
  10. Yao, Y., et al. Adipose Stromal Vascular Fraction Gel Grafting: A New Method for Tissue Volumization and Rejuvenation. Dermatol Durg. 44 (10), 1278-1286 (2018).
  11. Jin, X., et al. An Adipose-Derived Injectable Sustained-Release Collagen Scaffold of Adipokines Prepared Through a Fast Mechanical Processing Technique for Preventing Skin Photoaging in Mice. Front Cell Dev Biol. 9, 722427(2021).
  12. Cai, J., et al. Adipose Component Transplantation: An Advanced Fat-Grafting Strategy for Facial Rejuvenation. Plast Reconstr Surg. 153 (3), 549e-554e (2024).
  13. Demirel, O., Aköz Saydam, F. Assessment of the Causes of Differences in Centrifugation Protocols as a Fat-Processing Technique: A Systematic Literature Review. Aesthetic Plast Surg. 45 (3), 1242-1265 (2021).
  14. Neal, M. D., et al. Early Cold Stored Platelet Transfusion Following Traumatic Brain Injury: A Randomized Clinical Trial. Ann Surgery. , (2025).
  15. Czako, S., Prochaska, M. Red blood cell transfusion clinical decision support: A scoping review of guideline adherence and clinical impact. Transfusion. 65 (2), 410-419 (2025).
  16. Warner, D., Duncan, H., Gudsoorkar, P., Anand, M. Indications and complications associated with centrifuge-based therapeutic plasma exchange - a retrospective review. BMC Nephrol. 26 (1), 87(2025).
  17. Yang, R., Song, Z., Li, S., Wang, J., Liang, H. Analysis of the Volume of the Liposuction-Derived Adipose Tissue in Clinical Application. J Craniofacial Surg. , (2025).
  18. Baniameri, S., et al. Tissue Engineering 3D-Printed Scaffold Using Allograft/Alginate/Gelatin Hydrogels Coated With Platelet-Rich Fibrin or Adipose Stromal Vascular Fraction Induces Osteogenesis In Vitro. J Cell Physiol. 240 (1), e31497(2025).
  19. Karna, E., Szoka, L., Huynh, T. Y. L., Palka, J. A. Proline-dependent regulation of collagen metabolism. Cell Mol Life Sci. 77 (10), 1911-1918 (2020).
  20. Ricard-Blum, S. The collagen family. Cold Spring Harb Perspect Biol. 3 (1), a004978(2011).
  21. Ferrara, N. VEGF and the quest for tumour angiogenesis factors. Nat Rev Cancer. 2 (10), 795-803 (2002).
  22. Harraz, M. M., et al. SOD1 mutations disrupt redox-sensitive Rac regulation of NADPH oxidase in a familial ALS model. J Clin Invest. 118 (2), 659-670 (2008).
  23. Guan, J., et al. Identification of High-Quality Fat Based on Precision Centrifugation in Lipoaspirates Using Marker Floats. Plast Reconstr Surg. 146 (3), 541-550 (2020).
  24. Qiu, L., et al. Identification of the Centrifuged Lipoaspirate Fractions Suitable for Postgrafting Survival. Plast Reconstr Surg. 137 (1), 67e-76e (2016).
  25. Feng, J., et al. Mechanical process prior to cryopreservation of lipoaspirates maintains extracellular matrix integrity and cell viability: evaluation of the retention and regenerative potential of cryopreserved fat-derived product after fat grafting. Stem Cell Res Ther. 10 (1), 283(2019).
  26. Comerci, A. J., et al. Risks and Complications Rate in Liposuction: A Systematic Review and Meta-Analysis. Aesth Surg J. 44 (7), Np454-Np463 (2024).
  27. Crisan, M., et al. A perivascular origin for mesenchymal stem cells in multiple human organs. Cell stem cell. 3 (3), 301-313 (2008).
  28. Pan, Z., et al. CD90 serves as differential modulator of subcutaneous and visceral adipose-derived stem cells by regulating AKT activation that influences adipose tissue and metabolic homeostasis. Stem Cell Res Ther. 10 (1), 355(2019).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

פיצול רקמת שומן חדשני להפיכת שומן לרכיבים מיוחדים
צרו קשר
המליצו לספרייה

פרטיות

תנאי שימוש

מדיניות

זכויות יוצרים © 2026 MyJoVE Corporation. כל הזכויות שמורות.