Method Article

בניית מיקרו-מערך רקמות מבוסס דבק לחקר גידולים ומחלות

DOI:

10.3791/68424

August 1st, 2025

In This Article

Summary

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

פרוטוקול זה מתאר ייצור בעלות נמוכה ושיטת אימות יעילה לבניית TMA מבוססת דבק, המספקת פלטפורמת אבחון פתולוגית נוחה לחקר גידולים ומחלות.

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

טכנולוגיית מיקרו-מערך רקמות (TMA) היא פלטפורמה בעלת תפוקה גבוהה לזיהוי וניתוח בו זמנית של דגימות רקמה מרובות, המאפשרת מחקר יעיל של סמנים ביולוגיים של גידולים ומחלות. עם זאת, שיטות בניית TMA קונבנציונליות מתמודדות לעתים קרובות עם מגבלות כגון מורכבות תפעולית, נהלים גוזלי זמן ודיוק משתנה. שיטת בנייה מבוססת דבק פותחה כדי להתגבר על אתגרים אלה, ומציעה קיבוע משופר של ליבת הרקמה ויציבות מבנית משופרת. אימות שיטתי כלל הערכה היסטולוגית (צביעת HE), פרופיל אימונוהיסטוכימי של חלבוני מטרה וניתוח פלואורסצנטי במקום הכלאה (FISH). התוצאות הראו כי השיטה מבוססת הדבק שמרה על שלמות פרוסה מצוינת, שיפרה את יחס האות לרעש והבטיחה שחזור עקבי של אצווה לאצווה. למרות שהגישה מוגבלת להפעלה ידנית, היא מציגה אפשרות אמינה וחסכונית לייצור TMA בתפוקה בינונית. שיטה זו מתאימה במיוחד לסביבות מחקר שמעריכות גמישות וגיוון מדגם על פני אוטומציה בקנה מידה גדול, ומרחיבה את התועלת של TMA במסגרות אקדמיות ואבחון.

Introduction

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

מיקרו-מערך רקמות (TMA) היא טכניקה בעלת תפוקה גבוהה לניתוח דגימות רקמה 1,2,3. מתקבלות ליבות רקמת תורם מרובות, וגושי פרפין של התורם מועברים לבלוקים של רקמת הנמען לניתוח מולקולרי דיפרנציאלי והשוואתי בו זמנית באותם תנאי ביצועיםתיאורטית 2,4. הדרך הקלאסית לבנות מיקרו-מערך רקמות (TMA) היא להשתמש באגרוף חור כדי לחלץ ליבות רקמה מדגימת רקמה של תורם ולסדר אותן ברצף לתוך גוש פרפין מקבל. שיטה זו מתאימה לגושי פרפין תורמים בעומק דומה ומאפשרת ניתוח יעיל של דגימות מרובות על פרוסה אחת, מה שמשפר מאוד את יעילות המחקר ואת עקביות הנתונים 5,6,7. עם זאת, לשיטה זו עדיין יש מגבלות מסוימות, כולל טיפול לקוי בליבת הרקמה במהלך תהליך ההטבעה, מה שעלול לגרום לצביעה לא עקבית של דגימות בניתוחים הבאים8.

השיטה השנייה של בניית TMA היא שיטת הסרט 9,10. שיטה זו הופכת את תהליך הבנייה על ידי יציקת הבלוק סביב ליבות זקופות הפוכות, שעם השלמתן, צמודות לחלק העליון של ה-TMA, ללא קשר לאורך הליבה11,12. עם זאת, שיטה זו מחייבת הקפדה על מיקום נכון של ליבת הרקמה ויעילות הסרט, וגם מגבילה את מספר הדגימות שניתן לעבד בהשוואה לטכניקות מסורתיות.

מחקר זה מציע שיטת דבק חדשנית לבניית TMA, שמטרתה לפתור בעיות כגון יציבות לא מספקת של ליבות רקמה ופעולות מורכבות הקיימות בטכניקות מסורתיות13. שיטה זו משתמשת בדבק כדי לתקן במדויק ליבות רקמה מרובות יחד ויש לה את היתרונות של פעולה פשוטה ומוצקות דגימה חזקה. בהשוואה לשיטות החיתוך או הסרט המסורתיות, שיטת הדבק יכולה להגדיל את קצב השמירה של ליבות הרקמות ולהפחית עלויות. שיטה זו ישימה למחקרים קליניים עם גודל מדגם בינוני ומתאימה במיוחד לעיצובי מחקר הדורשים התאמה גמישה של תוכנית הניסוי. עם זאת, יש לציין כי יכולת העיבוד של שיטה זו אינה עומדת בדרישות של תפוקה גבוהה במיוחד9. בינתיים, בתהליך היישום בפועל, יש להקים מערך שלם של נורמות הפעלה סטנדרטיות ומערכות בקרת איכות. המפעילים צריכים לקבל הכשרה שיטתית ולעבור הערכות מקצועיות כדי להבטיח סטנדרטיזציה של פעולות טכניות וחזרתיות של תוצאות. ניתוח מקיף מצביע על כך שטכנולוגיה זו משיגה איזון טוב בין גמישות תפעולית, עלות-תועלת ואמינות טכנית, ומתאימה במיוחד לתרחישי מחקר שבהם המשאבים מוגבלים אך עדיין יש להבטיח בקרת איכות.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

כל גושי התורמים התקבלו מדגימות פתולוגיות ארכיוניות שנאספו בין 2016 ל-2018 בבית החולים העממי מס' 1 של האוניברסיטה הרפואית נאנג'ינג. הדגימות הוסרו לפני השימוש ועובדו בהתאם לפרוטוקולים שאושרו (ועדת האתיקה של בית החולים העממי מס' 1 של האוניברסיטה הרפואית נאנג'ינג, KY-2024-250-01).

1. הערכה ותיוג של רקמת תורם

  1. בחר גושי רקמה בעובי של ≥5 מ"מ ושטח של ≥15 מ"מ × 15 מ"מ. הקפידו על מרווח בטיחות של 2 מ"מ בקצוות, ואל תכלול אזורים המציגים נמק, דימום או הסתיידות כדי לשמור על שלמות הרקמות.
  2. זיהוי וסימון אזור יעד
    1. העריכו את החלקים המוכתמים ב-H&E באמצעות מיקרוסקופ אופטי. אתר את אזור היעד באמצעות סריקה בהספק נמוך, ולאחר מכן עבור להספק גבוה כדי לאשר את המאפיינים המורפולוגיים של התא. סמן את גבולות אזור היעד בשקופיות.
    2. מפה את הקואורדינטות של האזור שנבחר לפני השטח של גוש הפרפין כדי להשלים את המרת הסימון.

2. מיצוי ליבת רקמה

  1. הכנת פנצ'ר וטיפול מקדים לדוגמא
    1. בחר מנקב חורים ידני בקוטר 2 מ"מ ואשר את החלקות של קצה החיתוך וקלות התפעול שלו.
    2. מניחים את גוש הפרפין התורם על פלטפורמה קרה בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס למשך 15 דקות.
  2. יישר את המחט אנכית עם הנקודה המסומנת, והפעל לחץ סיבובי קבוע כדי להגיע לעומק המגביל. הימנע מהטיה או רטט במהלך התהליך7 (איור 1A).
  3. סובב בעדינות את המחט נגד כיוון השעון (≤2 סיבובים/שניות) כדי למשוך אותה. הוציאו בזהירות את ליבת הרקמה מהמחט והעבירו אותה לבאר אינדיבידואלית של צלחת מקוררת מראש של 96 בארות. רשום את מיקום הליבה בכל באר (איור 1B).
    הערה: אם החלק התחתון של ליבת הרקמה אינו אחיד, יישר אותו עם להב. לאחר החיתוך, בדוק שוב את התקינות.
  4. רשום מראש את כל מספרי התורמים ואת מיקומי באר הצלחות המתאימים של ELISA (A1-H12) בטופס ההרשמה. במהלך הניתוח, בדוק שוב כדי לוודא התאמה קפדנית בין מספר התורמים למיקומי הבאר.
  5. בדוק מיד את הליבות לאיתור תקינות. השלך גרעינים שבורים, מכופפים או בעלי סטיות קוטר >0.1 מ"מ.
    הערה: ודא עקביות באורך הליבה (מקדם וריאציה, CV ≤5%) והימנע משריטות משטח או חפצי דחיסה.

3. קיבוע ליבת רקמות

  1. השתמש בטוש עמיד למים כדי לצייר רשת ישירות על משטח התבנית, מה שמבטיח קווים ברורים ומרווחים באופן שווה.
    1. השתמש בתבנית סטנדרטית עם שטח תחתון יעיל של 3.0 ס"מ × 2.5 ס"מ, ושמור שטח גבול ריק של 1.5 מ"מ מכל צד.
    2. השתמש בטוש עמיד למים בנקודה עדינה של 0.5 מ"מ כדי לצייר תשעה קווים מקבילים במרווחים שווים אופקית ואנכית, ויוצרים רשת מיקום של 9 × 9 (81 נקודות חיתוך בסך הכל).
      הערה: לפני שמתחילים, נקו את פנים התבנית בעזרת צמר גפן ספוג קסילן כדי להסיר שאריות פרפין, שעלולות לגרום לדלמינציה. במהלך תהליך השרטוט, השתמש בסרגל פלדה כדי להבטיח עובי קו אחיד ונקודות חיתוך הניתנות להבחנה בבירור.
  2. השתמש בפיפטה כדי לצייר 5 מיקרוליטר דבק והנח אותו בעדינות במרכז השקופית המסומנת מראש ליצירת טיפה אחת. השתמש מיד בפינצטה עדינה כדי להרים אנכית את ליבת הרקמה בזווית של 90 מעלות וללחוץ אותה לאט אנכית לתוך טיפת הדבק (איור 1C).
  3. הכנס את הליבות לצמתים המתאימים ברשת על התבנית באמצעות פינצטה. הפעל לחץ עדין למשך 5 שניות כדי להבטיח הידבקות בטוחה (איור 1D).
  4. אם ליבת הרקמה נעקרת, כוונן ואפס אותה מיד באמצעות פינצטה עדינה לפני שהדבק מתמצק (תוך 30 שניות). השלך ליבות מוצקות ולא מיושרות כדי לשמור על איכות ההכנה תוך שמירה על דגימות יקרות במידה המרבית.

4. התקנת קלטות והטמעת פרפין

  1. הנח אנכית את קלטת הרקמות מעל תבנית הפלדה, והבטיח מגע עם קצות הליבה מבלי להפעיל דחיסה. אבטח את הקסטה באמצעות מהדקים מגנטיים בכל ארבע הפינות, ואטום את התפרים בפרפין מותך.
  2. להחדיר פרפין מותך בזווית של 45° בתבנית זיגזג, תוך שמירה על קצב זרימה של 1 מ"ל לשנייה. ודא שרמת הפרפין עולה על קצות הליבה ב-2 מ"מ (איור 1E).
  3. יש לקרר במהירות את הבלוק על צלחת קרה של 4 מעלות צלזיוס למשך 5 דקות ליצירת שכבת תמיכה קשיחה. העבר את הבלוק לסביבה של 22 מעלות צלזיוס למשך 20 דקות כדי להפחית את הלחץ הפנימי. לבסוף, השתמש באקדח חום של 40 מעלות צלזיוס כדי להחליק בעדינות את פני השטח ולהעלים סימני הצטמקות.
  4. מחממים מעט את הפרפין כדי לרכך אותו, ואז חותכים בזהירות לאורך שולי הקסטה כדי לשחרר את הבלוק. הרם בעדינות את הקסטה והסר את שאריות הפרפין כדי להבטיח את שלמות ליבות הרקמה (איור 1F).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

במחקר הנוכחי נבנו מיקרו-מערכי רקמות איכותיים בשיטת הדבק. כדי לאמת את יעילות השיטה, בוצעה סדרה של ניסויים, כולל צביעת H&E, זיהוי אימונוהיסטוכימי של חלבונים ספציפיים וניתוח פלואורסצנטי במקום הכלאה (FISH). מרכיב קריטי בתהליך הבנייה הוא נוכחותן של נקודות ליבת רקמה במיקומים ובמרחקים הצפויים זה מזה, המוערכת על ידי בדיקה חזותית. בדיקה ויזואלית של בלוקי ה-TMA מראה שהליבות קיימות ומרווחות באופן קבוע בכל TMA (איור 2A). צביעת H&E הראתה שכל ליבות הרקמות היו מסודרות בצורה מסודרת, עם מרוו...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

כשיטה חדשנית לבניית מיקרו-מערכי רקמות (TMA), שיטת הדבק הראתה יתרונות משמעותיים בשל קלות הליכי הבנייה והעלות-תועלת שלה. בהשוואה לשיטת מערך המחטים המסורתית, המסתמכת על מכשירים מתוחכמים14,15, שיטת הדבק מאפשרת קיבוע דגימה על ידי הדבקה, שניתן לעשות זאת בכלים בסיסיים בלבד, מה שמפחית מאוד את הסף הטכני. בניגוד לשיטת ההטבעה המסורתית, שיטת ההדבקה קבועה על ידי חלוקה מקומית, מה שמקצר משמעותית את זמן הלוקליזציה של ליבת הרקמה ומונע הרס של אנטי...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

למחברים אין מה לחשוף.

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

תודה לחברי הצוות על תמיכתם ותרומתם לניסוי זה.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
סרטן השד ערכת זיהוי HER2Anbiping2502001סרטן השד ערכת זיהוי HER2
נוגדן CDHR4 נוגדןAbcamab166914נוגדן CDHR4
CDK1 נוגדןAbcamab265590CDK1 נוגדן CRTAC1
נוגדןAbcamab254691נוגדן CRTAC1
DNASE1L3 נוגדןAbcamab203669DNASE1L3 נוגדן
מכונת הטבעהPSJ רפואיBM450Aמכונת הטבעה
רקמות אוטומטי לחלוטיןLeica BiosystemsASP3005מייבש רקמות אוטומטי לחלוטין
שקופיות מיקרוסקופ זכוכיתCitotest250124A1זכוכית מיקרוסקופ שקופיות
דבקTIZO200דבק
GPR146 נוגדןAbcamab117104GPR146
נוגדן IGSF10 נוגדןAbcamab197671IGSF10 נוגדן
ITIH1 נוגדןAbcamab233032ITIH1 נוגדן
להבי מיקרוטום בפרופיל נמוךתרמו פישר3052835להבי מיקרוטום בפרופיל נמוך
עט סמןמעדנייהSK109עט סמן
מיקרוטוםLeica BiosystemsHistoCore BIOCUTMicrotome
SolarbioYA0012שעוות פרפין
SMAD9 נוגדןAbcamab262940SMAD9
נוגדן TARBP1 נוגדןAbcamab115896נוגדן TARBP1
ZCCHC24 נוגדןAbcamab88756נוגדן ZCCHC24
מייבש שעוות פרפין

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Bingle, L., Fonseca, F. P., Farthing, P. M. Constructing tissue microarrays: Protocols and methods considering potential advantages and disadvantages for downstream use. Oral Biol Mol Tech Appl. Seymour, G. J., Cullinan, M. P., Heng, N. C. K. , 429-438 (2017).
  2. Chung, L. K., et al. Tissue microarray analysis for epithelial membrane protein-2 as a novel biomarker for gliomas. Brain Tumor Pathol. 35 (1), 1-9 (2018).
  3. Torata, N., et al. Tissue tablet method: An efficient tissue banking procedure applicable to both molecular analysis and frozen tissue microarray. Hum Pathol. 45 (1), 143-152 (2014).
  4. Koo, M., Squires, J. M., Ying, D., Huang, J. Making a tissue microarray. Biobank Methods Protocols. Yong, W. H. , 313-323 (2019).
  5. Rimm, D. L., Camp, R. L., Charette, L. A., Olsen, D. A., Provost, E. Amplification of tissue by construction of tissue microarrays. Exp Mol Pathol. 70 (3), 255-264 (2001).
  6. Vogel, U. F., Bueltmann, B. D. Simple inexpensive, and precise paraffin tissue microarrays constructed with a conventional microcompound table and a drill grinder. Am J Clin Pathol. 126 (3), 342-348 (2006).
  7. Pires, A. R. C., Andreiuolo, F. M., de Souza, S. R. TMA for all: A new method for the construction of tissue microarrays without recipient paraffin block using custom-built needles. Diagn Pathol. 1 (1), 14(2006).
  8. Zlobec, I., Koelzer, V. H., Dawson, H., Perren, A., Lugli, A. Next-generation tissue microarray (ngTMA) increases the quality of biomarker studies: An example using CD3, CD8, and CD45RO in the tumor microenvironment of six different solid tumor types. J Transl Med. 11 (1), 104(2013).
  9. Glinsmann-Gibson, B., et al. Recommendations for tissue microarray construction and quality assurance. Appl Immunohistochem Mol Morphol. 28 (4), 325-330 (2020).
  10. Chen, N., Zhou, Q. Constructing tissue microarrays without prefabricating recipient blocks: A novel approach. Am J Clin Pathol. 124 (1), 103-107 (2005).
  11. Pires, A. R. C., de Souza, S. R. Hypodermic needle without recipient paraffin block technique. Methods Mol Biol. 664, 53-61 (2010).
  12. Vogel, U. F., Bültmann, B. Application of a novel and low-cost technique to construct paraffin tissue microarrays out of paraffinised needle biopsy specimens from patients with breast cancer. J Clin Pathol. 63 (7), 640-643 (2010).
  13. Qin, P., Li, L., Zhao, L., Bian, P., Xiong, Z. Constructing high-density tissue microarrays with a novel method and a self-made tissue-arraying instrument. Pathol Res Pract. 245, 154430(2023).
  14. Zlobec, I., Suter, G., Perren, A., Lugli, A. A next-generation tissue microarray (ngTMA) protocol for biomarker studies. J Vis Exp. (91), e51893(2014).
  15. Barrette, K., van den Oord, J. J., Garmyn, M. Tissue microarray. J Invest Dermatol. 134 (9), 1-4 (2014).
  16. Sexton, T., Kucera, G. L., Levine, E. A., Watabe, K., O'Neill, S. S. Optimization of tissue microarrays from banked human formalin-fixed paraffin embedded tissues in the cancer research setting. Biopreserv Biobank. 17 (5), 452-457 (2019).
  17. Harfouch, R. M., et al. Optimization of tissue microarray technique for breast cancer patients: A short communication. Ann Med Surg. 85 (10), 5299-5303 (2023).
  18. Choi, C. H., et al. Construction of high-density tissue microarrays at low cost by using self-made manual microarray kits and recipient paraffin blocks. Korean J Pathol. 46 (6), 562-568 (2012).
  19. Kim, K. H., et al. In-house manual construction of high-density and high-quality tissue microarrays by using homemade recipient agarose-paraffin blocks. Korean J Pathol. 47 (3), 238-244 (2013).
  20. Moncada, R., et al. Integrating microarray-based spatial transcriptomics and single-cell RNA-seq reveals tissue architecture in pancreatic ductal adenocarcinomas. Nat Biotechnol. 38 (3), 333-342 (2020).
  21. Bingham, V., et al. Topographic analysis of pancreatic cancer by TMA and digital spatial profiling reveals biological complexity with potential therapeutic implications. Sci Rep. 14 (1), 11361(2024).
  22. Casadonte, R., Longuespée, R., Kriegsmann, J., Kriegsmann, M. MALDI IMS and cancer tissue microarrays. Adv Cancer Res. 134, 173-200 (2017).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Tissue MicroarrayGlue Based TMATumor ResearchDisease BiomarkersCore FixationHistological EvaluationHE StainingImmunohistochemistryFISH AnalysisSlice Integrity
Video Coming Soon

Related Articles