הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

ב Vivo מיקרוסקופיה קונפוקלית באבחון וניהול עין יבשה: התמקדות בפרוטוקולי הדמיה ופרשנות

1.4K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/69156

⸱

11 בנובמבר 2025

 ,  , 
1Hankou Aier Eye Hospital, 2Aier Eye Hospital of Wuhan University, 3School of Stomatology and Ophthalmology, Xianning Medical College, Hubei University of Science and Technology

במאמר זה

סיכום

מאמר זה מדגים את הפעולה וההשפעה של מיקרוסקופיה קונפוקלית in vivo באבחון וטיפול בעין יבשה וחוקר את היישום והתוצאות של מיקרוסקופיה קונפוקלית in vivo כדי לספק בסיס למחקר עתידי.

תקציר

מיקרוסקופיה קונפוקלית in vivo (IVCM) זכתה לתשומת לב משמעותית בשל אופייה הלא פולשני והרזולוציה הגבוהה שלה. הוא מאפשר תצפית in vivo וכימות אובייקטיבי של מבני פני העין הרבים הקשורים למחלת עין יבשה (DED), כולל הקרנית, הלחמית, שולי העפעפיים, בלוטות המייבומיאן וטפילים כגון דמודקס, ברמה התאית. יכולת זו מסייעת לרופאי עיניים בזיהוי אטיולוגיות ותתי סוגים ספציפיים של DED, ובכך מאפשרת אבחון מדויק, טיפול ממוקד והערכה פרוגנוסטית. עם זאת, עדיין חסרים פרוטוקולים סטנדרטיים לתפעול ודיווח IVCM. בקיאות הן בידע עיניים והן בתפעול טכני חיונית לניצול יעיל של מכשיר זה ולהפקת דוחות באיכות גבוהה. מאמר זה מפרט את השלבים הפרוצדורליים והניואנסים של בדיקת IVCM עבור חולי DED. זהו פרוטוקול ה-IVCM הראשון של JoVE צעד אחר צעד עבור DED. הוא נועד לשמש כהתייחסות לרופאים, לעזור להם להימנע מחוסר יעילות תפעולית ולהשיג באופן עקבי תמונות איכותיות של פני הקרנית והעיניים כדי להנחות את הניהול הקליני.

מבוא

בשל אילוצים במשאבים הרפואיים המקומיים או הנטל הכספי של המטופל, האבחנה הקלינית של DED מתמקדת לרוב רק בהיבט בסיסי (למשל, תצפית מתחת למיקרוסקופ מנורת החריץ, תלונה על יובש וגירוד בעיניים) או אפילו אינדיקטור יחיד (למשל, זמן פירוק סרט דמעות פולשני, בדיקת הפרשת דמעות או התפשטות דמודקס). יישום IVCM אינו זמין באופן נרחב, שלא לדבר על סטנדרטיזציה של פרוטוקולים עבורו. עם זאת, עבור מוסדות עיניים המצוידים ב-IVCM, המחבר ממליץ לחולים בפעם הראשונה לעבור בדיקה מיקרוסקופית מקיפה כדי למנוע השמטות, כולל הקרנית, הלחמית ושוליים פלפברליים. למקרי DED דו-משמעיים או לזיהוי דמודקס, IVCM מתאים במיוחד לתשובה מפורשת.

מחלת עין יבשה (DED) מוגדרת כמצב כרוני של פני העין הנגרם על ידי חריגות באיכות או בכמות נוזל הדמעות וירידה ביציבות של שכבת הדמעות. בסדנת העין היבשה II (DEWS II), DED מסווג לחמישה סוגים: עין יבשה חסרת מים (ADE), עין יבשה באידוי (EDE), עין יבשה מעורבת (MDE), נטייה לעין יבשה ועין יבשה פרה-קלינית מצב1. ראלין ועמיתיו סיכמו את הפרקטיקה הקלינית החשובה של IVCM בסוגים שונים של עין יבשה, כולל הספרות שפורסמה בין השנים 2017 ל-20222. מחקרים אחרונים הראו כי דלקת ממלאת תפקיד מפתח בפתוגנזה של DED 3,4. במיוחד, צפיפות התאים הדנדריטים (DCs) עשויה להיות אינדיקטור טוב ל-DED הקשור לתהליך מערכתי בתיווך חיסוני5.

ה-IVCM משתמש בטכנולוגיית טומוגרפיה לייזר קונפוקלית. הוא מציע רזולוציות אופקיות ואנכיות של 1 מיקרומטר. מפרט טכני מפורט של המכשיר מתועד בדוח של ג'רמי ואחרים6. במהלך בדיקת פני העין, IVCM מוחל תחילה על הקרנית7, ולאחר מכן על הלחמית ובלוטות המייבומיאן8. דלקת העפעפיים של דמודקס זכתה לתשומת לב קלינית הולכת וגוברת בשנים האחרונות 9,10. IVCM מספק תמונות ברורות של הקרנית, הלחמית ושולי הפלפברל. תמונות אלו מאפשרות לרופאים להעריך את מצב המחלה ולהקל על הדמיה וכימות של תאים דלקתיים וחיסוניים.

בהערכת DED, המיקוד שלנו כולל: תאי אפיתל בקרנית (CEC); סיבי עצב תת-אפיתל (SNF); תאים דלקתיים/חיסוניים בין-אפיתליים ותת-אפיתליים; תאי גביע הלחמית (CGCs); תאים דלקתיים/חיסוניים של הלחמית; בלוטת מייבומיאן acini ופתחים; Demodex folliculorum ו-Demodex brevis; ותאים דלקתיים בתוך הרקמות הסובבות. דגש זה נובע מהפתופיזיולוגיה: תפקוד לקוי של בלוטת מייבומיאן מוביל להפרשה מופחתת או לשינוי בהרכב שכבת השומנים של שכבת הדמעות, וכתוצאה מכך אידוי מואץ של הדמעות ונזק למשטח העין. התפשטות דמודקס תורמת לגירוד ואי נוחות בעיניים. CGCs מפרישים מוצין, מרכיב קריטי של סרט הדמעות; דלדול שלהם יכול לגרום למחסור במוצין. לעומת זאת, DED עצמו פוגע במבני פני העין, כולל CEC ו-SNF, וכתוצאה מכך מעלה את צפיפות התאים הדלקתיים/חיסוניים ברקמות הקרנית והלחמית. לאחר השגת התמונות האידיאליות, אנו יכולים להשתמש ביעילות בכלים הכמותיים המובנים של התוכנה כדי לספור את התאים הרבים שהוזכרו (איור 1). אבל עבור המגוון המורפולוגי של SNF, עלינו להסתמך על תוכנה אנליטית שתעזור בכימות11,12.

IVCM הכרחי להערכה בזמן אמת של שכבות הקרנית, סיבי העצב ותאים דלקתיים/חיסוניים ברקמות פני העין. להערכת CGCs, ציטולוגיה של רושם משמשת כשיטה חלופית. טכניקה זו מכוונת ללחמית הפורניקס, שם צפיפות תאי הגביע מגיעה לשיא, ומניבה ערכים גבוהים בדרך כלל ממדידות IVCM13,14. עם זאת, התוצאות כפופות לשונות הצביעה ולמומחיות המפעיל, בעוד שהפרוטוקול עתיר הזמן מגביל את היישום הקליני השגרתי. חסימת פתח בלוטת מייבומיאן ניתנת לצפייה ישירה באמצעות מיקרוסקופ מנורת חריץ, אך שיטה זו אינה יכולה לזהות חסימות הנגרמות על ידי Demodex brevis, ש-IVCM מזהה במדויק. לאבחון נגיעות דמודקס, אפילציה של ריסים בבדיקת מיקרוסקופ אור מספקת שיטה בעלות נמוכה. למרות שהיא פשוטה מבחינה טכנית, גישה זו טומנת בחובה מגבלות משמעותיות: אי נוחות של המטופל מגבילה דגימה מרובה, קרדית השוכנת עמוק בתוך זקיקי הריסים או פתחי בלוטת המייבומיאן נותרת בלתי ניתנת לגילוי15. לעומת זאת, IVCM מאפשר בדיקה מקיפה של אתרי שולי עפעפיים מרובים, כולל זקיקי ריסים ופתחי בלוטת מייבומיאן, עם אי נוחות מינימלית של המטופל. גישה זו משיגה שיעורי אבחון חיוביים גבוהים משמעותית באמצעות הדמיה בזמן אמת של טפילים בתוך בתי הגידול שלהם16,17.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

הליך הבדיקה אושר על ידי ועדת האתיקה של בית החולים לעיניים Hankou Aier, והתקבלה הסכמה מדעת מכל המטופלים.

הערה: קריטריוני ההכללה לבחירת מטופלים כוללים מטופלים המציגים תלונות על עיניים יבשות ומגרדות, ואנשים המבקשים בדיקות עיניים שגרתיות. קריטריוני ההחרגה לבחירת מטופלים כוללים חולים עם ניקוב בקרנית או ניקוב קרנית מתקרב, אלה האלרגיים להרדמה מקומית של העין, אנשים צעירים מדי (למשל, מתחת לגיל 3) או מבוגרים מכדי לשתף פעולה, חולים עם סדקים צרים בפלפברל שאינם מסוגלים להכיל ספקולום עפעפיים, נשים בהריון ואנשים שאינם מסוגלים לשתף פעולה מסיבות אחרות. ניתן למצוא דיאגרמת זרימת עבודה קצרה באיור 2. ושלבי הפעולה המפורטים הם כדלקמן.

1. בחינה מוקדמת

  1. הכנת חומרים: מכשיר IVCM, כובע מגע בקרנית, חומר הרדמה מקומי לעיניים, חומר צימוד, צמר גפן רפואי, ספקולום עפעפיים, כדורי אלכוהול, מאגר אלכוהול, טיפות עיניים אנטי דלקתיות (איור 3).
  2. להבין את מרכיבי המפתח של ציוד IVCM (היידלברג טומוגרפיה רשתית רוסטוק מודול קרנית (HRT-RCM)), כפתור מיקוד, מצלמת ניטור, תאורת הנחיית מבט, משענת סנטר, משענת מצח, כפתור למעבר בין עיניים שמאל/ימין, כפתורים סיבוביים להזזת HRT-RCM תלת-צירית, כפתור לכידת תמונה ודוושת רגל, מחשב עם תוכנת IVCM ייעודית), והכנת מכשיר IVCM עם ג'ל צימוד.
  3. הכנת הבוחן: יש ללבוש מסכה ולחטא ידיים בג'ל על בסיס אלכוהול או ללבוש כפפות חד פעמיות.
  4. חיטוי מכשיר: נגב את משענות המצח והסנטר של הציוד בעזרת ספוגיות אלכוהול.
  5. הסבר על הנוהל: הסבירו בקצרה למטופל שהבדיקה אינה כואבת כדי להקל על החרדה.

2. במהלך הבדיקה

  1. אמת וצור רשומת מטופל חדשה עם התוכנה הנלווית במחשב.
  2. מתן הרדמה מקומית: יש לתת שתי טיפות ממנו בפורניקס התחתון במרווח של 3 דקות לפני ההליך.
  3. הכן את מודול הקרנית של רוסטוק (RCM) של התקן IVCM: ציפוי האזור פולט הלייזר של RCM בג'ל צימוד (ודא שאין בועות אוויר) (איור 4 ואיור 5), ורק כמות מספקת של חומר צימוד (בדרך כלל טיפה אחת או שתיים, לא יותר מדי) יכולה להבטיח מגע מלא עם מכסה המגע של הקרנית, ובסופו של דבר להשיג את ממשק האפס האידיאלי. חבר מכסה מגע חד פעמי בקרנית.
  4. מקם את המכשיר: משוך את ה-RCM במלואו. אבטח את משענת המצח בצורה אופקית. כוונן את מצלמת הניטור לצד הזמני של הנושא. מצא את המיקום של נקודת העצירה של המצלמה, הניצבת לציר האופטי של ה-RCM.
  5. כיול מיקוד: סובב את כפתור המיקוד עד שהתוכנה תציג פאקולה לבנה מקסימלית עם ערך איכות התמונה של 100 בדיוק. אפס את ערך העומק לאפס (אפס).
  6. בחר מצב סריקה: ברירת מחדל למצב מקטע , אלא אם צוין אחרת. כדי לצפות בפעילות קרדית Demodex, ניתן להשתמש במצב רצף להקלטה רציפה של תמונות דינמיות.
  7. מקם את המטופלים: הנח את סנטרם בחוזקה על משענת הסנטר. לחץ את המצח שלהם על משענת המצח. התאם את שולחן הבדיקה ואת משענת הסנטר לגובה המטופל.
  8. הכנס ספקולום עפעפיים: בקש מהמטופל להסתכל למטה תוך כדי שימוש בצמר גפן כדי להרים את העפעף העליון למיקום, ובקש מהמטופל להסתכל למעלה תוך כדי משיכה עדינה של העפעף התחתון כלפי מטה עם צמר גפן למיקום.
  9. הוראות אחרונות: אשר מחדש את מיקום הראש הנכון. הזכירו למטופל להישאר רגוע ולהימנע מתנועה. דווח מיד על כל אי נוחות.
  10. פרוטוקול בדיקת קרנית
    1. התחילו עם יישור מקרוסקופי: התאימו חזותית את ה-RCM כדי להתקרב לקודקוד הקרנית (איור 6). עבור למצלמת הניטור של המכשיר לכוונון עדין כאשר ה-RCM מתקרב לקרנית. הנחו את המטופל לסובב את מבטו לקרניות נגע, תוך ריכוז הנגע מתחת ל-RCM. שמרו על מגע עדין כדי למנוע נזק לקרנית.
    2. טכניקת מפתח: לכובע המגע של הקרנית יש גודל פיזי גדול אך אזור אופטי קטן במיוחד (מוגבל לאזור המרכזי הפולט לייזר). דרישה קריטית: השג מגע דיוק גבוה בין הפקק לרקמת המטרה, מכיוון שהדבקה לקויה גורמת לחפצי הדמיה (למשל, בועות, הפרעות שמן או אובדן אות מוחלט).
      הערה: להדמיה רציפה, לחץ על דוושת הרגל לסריקה ממושכת כדי ללכוד תמונות עומק רציפות ולמנוע החמצת נתונים קריטיים.
  11. הערכת קרנית שכבתית: סריקה משכבות שטחיות לעמוקות בסדר זה: CEC, SNF, תאים דלקתיים תת-אפיתליים.
    1. התמקדו בשרוול התחתון, שהוא ציון הדרך המומלץ, ובאזורים עליונים/נחותים סמוכים18.
  12. בדיקת לחמית באף
    1. אפס את מישור המוקד לערך העומק של אפס. מרחו ג'ל צימוד על הכובע. הנחו את המטופל להביט באופן זמני או אינפרו-טמפורלי. קדם את ה- RCM בעדינות על משטח הלחמית. תמרונים בו זמנית: התאם את מיקום ה-RCM לשדה ראייה אופטימלי ביד ימין. סובב את כפתור המיקוד כדי לזהות תאי גביע בשכבת הלחמית החיצונית ביותר ביד שמאל.
  13. הסרת ספקולום עפעפיים: הנחו את המטופל להסתכל למטה, והשתמשו בצמר גפן כדי להרים את העפעף העליון להסרה. והורה למטופל להסתכל למעלה, וללחוץ בעדינות על העפעף התחתון בעזרת ספוגית להסרה.
  14. איפוס מכשיר: שחרר והרם את משענת המצח. אפס את כפתור המיקוד. מרחו מחדש ג'ל צימוד על משטח ה- RCM.
  15. הערכת בלוטת מייבומיאן וזקיקי ריסים
    1. מיקום המטופל: הורה על מבט כלפי מטה. תמרון הבוחן: הרם בעדינות ולחץ את עור העפעף העליון פנימה כדי ליישר את שולי העפעף במקביל למישור כובע הקרנית. הזז את ה- RCM אופקית כדי להציג תמונות נוספות מאותו מבנה סוג. הזיזו את ה-RCM אנכית (מלמטה למעלה) כדי לעבור מבדיקת פתחי בלוטת המייבומיאן לבלוטת האצ'יני ולאחר מכן לשורשי הריסים.
      הערה: מתחילים יכולים להזיז את העפעף לחשיפה טובה יותר בעת בחינת פתחי בלוטת המייבומיאן. אנו מציעים את מיקום הבדיקה ב-1/3 המרכזי של העפעף העליון עבור חלק זה.
    2. תקנים כמותיים (פרוטוקול מוסדי): העריכו 8 זקיקים עוקבים עם אציני15 סמוכים, ובחנו 4-8 פתחי בלוטות עוקבים. כיול עומק: להשגת תמונות ברורות של זקיקים, התמקד עד שקרדית הדמודקס תראה גבולות חדים (אם קיימים). לרכישת תמונות ברורות של acinis, הערך המומלץ הוא כ-30-50 מיקרומטר עומק. ועבור פתחים, זה בסביבות 30 מיקרומטר (התאם לנראות Demodex brevis אם נגוע)19.

3. בדיקה לאחר

  1. טיפול לאחר ההליך: בצע היגיינת ידיים וחטא את הידיים ביסודיות. נגב בעדינות שאריות ג'ל צימוד, קרעים או פסולת משטח העין באמצעות צמר גפן. יש לתת טיפות עיניים אנטיביוטיות למניעת זיהום.
  2. הוראות המטופל: יש לייעץ למטופל להימנע משפשוף העיניים ביום הבדיקה.
  3. דיווח: נתח את כל התמונות שנרכשו באופן מקיף וצור דוח אבחון. דרישות דיווח: כלול לפחות תמונה אחת לכל מבנה רקמה, הוסף עוד לממצאים חריגים לפי הצורך. כל התמונות הנבחרות צריכות להיות מסודרות לפי רצף הבדיקה וערך העומק, ולאחר מכן תיאורים ומדידות מדויקים.
  4. הוראות לפינוי פסולת: עבור חומרים חד פעמיים (מכסי מגע, ספוגיות, מיכלי הרדמה), נא לזרוק אותם לפח האשפה הרפואית להמשך סילוק מקצועי.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

כל התמונות המיקרוסקופיות של IVCM נרכשו ברזולוציה של 384 פיקסלים ×-384 פיקסלים, שדה תצפית של 400 מיקרומטר ×-400 מיקרומטר. כאשר היא "מאופסת" כראוי, בדיקה זו תציג רק שלוש תוצאות אפשריות במסגרת התמונה: 1) אין תמונה כלל (ניסוי לא מוצלח): האזור האופטי המרכזי לא יצר מגע עם רקמת המטרה. ii) תמונה חלקית בלבד (איור 7) או מצבים חריגים אחרים (איור 8) (ניסוי לא מוצלח): האזור האופטי המרכזי יצר מגע לא שלם או רופף עם רקמת המטרה. 3) תמונה ברורה ו...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

חיפוש ספרות PubMed באמצעות מילות המפתח "מיקרוסקופיה קונפוקלית in vivo " ו"מחלת עין יבשה" (אוחזר ביוני 2025) הניב >-300 פרסומים. יש לציין כי שיעורי הפרסום השנתיים התייצבו על כ-40 מאמרים בשנה מאז 2021. יישומים רחבים יותר של IVCM בהפרעות פני העין הניבו >-2,000 מחקרים במהלך שני העשורים האחרונים (2004-2024). מבחינה קלינית, IVCM חולל מהפכה בהערכה ברמת התא של פתולוגיות פני העין. טכנולוגיה זו מאפשרת זיהוי ביטויי מחלה תת-קליניים, מה שמקל על אבחון מוקדם והתערבויות מדויקות, התואמים במדויק ...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

המחברים מצהירים שאין ניגוד עניינים.

תודות

המחברים מודים ללינה ג'ין מבית החולים לעיניים Hankou Aier ולמין צ'ן ממחלקת העיניים של בית החולים ללב ווהאן אסיה על הסיוע בכמה תמונות, ולכל המשתתפים ואנשי הצוות שעבדו על הליך הניתוח. מחקר זה נתמך על ידי מענק מפרויקטי מחקר מדעיים מוועדת הבריאות העירונית של ווהאן (WX23A20).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
כדורי כותנה סופגיםג'יאן צ'י, סיןhttp://www.hnjianqi.comלהכנת כדורי אלכוהול, קטנים
ג'ל מבוסס אלכוהוללי קאנג, שנגחאי, סין31107904ג'ל חיטוי לידיים ללא שטיפה, 500 מ"ל
טיפות קרבומר לעינייםוידיסיץ', גרמניה8187195ג'ל עיניים סטרילי לסוכן קישור, 10 גרם
כובע מגע בקרנית (TomoCap)היידלברג, גרמניה18829מדיום אופטי ומגע בקרנית באופן אספטי
ספקולום עפעףאסיקון, סין6102Aעל פתיחת העיניים
תוכנת חוקר העיניים של היידלברגהיידלברג, גרמניהגרסה 1.5.2.0התוכנה שמגיעה עם מכשיר IVCM
מכשיר IVCMהיידלברג, גרמניהHRT-?,08398הציוד המרכזי של הבחינה
מטשיות כותנה רפואיותאסאונד מד, סיןwww.e-soundmed.comלניקוי עיני המטופלים וסיוע בפתיחת העיניים, 10 ס"מ
75% אלכוהול רפואיהויצ'אנג, סיןwww.huichang888.cnלהכנת כדורי אלכוהול, 75% ומעלה; 5% 500 מ"ל
טיפות עיניים 0.4% אוקסיבופרוקאין הידרוכלורידסנטן, יפןhttp://www.santen.co.jpהרדמה מקומית עינית, 0.4% (0.5 מ"ל: 2 מ"ג)
טיפות עיניים עם טוברמיציןטוברקס, בלגיה8453824טיפות עיניים נוגדות דלקת, 0.3% (5 מ"ל: 15 מ"ג)

מקורות

  1. Craig, J. P., et al. TFOS DEWS II definition and classification report. Ocul Surf. 15 (3), 276-283 (2017).
  2. Ralene, S., Kenneth, Y., Yu-Chi, L., Louis, T. In vivo confocal microscopy in different types of dry eye and meibomian gland dysfunction. J Clin Med. 11, 2349(2022).
  3. Bron, A. J., et al. TFOS DEWS II pathophysiology report. Ocul Surf. 15, 438-510 (2017).
  4. Kheirkhah, A., Rahimi, D. R., Cruzat, A. Corneal epithelial immune dendritic cell alterations in subtypes of dry eye disease: a pilot in vivo confocal microscopic study. Invest Ophthalmol Vis Sci. 56, 7179-7185 (2015).
  5. Jodi, H., Harrison, D., Anat, G. Can in vivo confocal microscopy differentiate between subtypes of dry eye disease? A review. Clin Exp Ophthalmol. 49 (4), 373-387 (2021).
  6. Jeremy, C. B. C., et al. In vivo corneal confocal microscopy: imaging analysis, biological insights and future directions. Commun Biol. 6 (1), 652(2023).
  7. Lemp, M. A., Dilly, P. N., Boyde, A. Tandem-scanning (confocal) microscopy of the full-thickness cornea. Cornea. 4 (4), 205-209 (1985).
  8. Kobayashi, A., Yoshita, T., Sugiyama, K. In vivo findings of the bulbar/palpebral conjunctiva and presumed meibomian glands by laser scanning confocal microscopy. Cornea. 24 (8), 985-988 (2005).
  9. Yiran, H., et al. Demodex folliculorum infestation in meibomian gland dysfunction-related dry eye patients. Front Med (Lausanne). 24 (9), 833778(2022).
  10. Orla, M., Veronica, O. D., Aoife, L. M. Ocular Demodex folliculorum: prevalence and associated symptoms in an Irish population. Int Ophthalmol. 39 (2), 405-417 (2019).
  11. Al-Aqaba, M. A., et al. Corneal nerves in health and disease. Prog Retin Eye Res. 73, 100762(2019).
  12. Liu, Y. C., Lin, M. T. Y., Mehta, J. S. Analysis of corneal nerve plexus in corneal confocal microscopy images. Neural Regen Res. 16, 690-691 (2021).
  13. Zhixin, W., Xuguang, S. Progress in the study of conjunctival goblet cell. Int Rev Ophthalmol. 4 (3), 1673-5803 (2005).
  14. Bilian, K., et al. Quantitative study of goblet cells in human conjunctiva. Chin J Anat. 3 (10), 1001-1633 (2001).
  15. Yan, T., Dai, Q., Yu, G. In vivo confocal microscopy: a standard operating procedure for the detection of Demodex mites at the eyelid margin. J Vis Exp. (221), e68534(2025).
  16. Matthieu, R., et al. In vivo confocal microscopy as a novel and reliable tool for the diagnosis of Demodex eyelid infestation. Br J Ophthalmol. 99 (3), 336-341 (2015).
  17. Jalbert, I., Rejab, S. Increased numbers of Demodex in contact lens wearers. Optom Vis Sci. 92 (6), 671-678 (2015).
  18. Patel, D. V., McGhee, C. N. J. Mapping of the normal human corneal sub-basal nerve plexus by in vivo laser scanning confocal microscopy. Invest Ophthalmol Vis Sci. 46, 4485-4488 (2005).
  19. Nanyu, Z., et al. Lid margin score is the strongest predictor of meibomian area loss. Cornea. 41 (6), 699-708 (2022).
  20. Cañadas, P., Alberquilla, G. V. M., Hernández, V. J. L., Teus, M. A. Update on corneal confocal microscopy imaging. Diagnostics. 13, 46(2023).
  21. Xu, J., et al. In vivo confocal microscopic evaluation of corneal dendritic cell density and subbasal nerve parameters in dry eye patients: a systematic review and meta-analysis. Front Med. 8, 578233(2021).
  22. Baikai, M., et al. Quantification of increased corneal subbasal nerve tortuosity in dry eye disease and its correlation with clinical parameters. Transl Vis Sci Technol. 10, 26(2021).
  23. Michael, J. D. On the in vivo assessment of goblet cells of the human bulbar conjunctiva by confocal microscopy: a review. Cont Lens Anterior Eye. 43 (4), 315-321 (2020).
  24. Allgeier, S., et al. A novel approach to analyze the progression of measured corneal sub-basal nerve fiber length in continuously expanding mosaic images. Curr Eye Res. 42, 549-556 (2017).
  25. Matuszewska-Iwanicka, A., et al. Mosaic vs single image analysis with confocal microscopy of the corneal nerve plexus for diagnosis of early diabetic peripheral neuropathy. Ophthalmol Ther. 11 (6), 2211-2223 (2022).
  26. Kryszan, K., et al. Artificial-intelligence-enhanced analysis of in vivo confocal microscopy in corneal diseases: a review. Diagnostics. 14, 694(2024).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

גלה מאמרים נוספים

מחלת העין היבשהדימות של פני השטח של העיןהערכת קרניתדימות של בלוטות מייבומיאןצפיפות תאי גביעסיבי עצב סוב-בסאלייםזיהוי דמודקסאבחנה ברמה התאית
ב Vivo מיקרוסקופיה קונפוקלית באבחון וניהול עין יבשה: התמקדות בפרוטוקולי הדמיה ופרשנות
צרו קשר
המליצו לספרייה

פרטיות

תנאי שימוש

מדיניות

זכויות יוצרים © 2026 MyJoVE Corporation. כל הזכויות שמורות.