מאמר שיטה

ריפוי משופר של פצעי עור בעובי מלא של טלאי סליל אלקטרומגנטי גמיש

DOI:

10.3791/69605

⸱

27 בפברואר 2026

 ,  ,  , 
1Wuxi School of Medicine, Jiangnan University, 2Engineering Research Center of the Ministry of Education for Wound Repair Technology, Jiangnan University, Affiliated Hospital of Jiangnan University

* These authors contributed equally

במאמר זה

סיכום

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

פרוטוקול זה מדגים שיטה ליצירת פצעי עור עגולים בעובי מלא בעכברים ולהגברת ההחלמה שלהם באמצעות סליל נחושת גמיש שמספק שדה אלקטרומגנטי אפולס.

תקציר

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

פצעים כרוניים וגדולים מהווים אתגרים קליניים משמעותיים בשל עיכוב בהחלמה וסיכון גבוה לזיהום. טיפול בשדה אלקטרומגנטי פועם (PEMF) הוא גישה לא פולשנית שיכולה לקדם תיקון רקמות. מחקר זה מתאר פרוטוקול מודל עכברוש שניתן לשחזור באמצעות טלאי סליל נחושת מודפס גמיש המחובר לבקר PCB מותאם אישית כדי לספק גירוי PEMF מקומי לפצעים גביים בעובי מלא. הפצע הנגדי שימש כבקרה שלא טופלה. התקדמות ההחלמה הוערכה באמצעות צילום קבוע ומדידות אזור הפצע. הפרוטוקול מספק מערכת מעשית וגמישה להערכת ואופטימיזציה של טיפולים מבוססי PEMF ב-vivo במגוון מצבים, עם דגש על יישום מקומי והתאמת פרמטרים ברפואה רגנרטיבית. בחירת הפרמטרים התבססה על מסך CCK-8 אורתוגונלי של התרבות פיברובלסטים שבדקה 0.25-1.3 mT, 10-40 Hz ו-30-90 דקות ליום; ניתוח האפקט העיקרי זיהה רמות אופטימליות של 1.3 mT, 30 Hz ו-60 דקות ליום, שאומצו לבדיקות in vivo .

מבוא

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

פצעים עוריים כרוניים (כגון כיבים סוכרתיים) הם בעיה בריאותית הולכת וגדלה, ולעיתים מובילים לפגיעה בריפוי, זיהום או קטיעה1. טיפולים מסורתיים יכולים להיות ממושכים ויקרים, מה שמעורר עניין בטיפולים משלימים שיכולים להאיץ את תיקון הרקמות2. טיפול בשדה אלקטרומגנטי הוא אחת מהשיטות הללו, שהיא לא פולשנית והוכיחה השפעות פרו-ריפוי הן בסביבות פרה-קליניותוהן בסביבות קליניות 2,3,4,5. שדות אלקטרומגנטיים פולסים (PEMFs) בטווח תדרים נמוך מאוד (~1-100 הרץ) יכולים לעורר תהליכים תאיים חשובים לתיקון, כולל אנגיוגנזה ושחרור גורמי גדילה 2,6,7.

לדוגמה, חשיפה ל-PEMF האיצה משמעותית את סגירת הפצעים בקרב מכרסמים סוכרתיים ובריאים על ידי הגברת גורם גדילה פיברובלסטים-2 (FGF-2) והגברת האנגיוגנזה8. באופן דומה, במודל הריפוי המופגע (למשל, חולדות סוכרתיות), טיפול ב-PEMF הוכח כמשפר את קצב ההחלמה ומעלה את חוזק המתיחה של רקמה חדשה9. קלינית, טיפול ב-PEMF נחקר אצל מטופלים עם פצעים כרוניים. ניסוי פיילוט אקראי בחולי כיב כף רגל סוכרתי דיווח על שיפור זרימת הדם המיקרו-מחזורית ומגמה לסגירת פצעים מהירה יותר תחת חשיפה ל-PEMF10. באופן כללי, PEMF הראה גם השפעות חיוביות בסוגי פצעים אחרים, לדוגמה, שיפור בהחלמה נצפה בפציעות כוויות שטופלו בשדות מגנטיים פולסים11. מחקרים אלו מדגישים יחד את הפוטנציאל של גירוי אלקטרומגנטי כטיפול משלים לטיפול בפצעים, 8,9,10,11.

בהשוואה לגירויים קוויים קונבנציונליים, הפעלה מגנטית מבטלת את הצורך במחברים טרנס-קונטניים ומפחיתה את הסיכון לסיבוכים הקשורים לחומרה. מערכות מגנטיות אלחוטיות השיגו גירוי ספציפי לרקמה בהקשרים אחרים, לדוגמה, תעלת הנחיה עצבית מולכת יכולה לייצר מיקרוזרמים מושרים תחת שדה מגנטי מתחלף, כאשר עוצמת הזרם נקבעת בעקיפין על ידי פרמטרי השדה12. אסטרטגיות מגנטיות יכולות גם לתמוך בוסקולריזציה – צוואר בקבוק קריטי בריפוי העור – משום ששדות מגנטיים סטטיים או דינמיים, לבדם או בשילוב עם חומרים ביולוגיים מגיבים מגנטית, הוכחו כמווסתים התנהגות אנדותליאלית ואותות אנגיוגניים13. תקדימים אלו הניעו אותנו לפתח גישה לבישה: טלאי סליל קונפורמלי וניתן להסרה שמרכז PEMF במיטת הפצע תוך שמירה על חוסר פולשנות ותכנות חיצוני12,13. בפרוטוקול הבא אנו מפרטים את השלבים ליישום טיפול PEMF זה במודל פצע בעובי מלא של חולדה, כולל יישום המכשיר, משטר גירוי והערכת תוצאות.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

כל ההליכים לבעלי חיים אושרו על ידי ועדת הטיפול והשימוש המוסדית בבעלי חיים (IACUC) של אוניברסיטת ג'יאנגנאן (JN. No2025-0630S0360-915[408]). יישמנו את הפרוטוקול עם זכרים של חולדות SD (בני 6-8 שבועות, בערך 200-250 גרם). לפני הניסויים, חולדות היו מאוחסנות בנפרד עם גישה חופשית למזון ומים, תוך שמירה על מחזור אור/חושך של 12 שעות, בהתאם למדריך לטיפול ושימוש בבעלי חיים במעבדה.

1. יצירת פצעים כריתתיים בעובי מלא

  1. הכינו את תחום בעלי החיים והכירורגיה.
    1. השרה הרדמה עם 3-4% איזופלורן בתא השראה. לאחר אובדן הרפלקס המתיישר, שמרו על ההרדמה ב-~2% דרך קונוס האף.
    2. הנח את העכברוש במצב שכיבה על משטח ניתוחי סטרילי. גילח את אזור החזה הגבי (השכמות, האזור המותני התיכון, כולל הצדדים) באמצעות קוצץ חשמלי.
    3. הערה: הסר פרווה מאזור של לפחות 5 × 5 ס"מ בכל צד של קו האמצע כדי לאפשר גישה ניתוחית ברורה ומיקום הסליל.
    4. חטא את האזור המגולח עם 70% אתנול ואחר כך תמיסת יודופור. חזור על השפשוף של אתנול/יוד שלוש פעמים, וסיים ביוד.
    5. כיסו את שדה הניתוח בגזה סטרילית, והשאירו רק את אתרי הפציעה המתוכננים חשופים.
  2. ליצור פצעים דו-צדדיים בעובי מלא.
    1. שרטט שני מעגלים בקוטר 2 ס"מ בצדדים הגביים באמצעות טוש כירורגי סטרילי, תוך מיקום אחד בכל צד של קו האמצע מאחורי הגפיים הקדמיות.
      הערה: ודא ששני המעגלים שווים בגודלם וממוקמים בסימטריה כדי לאפשר השוואה בתוך בעלי חיים14,15.
    2. כרת את אזור העור העגול המסומן באמצעות מספריים סטריליות או סכין מנתח. הסר את האפידרמיס, הדרמיס והפניקולוס קרנוסוס ליצירת פצע בעובי מלא (~3.14 ס"מ²).
    3. השגת המוסטזיס על ידי הפעלת לחץ עדין עם גזה סטרילית. צור פצע זהה של 2 ס"מ בצד הנגדי באותה טכניקה.
      הערה: משטח הפצע צריך לכלול פאשיה חשופה או שריר ללא שאריות דרמיס.
    4. מתן הקלה לאחר הניתוח מיד לאחר יצירת הפצע (למשל, לידוקאין 4 מ"ג/ק"ג תת-עורית).
  3. הקצה קבוצות ניסוי.
    1. השתמשו בעיצוב בתוך הנבדק שבו פצע אחד מקבל טיפול PEMF והפצע הנגדי משמש כאמצעי בקרה.
    2. כלול קבוצה נפרדת שמקבלת מכשיר מזויף (סליל זהה ללא חשמל) כדי לשלוט בנוכחות המכשיר.
    3. שמרו על בקרות לא מטופלות או מטופלות בדומה כדי להבחין בין אפקטים אלקטרומגנטיים להשפעות טיפול או חבישה.

2. יישום מכשיר ה-PEMF

  1. חבוש את הפצע ומקם את הסליל.
    1. הנח גזה דקה, סטרילית או סרט חדיר-חצי-חדיר, ישירות מעל הפצע המיועד לטיפול PEMF. ודא כיסוי מלא של מיטת הפצע.
    2. מקם את טלאי סליל הנחושת הגמיש מעל הפצע החבוש (איור 1). מרכז את הסליל כך שהפצע יהיה מתחת למרכז הסליל.
      הערה: קוטר הסליל (~5 ס"מ) עשוי להגיע מעבר לשולי הפצע; ודא שהפצע נשאר בתוך אזור השדה המגנטי האפקטיבי.
  2. אבטח את הסליל.
    1. אבטח את הסליל באמצעות דבק רפואי עטוף בעדינות סביב הגוף. שמור על מגע קרוב בין הסליל לתחבושת מבלי ללחוץ על החזה.
    2. הנח רצועת אלומיניום גמישה מעל הסליל כדי לייצב את המיקום במידת הצורך. הימנעו מהגבלת הנשימה או זרימת דם מקומית.
    3. נתב חוטי חוט הרחק מהגוף (למשל, לכיוון הראש) כדי למנוע הסתבכות.
  3. נתן גירוי PEMF.
    1. חבר את הסליל לבקר ה-PCB (איור 2) והפעל את המכשיר. הגדר את פרמטרי הגירוי לתדר 30 הרץ ועוצמת שדה מגנטי ~1.3 mT למשך 60 דקות ליום.
    2. בצע מפגשי גירוי באותו זמן בכל יום (±שעה אחת) כדי לשמור על מרווחים עקביים.
      הערה: פרמטרים אלו נבחרו בהתבסס על סקר CCK-8 אורתוגונלי (0.25-1.3 mT, 10-40 Hz, 30-90 דקות ליום, טבלה 1) שזיהו 1.3 mT, 30 Hz ו-60 דקות ליום כאופטימליים (טבלה 2).
    3. הניחו סליל לא פעיל זהה מעל הפצע המבוקר למשך שעה אחת כדי לספק טיפול מזויף. סמן בבירור את הסליל המזויף כדי למנוע בלבול.
  4. הסר את המכשיר ובדוק את הפצע.
    1. כבה את השלט אחרי 60 דקות. הסר בזהירות את הסליל וחומרי הדביק.
    2. בדקו את הפצע לאיתור דימום, בצקת או תופעות לוואי. החלף גזה סטרילית במידת הצורך.
      הערה: טמפרטורת פני הסליל נשארת קרובה לסביבה במהלך גירוי של שעה; לא נצפה התחממות משמעותית.
  5. לספק טיפול לאחר הטיפול.
    1. להתקין קולר אליזבתני כדי למנוע טראומה עצמית. ודאו התאמה נכונה מבלי לפגוע בנשימה או באכילה.
    2. עטוף בעדינות גזה סביב הגפיים האחוריות כדי להפחית שריטות בפצעים בגב.
    3. לעקוב אחרי העכבר עד שיתאושש לחלוטין מההרדמה. להמשיך בהרדמת כאבים (למשל, לידוקאין 4 מ"ג/ק"ג כל 12 שעות במשך 2-3 ימים או לפי פרוטוקול מוסדי).
    4. חזרו על טיפולי PEMF יומיים לאורך משך המחקר (למשל, 14 ימים).

3. ניטור פצעים ואיסוף נתונים

  1. ללכוד תמונות פציעה.
    1. צילמו פצעים בימים 0, 3, 7, 10 ו-14 ימים לאחר הפציעה. הרדמו בעדינות בעלי חיים במידת הצורך כדי למנוע תנועה.
    2. כלול סולם מדידה בכל תמונה ומקם את המצלמה בניצב לפצע במרחקקבוע 14.15.
  2. מדוד את אזור הפצע.
    1. כיילן את קנה המידה של התמונה ב-ImageJ באמצעות סרגל התייחסות. עקב אחרי שולי הפצע כדי לחשב שטח במ"מ רבוע.
    2. רשמו את שטח הפצע בכל נקודת זמן ומחשבו אחוז סגירת פצע ביחס לקו הבסיס.
    3. השווה באופן כמותי פצעים שטופלו ב-PEMF לבין פצעים בבקרה.
  3. קציר רקמה להיסטולוגיה (אופציונלי).
    1. המית בעלי חיים בנקודת הניסוי לפי נהלים שאושרו על ידי IACUC.
    2. הוצאה מדגימות רקמת פצע וקיבוע בפורמלין לעיבוד היסטולוגי.
    3. לבצע הטמעת וצביעת פרפינים (למשל, H&E, הטריכרום של מסון) להערכת שקיעת קולגן, רי-אפיתליאליזציה ואנגיוגנזה13,16.

4. ניתוח ופרשנות נתונים

  1. יצר עקומות סגירת פצע.
    1. אחוז הסגירה של הפצע לאורך זמן עבור כל קבוצה.
    2. חשב קצב החלמה וזמן עד לספי סגירה מוגדרים מראש.
  2. בצע ניתוח סטטיסטי.
    1. אסוף נתוני שטח פציעה לכל בעלי החיים וחשב ממוצע ± SD בכל נקודת זמן.
    2. אשר נורמליות (מבחן שפירו-וילק) והומוגניות של שונות (מבחן לוון).
    3. נתחו הבדלים באמצעות ANOVA דו-כיווני עם גורמים כמו "טיפול" ו"זמן". בצע בדיקות פוסט-הוק של טוקי אם מתגלה אינטראקציה משמעותית.
    4. הגדר מובהקות סטטיסטית כ-*p < 0.05 ו-**p < 0.01.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

במודל פצעי עכברוש בעובי מלא, טיפול יומי ב-PEMF באמצעות טלאי סליל גמיש הביא לסגירת פצע מהירה משמעותית בהשוואה לביקורת. כדי להעריך את ההשפעה בקפדנות, חולקו העכברים לשלוש קבוצות בהתבסס על עיצוב הניסוי המפורט בסעיף הפרוטוקול: קבוצת ביקורת בתוך הנבדק (שבה לכל עכברוש היה פצע אחד מטופל ב-PEMF ופצע נגדי לא מטופל, שנאספו נתונים לניתוח), קבוצת ביקורת מזויפת (PATCH: פצע מכוסה בסליל לא מופעל), וקבוצת ביקורת לא מטופלת (CTRL: טיפול פצעים סטנדרטי בלבד). איור 1,

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

צעדים קריטיים כוללים יצירת פצעים סימטריים בעובי מלא, הבטחת שכבת הסליל שטוחה מעל מחסום סטרילי ללא רווחים, ושמירה על חשיפה יומית עקבית; סטיות יכולות להפחית את העברת השטח ולהגדיל את השונות בתוצאות ההחלמה.

לעבודה זו יש מספר מגבלות שיש לקחת בחשבון בעת פרשנות הממצאים והערכת פוטנציאל התרגום. ראשית, הפרוטוקול הוכח אצל זכרים בריאים עם חולדות SD (6-8 שבועות, 200-250 גרם) עם פצעים חריפים בכריעה, ולכן אינו תופס באופן מלא סביבות ריפוי קליניות פגועות כמו סוכרת, איסכמיה, זיה...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

המחברים מצהירים כי אין להם ניגודי עניינים או אינטרסים פיננסיים במוצרים או במכשירים בהם השתמשו במחקר זה. התקן ה-PEMF המותאם אישית המתואר מיועד למטרות מחקר ואינו קשור מסחרית.

תודות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

אנו מודים לד"ר ג'אנג על הדיונים המעמיקים ולד"ר פו על הסיוע בטיפול בבעלי חיים ובהיסטולוגיה. עבודה זו נתמכה על ידי (2022YFC3006200) תוכנית המחקר והפיתוח המרכזית הלאומית של סין. המחברים גם מודים לצוות בית הספר לרפואה ווקסי, מתקן בעלי החיים של אוניברסיטת ג'יאנגנאן, על תמיכתם במהלך ניסויי ה-in vivo .

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
לוחות תרבית תאים עם 96 בארותBaiDiH908002לבדיקת CCK-8
שקופיות מיקרוסקופ ADHESION  סיטוטסטוP/N.80312-3161ציוד ל  H& צביעת E/Masson
משכך כאבים (הזרקת לידוקאין הידרוכלוריד)HUAMU70011657משכך כאבים אופיאטיים, 4 מ"ג/ק"ג (לשליטה בכאב)
מכונת הרדמהRWD Life Science (שנזן, CN)R520-Iso מאייד איזופלוראן עם אספקת חמצן
מכונת צביעה אימונוהיסטוכימית אוטומטיתלייקה21.2201  צביעת אימונוהיסטוכימיה אוטומטית 
אגרוף ביופסיה (20 מ"מ)אינטגרה מילטקס#33-37אגרוף עור עגול, קוטר 2 ס"מ
מצלמה, דיגיטליתHuawei Mate 70 proלא זמין≥ 12 MP להדמיית פצעים
נוגדן CD31אבקאםab182981סמן אנדותל ל-IHC (איור 4B)
נוגדן CD34אבקאםab81289סמן אנדותל ל-IHC (איור 4B)
ערכת ספירת תאים-8 (CCK-8)ביושארפBS350Bמשמש לסינון פרמטרים של PEMF במבחנה (OD450)
צלחת תרבית תאים (10 ס"מ)BaiDiH802004צלחת תרבית רקמה בגודל 10 ס"מ (100 מ"מ) לתרבית פיברובלסטים 
מדיום תרבית תאים (למשל, DMEM + FBS)BaiDiL100-500לתרבות פיברובלסטים במסך CCK-8
חממת CO2תרמוBB150-2TCS-Lלתרבות פיברובלסטים
סליל, נחושת גמישהייצור בהתאמה אישית (בתוך החברה)לא זמיןסליל מודפס ספירלי (קוטר 5 ס"מ, פוליאימיד)
לוח בקרה (גנרטור PEMF)עיצוב מותאם אישית (עיצוב פנימי)לא זמיןלוח מעגלים מותאם אישית, מניע סליל ב-30 הרץ, ~1.3 mT
מכונת תספורת חשמליתווהל או אוסטר (טיפוח חיות מחמד)דגם 9160 קוצץ טיפוח בעלי חיים לגילוח פרווה
קולר אליזבתני (מכרסם)MukeBioMK-EC-01מניעת הפרעות פצע
תחנת הטמעהאפרדיה היסטוסטארA81000002עיבוד להיסטולוגיה (אם מבוצע)
  מסיכת פניםודנגV531596שמירה על הרדמה
פיברובלסטים (קו תאים L929)פרוסלCL-0137תאים המשמשים לסקר התרבות CCK-8
תוכנות סימולציית אלמנטים סופיים (למשל, COMSOL Multiphysics)COMSOLCM010004סימולציית שדה מגנטי (איור 5B-C)
סד אלומיניום גמישדיארגו1592תמיכה למניעת הזזת סליל
מלקחייםמג'סטיק01625לטיפול בעור ובתחבושות במהלך ניתוח
המטוקסילין & אאוסין (H& ה) אוניברסיטה אוטומטית לצביעה ואיטוםDRS-Prisma-P+FILM61770249מתכלה לצביעה היסטולוגית שגרתית
תוכנת ניתוח תמונותהמכונים הלאומיים לבריאותגרסה 1.54 למדידת שטח הפצע (למשל, ImageJ)
תוכנת ניתוח תמונותהמכונים הלאומיים לבריאותגרסה 1.54למדידת שטח הפצע (למשל, ImageJ)
תא אינדוקציהRWD Life Science (שנזן, CN)802-00132-00השראת הרדמה איזופלורנית
מצלמת דימות תרמי אינפרא-אדוםHIKMICROH11טמפרטורת פני השטח של סליל המוניטור (איור 5A)
חומר חיטוי יוד פובידון 10%היינאוטלא זמיןחומר חיטוי לעור (יודופור)
איזופלוראןRWD Life Science (שנזן, CN)20037015הרדמה בשאיפה (דרגת USP)
הזרקת לידוקאין 10%סאנמהלא זמיןלהקלה על כאבים לאחר ניתוח
ערכת הצביעה בטריכרום של מסוןבסוC250202מוצר מתכלה לוויזואליזציה של קולגן/ECM
טוש עור וסרגל רפואיטונדאוסלא זמיןכלול קנה מידה בתמונות פצעים
קורא מיקרופלטתרמוA51119500Cלמדידת OD450 במבחן CCK-8
מיקרוטוםאפרדיה HM 340E23900670חתכים להיסטולוגיה/IHC (אם מבוצעים)
קיבוע רקמת פוליפורמלדהידשיתוף ביוגרפיהSB-C009קיבוע דגימות רקמות בעלי חיים
כלוב מגורים לעכבריםפנג צ'יאוCP-JMכלוב דיור סטנדרטי לעכברים למגורים אישיים.
ראטס, ספרג דולי (זכר, 6– 8 שבועות)וויג'ינגיו סוז'ואוSCXK2024-0004200– 250 גרם; מגורים אישיים; שימוש מאושר על ידי IACUC
סכין מנתחג'ינחואן35W0602ליצירת פצע כריתה
סיפוי סרט חדיר-חדירZDQ20189מחסום פציעה חלופי
תוכנות ניתוח סטטיסטי (למשל, GraphPad Prism או R)מקייב תוכנה10.6.9(890)ANOVA דו-כיווני והשוואות מרובות לאחר מכן
גזה סטריליתZD3141626חבישת פצעים/מחסום מגן
וילונות ניתוחים סטרילייםZDV271617לכסות את שדה הניתוח לאחר הכנת העור
מספריים כירורגייםמג'סטיק01627ליצירת פצע כריתה
מזרקים ומחטיםמיננק20193141643למתן משכך כאבים תת-עורי
סורק שקופיות שלמות3DHISTECHלא זמיןסריקת שקופיות דיגיטלית

מקורות

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Guo, S., Dipietro, L. A. Factors affecting wound healing. J Dent Res. 89 (3), 219-229 (2010).
  2. Pilla, A. A. Nonthermal electromagnetic fields: From first messenger to therapeutic applications. Electromagn Biol Med. 32 (2), 123-136 (2013).
  3. Gualdi, G., Costantini, E., Reale, M., Amerio, P. Wound repair and extremely low frequency-electromagnetic field: Insight from in vitro study and potential clinical application. Int J Mol Sci. 22 (9), 5037(2021).
  4. Su, D. B., Zhao, Z. X., Yin, D. C., Ye, Y. J. Promising application of pulsed electromagnetic fields on tissue repair and regeneration. Prog Biophys Mol Biol. 187, 36-50 (2024).
  5. Markov, M. S. Pulsed electromagnetic field therapy history, state of the art and future. Environmentalist. 27 (4), 465-475 (2007).
  6. Funk, R. H., Monsees, T., Ozkucur, N. Electromagnetic effects-from cell biology to medicine. Prog Histochem Cytochem. 43 (4), 177-264 (2009).
  7. Peng, L., et al. The effect of pulsed electromagnetic fields on angiogenesis. Bioelectromagnetics. 42 (3), 250-258 (2021).
  8. Callaghan, M. J., et al. Pulsed electromagnetic fields accelerate normal and diabetic wound healing by increasing endogenous FGF-2 release. Plast Reconstr Surg. 121 (1), 130-141 (2008).
  9. Goudarzi, I., Hajizadeh, S., Salmani, M. E., Abrari, K. Pulsed electromagnetic fields accelerate wound healing in the skin of diabetic rats. Bioelectromagnetics. 31 (4), 318-323 (2010).
  10. Kwan, R. L., et al. Pulsed electromagnetic field therapy promotes healing and microcirculation of chronic diabetic foot ulcers: A pilot study. Adv Skin Wound Care. 28 (5), 212-219 (2015).
  11. Tabakan, I., Yuvacı, A. U., Taştekin, B., Öcal, I., Pelit, A. The healing effect of pulsed magnetic field on burn wounds. Burns. 48 (3), 649-653 (2022).
  12. Liu, S., et al. Magnetic field-assisted conductive nerve guidance conduit enabling peripheral nerve regeneration with wireless electrical stimulation. Adv Funct Mater. 35 (34), 2416548(2025).
  13. Zhu, S., et al. Magnetically controlled strategies for enhanced tissue vascularization. Adv Funct Mater. 34 (34), 2401856(2024).
  14. Trujillo, A. N., Kesl, S. L., Sherwood, J., Wu, M., Gould, L. J. Demonstration of the rat ischemic skin wound model. J Vis Exp. (98), e52637(2015).
  15. Galiano, R. D., Michaels, J. T., Dobryansky, M., Levine, J. P., Gurtner, G. C. Quantitative and reproducible murine model of excisional wound healing. Wound Repair Regen. 12 (4), 485-492 (2004).
  16. Strauch, B., et al. Pulsed magnetic fields accelerate cutaneous wound healing in rats. Plast Reconstr Surg. 120 (2), 425-430 (2007).
  17. Lv, H., et al. Magnetic fields as a potential therapy for diabetic wounds based on animal experiments and clinical trials. Cell Prolif. 54 (3), e12982(2021).
  18. Yin, Y., et al. The effects of a pulsed electromagnetic field on the proliferation and osteogenic differentiation of human adipose-derived stem cells. Med Sci Monit. 24, 3274-3282 (2018).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

בקש הרשאה לשימוש חוזר בטקסט או באיורים של מאמר JoVE זה

בקש הרשאה

תגיות

PEMFPEMF

מאמרים קשורים