כל המחקרים אושרו על ידי ועדת הטיפול והטיפול המוסדי של אוניברסיטת שוז'ואו לרפואה. החומרים והציוד בהם משתמשים מופיעים בטבלת החומרים.
1. מודל חיה
זכרים ונקבות בוגרים מסוג Sprague-Dawley (SD) במשקל 250–300 גרם נרכשו ממרכז בעלי החיים הניסיוניים של אוניברסיטת הרפואה שוז'ואו. חולדות גודלו בחדר מיוחד ללא פתוגנים. ההליכים הניסיוניים בבעלי חיים, כולל טיפול, טיפול ובחירת סיום, פעלו לפי ההנחיות "מחקר בעלי חיים: דיווח ניסויים בחיים החיים". ניסויים בבעלי חיים בוצעו באמצעות אקראיות. חולדות SD חולקו לארבע קבוצות (n = 8 לכל קבוצה): קבוצה תקינה (ללא ניתוח, האכלה תקינה) (קבוצה תקינה), קבוצת שאם (ניתוח מזויף: חתך עור ושריר ללא חיתוך רצועות צלב קדמיות [ACLT], ואחריה גז מלח), קבוצת KOA/NC (ניתוח ACLT + גז מלח), קבוצת KOA/OST (ניתוח ACLT + גז OST). מודל KOA של ברך העכברוש נבנה בשיטת חיתוך הרצועה הצולבת הקדמית (ACLT) כפי שתוארה קודם29. קבוצת הסליין קיבלה תמיסת מלח באמצעות גאווג', וקבוצת ה-OST קיבלה OST באמצעות גאבג' במשך 4 שבועות. מינון ה-OST הוא 50 מ"ג/ק"ג משקל גוף (מומס ב-PEG 400 ומדולל עם מלח פיזיולוגי), ותדירות המתן היא פעם ביום במשך 4 שבועות בתת-הסעיף של Rats. לאחר מכן, חולדות הושמתו לניתוח (בהתאם לפרוטוקולים שאושרו על ידי המוסד). רקמות הוקפאו מיד בחנקן נוזלי או מקובעים ב-4% פאראפורמלדהיד.
2. תרבית תאים
קו תאי כונדרוציטים אנושיים (C28/I2) התקבל מאוסף תרביות הסוגים האמריקאי (ATCC, מנאסס, וירג'יניה). התאים תורבדו לפי הנחיות ATCC ושימשו תוך 6 חודשים.
תנאי תרבית: מדיום DMEM/F-12 עם תוספת של 10% סרום בקר עוברי ו-1% פניצילין-סטרפטומיצין, מודגר בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס בדגירה לח של 5%CO2 .
טיפולים: תאים זרעו ב-1 ×10 6 תאים/באר בלוחות עם 6 בארות; לאחר 24 שעות של היצמדות, טופלו ב-LPS (1 מיקרוגרם/מ"ל) בלבד או ב-OST (100 מיקרומון) למשך 24 שעות.
3. בדיקות לקיימות תאים
תאי כונדרוציט הוגדרו יחד עם OST או LPS בריכוזים שונים בלוחות של 96 בארות. מבחן CCK8 משקף את חיוניות התאים על ידי זיהוי ספיגה (OD450 ננומטר) באמצעות קורא מיקרופלט, כאשר ערכי OD גבוהים יותר מצביעים על תאים ברי קיימא יותר.
גרדיאנט ריכוזי OST: 0, 25, 50, 100, 200, 400 מיקרומולר (מודגר ל-24 שעות). בדיקת CCK8 הראתה >90% מהחיוניות של התאים בכל הריכוזים, מה שמאשר את אי-הרעילה של התרכובת.
גרדיאנט ריכוז LPS: 0, 0.1, 0.5, 1, 2 מיקרוגרם/מ"ל (מודגר ל-24 שעות). קבוצת LPS של 1 מיקרוגרם/מ"ל הייתה בעלת ~50% חיוניות תאית (לעומת קבוצת Ctrl), ולכן ריכוז זה נבחר לניסויים הבאים.
4. צביעת המטוקסילין ואאוזין (H&E) וצביעת ספאנין O
הרקמות הוטבעו בפרפין, הוסרו מהשעווה, הודרו מחדש וצבועו במגני H&E ו-Safranin O/Fast Green בהתאם להוראות היצרן. תנאי צביעה: ריכוז העבודה של AO היה 1 מיקרוגרם/מ"ל; התאים היו מודגרים בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס למשך 5 דקות בחושך.
שיטה כמותית: שיעור החיוביות של AVO חושב על ידי ספירת תאים המכילים נקטה כתומה ב-5 שדות אקראיים (×הגדלה של 400) לכל דגימה באמצעות תוכנת ImageJ. לאחר מכן, קטעים צולמו תחת מיקרוסקופ BX43 (הגדלה ×400).
5. ציטומטריית זרימה
התאים נקטפו והושעו מחדש בתמיסת Annexin-V FITC/PI לניתוח אפופטוזיס. תנאי הדגירה: התאים הוצפו מחדש ב-1 × 106 תאים/מ"ל בתמיסת Annexin-V FITC/PI (KeyGEN) ודגרו בטמפרטורת החדר למשך 15 דקות בחושך.
אסטרטגיית שערים: פיזור קדמי (FSC) לעומת שערי פיזור צד (SSC) שימשו למניעת פסולת תאים; תאי FITC⁺/PI⁻ באנקסין-V הוגדרו כאפופטוטיים מוקדמים, ותאי FITC⁺/PI⁺ באנקסין-V כאפופטוטיים מאוחרים. גרף השער כלול בקובץ המשלים 1 (נתוני ציטומטריית זרימה גולמיים). תאים נאספו באמצעות ציטומטר זרימה. הנתונים נותחו באמצעות תוכנת Flow Jo.
6. טרנספקציה של פלסמידים וחיקוי
חיקוי MiR-34a (34a-mimic), חיקוי ביקורת-לא ספציפי (NC) הושגו ממקור מסחרי. התאים עברו טרנספקט עם פלסמידים באמצעות LipofectamineTM 3000 לפי הוראות היצרן.
7. צביעת כתום אקרידין
אוטופגיה הוערכה בדרך כלל באמצעות צביעת כתום אקרידין בתאים. לאחר שהתאים טופלו ב-LPS או OST בריכוזים ספציפיים במשך 24 שעות, הם דוגרו ב-AO (1 מיקרוגרם/מ"ל) בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס למשך 5 דקות בחושך. התמונות צולמו באמצעות מיקרוסקופ לייזר קונפוקלי. שיעור החיוביות של AVO חושב על ידי ספירת תאים המכילים פונקטה כתומה ב-5 שדות אקראיים (×הגדלה של 400) לכל דגימה באמצעות תוכנת ImageJ. הנתונים מדווחים כממוצע ± SD משלושה ניסויים עצמאיים.
8. תצפית במיקרוסקופ אלקטרוני בהעברה
הדגימות קיבעו ב-2.5% גלוטראלדהיד ו-1% אוסמיום טטרוקסיד, לאחר מכן יובשו, שטפו והושררו. לאחר הפולימריזציה, הדגימות נחתכו לחתכים בעובי 70 ננומטר באמצעות אולטרה-מיקרוטום. האולטרה-מבנה של התאים נצפה באמצעות מיקרוסקופיית אלקטרונים מעברית.
9. אימונובלוטינג
נוגדן מונוקלונלי לעכבר (Abs) נגד Bcl-2 (#68103), נוגדן פוליקלונלי של ארנב נגד LC3 (#14600-1-AP), IL-6 (21865-1-AP), ונוגדן מונוקלונלי לעכבר נגד β-אקטין (#66009-1-lg) נרכשו מ-Proteintech. בטן משנית הוצגה מסחרית ל-IRDye 800CW עז (פוליקלונלית), אנטי-ארנבת IgG (H+L) או IRDye 800CW עז (פוליקלונלית) אנטי-עכבר IgG (H+L). התאים עברו ליזזה במבחן פירוק תאי שלם, שהופרדו באמצעות אלקטרופורזה בג'ל SDS-פוליאקרילאמיד. חלבונים זוהו באמצעות Abs ראשוניים ו-Abs משניים מתאימים. עומס החלבונים היה 30 מיקרוגרם לכל נתיב; דילול נוגדנים ראשוניים: Bcl-2 (1:1000), LC3 (1:1500), β-טובולין (1:5000); נוגדנים משניים (IRDye 800CW) שימשו ב-1:10,000, IL-6 (1:800). לאחר מכן, רצועות החלבון נלכדו על ידי מערכת ה-Chemiluminescence Laser Imaging Imaging Models. רצועות החלבון נמדדו על ידי תוכנת ImageJ.
10. תגובת שרשרת פולימראז כמותית בזמן אמת (qRT-PCR)
רנ"א כולל בודד מתאים באמצעות תגובת טריזול. cDNAים שמקורם ב-RNA כולל סונתזו באמצעות ערכת הרגנט של cDNA ונותחו בשיטות SYBR Green. cDNAים שמקורם ב-miRNA סונתז באמצעות קיט cDNA של miRcute plus miRNA ונותחו על ידי ערכת qPCR של miRcute plus miRNA. כל ההליכים בוצעו בהתאם לפרוטוקול היצרן. הביטוי של תמלול היעד חושב באמצעות שיטת 2-△△CT . GADPH ו-U6 שימשו כבקרת טעינה ל-mRNA ו-miRNA, בהתאמה. רצף הפריימרים מופיע בטבלה 1.
11. בדיקות כתב ללוציפראז
פלסמיד דיווח מסוג פראי מסוג פראי (WT) ו-psiCHECK2- פלסמיד דיווח Bcl-2-3′UTR עם מוטנט באתר הקשר miR-34a (Mut). הכתבים והמחקה miR-34a הועברו יחד לתאי כונדרוציטים באמצעות LipofectamineTM 3000. התאים נקטפו ופורקו לאחר 24 שעות של טרנספקציה. לאחר מכן נמדדה עוצמת הלוציפראז באמצעות ערכת בדיקת הגנים Dual-LumiTM Luciferase Reporter לפי הוראות היצרן.
12. מבחני ניתוח הליכה
מערכת MGT-PR שימשה לצפייה בתנועות הגפיים הרצות של חולדות בכל קבוצה. לפני הניסויים, העכברים הורשו להסתגל לסביבת המסלול. נרשמו נתוני הליכה במהלך הליכה חופשית, עם שלושה ניסויי הליכה תקפים רצופים עבור כל עכברוש. הפרמטרים שנותחו כללו אורך צעד, משך הנפה ותיאום בין הגפיים האחוריות הימניות והשמאליות.
13. ניתוח סטטיסטי
הניסויים בוצעו בשלושה עותקים וחזרו על עצמם לפחות שלוש פעמים. ניתוח סטטיסטי בוצע באמצעות תוכנת GraphPad Prism 9. הנתונים הוצגו כממוצע ± SD. ההבדלים הסטטיסטיים הוערכו באמצעות ANOVA חד-כיווני (מבחן הפוסט-הוק של טוקי) עבור השוואות מרובות, או באמצעות מבחן Student t דו-זנבי להשוואות שתי קבוצות ניסוי. ההבדלים התקבלו כמובהקים ב-p < 0.05.