כל ההליכים בבעלי חיים בוצעו בהתאם לסטנדרטים מוסדיים שנקבעו לטיפול ושימוש הומאני בבעלי חיים במעבדה, ואושרו רשמית על ידי ועדת האתיקה של בעלי החיים המוסדית. ננקטו צעדים להפחתת אי הנוחות והמצוקה של בעלי החיים בכל הזדמנות אפשרית.
עבודות שכללו תרכובות כימיות, צבעים ודגימות ביולוגיות התבצעו לפי נהלי בטיחות ביולוגית מוכרים כדי לצמצם סיכונים פוטנציאליים. חומרים שעלולים להיות מסוכנים – כולל פאראפורמלדהיד, תגובות מבוססי נחושת ו-DHE – טופלו באמצעות ציוד מגן אישי מתאים, כולל כפפות, מסכות פנים ומשקפי בטיחות. כל חומרי הפסולת, כגון חומרים משומשים ופריטים חד-פעמיים מזוהמים, הופרדו למכלי ביו-סיכון ייעודיים וטופלו לאחר מכן על ידי שירותי ניהול פסולת מסוכנת מורשים בהתאם לתקנות הבטיחות המוסדיות והסביבתיות. העיצוב הניסויי הכולל מתואר באיור 1.

איור 1: תהליך העבודה של מחקר זה. אנא לחצו כאן כדי לצפות בגרסה מוגדלת של הדמות הזו.
תרבית תאים וקיבוץ
האסטרוציטים האנושיים (NHA) ותאי גליובלסטומה תקינים A172, U251, LN229 ו-SHG-44 (ראו טבלת חומרים) גודלו במדיום DMEM המכיל 10% סרום בקר עוברי (FBS) ונשמרו באינקובטור בטמפרטורה של 3 מעלות צלזיוס עם 5% CO₂. המדיום הוחלף כל יומיים, והתאים עברו כאשר הגיעו לכ-80% מזל. המינון המתאים וזמן החשיפה ל-CUM נקבעו באמצעות מבחן MTT. תאי NHA, A172, U251, LN229 ו-SHG-44 טופלו בריכוזים שונים (0, 2.5, 5, 10, 20 ו-4 מיקרומון) של CUM במשך 24, 48 ו-7 שעות בהתאמה,23 בהתאמה. לאחר מכן נוספו 2 מיקרוליטר של תמיסת MTT. לאחר ה-H, נוספו 15 מיקרו-ליטר דימתיל סולפוקסיד לכל באר וערבבו בעדינות. צפיפות אופטית (OD) ב-45 ננומטר נמדדה באמצעות קורא מיקרופלט. תאים לא מטופלים (קבוצת הביקורת) שימשו כביקורת שלילית בכל הניסויים.
תאי A172 ו-U251 זרעו וחולקו לקבוצות: בקרה, CUM במינון נמוך (1 מיקרומון), CUM במינון גבוה (2 מיקרומון), מעכב AKT (MK-2206), מעכב AKT + מעכב Wnt (MK-2206 + LGK974), ו-Elsm-Cu (אלסקלומול + CuCl₂), בהתאם לתנאי הטיפול. תאים בקבוצות CUM טופלו ב-10 או 2 מיקרומום CUM למשך 4 שעות. תאים בקבוצת MK-2206 קיבלו 1 מיקרומום MK-2206 למשך 2 שעות. תאים בקבוצת MK-2206 + LGK974 טופלו ב-μM LGK974 עבור H לאחר חשיפה ל-MK-2206. תאי קבוצת Elsm-Cu טופלו ב-100 ננומולר אלסקלומול ו-μM CuCl₂ למשך 4 שעותו-14 שעות.
ציטומטריית זרימה
תאי A172 ו-U251 מתורבתים בכל קבוצה הוסטו עם תמיסת צביעת PBS המכילה 1 מיקרוגרם/מ"ל PI למשך דקה. תאים טופלו לאחר מכן ב-0.25% טריפסין ונאספו בצנטריפוגציה (20 × גרם, מינימום, בטמפרטורת החדר). תאים חיוביים ל-PI זוהו באמצעות ציטומטר זרימה עם ערוץ PE (עירור ב-488 ננומטר), ושיעור תמותת התאים חושב27.
בדיקת קרבוקסיפלואורסאין סוקסינימידיל אמינו אסטר (CFSE)
תאי A172 ו-U251 נדגרו עם צבע CellTrace CFSE מיקרומול/ליטר בטמפרטורה של 3°C למשך דקה אחת בחושך. המדיום נוטרל, והתאים צונטרו בטמפרטורה של 20 × גרם למינימום בטמפרטורת החדר. לאחר האיסוף, התאים תורבתו וטופלו בהתאם לקבוצות שלהם. עוצמת הפלואורסצנציה של CFSE נותחה באמצעות ציטומטריית זרימה (עירור ב-488 ננומטר)27.
מבחן יצירת שיבוט תאים
תאי A172 ו-U251 מתורבתים עוכלו, הושעו מחדש ונספרו. נוספו שני מיליליטר של מתלה תא מוכן. לאחר ערבוב עדין, התאים הועברו לדגירה למשך כ-14 ימים. התאים קיבעו לאחר מכן עם 4% פאראפורמלדהיד למשך 3 דקות, והקיבע הושלך. לאחר צביעה עם 0.1% קריסטל סגול. תמונות מהמושבות נלקחו, ושיעור היווצרות השיבוטים חושב14.
מבחן שריטה של תא
תאי A172 ו-U251 (1 ×10 6 תאים לבאר) תורבדו עד שהגיעו ל-90% קונפלינסי. שכבת התא נשרטה פעם אחת באמצעות קצה סטרילי בנפח 2 מיקרוליטר ליצירת פצע, ולאחר מכן טופלה בריכוזים שונים של CUM עבור H ו-48 שעים. התמונות צולמו באמצעות מיקרוסקופ. קצב החלמת השריטות הוערך באמצעות תוכנת ImageJ. התמונות הומרו לפורמט של 8 ביט, נקבע סף מאוחד להבחנה בין אזור השריטה לאזור התא, ואזורי השריטה ב-0 ו-48 שעות חושבו באמצעות פונקציית ניתוח חלקיקים . קצב החלמה משריטה (%) = (מרחק 0 שעה − מרחק 48 שעות) / מרחק 0 שעה × 100%23.
ניסוי טרנסוול
תאי A172 ו-U251 נחשפו לטיפולים שנקבעו, ואז נותקו אנזימטית וצונטריפוגה ב-200 × גרם למשך 5 דקות בטמפרטורת החדר. התאים הושעו מחדש במדיום ללא סרום. מטריג'ל דולל ביחס של 1:8 במדיום ללא סרום, מעורבב היטב, והוחל 5 מיקרוליטר על התא העליון של הכנסת טרנסוול, ואחריו דגירה של 4 שעות. בסך הכל נוספו 5 ×-10 תאים לכל באר לתא העליון, בעוד 60 מיקרוליטר מדיום עם 20% FBS הוכנסו לתא התחתון. לאחר 48 שעות של דגירה, התאים קיבעו באמצעות פאראפורמלדהיד וצבועו בסגול קריסטלי. חמישה שדות ראייה נבחרו ממרכז ופריפריה של כל באר. תאים נצפו וצולמו תחת מיקרוסקופ. תאים פולשים חושבו באמצעות ImageJ. התמונות הומרו לפורמט של 8 ביט, הוטלו ספים להבחנה בין תאים מוכתמים לרקע, ופונקציית ניתוח חלקיקים ספרה תאים שהיגרו דרך הממברנה23.
זיהוי פוטנציאל ממברנה מיטוכונדריאלית (MMP)
תאי A172 ו-U251 מתורבתים בכל קבוצה נדגרו עם מיליטר של תמיסת JC-1 למשך 30 דקות בחושך. התאים נשטפו בעדינות באמצעות בופר JC-1 מקורר מראש, נצפו וצולמו באמצעות מיקרוסקופ פלואורסצנטי. באמצעות עירור של 488 ננומטר, נאספו אותות פולימר ומונומר JC-1 באמצעות מסנני פליטה של 590 ננומטר ו-530 ננומטר, בהתאמה. יחס הפלואורסצנציה האדום/ירוק (אגרגטים JC-1 למונומרים) נותח באמצעות תוכנת ImageJ להערכת שינויים ב-MMP28. תמונות של ערוצים אדומים וירוקים הופקו בנפרד, ועוצמת הפלואורסצנציה הממוצעת באותו אזור נמדדה.
גילוי קצב צריכת חמצן (OCR)
תאי A172 ו-U251 שתרבתו. הפלטה הונחה באנלייזר מחומם מראש בטמפרטורה של 3 מעלות צלזיוס לצורך התאמה. לאחר ההתאמה, נוסף מדיום ההגדרה. לאחר כיול אוטומטי, הפלטה התאזנה ל-15-2 דקות בטמפרטורה של 3°C ללאCO2. נמדד OCR בסיסי, ותוכנית הבדיקה הוגדרה לרשום את ה-OCR המיטוכונדריאלי במרווחים מוגדרים. הנתונים יוצאו לניתוח מאוחריותר 28.
זיהוי גלאי פלואורסצנטי של MitoSOX של מיני חמצן תגובתי (ROS)
תאי A172 ו-U251 הותאמו לצפיפות של 1 ×-104 תאים למ"ל, ו-1 מ"ל לכל באר נזרע בצלחת קונפוקלית, ולאחר מכן בוצעה התערבות תרופה. הסופרנטנט של התא נזרק, ונוסף 1 מ"ל של גלאי MitoSOX מדולל (1:1,000). התאים הוגדרו בחושך בטמפרטורה של 3°C למשך דקה. אות הפלואורסצנציה נלכד באמצעות מיקרוסקופ פלואורסצנציה (עירור/פליטה: 510/580 ננומטר) להערכת רמות ROS29 במיטוכונדריה.
אימונופלואורסצנציה
כיסויי כיסוי נשטפו פעם אחת עם מדיום תרבית DMEM. לאחר מכן הונחו בלוחות של שישה בארות לזרעת תאים ולהתערבות תרופתית. לאחר 24 שעות, התאים הוקבעו ב-4% פאראפורמלדהיד וחסמו לאחר מכן באלבומין סרום בקר (BSA) של 5% למשך 30 דקות. תמיסת החסימה הוסרה, והוחלו נוגדנים ראשוניים מדוללים המיועדים לדיהידרוליפואמיד אצטילטרנספראז (DLAT) ו-β-קטנין, ואחריהם דגירה לילית בטמפרטורהשל °C 30. נוגדנים משניים מסומנים פלואורסצנטית הוכנסו ודגרו בטמפרטורה של 3 מעלות צלזיוס למשך 30 דקות. גרעיני התאים צובעו נגד DAPI, והוסתפו עם מגיב אנטי-פייד. תמונות פלואורסצנציה צולמו באמצעות מיקרוסקופ פלואורסצנטי, ועוצמת האות נמדדה באמצעות תוכנת ImageJ. התמונות הומרו לפורמט של 8 ביט, והוחל סף עקבי להבחנה בין אותות מטרה לרעש רקע. כלי המלבן שימש לבחירת אזורי התאים הרצויים, ועוצמת הפלואורסצנציה הממוצעת נמדדה27. כדי להמחיש את המיטוכונדריה, התאים טופלו ב-20 ננומטר MitoTracker Red CMXRos למשך 30 דקות ואז תוקנו בפארפורמלדהיד30.
ערכת דיווח TCF/LEF1 לוסיפראז
הפעלת Wnt/β-catenin בתוך תאי A172 ו-U251 הוערכה באמצעות ערכת דיווח TCF/LEF1 לוסיפראז. וקטור המדווח TCF/LEF מכיל קופסת TATA ואלמנטים של תגובת פקטור תאי T/פקטור מגביר לימפה (TCF/LEF), המאפשרים זיהוי עקיף של פעילות שעתוק של β-קטנין באמצעות ביטוי חלבון פלואורסצנטי ירוק (GFP). תאי A172 ו-U251 שהתרבתו עברו העברה הפוכה עם וקטור דיווח TCF/LEF של 5 נ"גרם. שש עשרה שעות לאחר ההעברה, נרשמה עוצמת הפלואורסצנציה באמצעות קורא מיקרופלט עם הגדרות עירור ופליטה של 488 ו-51 ננומטר, בהתאמה31.
עכברים נושאי גידול
עשרה עכברים עירומים זכרים מסוג BALB/c (בני 7 שבועות, 2 ± 2 גרם) הוחזקו בתנאים מסוימים ללא פתוגנים (2 מעלות צלזיוס, 65% לחות) עם גישה בלתי מוגבלת לאוכל ומים סטנדרטיים. כל ההליכים אושרו על ידי ועדת הסקירה האתית של בית החולים הראשון המסונף של אוניברסיטת היאנגצה (מס' 2023092; תאריך אישור: 18.10.2023).
כדי להקים מודל זנוגרפט GBM, תאי A172 (4 × 106 תאים למ"ל) הושמו במדיום ללא סרום, והוזרק 0.1 מ"ל תת-עורית לצד ימין של כל עכבר. בעלי החיים חולקו באקראי לקבוצת ביקורת או לקבוצת טיפול ב-CUM (n = 5 לכל קבוצה). קבוצת ה-CUM קיבלה 60 מ"ג/ק"ג כורכומין ביום באמצעות גאבאז' אוראלי, בעוד קבוצת הביקורת קיבלה נפח שווה של מי מלח. קוטר הגידול נרשם כל 7 ימים באמצעות קליפר ורנייה, ונפח הגידול חושב באמצעות הנוסחה 1/2 × אורך ×רוחב 2 (מ"מ 3). לאחר 5 שבועות, עכברים הושמתו עקב פריקת צוואר הרחם, והגידולים נקטפו בתנאים סטריליים למדידת משקל32.
בדיקת טונל
רקמות הגידול נקבעו ב-4% פאראפורמלדהיד במשך 24 שעות, יובשו באתנול, הוטבעו בפרפין, וחתכו בעובי מיקרון. החתכים עברו הסרת שעווה והודרציה מחדש, שטפו ב-PBS, טופלו בחראבונאז K במשך 50 דקות לשאיבת אנטיגן, ודגרו ב-3% מי חמצן. תערובת תגובת TUNEL הונחה במשך שעה, ולאחר מכן הורכבה עם מגיב אנטי-פייד. תמונות פלואורסצנציה נאספו במיקרוסקופיה, ותאי TUNEL חיוביים בשדה נמדדו באמצעות תוכנת ImageJ.
אימונוהיסטוכימיה
מקטעי הגידול המוטמעים בפרפינים נאפו בטמפרטורה של 6 מעלות צלזיוס, הוסרקו בשעווה בקסילן, והודרו מחדש באמצעות סדרת אתנול מדורגת. שליפת אנטיגנים בוצעה באמצעות בופר מחומם של EDTA, ולאחר מכן כיבוי פעילות פרוקסידאז אנדוגנית. המחסניות דגרו בנוגדן ראשוני נגד Ki-67 במהלך הלילה בטמפרטורה של °C. לאחר דגירה עם נוגדן משני למשך 20 דקות, החתכים צוברו בדיאמינובנזידין (DAB) למשך 5 דקות וצובעו נגד בהמטוקסילין. לאחר התייבשות והרכבה עם שרף ניטרלי, צולמו שקופיות תחת מיקרוסקופ. צביעה חיובית זוהתה על ידי משקע חום-צהבהב, ותאי Ki-67 חיוביים נמדדו באמצעות ImageJ27.
צביעת פלואורסצנציה של דיהידרואתידיום (DHE)
רמות ROS הוערכו באמצעות צביעת פלואורסצנציה של DHE. קטעי רקמת גידול קפואים נשטפו ב-PBS. פלואורסצנציה ברקע כובה, ו-μM DHE נוסף לכל חלק למשך 3 דקות. לאחר שטיפת PBS, החלקים נאטמו בחושך. פלואורסצנציה נצפתה באמצעות מיקרוסקופ (עירור/פליטה: 518/605 ננומטר), ונאספו חמש תמונות אקראיות בכל קבוצה. ImageJ שימש לכימות רמות ROS.
זיהוי תוכן Cu2+
ריכוז Cu2+ בתאי GBM ורקמות גידול הוערך באמצעות ערכת זיהוי קולורימטרית. תאי A172 ו-U251, לאחר הטיפול, נאספו וצונטריפוגה ב-1,500 × גרם למשך 10 דקות בטמפרטורה מעלות צלזיוס. כדורי תאים הושעו מחדש ב-0. מ״ל מים מזוקקים, סוניקציה על קרח, ושוב בצנטריפוגה. רקמות הגידול עברו הומוגניזציה במים מזוקקים ובצנטריפוגה דומה בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס למשך 10 דקות. סופרנטנטים (1 מיקרוליטר) הועברו ללוח עם 96 בארות, מעורבבים עם 23 מיקרוליטר של תגובת כרומוגנית, נאטמו ודגרו במשך 5 דקות. צפיפות אופטית (OD) נמדדה ב-58 ננומטר באמצעות קורא מיקרופלט, ורמות Cu+ 2+ חושבול-14.
ווסטרן בלוט (WB)
חלבונים בודדו מתאים מתורבתים ורקמות גידול. סופרנטנטים הושגו באמצעות צנטריפוגציה ב-12,000 × גרם למשך 15 דקות בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס, וריכוזי החלבון נמדדו באמצעות בדיקת BCA. לאחר הדנאטורציה, הדגימות הופרדו על ידי SDS-PAGE, הועברו לממברנות PVDF ונחסמו עם חלב רזה של 5% למשך שעה. הממברנות נשטפו ב-TBST ודגרו במהלך הלילה בטמפרטורה של °C עם נוגדנים ראשוניים נגד FDX1, LIAS, DLAT, DLD, AKT, p-AKT, Wnt3a, GSK-3β, p-GSK-3β, β-קטנין, p-β-קטנין ו-β-אקטין (ראו טבלת החומרים)14,33. לאחר שטיפות נוספות של TBST, הממברנות דוגרו בנוגדנים משניים מצומדים ל-HRP למשך שעה אחת, שפותחו באמצעות תגובת ECL, והוצגו באמצעות כימילומינסנציה. תוכנת ImageJ שימשה לכימות עוצמת האות באמצעות כלי בחירת מלבן ופונקציית ניתוח הג'לים. ביטוי חלבון יחסי חושב כיחס בין ערך אפור של פס המטרה לערך הבקרה הפנימית (GAPDH). תמציות גרעיניות מתאי A172 ו-U251 הוכנו באמצעות ערכת חילוץ חלבון גרעיני. ההבעה של β-קטנין ולמין B1 הוערכה, כאשר לאמין B1 שימש כבקר טעינה גרעינית34.
ניתוח סטטיסטי
תוצאות כמותיות משקפות את הממוצע של שלושה שכפולים עצמאיים. כל הנתונים הוערכו מבחינת התפלגות תקינה והומוגניות של שונות. ANOVA חד-כיווני ואחריו מבחן פוסט-הוק של טוקי שימש להשוואות בין קבוצות שונות. הנתונים מוצגים כסטיית תקן ממוצעת ± (SD). ערך P של פחות מ-0.05 נחשב מובהק סטטיסטית. נהלים אלו שימשו להבטחת עמידות הנתונים ולתמיכה באמינות המסקנות.