פרוטוקול זה מתאר את ההליכים הניסיוניים המשמשים לחקר השפעות המודולציה של circZBTB46 על איתות דלקתי, לחץ חמצוני והפעלת מסלולי ERBB2-AKT ב-HUVECs.
תרבית תאים
תאי ה-HUVECs ששימשו במחקר זה התקבלו ממקור מסחרי. HUVECs שימשו כמודל תאי אנדותל מייצג בשל זמינותם הרחבה, תנאי התרבית הניתנים לשחזור ויעילות הטרנספקציה הגבוהה, המסייעים במניפולציה גנטית וחקירה מכנית של מסלולי איתות אנדותליים תחת לחץ דלקתי15,16. HUVECs גודלו ב-DMEM עם תוספת של 10% (v/v) סרום בקר עוברי וקוקטייל אנטיביוטיקה-אנטימיקוטי בריכוז 1%. כל תרביות התאים נשמרו בתנאים פיזיולוגיים סטנדרטיים בתא לחות (37°C, 5% CO2), מה שעודד התרבות תאית מתמשכת תוך שמירה על >95% חיוניות כפי שאושר על ידי בדיקת הדרה כחולה טרייפן. למרות שמדיות ספציפיות לאנדותל (למשל, EGM-2 או M199 עם תוספי גדילה אנדותליים) מומלצות בדרך כלל לתחזוקה ארוכת טווח של HUVEC, DMEM שימש במחקר זה כדי להבטיח עקביות בין טיפולים ניסיוניים והתאמה לגירוי LPS ולבדיקות מעכבים פרמקולוגיות. לבדיקות מעכבי AG-825, יש לדגור HUVECs עם DMEM טרי המכיל 10 מיקרומום AG-825 למשך שעה אחת. לאחר מכן, מוסיפים את תמיסת ה-LPS לבארות כדי להגיע לריכוז סופי של 10 מיקרוגרם/מ"ל, וממשיכים את התרבית במשך 24 שעות. כדי למזער סטייה פנוטיפית פוטנציאלית, HUVECs שימשו במספרי מעבר נמוכים ונחשפו לתנאים ניסיוניים מבוססי DMEM רק לבדיקות קצרות טווח. כל הניסויים התפקודיים בוצעו בתוך חלונות טיפול מוגדרים ולא במהלך תרבית ממושכת.
טרנספקציה תאית
כדי להבהיר את התפקיד הביולוגי של circZBTB46, פלסמידים בעלי הבעה יתר (oe-circZBTB46) ומבני ביקורת שליליים תואמים (oe-NC) סונתזו ואומתו על ידי GenScript. HUVECs נזרעו ללוחות בעלי 6 בארות בצפיפות של 1 x 10⁵ תאים לבאר ותרבתו במהלך הלילה כדי להגיע למפגש ~70%-80% בזמן הטרנספקציה. לכל באר, 2.5 מיקרוגרם DNA פלסמיד (oe-circZBTB46 או oe-NC) דולל ב-125 מיקרוליטר של תווך סרום מופחת ומעורבב עם 2.5 מיקרוליטר של תגובת P3000 (צינור A). במקביל, 3.75 מיקרוליטר של ליפופקטמין 3000 דולל ב-125 מיקרוליטר של מדיום סרום מופחת (צינור B). צינור A וצינור B שולבו, מעורבבים בעדינות ודגרו בטמפרטורת החדר במשך 15-20 דקות כדי לאפשר היווצרות קומפלקס (נפח קומפלקס סופי: 250 מיקרוליטר לבאר). הקומפלקסים נוספו בדרופ בתאים במדיום מלא ללא אנטיביוטיקה. לאחר 6 שעות של דגירה בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס, 5%CO2, הוחלף מדיום הטרנספקציה במדיום צמיחה טרי ומלא. התאים תורבדו במשך 48 שעות לפני הבדיקות הבאות. כל הנהלים פעלו לפי הוראות היצרן.
מודל מושרה על ידי LPS
כדי ליצור מודל SA-AKI במבחנה, HUVECs (5 x 105 תאים לבאר) שהועברו עם oe-circZBTB46 או NC הוזרעו בלוחות של 96 בארות ונשמרו במשך 24 שעות עד שהושגה 80% מפגש נקודות. לאחר מכן, תאים אלו עברו טיפול ב-LPS ב-10 מיקרוגרם/מ"ל במשך 24 שעות. HUVECs ללא טיפול ב-LPS שימשו כקבוצת הביקורת.
qRT-PCR
הפקת ה-RNA הכוללת מ-HUVECs השתמשה במגיב מסחרי. שעתוק הפוך לסינתזת cDNA בוצע באמצעות ערכת המגיב המסחרית. PCR כמותי (qPCR) בוצע בשלושה עותקים באמצעות מערכת PCR בזמן אמת לצד מיקס ראשי. כמויות הביטוי של גני המטרה כויללו מול U6, כאשר הניתוח בוצע באמצעות שיטת 2−ΔΔCT 17,18. לניתוח ביטוי circRNA, RNA גרעיני קטן U6 שימש כהתייחסות פנימית לנרמול, שכן הוא משמש לעיתים קרובות לכימות RNA קטנים שאינם מקודדים ודווח כי מציג ביטוי יציב יחסית בתנאי ניסוי קצרי טווח במבחנה. רצפי פריימר שיושמו במחקר זה מפורטים כדלקמן:
circZBTB46-קדימה: 5'-CGGCGCTCATGAGTAAGAAC-3'
circZBTB46-הפוך: 5'-CGCCTCTTCTACAGACTGGG-3'
U6-חלוץ: 5'-TGCTATCACTTCAGCAGCAGCA-3'
U6-ריברס: 5'-GAGGTCATGCCTAATCTTCTG-3'.
מבחן CCK-8
הקיימות של HUVEC הוערכה באמצעות CCK-8 שנרכש מסחרית. בקצרה, תאים הוזרעו ללוח של 96 בארות, והתאים עברו תרבית הידבקות במשך 24 שעות. לאחר מכן נוספו 10 מיקרוליטר של תמיסת CCK-8 לכל באר, והתאים הועברו לדגירה נוספת בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס למשך 2 שעות. קורא מיקרופלט שימש למדידת צפיפות אופטית (OD) באורך גל של 450 ננומטר. תצפיות ראשוניות הראו כי 10 מיקרוגרם/מ"ל של LPS הפחיתו משמעותית את הקיימות של HUVECs, מה שהוביל לבחירת ריכוז זה לתהליכים ניסיוניים עתידיים.
ציטומטריית זרימה
בתחילה, HUVECs הופרדו עם טריפסין ללא EDTA בהתאם לנהלים הסטנדרטיים. בהתאם להנחיות היצרן עבור ערכת בדיקת אפופטוזיס Annexin V-APC/PI, תלשות תאים צונטריפוגה ב-1,000 x גרם למשך 5 דקות בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס, לאחר דיסוציאציה אנזימטית. התאים הגולגולים נשטפו 2 פעמים עם PBS קר בתנאים זהים והושעו מחדש ב-100 מיקרוליטר של בופר קישור 1x. כל דגימה טופלה ב-5 מיקרוליטר של אנקסין V-FITC קונגוגט ו-5 מיקרוליטר של תמיסת צביעה ביודיד פרופידיום (PI), ואחריה דגירה של 10 דקות בחושך בטמפרטורת החדר (20-25 מעלות צלזיוס). לבסוף, נוספו 400 מיקרוליטר של בופר קישור 1x לכל הדגימות, ואפופטוזיס נותח תוך שעה באמצעות ציטומטר זרימה. האירועים הוגדרו תחילה על ידי FSC/SSC כדי למנוע פסולת. לניתוח אפופטוזיס, הוחלו שערי רבע על גרף Annexin V-FITC מול PI באמצעות בקרות מתאימות (בקרות לא צבועות ויחידות צביעה/פיצוי) כדי להגדיר אוכלוסיות חיות (Annexin V-/PI-), אפופטוטיות מוקדמת (Annexin V+/PI-), אפופטוטיות מאוחרות (Annexin V+/PI+) ונמקיות (Annexin V-/PI+). אותו תבנית שער וספים הוחלו על כל הדגימות.
בדיקת ELISA
ריכוזי הגורמים הדלקתיים – פקטור נמק הגידול – α (TNF-α), אינטרלוקין-6 (IL-6) ואינטרלוקין-1β (IL-1β) – בסופרנטנט של HUVECs מתורבתים נמדדו באמצעות ערכות ELISA מסחריות. באופן ספציפי, ערכת ELISA של ה-TNF-α האנושית, ערכת ELISA אנושית IL-6 וערכת ELISA אנושית IL-1β שימשו לפי הוראות היצרנים. לכל בדיקה נטען 50 מיקרו-ליטר של סופרנטנט תרבית תאים לא מדולל לכל באר. עקומות סטנדרטיות נוצרו באמצעות דילול סדרתי שסופקו (TNF-α: 0-1000 pg/mL; IL-6: 0-500 pg/mL; IL-1β: 0-200 pg/mL). לאחר דגימה ותוספת סטנדרטית, הצלחות דגרו בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס למשך 90 דקות, ואחריהן חמש שטיפות עם בופר שטיפה. לאחר מכן נוספו נוגדנים לזיהוי מצומדים לביוטין ודגרו בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס למשך 60 דקות. לאחר שלב שטיפה נוסף, נוסף סטרפטווידין-HRP ודגרה בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס למשך 30 דקות. לאחר שטיפה אחרונה, נוסף מצע 3,3',5,5'-טטראמתילבנזידין (TMB) והוחזק בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס בחושך למשך 15 דקות. התגובה הסתיימה בתמיסת עצירה, והספיגה נמדדה מיד ב-450 ננומטר עם אורך גל ייחוס של 630 ננומטר. כל דגימה ותקן נבדקו בשכפול, וכל הניסויים כללו שלושה שכפולים ביולוגיים עצמאיים. רמות סמני הלחץ החמצוני - מלונדיאלדהיד (MDA), סופראוקסיד דיסמוטאז (SOD) וקטלז (CAT) - בסופרנטנט הוערכו באמצעות ערכת MDA ELISA, ערכת SOD ELISA וקיט ELISA, בהתאמה בהתאם לפרוטוקולים 19,20,21. לבדיקות MDA ו-SOD, נעשה שימוש ב-40 מיקרוליטר של סופרנטנט לכל באר ללא דילול; ב-CAT, דגימות דוללו ביחס 1:10 עם בופר מבחן לפני הטעינה. עקומות סטנדרטיות הוכנו לפי מפרטי הערכה (MDA: 0-60 nmol/mL; SOD: 0-100 U/mL; CAT: 0-100 U/mL). שלבי הדגירה בוצעו כך: MDA - 60 דקות ב-37 מעלות צלזיוס; SOD - 60 דקות ב-37 מעלות צלזיוס; חתול - 30 דקות ב-37 מעלות צלזיוס. הלוחות נשטפו 4 פעמים בין שלבי הדגירה המרכזיים. התפתחות צבע הושגה על ידי הוספת המצע המתאים ודגירה בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס (MDA: 15 דקות; SOD: 20 דקות; חתול: 15 דקות). הספיגה נמדדה ב-450 ננומטר עבור SOD ו-CAT, וב-532 ננומטר עבור MDA. כל המדידות בוצעו בבארות כפולות וחזרו על פני שלושה שכפולים ביולוגיים עצמאיים.
רצף RNA
RNA כולל הופק מ-HUVECs באמצעות תגובות מסחריות לפי הוראות היצרן. טוהר וריכוז ה-RNA הוערכו באמצעות ספקטרופוטומטר על ידי מדידת ספיגה ב-260 ננומטר ו-280 ננומטר (A260/A280), ושלמות ה-RNA הוערכה באמצעות ביואנלייזר. רק דגימות RNA עם מספר שלמות RNA (RIN) ≥ 7 שימשו להכנת ספרייה מאוחרת יותר. RNA ריבוזומי הוסר במהלך הכנת הספרייה באמצעות הליך סטנדרטי של דלדול rRNA שבוצע על ידי חברה מסחרית. כאשר נדרש, טיפול ב-RNase R יושם לפני בניית הספרייה לעיכול סלקטיבי של RNA ליניארי ולהעשיר מיני RNA מעגליים. פריסת RNA בוצעה לאחר מכן בתנאי טמפרטורה גבוהים בהתאם לפרוטוקול הסטנדרטי של מדריך ערכת הכנת ספריית ה-RNA, ליצירת קטעי RNA בגודל מתאים. ספריות הרצף הוכנו באמצעות ערכת הכנת ספריות RNA לפי הוראות היצרן ורצפו על פלטפורמת Illumina באמצעות אסטרטגיית רצף זוג עם אורך קריאה של 150 bp (PE150). עומק הריצוף היה מספיק כדי לתמוך בניתוח רחב של טרנסקריפטום. קריאות רצף גולמיות עובדו באמצעות נהלי בקרת איכות סטנדרטיים להסרת רצפי מתאם וקריאות באיכות נמוכה. קריאות נקיות הותאמו לגנום הייחוס האנושי, ורמות ביטוי הגנים נמדדו בהתאםל-22,23. גנים מבוטאים באופן דיפרנציאלי (DEGs) בין HUVECs שמביעים יתר על המידה circZBTB46 לבין HUVECs שטופלו ב-NC תחת גירוי LPS זוהו באמצעות שיטות סטטיסטיות מבוססות. בוצע ניתוח העשרת קבוצות גנים (GSEA) לזיהוי מסלולי איתות הקשורים לביטוי יתר של circZBTB46. הגנים דורגו על פי ביטוי שונה בין קבוצות ניסוי. מערכי גנים שנבחרו מתוך מאגר החתימות המולקולריות (MSigDB) שימשו לניתוח העשרה. מובהקת ההעשרה הוערכה על בסיס ציון ההעשרה המנורמל (NES) ושיעור גילוי שגוי (FDR), כאשר FDR < 0.25 נחשב למובהק סטטיסטית. ריצוף CircRNA וכל הניתוחים הביואינפורמטיים הנלווים הועברו למיקור חוץ.
זיהוי DEGs
כדי לסרוק DEGs, רמות הביטוי בין שתי קבוצות שונות הושוו באמצעות חבילת התוכנה DESeq (2012) R. הספים למובהק סטטיסטי הוגדרו כ-p < 0.05 עם |log2FC| ערך מעל 0.58. מפת החום נוצרה על ידי חבילת pheatmap R, וגרף הר געש השתמש בחבילת Goplot2 R לציור.
ניתוח העשרה פונקציונלית
ניתוחי העשרה של GO ו-KEGG שהתבססו על תמלילים ליניאריים נערכו באמצעות הפלטפורמה המקוונת EnrichR, ותרשים הבועה נכתב על בסיס חבילת GOplot R. תוכנת GSEA שימשה בהתבסס על מטריצת הביטוי וקבצי סט גנים שסופקו על ידי מסד הנתונים MSigDB, עם פרמטרים ניתוחים (למשל, מספר ההחלפות ושיטות סטטיסטיות). העשרת מערכי הגנים הוערכה באמצעות ציון ההעשרה המנורמל (NES), ערך P וערך FDR, מה שסיפק חקירה מעמיקה של הפונקציות והמנגנונים הביולוגיים הפוטנציאליים של הגנים המבוטאים באופן דיפרנציאלי.
כתם מערבי
חלבון כולל הופק מ-HUVECs (בערך תאים בגודל 1 x 10⁶) באמצעות בופר ליזיס RIPA בתוספת מעכבי פרוטאז ופוספטאז. ריכוז החלבון נקבע באמצעות ערכת כימות חלבון BCA. כמויות שוות של חלבון (20 מיקרוגרם לנתיב) נפתרו באלקטרופורזה על ג'לים דודציל סולפט-פוליאקרילאמיד 10% נתרן (SDS-PAGE) בעוצמה של 80 וולט למשך 30 דקות, ואחריה 120 וולט למשך 60 דקות. לאחר מכן, חלבונים הועברו לממברנות פוליווינילידן פלואוריד (PVDF) באמצעות מערכת העברה רטובה ב-100 וולט למשך 90 דקות בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס. הממברנות נחסמו עם 5% חלב דל שומן במלח טריס-בופר עם 0.1% Tween-20 (TBST) למשך שעה בטמפרטורת החדר, ולאחר מכן דגירה עם נוגדנים ראשוניים מדוללים באותו בופר חסימה (בדרך כלל 1:1000 לחלבוני יעד ו-1:5000 ל-GAPDH) בטמפרטורה של 4°C במהלך הלילה. הנוגדנים העיקריים ששימשו היו כדלקמן: ERBB2, p-AKT, AKT ו-GAPDH. לאחר הדגירה, הממברנות נשטפו 3 פעמים (10 דקות בכל שטיפה) עם TBST ואז דוגרו בנוגדן משני IgG אנטי-ארנב עם פרוקסידאז חזרת (HRP) (1:5000 בבופר חסימה) למשך שעה בטמפרטורת החדר. לאחר שלוש שטיפות נוספות של TBST (10 דקות כל אחת), רצועות החלבון הוצגו באמצעות ערכת Western Blotting Substrate של Enhanced Chemiluminescence (ECL) וצולמו באמצעות מערכת הדמיה. עוצמות הרצועות נמדדו באמצעות תוכנה.
ניתוח סטטיסטי
הערכות סטטיסטיות בוצעו באמצעות GraphPad Prism 10. הנתונים מוצגים כממוצעים ± שגיאת תקן של הממוצעים (SEMs). ערך p < 0.05 הוגדר כדי להצביע על מובהקות סטטיסטית.