הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

כריתת שרוול בגסטרקטומיה בעכברים באמצעות קליפסים חד-פעמיים

265 צפיות

⸱

DOI:

10.3791/69996

⸱

20 בפברואר 2026

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of General Surgery, Guangzhou Red Cross Hospital of Jinan University, 2College of Clinical Medicine, Guizhou Medical University

* These authors contributed equally

במאמר זה

סיכום

כאן, אנו מציגים פרוטוקול המשתמש בקליפס חבל חד-פעמי ליצירת מודל גסטרקטומיה בשרוול העכבר. מודל זה מראה תמותה נמוכה לאחר הניתוח, זמן ניתוח קצר יותר, ותוצאות טיפוליות הדומות לטכניקות תפירה מסורתיות.

תקציר

דגמי העכברים הנוכחיים של גסטרקטומיה בשרוול (SG) מסתמכים רבות על תפירה ידנית – הליך טכני תובעני עם זמני ניתוח ממושכים, תמותה גבוהה סביב הניתוח ועקומת למידה תלולה. דבר זה מגביל את הנגישות שלהם לחוקרים שאינם כירורגיים. כדי להתמודד עם צוואר בקבוק זה, פיתחנו פרוטוקול SG פשוט המשתמש בקליפסים חד-פעמיים, המשמשים בדרך כלל בניתוחי מערכת העיכול הקליניים. בעכברי C57BL/6J ששמנו על ידי תזונה, הגישה המבוססת קליפס הפחיתה את זמן הניתוח הממוצע ב->50% (20.9 ± 3.2 לעומת 43.9 ± 3.0 דקות) ושיפרה באופן משמעותי את ההישרדות במשך 12 שבועות בהשוואה לתפר המסורתי. השיטה השיגה תוצאות מטבוליות דומות, כולל ירידה ממושכת במשקל, שיפור סבילות לגלוקוז, הגברת רגישות לאינסולין והפחתת סטיאטוזיס בכבד. ראוי לציין שהדגם אינו דורש מומחיות מיקרוכירורגית מיוחדת או מכשירי סיכות, שלרוב אינם זמינים ליישומים בעכברים. אנו ממליצים על שיטה מבוססת קליפים זו לחוקרים, במיוחד אלו ללא הכשרה כירורגית מתקדמת, שמעדיפים יעילות פרוצדורלית ויכולת שחזור במחקרים מכניים של ניתוחי בריאטריה. למנתחים המעוניינים לתרגום קליני ישיר, טכניקות מבוססות תפר נשארות מועדפות, אם כי עם ניהול סביב ניתוח מחמיר יותר.

מבוא

ניתוח בריאטרי מוכר באופן נרחב כהתערבות היעילה ביותר להשמנת יתרון קיצונית וסיבוכים הנלווים לה1. מודל הגסטרקטומיה בשרוול העכבר (SG) הוא כלי חשוב לחקר השינויים הפתופיזיולוגיים והמנגנונים הפוטנציאליים הקשורים לניתוח בריאטרי. מודל זה מועיל כי הוא מאפשר שימוש בזני עכברים מהונדסים גנטית, כגון כאלה עם הדחפת גנים או ביטוי יתר. מודלים של עכברים שקל לשחזר, מאפשרים שליטה קפדנית בתנאי הניסוי ומאפשרים מניפולציה ניסיונית הם חיוניים לתרגום קליני2.

מודל SG הקונבנציונלי של עכברים משתמש בטכניקות מבוססות תפרים לייצור שקית קיבה צינורית. שיטה זו כוללת מספר שלבים כירורגיים מדויקים ודורשת בדרך כלל מיומנות טכנית משמעותית. טכניקות מייצגות כוללות SG-שכבהאחת 3,4 ו-SG-למברט 5,6, עם זמן ניתוח ממוצע של כ-30 עד 45 דקותב-7. כתוצאה מכך, ביצוע SG בקבוצה של עשרה עכברים דורש בדרך כלל 5-7.5 שעות של זמן ניתוח. במחקרים הכוללים מספר קבוצות ניסוי, סשנים כירורגיים מצטברים עשויים להימשך 2-3 ימים רצופים. לוחות זמנים פרוצדורליים ממושכים עלולים להכניס מגבלות לוגיסטיות ושונות בתנאים סביב הניתוח, המשפיעים על עקביות ניסוי ומעקב לאחר הניתוח. חוקרים בחנו גישות חלופיות לפיתוח מודלים נגישים יותר של עכבר-SG. גישות בסיוע סיכות (SG-stapler)7,8 וגישות מבוססות קליפס (SG-clip)9,10,11 מייצגות שיפורים בולטים. שיטות אלו מייעלות היבטים מסוימים של היווצרות שקיות קיבה ומפחיתות את הדרישות הטכניות הכרוכות בתפירה ידנית, ובכך תומכות באימוץ רחב יותר בסביבות מחקר עם רמות ניסיון ניתוחיות משתנות. טכניקת SG-סטאפלר מתמודדת עם מגבלות מעשיות ביישומי עכברים בשל זמינות מוגבלת של מכשירי סיכות בגודל מתאים, מה שהוביל לשימוש תדיר יותר במודלים של חולדות. לגבי גישת קליפס SG, מחקרים קודמים השתמשו בדרך כלל בקליפס טיטניום אחד עד שניים בתוספת תפרים נלווים 9,10,11. המשטח הפנימי החלק של קליפסי טיטניום סטנדרטיים מספק מיקום רקמתי לא אופטימלי, מה שמצריך קיבוע נוסף להבטחת אמינות פרוצדורלית ושלמות קיבה.

בהסתמך על תכונות מודלי SG-סטפלר ו-SG-קליפ, פרוטוקול זה מציג מודל SG עכברי שפותח באמצעות קליפים חד-פעמיים. קליפים אלו משמשים לעיתים קרובות בכריתת כיס ראש, כריתת תוספתן וניתוחים נוספים במערכת העיכול. בפרוצדורות אלו, הם מהדקים היטב רקמות כמו צינור הציסטיק השארי, שורש התוספתן וכלי הדם, ובכך מבטלים את הצורך בחיזוק תפר נוסף. קיימים גדלים שמתאימים לאורך קיבת העכבר. מודל ה-SG-clip החדש הזה פשוט, אמין ומציג יעילות טיפולית הדומה לזו של מודל התפרים המסורתי.

ראוי לציין כי SG מבוסס תפרים נותר מועדף כאשר המחקר שואף לשחזר טכניקת ניתוח קלינית, לחקור השפעות ביומכניות או ביולוגיות ספציפיות לתפר, או דורש דיוק אנטומי מרבי. לחוקרים בעלי מיומנויות מיקרוכירורגיה מתקדמות, שיטות תפירה ידנית משקפות פרוצדורות אנושיות ולכן מתאימות יותר לנאמנות תרגומית. לעומת זאת, מודל קליפ הליגציה מציע חלופה יעילה, יעילה ונגישה השומרת על קפדנות ניסויית תוך הרחבת היישום של SG עכברי עכברים במגוון סביבות מחקר – במיוחד כאשר המומחיות הכירורגית מוגבלת.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

פרוטוקול זה עומד בהנחיות האתיקה הבינלאומיות לרווחת בעלי חיים ואושר על ידי ועדת רווחת בעלי החיים והאתיקה הניסיונית של אוניברסיטת ג'ינאן (מספר אישור: 20240227-0073).

הערה: שלושים עכברי בר זכרים מסוג C57BL/6J (בני שמונה שבועות), במשקל 22-25 גרם, שוכלו בסביבה ייחודית ללא פתוגן (SPF) עם טמפרטורת חדר של 20-26 מעלות צלזיוס ו-12/12 שעות לסירוגין בין יום/לילה. לאחר הסתגלות לתזונה עתירת שומן במשך 4 שבועות, העכברים חולקו באקראי לקבוצות SC (SG עם קליפ), SS (SG עם תפר) ו-SH (שמה עם תפר) עם 10 עכברים בכל קבוצה.

1. הכנה לפני הניתוח

  1. עברו לדיאטה נוזלית למשך יומיים ואל צמו לפני הניתוח.
    הערה: מעבר לפני הניתוח לתזונה נוזלית יכול להקל על ריקון מזון מוצק מקיבת העכברים, ובכך להפחית זיהום במהלך הניתוח. בנוסף, הוא מקדם התאמה טובה יותר לתזונה נוזלית לאחר הניתוח, ומבטיח צריכת אנרגיה מספקת.
  2. מקבע את כרית החימום על שולחן הניתוחים עם מסכת הרדמה וכיוון את הטמפרטורה ל-~37 מעלות צלזיוס.
  3. נקה את השולחן עם 75% אלכוהול.
  4. חלץ 1 מ"ל מ-100 מ"ל של תמלח רגיל כדי להמיס את אבקת הפניצילין. לאחר מכן, מזריקים את כל תמיסת הפניצילין המומסת ל-99 מ"ל הנותרים של תמיסת מלח רגילה להכנת תמיסת פניצילין בריכוז של 800,000 IU/100 מ"ל.
  5. הרדימו את העכברים עם 3% איזופלורן ו-0.5 ליטר לחמצן לדקה למשך כ-30 שניות ואז הניחו את הראש בתוך מסכת הרדמה כאשר ריכוז האיזופלוראן נשמר על 1.5%.
  6. סטריליזציה של עור החזה והבטן עם תמיסת אנרדיאן וכסה במגבת סטרילית.

2. הליכים כירורגיים

  1. לפרוטומיה אמצעית: הרם את העור כ-2 ס"מ מתחת לתהליך הזיפואיד ויוצר חתך של 1.5 ס"מ לאורך קו האמצע. חתכו את האזור החופשי מהשרירים לאורך הלינאה אלבה בדיוק מספיק כדי להתאים לרטרקטור (כ-1.5 ס"מ).
  2. החוצה של הקיבה: באמצעות מטוש כותנה רטוב, דחפו את המעי הגס וחלק מהמעי הדק לכיוון חלל האגן. הרימו בעדינות את הבטן עד לחתך הבטן עם פינצטה קהה וכסו אותה במגבת חדשה שחתכה מגזה רטובה. נתח בזהירות את רצועת ההפטוגסטריה, הרצועה הגסטרוספלית והחיבור החלקי של הסינוס הקיבתי ללבלב, וחתוך באמצעות אלקטרוקואגולטור.
    הערה: הנחת וילונות חדשים נוספים או כדורי כותנה רטובים בזמן הוצאה וחתך בקיבה יכולה להפחית ביעילות זיהום מתכולת הקיבה.
  3. קבעו את היקף הכריתה לאורך הקימור הגדול של הקיבה, כאשר הקרקע נמצאת 3 מ"מ רחוק לוושט והאנטרום 3 מ"מ פרוקסימלי לפילורוס.
  4. לקבוצת SC:
    1. הניחו את קליפס הליגטורה החד-פעמי עם אפליקטור לאורך ההיקף שנקבע מראש; קבעו בזהירות את המרחק בין מיקום ההידוק לוושט לפילורוס, ואז מהדקים.
      הערה: לפני החיתוך, יש לאשר את קו הכריתה בשיתוף פעולה הן על ידי העוזר והן על ידי המפעיל כדי להבטיח שולי כריתה מדויקים.
    2. יש למקם מראש כדור כותנה רטוב סביב הבטן כדי למנוע זיהום חלל הבטן בתכולת קיבה שמזליפה; לאחר מכן חתכו במהירות כ-80% מרקמת הקיבה בצד הקימור הגדול של קליפס הליגטורה.
    3. חטא את החתך שלוש פעמים עם מטוש אנרדי ונגב פעם אחת עם מטוש מלח (איור 1).
  5. לגבי קבוצת האס אס:
    1. מהדק את גוף הקיבה לאורך ההיקף שנקבע מראש של הכריתה.
    2. יש למקם מראש כדור כותנה רטוב סביב הבטן כדי למנוע זיהום חלל הבטן בתכולת קיבה שמזליפה; לאחר מכן השתמשו במספריים עיניים כדי לחתוך במהירות כ-80% מרקמת הקיבה בצד הקימור הגדול.
    3. פתח את המלקחיים ונקה את תוכן הקיבה עם דגימות מלח.
    4. תפרו את החתך פעמיים באמצעות תפרים כירורגיים סופגים בקוטר 6-0 בטכניקת שכבה רציפה חד-שכבתית. בצע את התפר הרציף הראשון על ידי הכנסת המחט בניצב לקצה החתך, במרחק של 2-3 מ"מ, עובר דרך כל עובי דופן הקיבה, ויציאה בנקודה שווה מרחק בצד הנגדי. אבטחו את התפר הראשוני בקשר כירורגי, המשיכו את התפר באמצעות נשיכות מתחלפות של 2 מ"מ תחת מתח אחיד למניעת קימוט או פערים ברקמה, וסיימים בקשר מרובע (3-4 זריקות).
    5. בצע את התפר הרציף השני במקביל לראשון, תוך שימוש בדפוס הזזה לשיפור הכיסוי ושמירה על מרווח ומתח עקביים בין הנשיכה, תוך הימנעות מחפיפה או פיתול.
      הערה: אדמומיות של כדורי כותנה או גזה מעידה על דימום משמעותי, במיוחד באזור החתך בקיבה; נדרשת קרישה חשמלית מספקת של החתך לפני התפירה כדי להשיג המוסטזיס.
    6. חטא את החתך שלוש פעמים עם מטוש אנרדי ונגב פעם אחת עם מטוש מלח (איור 2).
  6. לקבוצת SH:
    1. בצע רק את פעולת ההידוק של הקיבה ושחרר אחרי 10 דקות.
    2. החזר את הקיבה לחלל הבטן במיקום הנכון ותפר את השרירים והעור עם תפרים כירורגיים של 5-0, חטא וסיים את ההליך.
      הערה: כל העכברים עברו ניתוח בתוך שבוע אחד כדי לאפשר ניטור יעיל של משקל וצריכת מזון לאחר הניתוח.

3. טיפול לאחר הניתוח

  1. הנח את העכברים בקופסת אינדוקציה של חמצן טהור. הם יכולים להתעורר אחרי כ-2 דקות. הוציאו את העכברים והניחו אותם על כרית חימום. התבונן מקרוב במצב התודעה והנשימה, ואז החזיר אותם לכלוב כשהם יכולים לזוז.
  2. יש להזריק זריקה תת-עורית אחת של תמיסת גלוקוז סלין (5% גלוקוז ו-4.5% נתרן כלורי) במינון של 20 מ"ל לק"ג.
  3. יש להזריק זריקה תת-עורית של מלוקסיקאם במינון של 4 מ"ג/ק"ג (ריכוז: 0.4 מ"ג/מ"ל) מיד לפני שהעכברים מתעוררים לאחר הניתוח. חזור על ההזרקה כל 24 שעות במשך שלושה ימים רצופים.
  4. לספק ל-Abbot תמיסה תזונתית ודיאטה עתירת שומן לשלושת הימים הראשונים לאחר הניתוח; החלף את התמיסה התזונתית במים לשתייה ביום הרביעי לאחר הניתוח.
  5. נתן פניצילין (30,000 U/kg) בתוך השריר במשך 3 ימים רצופים לאחר הניתוח כדי למנוע זיהום.
  6. צפו בעכברים מדי יום למצבים כלליים וספקו טיפול סימפטומטי מהיר לפי הצורך.

4. מדדי גילוי

הערה: הישרדות של 4 שבועות ללא סיבוכים משמעותיים לאחר ניתוח בעכברים נחשבת לניתוח מוצלח.

  1. רשמו את משקל ומשך הניתוח בזמן הניתוח, ועקובו אחרי המשקל, צריכת המזון, שיעור התמותה והופעת סיבוכים חמורים בכל שבוע לכל קבוצה במשך 12 שבועות לאחר הניתוח.
  2. בצע הערכות מעבר מטבוליות ומעיים כגון בדיקת סבילות לגלוקוז תוך-פריטונאלי (ipGTT), בדיקת סבילות לאינסולין (ITT) ובדיקת מעבר במעי הדק בשבוע 12.
    1. ל-ipGTT: עכברים מהירים ל-12 שעות. חתוך קטע של 1 מ"מ מקצה הזנב ומדד את רמת הסוכר בצום (זמן 0). נתנו תמיסת גלוקוז של 20% תוך-פריטונית במינון של 2 גרם למשקל גוף. מדדו את רמות הסוכר בדם ב-15, 30, 60, 90 ו-120 דקות לאחר הטיפול.
    2. ל-ITT: עכברים מהירים ל-6 שעות. מדדו את רמות הסוכר בצום בדם. מתן תמיסת אינסולין (0.075 U/mL) באמצעות הזרקה תוך-פריטונלית במינון של 0.5 U/kg משקל גוף. מדדו את רמות הסוכר בדם ב-15, 30, 60, 90 ו-120 דקות לאחר ההזרקה.
    3. למעבר במעי דק: עכברים מהירים למשך 12 שעות. נתנו 10% אבקת פחמן עם תלייה דרך הפה במינון של 10 מ"ל לקילוגרם משקל גוף. אחרי 30 דקות, הורד את העכברים. כריתה את המעי הדק השלם מהפילורוס ועד לקצה הפרוקסימלי של הצקום. מדוד את יחס המעבר המעי כמרחק מהפילוס לקצה הקדמי של תליית הפחמן חלקי אורך המעי הדק הכולל.
  3. להקריב את העכברים כדי לצפות במבנה האנטומי של קיבת השרוול ובמורפולוגיה של המעי הדק.
  4. צבעו את דגימות הכבד בצביעת המטוקסילין-אאוזין (HE) וצביעת O אדום שמן, ואספו את דגימות הדם לזיהוי כולסטרול כולל (TC), טריגליצרידים (TG) וחומצות שומן חופשיות (FFA).

5. ניתוח סטטיסטי

  1. הביטו את כל המשתנים הרציפים (משקל גוף, צריכת מזון, יחס מעבר במעי הדק, רמות סוכר בדם ופרמטרים סרולוגיים) כסטיית תקן ממוצעת ±.
  2. ניתוח נתוני משקל גוף לאורך זמן וצריכת מזון באמצעות מדדים חוזרים דו-כיווניים של ANOVA (גורמים: קבוצה וזמן).
  3. ניתוח יחסי מעבר במעי הדק ופרמטרים סרולוגיים באמצעות ANOVA חד-כיווני.
  4. לנתוני בדיקת סבילות גלוקוז תוך-פריטונית (ipGTT) ובדיקת סבילות לאינסולין (ITT), חשבו את השטח מתחת לעקומה (AUC) עבור כל נבדק והשוו את ערכי AUC הקבוצתיים באמצעות ANOVA חד-כיווני.
  5. בצע השוואות זוגיות לאחר הוק עם תיקון בונפרוני לאחר תוצאות ANOVA משמעותיות.
  6. הגדר מובהקות סטטיסטית כ-p < 0.05. בצע את כל הניתוחים הסטטיסטיים באמצעות GraphPad Prism 9 (GraphPad Software, סן דייגו, קליפורניה, ארה"ב).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

הקריטריון להצלחת הניתוח הוגדר כעכברים ששרדו יותר מ-4 שבועות לאחר הניתוח מבלי לחוות סיבוכים חמורים. מקרי מוות שהתרחשו לאחר השבוע הרביעי לאחר הניתוח מיוחסים לסיבוכים. במהלך 12 שבועות רצופים של תצפית לאחר הניתוח, נרשם מקרה מוות אחד בקבוצת ה-SC ביום ה-24 לאחר הניתוח עקב זיהום פצע ובטן שנגרם מתפרים, בעוד תשעת העכברים הנותרים שרדו עד השבוע ה-12. בקבוצת ה-SS, סך הכל חמישה עכברים מתו, כאשר נקודות המוות התרחשו בימים 5, 7 ו-12 לאחר הניתוח, וכן בשבועות 7 ו-12 לאחר הניתוח. שני מקרי המוות הראשונים יו...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

מודל SG של עכברים הוקם באמצעות קליפסים חד-פעמיים, מה שהוביל להליך כירורגי פשוט, יעיל וניתן לשחזור. הטכניקה המבוססת קליפס הראתה בעקביות יעילות טיפולית הדומה לזו של מודל SG המבוסס תפר קונבנציונלי, תוך הפחתת זמן ניתוח ושיפור שיעורי ההישרדות לאחר הניתוח.

טכניקת הניתוח של מודל תפר SG בעכבר אינה מורכבת מטבעה, ורבים מהמנתחים המנוסים בתפירת כלי דם יכולים לבצע הליך זה בהצלחה. סקירה שכללה 82 מחקרים דיווחה על שיעור תמותה ממוצע לאחר ניתוח של 17% בדגם SG1...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

למחברים אין ניגודי עניינים להצהיר עליהם.

תודות

עבודה זו נתמכה על ידי קרן המדע הטבעי של מחוז גואנגדונג (2021A1515011261), קרן המחקר הבסיסי והיישומי של גואנגג'ואו (2024A03J0659) ופרויקט מדעי וטכנולוגיית הבריאות של גואנגג'ואו (20251A011020).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
פתרון אנרדיפרוספריךHC-3566עיקור עור החזה והבטן
75% אלכוהולמקליןE885996-500 מ"לנקה את שולחן הניתוחים
מכונת הרדמה לבעלי חייםיויאןביויויאן-ABSציוד הרדמה לעכברים
אפליקטורהאנגג'ואו קאנגג'יΦ 10 מ"מ ופעמים; 330 מ"ממפעיל קליפס חד-פעמי
קליפס קשירה חד-פעמיהאנגג'ואו קאנגג'יKJ-JZJ02XLצור שרוול קיבה
עיפרון אלקטרוכירורגייויאןביוג'מיני (מופעל על סוללה)המוסטזיס אלקטרוקואגולציה במהלך הניתוח.
להבטיחמעבדות אבוטH20181147דיאטה נוזלית
גלוקומטר ורצועות בדיקהACCU-CHEKהדריך אותיניטור סוכר בדם
תוכנת GraphPadסן דייגו, קליפורניה, ארה"בGraphPad Prism 9סטטיסטיקות וניתוח נתונים
כרית חימוםRTtechRT-jr01שמרו על טמפרטורת גוף חמימה לעכבר במהלך הניתוח
דיאטה עתירת שומןריסרץ' דיאטס, בע"מD1249260 קלורי אחוז שומן
איזופלוראןהנעה אחוריתR510-22תרופות הרדמה
מלוקסיקאםאלדיןM129228-25 גרםתרופות משככות כאבים לאחר ניתוח
כלים מיקרוכירורגייםביוטייםFS500ביצוע ניתוחי בעלי חיים
רטרקטור עכברצ'יו פוקCP-ckqמשיכה ניתוחית בטנית בעכברים
תפרים כירורגייםג'ינחואן מדיקלCR537/KCR631תפרים כירורגיים

מקורות

  1. Ghiassi, S., Morton, J. M. Safety and efficacy of bariatric and metabolic surgery. Curr Obes Rep. 9 (2), 159-164 (2020).
  2. Lutz, T. A., Bueter, M. The use of rat and mouse models in bariatric surgery experiments. Front Nutr. 3, 25(2016).
  3. Kucharczyk, J., Nestoridi, E., Kvas, S., Andrews, R., Stylopoulos, N. Probing the mechanisms of the metabolic effects of weight loss surgery in humans using a novel mouse model system. J Surg Res. 179 (1), e91-e98 (2013).
  4. Yin, D. P., et al. Assessment of different bariatric surgeries in the treatment of obesity and insulin resistance in mice. Ann Surg. 254 (1), 73-82 (2011).
  5. Bachmann, R., Meile, T., Lange, J., Widmayer, P., Königsrainer, A., Küper, M. A. Surgical technique of a vertical sleeve gastrectomy in mice. J Investig. Surg. 26 (5), 261-265 (2013).
  6. Hao, Z., Townsend, R. L., Mumphrey, M. B., Morrison, C. D., Münzberg, H., Berthoud, H. -R. RYGB produces more sustained body weight loss and improvement of glycemic control compared with VSG in the diet-induced obese mouse model. Obes Surg. 27 (9), 2424-2433 (2017).
  7. Bruinsma, B. G., Uygun, K., Yarmush, M. L., Saeidi, N. Surgical models of Roux-en-Y gastric bypass surgery and sleeve gastrectomy in rats and mice. Nat Protoc. 10 (3), 495-507 (2015).
  8. Chambers, A. P., et al. The effects of vertical sleeve gastrectomy in rodents are ghrelin independent. Gastroenterology. 144 (1), 50-52.e5 (2013).
  9. Schlager, A., et al. A mouse model for sleeve gastrectomy: applications for diabetes research. Microsurgery. 31 (1), 66-71 (2011).
  10. Jahansouz, C., Staley, C., Bernlohr, D. A., Sadowsky, M. J., Khoruts, A., Ikramuddin, S. Sleeve gastrectomy drives persistent shifts in the gut microbiome. Surg Obes Relat. Dis. 13 (6), 916-924 (2017).
  11. Wei, J. -H., Yeh, C. -H., Lee, W. -J., Lin, S. -J., Huang, P. -H. Sleeve gastrectomy in mice using surgical clips. J Vis Exp. (165), e60719(2020).
  12. Stevenson, M., Lee, J., Lau, R. G., Brathwaite, C. E. M., Ragolia, L. Surgical mouse models of vertical sleeve gastrectomy and Roux-en Y gastric bypass: a review. Obes Surg. 29 (12), 4084-4094 (2019).
  13. Frohman, H. A., Rychahou, P. G., Li, J., Gan, T., Evers, B. M. Development of murine bariatric surgery models: lessons learned. J Surg Res. 229, 302-310 (2018).
  14. Kawano, Y., Ohta, M., Hirashita, T., Masuda, T., Inomata, M., Kitano, S. Effects of sleeve gastrectomy on lipid metabolism in an obese diabetic rat model. Obes Surg. 23 (12), 1947-1956 (2013).
  15. Yousaf, M. S., et al. Short-Term Outcomes of Laparoscopic Sleeve Gastrectomy for Weight Loss and Gastroesophageal Reflux Disease. Cureus. 17 (1), e76943(2025).
  16. Aktekin, A., Kazan, K., Gunes, P., Yekrek, M., Muftuoglu, T., Saglam, A. Hematological, biochemical, and immunological laboratory and histomorphological effects of sleeve gastrectomy on female rats. Indian J Surg. 77 (S2), 557-562 (2015).
  17. Himel, A. R., et al. Feature article: splenectomy fails to attenuate immuno-hematologic changes after rodent vertical sleeve gastrectomy. Exp Biol Med. (Maywood). 244 (13), 1125-1135 (2019).
  18. Blok, N. B., et al. Towards a better mouse model of vertical sleeve gastrectomy. Surg Obes Relat. Dis. 21 (11), 1198-1209 (2025).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

צור קשר
המלצה לספרייה

פרטיות

תנאי שימוש

מדיניות

2026 © זכויות יוצרים MyJoVE Corporation. כל הזכויות שמורות.