הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

מודל פגיעה תרמית באמצעות תדר רדיו מונופולרי על עצב סיאטי בעכברים

201 צפיות

⸱

DOI:

10.3791/69998

⸱

3 באפריל 2026

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Pain Management, Xuanwu Hospital, Capital Medical University, 2National Medical Center for Neurological Diseases, 3National Clinical Research Center for Geriatric Diseases

* These authors contributed equally

במאמר זה

סיכום

מחקר זה יישם מערכות תדרי רדיו על עצבי הסיאטיקה של עכברים, וקבע מודל אבלציה בתדר רדיו לפגיעת עצבים תרמיים. גישה זו פותרת בעיות של שליטה במודלים של פגיעות תרמיות עצביות היקפיות בעכברים, ומספקת שיטת מידול מעשית למחקר על תיקון פגיעות עצביות וכאב נוירופתמי.

תקציר

פגיעה בעצב ההיקפי גורמת לעיתים לכאב נוירופתי ומפעילה תהליכי תיקון עצבים. בעוד שמודלים של פגיעות פיזיות נשלטות כבר מבוססים היטב, מודלים קיימים של פגיעות תרמיות נשארים חקרניים ומפגינים שליטה ירודה. בפרקטיקה הקלינית, מערכות אבלציה בתדר רדיו (RFA) משמשות לעיתים קרובות כדי לגרום לפגיעה תרמית ברקמות ובעצבים. RFA היא שיטה טיפולית שהוכחה כחוסמת ביעילות העברת כאב על ידי גרימת נזק תרמי לעצבים. היקף האבלציה ניתן לשינוי על ידי התאמת פרמטרים מסוימים, כמו גם רמת הנימול והפרעה מוטורית באזור התפלגות העצבים הפגוע. מחקר זה השתמש במערכת רדיו מונופולרית ליצירת מודל יציב וניתן לשליטה בפגיעת עצבים בעצב הסיאטי של עכברים על ידי יישום 75°C למשך 30 שניות. נרשמה עלייה משמעותית בסף הגמילה המכנית (MWT) בין הימים 7–14 לאחר הניתוח, כאשר ההחלמה התרחשה עד יום 28. מחקר זה מטפל בפער הנוכחי במודלים של פגיעות עצב RFA, משחזר את הנזק העצבי שנצפה קלינית לאחר הליכי RFA, ומספק מסגרת מתודולוגית למחקרים הבאים על פגיעות עצביות הנגרמות מ-RFA.

מבוא

כאב נוירופתי מציב אתגרים מתמשכים בניהול קליני, שכן מנגנוני הכאב שלו ממשיכים להיחקר. כדי לחקור את המנגנונים המולקולריים והתאים של כאב נוירופתי, קשירת עצב עמוד השדרה (SNL)1, פגיעת התכווצות כרונית (CCI)2, קשירת עצב סיאטי חלקית (pSNL)3, וניתוק עצב סיאטי (SNT)4, ופגיעת עצב חסונית (SNI)5 שימשו בהצלחה במכרסמים לסימולציה של פגיעה עצבית פיזית פריפרית. כדי לשפר את השליטה והיציבות של המודל, מחקרים קודמים הציעו שיפורים, כגון מדדי לחץ ונזק סלקטיבי, שיושמו.

למרות שטכנולוגיית תדרי הרדיו הניבה תוצאות קליניות חיוביות, היא גם קשורה למספר תופעות לוואי. לדוגמה, אבלציה בתדר רדיו (RFA), המשמשת להמיסטזיס במהלך ניתוח6, עלולה לגרום לנזק תרמי לרקמות הסובבות ולהוות סיכון לפגיעה תרמית בעצבים היקפיים בשל הטמפרטורה הגבוהה של קצה7 של המכשיר. בנוסף, RFA לטיפול בנוירלגיה טריגמינלית8, נוירלגיה פוסט-הרפטית9 ומצבים נוירופתיים נוספים מפחיתים כאב ראשוני לאחר ניתוח, אך מלווה בנימול ממושך לאחר ניתוח באזור המעורבב, היפראלגזיה שטחית ואי נוחות נוספת10,11. כתוצאה מכך, המחקר על פגיעה תרמית לעצבים היקפיים זכה בהדרגה לתשומת לב. עם זאת, מודלים קיימים של בעלי חיים אינם מסוגלים לשלוט בטמפרטורה, משך ומיקום הפציעה התרמית במדויק, ובכך מגבילים את האחידות בחומרת הפציעה.

מחקרים קודמים השתמשו במוטות מוליכים בחום המחוברים לאמבטיית מים בטמפרטורה קבועה12 או למשאבת מים חמים להזרקת מים חמים לצינור גומי במגע ישיר עם עצב13, במטרה לדמות את ההשפעות התרמיות של RFA על פגיעת עצב. עם זאת, מודלים קודמים של פגיעות תרמיות גרמו רק לנזק תרמי, ובכך ביטלו את השפעת זרם התדרי הרדיו והפרמטרים שלו על העצבים. האם הנזק מ-RFA נובע אך ורק מהשפעות תרמיות, או שמא גורמים כמו שינויים בפרמטרים בתדר רדיו משפיעים גם הם על עצבים, נותר לבחון. המחסור הנוכחי במודלים של בעלי חיים המשתמשים ישירות במערכות קרישה תרמית בתדר רדיו לפגיעות עצביות מעכב את התקדמות המחקר על נזקי עצבים הקשור ל-RFA. מחקר זה השתמש ישירות במערכת RFA מונופולרית לסימולציה של פגיעת עצבים הקשורה להליכי RFA בהקשרים קליניים, על ידי גרימת פגיעת RFA לעצבים הסיאטיים של עכברים. הוא מספק התייחסות מתודולוגית למחקר בסיסי על פגיעת RFA לעצבים פריפריים.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

ניסויים בבעלי חיים אושרו על ידי ועדת האתיקה של בעלי החיים של מרכז בעלי החיים הניסיוניים, בית החולים שואנו, אוניברסיטת קפיטל מדיקל, ונערכו בהתאם למדריך NIH לטיפול ושימוש בבעלי חיים במעבדה14. עכברים בוגרים C57BL/6 (8–10 שבועות, 20–25 גרם) אוחסנו בקבוצות (4–5 בכל כלוב) בתנאי סביבה מבוקרים (22 ± 2 מעלות צלזיוס, 50%–60% לחות, מחזור אור/חושך של 12 שעות עם אורות דלוקים בשעה 07:00) עם גישה חופשית לאוכל מכרסמים ומים סטנדרטיים. כל ההערכות ההתנהגותיות בוצעו במהלך שלב האור בין 08:00 ל-12:00. פרטי התגובות, התוכנה והציוד מופיעים בטבלת החומרים.

1. הרדמה והכנת עכברים

  1. הרדמה עכברים באמצעות הזרקה תוך-פריטונאלית של תמיסת טריברומואתנול של 20 מ"ג/מ"ל במינון של 0.2 מ"ל ל-10 גרם משקל גוף.
  2. כסו את שתי העיניים במשחת עיניים באמצעות אפליקטור צמר גפן.
  3. הניחו את העכברים במיקום הצידי השמאלי. הסר את השיער בצד ימין של הגוף (שטח של 1 ס"מ × 1 ס"מ) עם סכין גילוח חשמלית (איור 1).
    הערה: שלב זה מגדיל את שטח המגע בין הגוף ללוח השלילי של המעגל כדי להקל על הפחתת התנגדות המעגל.
  4. הניחו חלק מגופה של העכבר במגע עם פלטת האלקטרודה השלילית המתכתית בכיוון צד ימין. יש להניח מספר טיפות של נוזל יוני (0.9% NaCl או תמיסת רינגר מותאמת; ראו טבלת חומרים להרכב) על אזור המגע בין הגוף ללוח כדי לשפר את המוליכות החשמלית.
    הערה: ודאו שהראש והפנים נשארים מחוץ ללוח השלילי כדי למנוע חשיפה לא מכוונת לזרם לעיניים או לאיברים אחרים.
  5. אבטח את הגפה האחורית השמאלית במצב כלפי מעלה כאשר הברך מכופפת באמצעות סרט דבק על פלטת האלקטרודה השלילית. הסר שיער מאזור הירך השמאלית וחטא את אתר הניתוח שלוש פעמים עם 75% אתנול.
  6. וודא עומק הרדמה מספק לפני המשך על ידי אימות היעדר תגובת נסיגה לגירוי צביטה שהופעל על הגפה האחורית או הזנב.
    הערה: הימנעו ממתן חומרי הרדמה מקומיים (כגון לידוקאין) או תרופות אנטי-דלקתיות שאינן סטרואידיות (כגון אצטמינופן) במהלך התקופה הפרי-ניתוחית, שכן תרופות אלו עלולות להשפיע על הערכות נוירו-התנהגותיות לאחר הניתוח.

2. ניתוח אבלציה בתדר רדיו

  1. השתמש בעצם הירך כהפניה. השתמש במספריים מיקרו כדי לחתוך חתך עור באורך 1 ס"מ בכיוון הציר הארוך של עצם הירך, עם תרגום צידי של 0.5 ס"מ לצד הזנב (איור 2).
  2. נתח באופן ישיר את שריר הבייספס פמוריס (BFM) לאורך חתך העור וחפש את גזע העצב הסיאטי הראשי באמצעות מלקחיים. העצב הסיאטי מתפצל סמוך למפרק הברך (איור 3).
  3. השתמשו במלקחיים מיקרו כדי לנתק את גזע העצב הסיאטי מהרקמה הסובבת, כ-2 מ"מ מעל הפיצול של העצב הסיאטי, לאורך של כ-5 מ"מ. הימנעו מפגיעה בכלי דם במהלך הפרדה קהה.
    הערה: במקרה של פגיעה וסקולרית מקרית, יש להשתמש במקלון צמר גפן סטרילי כדי לספוג את הדם ולהפעיל לחץ מתאים כדי לעצור את הדימום. המשך את הניתוח לאחר שלא תהיה דליפת דם נוספת.
  4. חבר את מחט הקרישה של RFA למכשיר הטיפול בתדר רדיו. הנח את קצה המחט שטוח על רקמת השריר כדי לבדוק את ההתנגדות. אם ההתנגדות גבוהה מ-1 kΩ, הוסף נוזל יוני בין גוף העכבר ללוח השלילי באמצעות מטפטפת עד שההתנגדות יורדת מתחת ל-1 kΩ.
  5. הרימו בעדינות את עצב הסיאטיקה המופרד עם יד זכוכית של דמיקה. הניחו את מחט ה-RFA מתחת לעצב הסיאטי, כאשר קצה המתכת החשוף ממוקם במרחק 3 מ"מ מהפיצול של עצב הסיאטי (איור 4).
  6. הגדר את פרמטרי המכשיר הטיפולי בתדר רדיו כך: מצב קרישה תרמית, 75 °C, 30 שניות, תדר 2 הרץ, ורוחב פולס של 1 מילישניות. הפעל את אספקת אנרגיית RFA.
  7. משוך בעדינות את מחט ה-RFA. הזזת את עצב הסיאטי באמצעות פינצטה להרמת רקמת השריר. סגור את השריר עם תפר PGA (6-0) שניתן לספוג חומצה פוליגליקולית. סגור את חתך העור עם תפר PGA נספג 4-0.
  8. לאחר הניתוח, הניחו את העכברים על שמיכת מים חמים בסיבוב (38 מעלות צלזיוס) או כרית חימום מבוקרת תרמוסטטית (37–38 מעלות צלזיוס) מכוסה בנייר טואלט או מגבת כדי לאפשר לשיער להתייבש ולמנוע נזק מיידי מחום.
  9. החזירו את העכברים לכלוב והמתינו להחלמה מההרדמה. בדוק באופן שגרתי את שלמות החתך מדי יום, ועוקב אחרי צריכת המזון, צריכת המים ומצב הגוף הכללי.

3. קבוצת ניסוי

  1. קבוצת RFA: לבצע את פרוטוקול הניתוח RFA המלא כפי שמתואר בשלבים 2.1–2.9.
  2. קבוצת ה-Sham: מבצעים את אותם הליכים כמו קבוצת RFA (שלבים 2.1–2.5 ו-2.7–2.9), אך אינם מפעילים את מערכת ה-RFA בשלב 2.6. שמרו על מחט ה-RFA במקומה מתחת לעצב הסיאטי למשך 30 שניות ללא הפעלת זרם, ואז המשיכו לשלב 2.7.
    הערה: קבוצת שאם מפקחת על טראומה כירורגית, הרדמה, מניפולציה עצבית והנחת המחטים ללא תלות בפגיעה תרמית.

4. הערכת פון פריי ל-MWT

  1. לפני כל בדיקה, מקמים את העכברים באקראי בפלטפורמת הבדיקה של פון פריי. אפשר להסתגלות למשך 15 דקות עד שההתנהגות החקירתית תיפסק.
    הערה: הפלטפורמה מורכבת מרשת מתכת עם חורים בקוטר 0.6 ס"מ ×-0.6 ס"מ בתחתית וכמה מיכלים שקופים אדומים לעכברים, הממוקמים במיכלים שונים מבלי להפריע זה לזה.
  2. בצע את הערכת פון פריי באמצעות שיטת למעלה ולמטה15. הפעילו את חוט הסיבים של פון פריי כדי לגרות את מרכז סוליית כף הרגל האחורית השמאלית בכוח מספיק כדי לגרום לכיפוף קל. החזק למשך 3 שניות או עד שתתרחש תגובת גמילה,16.
    הערה: התחל בבדיקות עם פילמנט 0.4 גרם. הניחו את החוט הגבוה הבא לאחר תגובה שלילית, או את החוט הנמוך הבא לאחר תגובה חיובית. המשך לארבע בקשות נוספות לאחר שינוי הכיוון הראשון. בפועל, חוט ה-2g נקבע כגבול העליון במחקר זה, משום שבכוח זה, סיב פון פריי הרים את כף הרגל הקדמית מהקרקע מבלי להראות תגובות בריחה או נסיגה.
  3. רשמו תגובות וחישבו את ה-MWT של 50% באמצעות מחשבון שיטת למעלה-למטה (שיטת למעלה-למטה לניסויי פון פריי, https://bioapps.shinyapps.io/von_frey_app/).
  4. ביצעו בדיקות פון פריי במצב הבסיסי (לפני הניתוח) ובימים שלאחר הניתוח 7, 14, 21, 28 ו-35.

5. איסוף רקמות DRG וצביעת אימונופלואורסצנציה

  1. ביום השביעי לאחר הניתוח, אספו את ה-L4–L6 DRG מקבוצות RFA ו-Sham.
  2. מקבע את הרקמות ב-10% סוכרוז-פרפורמלדהיד בטמפרטורה של 4°C למשך 6–12 שעות.
  3. הקפיא את הרקמות ב-30% סוכרוז-PBS בטמפרטורה של 4°C במהלך הלילה.
  4. הטמיעו את הרקמות בתרכובת טמפרטורת חיתוך אופטימלית17.
  5. חתכו חתכי קירור של 13 מיקרון וחדרו את החתכים עם סורפקטנט לא יוני.
  6. חוסם באמצעות תגובת חוסם ודגר במשך הלילה עם הנוגדן הפוליקלונלי בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס.
  7. לאחר הכביסה, דגרו עם הנוגדן המשני במשך שעתיים בטמפרטורת החדר.
  8. התקן עם מדיום אנטיפייד.

6. ניתוח סטטיסטי

  1. מציגים נתונים רציפים בהתפזרות תקינות כממוצע ± שגיאת תקן של הממוצע (SEM).
  2. בצע השוואות בין קבוצות באמצעות מבחן t לדגימות בלתי תלוי.
  3. ניתוח השוואות בתוך קבוצות בנקודות זמן שונות באמצעות ניתוח שונות במדידות חוזרות (ANOVA).
  4. החלו תיקון בונפרוני להשוואות זוגיות לאחר הוק.
  5. עבדו את כל הנתונים באמצעות תוכנה סטטיסטית וקבעו מובהקות סטטיסטית ב-P < 0.05.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

הקמת מודל מוצלחת אושרה הן על ידי מדדים תוך-ניתוחיים והן לאחר הניתוח. בסיום ה-RFA (75 °C, 30 שניות), נצפתה הידבקות קלה בין קצה מחט ה-RFA לעצב הסיאטי בעת הגמילה. הידבקות זו נובעת מדנטורציה מקומית של חלבונים וקרישה באתר המגע, ומרמזת על אספקת אנרגיה תרמית מתאימה יחד עם מגע עצבי ישיר. היעדר הידבקות עשוי להעיד על הזזת המחט במהלך ההליך, מה שמוביל לפגיעה עצבית לא עקבית או לא אופטימלית.

לאחר הניתוח, עכברים בקבוצת RFA הפגינו עלייה משמעותית ב-MWT בימים 7 ו-14 בהשוואה לקו...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

עם ההתפתחות המהירה של ניתוחים זעיר-פולשניים, טכנולוגיית תדר הרדיו הפכה לנפוצה יותרויותר 6,7,18. ככל שטכנולוגיית תדרי הרדיו התרחבה בפרקטיקה הקלינית, מחקרים קשורים סייעו לאימוצה הרחב יותר. עם זאת, השפעות זרם התדר הרדיו על הרקמות דורשות בדיקה נוספת, במיוחד לאחר יישום טכנולוגיית תדר הרדיו לטיפול בכאב נוירופתי, ואיכות החיים של מטופלים רבים מושפעת מסיבוכים כמו פרסטזיה לאחר הליך ה-RFA.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

המחברים מצהירים שאין להם אינטרסים מתחרים.

תודות

מחקר זה נתמך על ידי תוכנית התכנסות הכישרונות של בית החולים שואנוו (HZ2025PYDTR009) וקרנות Capital's for Health Improvement and Research (CFH2024-2-2011).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
תפר 4-0ג'ינחואן מדיקלC412סגור את העור
תפר 6-0ג'ינחואן מדיקלKCR631סגור את שכבת השרירים
נוגדן משני אלקסה פלואר 488InvitrogenA-11008נוגדן משני
נוגדן פוליקלונלי לארנב ATF3Novus BiologicalsNBP1-85816נוגדן פוליקלונלי
מלקחיים עדינים מעוקליםביוטכנולוגיה ביוטייםFS031שריר חתך ופאשיה
מדיום הרכבה נגד פייד DAPIביוטכנולוגיה ביוטייםP0131מדיום אנטיפייד
מחוג דקות זכוכיתיויאן אינסטרומנטסBLFZ10הרם את העצבים
פריזמת GraphPadגרפיפד סופטור, LLCגרסה 9.0תמונות נתוני פלט
מספריים מיקרוביוטכנולוגיה ביוטייםFS217חתך עור
Modified Ringer' פתרון sהכנה עצמיתלא זמיןנתרן לקטט 3.10 גרם לליטר; NaCl 6.00 גרם לליטר; KCl 0.30 גרם לליטר; CaCl2· 2H2O 0.20 גרם לליטר
מחזיק המחטיויאן אינסטרומנטסY32010מחטי החזקה
פתרון חסימת QuickBlockביוטכנולוגיה ביוטייםP0260תגובת חסימה לאימונופלואורסצנציה
מכשיר טיפולי בתדר רדיוקוסמן מדיקלRFG-1Aמערכת תדרי רדיו
טרוקר אלקטרודה תרמו-קרישה בתדר רדיוקוסמן מדיקלTCD-10מחט RF מבודדת
הזרקת רינגר נתרן לקטטסצ'ואן  קלון  פארמה Co.,  בע"מ86902180001566נוזל יוני להפחתת העמידות
סטטיסטיקות SPSSIBM Corpגרסה 27.0תוכנת ניתוח סטטיסטי
מלקחיים ישרים ועדיניםביוטכנולוגיה ביוטייםFS027שריר חתך ופאשיה
חוט סיבים פון פריידנמיק גלובלאסתזיו סמס-ויינשטייןמבחן התנהגות

מקורות

  1. Schäfers, M., Cain, D. Single-Fiber Recording: in vivo and in vitro preparations. Methods in molecular medicine. Luo, Z. D. , Humana Press. Totowa, NJ. 155-166 (2004).
  2. Vissers, K., Adriaensen, H., De Coster, R., De Deyne, C., Meert, T. F. A chronic-constriction injury of the sciatic nerve reduces bilaterally the responsiveness to formalin in rats: A behavioral and hormonal evaluation. Anesth Analg. 97 (3), 520-525 (2003).
  3. Malmberg, A. B., Basbaum, A. I. Partial sciatic nerve injury in the mouse as a model of neuropathic pain: Behavioral and neuroanatomical correlates. Pain. 76 (1-2), 215-222 (1998).
  4. Moore, K. A., et al. Partial peripheral nerve injury promotes a selective loss of GABAergic inhibition in the superficial dorsal horn of the spinal cord. J Neurosci. 22 (15), 6724-6731 (2002).
  5. Cichon, J., Sun, L., Yang, G. Spared nerve injury model of neuropathic pain in mice. Bio Protoc. 8 (6), e2777(2018).
  6. Smith, T. L., Smith, J. M. Electrosurgery in otolaryngology–head and neck surgery: Principles, advances, and complications. Laryngoscope. 111 (4 Pt 1), 769-780 (2001).
  7. Advincula, A. P., Wang, K. The evolutionary state of electrosurgery: Where are we now. Curr Opin Obstet Gynecol. 20 (4), 353-358 (2008).
  8. Habib, H. E. A. A., Ellakany, M. H., Elnoamany, H., Elnaggar, A. G. Microvascular decompression versus radiofrequency ablation in trigeminal neuralgia of the maxillary and mandibular divisions. Asian J Neurosurg. 19 (2), 221-227 (2024).
  9. Zhang, H., Ni, H., Liu, S., Xie, K. Supraorbital nerve radiofrequency for severe neuralgia caused by herpes zoster ophthalmicus. Pain Res Manag. 2020, 3191782(2020).
  10. Wu, C., Lv, Y., Wang, C., Zhong, C. Efficacy of semilunar ganglion radiofrequency thermal coagulation in moderate and severe trigeminal postherpetic neuralgia and its impact on serum IL-1β and IL-6 levels. Eur J Med Res. 30 (1), 1005(2025).
  11. Gazelka, H. M., et al. Incidence of neuropathic pain after radiofrequency denervation of the third occipital nerve. J Pain Res. 7, 195-198 (2014).
  12. Dong, Y., et al. Neuropathologic damage induced by radiofrequency ablation at different temperatures. Clinics. 77, 100005(2022).
  13. Konno, S., et al. Acute thermal nerve root injury. Eur Spine J. 3 (5), 299-302 (1994).
  14. National Research Council. Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. , 8th ed, Natl. Acad. Press. Washington, DC. (2011).
  15. Chaplan, S. R., Bach, F. W., Pogrel, J. W., Chung, J. M., Yaksh, T. L. Quantitative assessment of tactile allodynia in the rat paw. J Neurosci Methods. 53 (1), 55-63 (1994).
  16. Christensen, S. L., et al. Von Frey testing revisited: Provision of an online algorithm for improved accuracy of 50% thresholds. Eur J Pain. 24 (4), 783-790 (2020).
  17. He, L., et al. A procedure for mouse dorsal root ganglion cryosectioning. J Vis Exp. (195), e65232(2023).
  18. Odell, R. C. Electrosurgery: Principles and safety issues. Clin Obstet Gynecol. 38 (4), 610-621 (1995).
  19. Zinder, D. J. Common myths about electrosurgery. Otolaryngol Head Neck Surg. 123 (4), 450-455 (2000).
  20. Al-Zain, F., Lemcke, J., Killeen, T., Meier, U., Eisenschenk, A. Minimally invasive spinal surgery using nucleoplasty: A 1-year follow-up study. Acta Neurochir (Wien). 150 (12), 1257-1262 (2008).
  21. Yu, X., et al. Changes of functional, morphological, and inflammatory reactions in spontaneous peripheral nerve reinnervation after thermal injury. Oxid Med Cell Longev. 2022, 9927602(2022).
  22. Boerboom, A., Dion, V., Chariot, A., Franzen, R. Molecular mechanisms involved in Schwann cell plasticity. Front Mol Neurosci. 10, 220(2017).
  23. Zhu, J., Luo, G., He, Q., Yao, M. Evaluation of the efficacy of unipolar and bipolar spinal dorsal root ganglion radiofrequency thermocoagulation in the treatment of postherpetic neuralgia. Korean J Pain. 35 (1), 114-123 (2022).
  24. Chang, M. C., Cho, Y. W., Ahn, S. H. Comparison between bipolar pulsed radiofrequency and monopolar pulsed radiofrequency in chronic lumbosacral radicular pain: A randomized controlled trial. Medicine. 96 (14), e6236(2017).
  25. Elemam, E. M., Abdel Dayem, O. T., Mousa, S. A., Mohammed, H. M. Ultrasound-guided monopolar versus bipolar radiofrequency ablation for genicular nerves in chronic knee osteoarthritis pain: A randomized controlled study. Ann Med Surg (Lond). 77, 103680(2022).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

צור קשר
המלצה לספרייה

פרטיות

תנאי שימוש

מדיניות

2026 © זכויות יוצרים MyJoVE Corporation. כל הזכויות שמורות.