פרוטוקול זה מעריך ניקוז לימפה לאחר שבר על ידי שילוב הדמיה אינדוציאנית ירוקה (ICG) קרובה לאינפרא-אדום עם אולטרסאונד, כדי לכמת את ניקוי ה-ICG הפלנטרי ואת הגדלת בלוטות הלימפה הפופליטאלית בעכברים.
הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.
מאמר שיטה
הערכת ניקוז לימפה באמצעות הדמיית ICG אינפרא-אדום קרובה ואולטרסאונד לאחר השבר
* These authors contributed equally
במאמר זה
סיכום
תקציר
שברים טראומטיים מלווים לעיתים קרובות בפגיעה בתפקוד הניקוז הלימפתי. ירידה בניקוז הלימפה ובהתרחבות בלוטות הלימפה לאחר השבר מעידים על תהליכים דינמיים מתמשכים של תגובה דלקתית חריפה וגיוס תאי חיסון. מאמר זה מתאר שיטה שבה הוזרק 6 מיקרוליטר של 0.2 מ"ג/מ"ל אינדוציאנין גרין באופן תוך-עורי לאזור כף הרגל של עכברים שעברו ניתוח מזויף או שבר טיביה. הדמיית פלואורסצנציה קרובה באינפרא-אדום כמותה את אות ה-ICG הפלנטרי ב-0 ו-24 שעות כדי לחשב את קצב הניקוי של 24 שעות כקריאה של ניקוז לימפה של עכברים. אולטרסאונד שימש במקביל לשחזור תלת-ממדי של בלוטות הלימפה הפופליטאליות (PLNs), השוואת נפחי השלטון והערכת הגדלה הנגרמת משבר. התוצאות הראו כי לאחר השבר, קצב הפינוי הלימפה ירד משמעותית, עוצמת הפלואורסצנציה של ICG באזור כף הרגל הייתה גבוהה משמעותית, ונפח ה-PLNs גדל משמעותית. בהשוואה לשיטות קודמות למדידת מערכת הלימפה, כגון חתכים היסטופתולוגיים או לימפוסינטיגרפיה, שלרוב לא מצליחות להשיג תצפית חי, דינמית ורציפה, שיטה זו מראה יציבות ושחזור גבוהות. ראוי לציין כי הוא מאפשר ניטור דינמי בחיים של תפקוד ניקוז לימפה, ומספק תמיכה טכנית איתנה לחקירת שינויים בריפלוקס לימפתי במודלים של שברים.
מבוא
שברים טראומטיים גורמים לעיתים לנזק משמעותי לנפיחות ברקמות, ומגבירים את הסיכון לסיבוכים כמו זיהום, נמק ואי-איחוד עצם 1,2. Grzegorz Szczesny ואחרים הראו כי תפקוד לקוי של ניקוז לימפה, המוביל לבצקת רקמה, קשור לעיכוב בהחלמה3. מחקרים מראים שבמהלך תהליך ההחלמה של השבר, בנוסף לתיקון רקמת העצם, מערכת הלימפה באתר השבר ממלאת גם תפקיד חשוב. כלי הלימפה אחראים לא רק לניקוז נוזל אינטרסטיציאלי ולמניעת נפיחות, אלא גם על ויסות נדידת תאי מערכת החיסון וניקוי פסולת מטבולית. עם זאת, בשלבים המוקדמים של השבר, גורמים פרו-דלקתיים כגון TNF-α, IL-1, IL-6 ופקטור מגרה מושבת מקרופאגים (MCSF) עלולים לפגוע בתאי אנדותל לימפהיים5, מה שמוביל לשינויים פתולוגיים כגון נייוון, בצקת ופיברוזיס6. מחקרים רלוונטיים הראו נוכחות של תאי אנדותל לימפה בעצם ובפריאוסטאום, וכן ברקמות השומן והשרירים הסובבות. בנוסף, ניקוז לימפה משתתף גם בוויסות המיקרו-סביבה של המטומה לאחר שבר; ניקוז לימפה יעיל מסייע להישרדות האוסטאובלסטים ולהתרבות תאי גזע מזנכימליים של מח עצם (BMSCs)7. במהלך שבר, הגורמים הפרו-דלקתיים (TNF-α, IL-1 ו-IL-6) וגורמי הגדילה (TGFβ1 ו-PDGF) המיוצרים על ידי תאי מערכת החיסון באתר הפגוע הם גורמים רגולטוריים חשובים לאפופטוזיס של האוסטאובלסט ולהתרבות BMSC8. חוסיין ארסלאן וחוקרים נוספים אישרו את ההשפעה השלילית של בצקת לימפה על האוסטאובלסטים. ממצאי מחקר אלו מדגישים את התפקיד החשוב של ניקוז הלימפה בריפוי שברים. התקדמות אחרונה בהדמיית פלואורסצנציה של ICG באינפרא-אדום קרוב (NIR) אפשרה תצפית לא פולשנית בזמן אמת על דינמיקת זרימת הלימפה במודלים של בעלי חיים ובבני אדם 9,10,11. טכניקה זו מאפשרת הערכה כמותית של התכווצות כלי הלימפה, מהירות הניקוז ושלמות המסלול10,11. מחקר שהשתמש במודלים של עכברים של דלקת מפרקים ודלקת הראה כי הדמיה ב-ICG-NIR יכולה להבחין בין תגובות לימפה חריפות וכרוניות, ולהדגיש דפוסי ניקוז מובחנים במהלך פגיעת רקמות והחלמה. יתרה מזאת, הוכח כי דימות לימפה של NIR יעיל במעקב אחר התאוששות תפקודית לאחר ניקוז לימפתי ידני ולהערכת יעילות טיפולים ממוקדי לימפה. אולטרסונוגרפיה מספקת שיטה כמותית משלימה להערכת המורפולוגיה והנפח של בלוטות הלימפה המנקזות, וכן בצקת רקמה הקשורה לפגיעה בניקוז לימפתי. השילוב של הדמיית פלואורסצנציה של NIR עם אולטרסאונד מאפשר הערכה מקבילה של תפקוד הלימפה ושינויים אנטומיים, ומספק גישה רב-מודלית לחקר דינמיקת הלימפה ב-vivo. למרות ההכרה הגוברת בתפקיד הקריטי של תפקוד לקוי לימפה בריפוי פוסט-טראומטי, שיטות סטנדרטיות וניתנות לשחזור להערכת ניקוז לימפה לאחר שברים עדיין חסרות. רבות משיטות ההדמיה הנוכחיות הן פולשניות, חסרות רזולוציה מרחבית מספקת, או אינן מצליחות לעקוב דינמית אחר זרימת הלימפה. לכן, פיתוח פרוטוקול המשלב ICG-NIR ודימות אולטרסאונד צפוי לטפל בחסרון המתודולוגי הזה ולספק כלי יעיל להערכת התאוששות לימפה ותרומתה לתיקון העצם.
מחקר זה מציג מסגרת חדשנית המשלבת הדמיית פלואורסצנציה של ICG-NIR עם אולטרסאונד ברזולוציה גבוהה להערכת ניקוז לימפה לאחר שברים בשוק העכברים. גישה זו מאפשרת ניתוח חצי-כמותי של יעילות הניקוז ומודדת את נפח בלוטות הלימפה במהלך תהליך החלמת השבר. יש לו גם כמה מגבלות. ראשית, ICG-NIR משמש בעיקר להערכת כלי לימפה שטחיים, ויכולת ההדמיה שלו למבנים עמוקים יותר מוגבלת. שנית, למרות ששינויים בנפח בלוטות הלימפה מספקים מידע מסוים, הם חסרי ספציפיות ואינם יכולים להחליף באופן מלא מדידות פונקציונליות ישירות. לשיטה זו יש פוטנציאל תרגומי משמעותי ומשפרת את הבנתנו את תפקוד הלימפה בהתחדשות העצם.
הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.
פרוטוקול
הניסויים בבעלי חיים אושרו על ידי ועדת הטיפול והשימוש בבעלי חיים המוסדית של מרכז האורגניזמים המודלים של שנגחאי (אישור מס' NMB-SMP-IACUC-01-0002-R02-03). עכברים זכרים מסוג C57 עם מודל שבר (גיל 6–8 שבועות) שימשו במחקר זה. החומרים והציוד בהם משתמשים מופיעים בטבלת החומרים.
1. טיפול טרום-ניתוחי
- הכניסו את העכברים לפחות לשבוע אחד עם גישה חופשית למזון ולמים. הקצו את בעלי החיים באקראי לקבוצת השבר או השמה באמצעות רשימת אקראיות ממוחשבת.
- הניחו את העכברים על כרית חימום של בעלי חיים ושמרו על טמפרטורה קבועה של 37 מעלות צלזיוס.
- הפעל את מכונת ההרדמה בגז ומניח את העכבר בתא ההשראה למשך 5 דקות עם 2%–3% איזופלורן.
- לאחר ההשראה, יש לעבור ל-1%–2% איזופלורן ולשמור על הרדמה באמצעות קונוס אף עד סוף ההליך.
2. הליך ניסויי
הערה: יש לאחד את הגדרות ההרדמה, מינון ונפח ICG, אתר ועומק ההזרקה, זמן החשיפה, הגדרת ROI ופרמטרי סריקת אולטרסאונד בכל המפגשים כדי למזער שונות בין בעלי חיים.
- הדמיית NIR-ICG
הערה: ההליך שלב אחר שלב להדמיית אינפרא-אדום קרובה ב-ICG מוצג באיור 1.- שוקלים 0.2 מ"ג של ירוק אינדוציאנין (ICG), העברו לצינור מיקרוצנטריפוגה בנפח 1.5 מ"ל, וממוסים אותו ב-1 מ"ל PBS להכנת תמיסת ICG של 0.2 מ"ג/מ"ל. עטוף את הצינור בנייר אלומיניום כדי להגן עליו מהאור.
- הפעל את מערכת ההדמיה ופתח את FluoBeam גרסה 1.46. כוון את גובה המצלמה לפי הצורך.
- הרטיב מטוש כותנה ב-75% אתנול וחטא את פני כף הרגל של כף הרגל האחורית המדומנת.
- באמצעות מיקרוסינג' בנפח 10 מיקרוליטר, שואף 6 מיקרוליטר של תמיסת ICG. הכניסו את המחט כ-1 מ"מ למשטח כף הרגל והזריקו את התמיסה בקצב קבוע עד שהנפח המלא מועבר.
- בתוכנה, הפעל גם את פונקציות ה"מצלמה" וגם את ה"לייזר". לחץ על "modify" כדי ליצור תיקייה חדשה והגדר אותה כתיקיית השמירה. שמור על זמן החשיפה זהה לצילום תמונה ב-0 שעות ו-24 שעות.
- הנח את העכבר מתחת למצלמה במצב שכיבה כשהגפה האחורית המדומה ממוקמת במרכז שדה הראייה. ודא שהגפה האחורית המדומה ממוקמת במרכז שדה הראייה.
- הגדר את זמן החשיפה ל-30 מילישניות ותשמור אותו זהה גם לתמונות 0 שעות וגם ל-24 שעות. לצלם תמונות של אותו ROI בהזרקת כף הרגל ב-0 שעות ו-24 שעות לאחר ההזרקה כדי למדוד את עוצמת אות ICG. שמור על זמן החשיפה זהה ב-0 שעה ו-24 שעות.
- כאשר כלי הלימפה של הגפה האחורית נראים בבירור בשדה הראייה, לחצו על "תמונה" כדי לצלם את התמונות.
- לאחר רכישת התמונה, ייצא את הנתונים והשתמש בתוכנת ניתוח תמונה כדי לכמת את עוצמת הפלואורסצנציה ב-0 שעות ו-24 שעות, ואז מחשב את קצב הפלואורסצנציה.
- פתח את תוכנת ניתוח התמונה.
- ייבא את תמונות הפלואורסצנציה על ידי לחיצה על קובץ → פתיחה, ופתח את תמונת כף הרגל של 0 h המתאימה לאותו בעל חיים ולאותו יום בדיקה (ואז לפתוח את התמונה התואמת של 24 שעות לאחר מכן).
- בחר באובל, ואז לחץ על עריכה → בחירה → הגדרה; הגדר Width = 30 ו-Height = 30, בחר Oval, ולחץ OK.
- הנח את המעגל מעל אזור רקע.
- לחץ על ניתוח → מדידה, ורשם את ערך הממוצע בחלון התוצאות כעוצמת פלואורסצנציה ברקע 0h (FI0hbg).
- הנח את המעגל מעל אתר התצפית היעד, לחץ על ניתוח → מדידה, ורשום את ערך הממוצע בחלון התוצאות כ-FI0h.
- חשב את עוצמת הפלואורסצנציה המתוקנת ב-0 שעות כ-FI0h מתוקן = FI0h − FI0hbg.
- פתח את התמונה התואמת של 24 שעות וחזור על שלבים 3–7 כדי לקבל את ה-FI24h המתוקן.
- חשב את קצב הפינוי באמצעות עוצמת הפלואורסצנציה המתוקנת ברקע כך: קצב ניקוי = [(FI0h − FI0hbg) − (FI24h − FI24hbg)] / (FI0h − FI0hbg) × 100%.
- אולטרסונוגרפיה במצב B
הערה: ההליך שלב אחר שלב להדמיית אולטרסאונד וזיהוי בלוטות הלימפה מוצג ב איור 2.- הפעל את מערכת האולטרסאונד, חבר את הטרנסדוסר, ומקם את העכבר כך שהגפה האחורית תיראה בבירור. בהרדמה רציפה, מניחים את העכבר במצב שכיבה בשלב ההדמיה, כאשר הראש מכוון הרחק מהמפעיל והזנב לכיוון המפעיל. כופפו את הברך כך שהגובה הפופיליטיאלי פונה כלפי מעלה ומעט לרוחב, ומקמו את הטרנסדוסר מעל השקע של הפוסה הפופליטיאלית.
- מרחו ג'ל קישור אולטרסאונד על הגפה האחורית המודגמת.
- סובב את המתמר כך שהזווית שלו תישאר מקבילה לציר האורכי של הגפה האחורית.
- הגדר את מרחק הסריקה ל-4 מ"מ ואת גודל הצעד ל-0.04 מ"מ. זהה את בלוטת הלימפה הפופליטיאלית בתמונה לפי מיקומה האנטומי.
- ייצוב את העכבר על ידי אחיזת הזנב והגפה האחורית המודגם בשתי הידיים. אל תזיז את החיה בזמן שהמשמר סורק.
- לרכוש תמונות. זהה את בלוטת הלימפה הפופליטיאלית כגוש קטן בצורת אליפסה או מעט בצורת שעועית עם אקוגניות בינונית עד נמוכה, מעט נמוכה מזו של השומן הסובב, ומובחן בבירור מהשריר הכהה והמפוספס הסמוך.
- ייצא את התמונות לתוכנת שחזור תלת-ממדי לעיבוד תמונה תלת-ממדי.
- לאחר השלמת הסריקה התלת-ממדית בקונסולת מערכת האולטרסאונד, שמור את הסריקה כמערך נתונים תלת-ממדי, ורשום את זיהוי החיה, קוד הקבוצה ונקודת הזמן (0 שעות / 24 שעות).
- ייצוא את הנתונים הגולמיים מקונסולת הרכישה למחשב הניתוח, תוך שמירה על מבנה התיקיות המקורי ללא שינוי; השתמש בתיקייה אחת לכל חיה בכל נקודת זמן כשאפשר.
- פתח את תוכנת השחזור התלת-ממדי.
- לחץ על "למד" כדי להיכנס למודול, ובחר "ייבוא".
- לחץ על תיקיית הנתונים , בדוק את הנתונים שיש לייבא, ולחץ פעמיים כדי לפתוח אותו.
- במצב התצוגה, בחר "עיבוד תמונה" → "טעינה לתלת-ממד" → "תצוגה רוחבית" → "מדידת עוצמה" → "התחל".
- ודא שכיוון הפרוסה ופרמטרי הצעדים ("ווקסל/מרווח") תואמים להגדרות הרכישה.
- השתמש בגלגל העכבר או מחוון הפרוסה כדי לגלול מהקצה הפרוקסימלי לקצה המרוחק, ולזהות את הפרוסה הראשונה שבה מופיע ה-PLN (הוא בדרך כלל נראה כמבנה אליפטי או בצורת שעועית, מעט היפואקואי יחסית לשומן הסובב, עם גבול יחסית ברור).
- התחל לעקוב אחרי החתך הראשון שבו מופיע ה-PLN על ידי לחיצה שמאלית להתחלת הקונטור.
- עקבו אחרי קו מתאר סגור נקודה אחר נקודה לאורך קצה בלוטת הלימפה, תוך שמירה על הקונטור קרוב ככל האפשר לקפסולה החיצונית והימנעות מהכללת השומן או הלומן הווסקולרי שמסביב.
- השתמש בגלגל העכבר כדי לעבור לפרוסה שמראה את שטח החתך המרבי של ה-PLN, וחזור על שלב 10 להשלמת הקונטור השני.
- השתמש בגלגל העכבר כדי לעבור לפרוסה רגע לפני שה-PLN נעלם, וחזור על שלב 10 כדי להשלים את הקונטור השלישי.
- לחץ על "סיום" כדי ליצור את הנפח המחולק לתלת-ממד ולהוציא את מדידת הנפח.
- הקלט את נפח ה-PLN (מ"מ 3) בפאנל התוצאות.
- בלוח תוצאות המדידה, בחר "ייצוא" ויצא את התוצאות כקובץ .csv או .xls.
- בחר את סוג הקובץ וייצא את התמונה כאזור תמונה של TIFF (.tif).
- שמרו על עיוורון במהלך הניתוח על ידי הצגת קוד בעלי החיים ונקודת הזמן בלבד, מבלי להציג את הקצאת הקבוצה (שבר/שמר), עד שכל חילוץ הנפח הושלם והקבוצות מפוענחות לניתוח סטטיסטי.
- ניתוח סטטיסטי באמצעות תוכנת ניתוח סטטיסטי
- בחר טבלה חדשה וגרף, בחר מקובץ.
- הגדר את פורמט הזנת הנתונים כך שיהיה Enter ערכים משוכפלים, המוערמים לעמודות משותפות.
- הזן את הערכים הגולמיים של 1 / 7 / 14 ו-Sham / Fracture.-פתח את הגרף.
- שנה את סוג הגרף ל-Scatter (ערכים בודדים) + ממוצע + שורות שגיאה.
- פורמט את הציר: הגדר את ציר ה-Y ושנה את כותרת הציר.
- לחץ על ניתוח ובצע ניתוח דו-כיווני.
- השווה בין שאם לשבר בכל נקודת זמן.
- הוסף את תוצאות המובהקות לגרף.
3. טיפול לאחר ניתוח
- בסיום הניסוי, מניחים את העכבר על כרית חימום ותנו לו להתאושש מההרדמה.
- עקבו מקרוב אחרי מצבו, ואם לא נצפו חריגות, החזירו לכלוב להמשך מגורים.
4. הערכה
הערה: בקש חוקר עיוור להקצאת קבוצות לבצע רכישת תמונות וניתוחים כמותיים, ולשמור על כל מערכי הנתונים מקודדים עד להשלמת הניתוחים הסטטיסטיים.
- הדמיית NIR-ICG
- השתמש בתוכנת ניתוח תמונות לביצוע ניתוח כמותי יחסי של עוצמת הפלואורסצנציה בתמונות ICG שנאספו ממשטחי רגל של עכבר.
הערה: נוסחת החישוב לקצב הניקוי של ICG ברפידות עכבר היא כדלקמן:
שיעור פינוי (%) = [(FI0h –FI 24 שעות) / (FI0h)] × 100% - השתמשו באותה שיטה לרישום קצב הניקוי לכל מדידה, וניתחו את הקשר בין קצב הניקוי הלימפתי לזמן באמצעות תוכנת ניתוח סטטיסטי.
- השתמש בתוכנת ניתוח תמונות לביצוע ניתוח כמותי יחסי של עוצמת הפלואורסצנציה בתמונות ICG שנאספו ממשטחי רגל של עכבר.
- אולטרסונוגרפיה במצב B
- ניתוח תמונות במצב B ותלת-ממדי באמצעות תוכנת שחזור תלת-ממדי לקביעת נפח PLN.
- הערך שינויים בניקוז הלימפה ונפח בלוטות הלימפה לאורך זמן על ידי יצירת גרפים של פיזור באמצעות תוכנת ניתוח סטטיסטי.
- ניתוח סטטיסטי
- נתחו מדידות חוזרות שהתקבלו בימים 1, 7 ו-14 באמצעות ANOVA דו-כיווני עם מדידות חוזרות.
הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.
תוצאות
בימים 1, 7 ו-14 לאחר הקמת מודל השבר, עוצמת הפלואורסצנציה של כף הרגל של 24 שעות (FI24h) בקבוצת השבר הייתה גבוהה בעקביות מזו שבקבוצת הניתוח המזויף (איור 3). ניתוח כמותי יחסי של עוצמת הפלואורסצנציה של ICG מתמונות כף הרגל שנאספו הראה כי שיעור ניקוי ה-ICG הלימפתי בקבוצת השבר היה נמוך משמעותית מזה שבקבוצת הניתוח המדומה (p < 0.05) (איור 4). בינתיים, אולטרסונוגרפיה תלת-ממדית במצב B גילתה שנפח בלוטות הלימפה הפופיליטאל...
הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.
דיון
הפרוטוקול כולל כמה פרטים שקל להתעלם מהם. לדוגמה, זמן החשיפה אינו קבוע ויש לקבוע אותו על פי עוצמת הפלואורסצנציה הספציפית. עם זאת, זמן החשיפה של אותה קבוצת עכברים ב-0 ו-24 שעות חייב להישאר עקבי; אחרת, התוצאות עלולות להיות לא אמינות. כאשר משתמשים באולטרסאונד לתצפית, חשוב לכסות במלואם את הגפיים התחתונות של העכבר בחומר קישור, שכן כל אזור חשוף יגרום לעיוות בתמונות המתקבלות כאשר הגשוש סורק את האזורים הללו. במהלך הסריקה, הגפיים התחתונות של העכבר אמורות להישאר יציבות. המפעיל יכול לייצב את העכבר ע...
הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.
גילויים
למחברים אין ניגודי עניינים להצהיר עליהם.
תודות
מחקר זה מומן על ידי הקרן הלאומית למדעי הטבע (82174407 ל-YJZ), תוכנית הכשרת מנהיגי דיסציפלינר של ועדת הבריאות החדשה של שנחאי פודונג (PWRd2020-05), פרויקט מנהיגי המשמעת של ועדת הבריאות החדשה של פודונג (PWRq2020-56), ופרויקט הרפואה סאנמינג של שנזן (מס' SZZYSM202311006).
הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.
חומרים
| שם | חברה | מספר קטלוג | הערות |
|---|---|---|---|
| 10 מיקרוליטר מזרק מיקרו | חברת המילטון | 80330/00 | המזרק המיקרו Hamilton 80330/00 הוא מכשיר מדויק עם קיבולת של 10 L, הכולל מחט מידה 26s, אורך 51 מ"מ, וסגנון נקודה 2. הוא מיועד למסירה מדויקת של נפחים קטנים בכרומטוגרפיה, הזרקת דגימות ויישומי כימיה אנליטית. |
| מערכת הדמיית אולטראסאונד תלת-ממדית Vevo 3100 | Vevo 2100 | ה- Vevo 2100 הוא מערכת הדמיית אולטראסאונד בתדר גבוה למחקר פרה-קליני, המספקת ויזואליזציה בזמן אמת של בעלי חיים קטנים. היא מציעה רזולוציה עליונה למחקרים בקרדיולוגיה, אונקולוגיה וביולוגיה התפתחותית, המשולבת עם תוכנת Vevo LAB לניתוח נתונים. | |
| 75% אתנול | חברת Shanghai Titan Scientific Co., Ltd. | G73537O | אתנול 75% הוא תמיסת חיטוי המשמשת באופן נרחב במעבדות לעיקור משטחים, ניקוי ציוד ואנטיספסיס. הוא הורג ביעילות חיידקים, וירוסים ופטריות באמצעות דנטורציה של חלבונים ונפוץ בהגדרות ביולוגיות וקליניות. |
| מטלית כותנה | חברת Hebei Kangji Medical Equipment Co., Ltd. | 20250303 | מטליות כותנה הן אפליקטורים סטריליים וסופגים המשמשים לאיסוף דגימות מדויק, יישום פתרונות או ניקוי בהליכים רפואיים, אבחוניים ומעבדתיים. הם כוללים מקלות עץ או פלסטיק עם קצות כותנה לטיפול היגייני. |
| חומר צימוד | חברת Tianjin Jinya Technology Development Co., Ltd. | 20241029 | חומר צימוד, המכונה בדרך כלל ג'ל אולטראסאונד, הוא מדיום מבוסס מים המשמש לשיפור העברת האקוסטיקה בין מתמר האולטראסאונד לעור. הוא מבטל כיסי אוויר לצורך הדמיה ברורה, אינו מעצבן, מסופק במיכל של 250 מ"ל לשימוש רפואי ואבחוני. |
| Graphpad Prism | GraphPad Software | Prism 10 | תוכנת גרפים סטטיסטית מדעית המשמשת לניתוח נתונים, הדמיה והצגת נתונים. |
| Image J | המכונים הלאומיים לבריאות | ImageJ 1.54d | תוכנית עיבוד ואנליזה של תמונות מבוססת Java ברשות הציבור המשמשת באופן נרחב לניתוח תמונות ביולוגיות ורפואיות. |
| אינדוציאנין ירוק | חברת Dandong Yichuang Pharmaceutical Co., Ltd. | 8305128 | אינדוציאנין ירוק הוא צבע אניוני מסיס במים המשמש באבחון רפואי לקביעת תפוקת הלב, תפקוד הכבד, זרימת דם בכבד ואנגיוגרפיה עינית. הוא מסופק בבקבוקונים של 25 מ"ג למתן תוך ורידי ומציג פלואורסצנציה בספקטרום האינפרא-אדום הקרוב לצורך הדמיה. |
| איזופלוראן | RWD | R650-IE | איזופלוראן הוא הרדמה כללית נשמפת. יש לו מקדם חלוקת דם/גז קטן. כאשר משתמשים בו להרדמת בעלי חיים, הוא יכול לגרום להרדמה בצורה חלקה, מהירה ונוחה, עם התאוששות מהירה, הרפיה שרירים טובה וללא השפעה מרגשת על מערכת העצבים הסימפתטית. קצב חילוף החומרים של איזופלוראן בכבד הוא נמוך, כך שיש לו מעט רעילות לכבד, ואין תופעות לוואי ברורות אפילו עם שימוש חוזר. כדי למנוע את ההשפעות השליליות של גז פסולת הרדמה על הסביבה ועל אנשי המעבדה, מומלץ להשתמש בו יחד עם מערכת התאוששות גז. |
| מיקרו-איזון | חברת Shanghai Precision Scientific Instrument Co., Ltd. | FA1004B | המיקרו-איזון FA1004B הוא מכשיר ניתוח דיוק גבוה המיועד לשקילה מדויקת של דגימות קטנות, המציע קריאות עד 0.0001 גרם ומתאים ליישומים במעבדה הדורשים מדידות מדויקות במחקר ובקרת איכות. |
| מערכת הדמיה אינפרא-אדום קרובה | אולימפוס | MVX10 | ה- Olympus MVX10 הוא מערכת מיקרוסקופ פלואורסצנטי מגדילה מאקרו המותאמת להדמיה אינפרא-אדום קרובה. הוא מציע ויזואליזציה ברזולוציה גבוהה של דגימות גדולות עם טווח זום רחב, אופטיקה מתקדמת לחדירה עמוקה לרקמות ותאימות עם טכניקות פלואורסצנטיות במחקר ביולוגי וחומרים. |
מקורות
- Zhang, S., Sheng, H., Xu, B., Lao, Y. Acute external iliac artery thrombosis following pelvic fractures: Two case reports. Medicine (Baltimore). 100 (6), e24710(2021).
- Szczesny, G., Olszewski, W. L., Gewartowska, M., Zaleska, M., Gorecki, A. The healing of tibial fracture and response of the local lymphatic system. J Trauma. 63 (4), 849-854 (2007).
- Zheng, Y., et al. A novel therapy for fracture healing by increasing lymphatic drainage. J Orthop Translat. 45, 66-74 (2024).
- Thomas, C., Le, J. T., Benson, E. Managing lymphedema in fracture care: Current concepts and treatment principles. J Am Acad Orthop Surg. 28 (18), 737-741 (2020).
- Jiang, X., Nicolls, M. R., Tian, W., Rockson, S. G. Lymphatic dysfunction, leukotrienes, and lymphedema. Annu Rev Physiol. 80, 49-70 (2018).
- Biswas, L., et al. Lymphatic vessels in bone support regeneration after injury. Cell. 186 (2), 382-397.e24 (2023).
- Dimitriou, R., Tsiridis, E., Giannoudis, P. V. Current concepts of molecular aspects of bone healing. Injury. 36 (12), 1392-1404 (2005).
- Arslan, H., et al. Effect of lymphedema on the recovery of fractures. J Orthop Sci. 12 (6), 578-584 (2007).
- Cheon, H., Kim, S. A., Kim, B., Jeon, J. Y. Investigation of optimizing indocyanine green solution for in vivo lymphatic research using near-infrared fluorescence indocyanine green lymphangiography. Sci Rep. 13 (1), 14966(2023).
- Polomska, A. K., et al. Minimally invasive method for the point-of-care quantification of lymphatic vessel function. JCI Insight. 4 (4), e126515(2019).
- Wang, F., Weng, Y., Geng, J., Zhu, J. A narrative review of indocyanine green near-infrared fluorescence imaging technique: A new application in thoracic surgery. Curr Challenges Thorac Surg. 3, 35-35 (2021).
- Zheng, Y., et al. Lymphatic platelet thrombosis limits bone repair by precluding lymphatic transporting damps. Nat Commun. 16 (1), 829(2025).
- Kim, K. M., Kim, K. Y. Lymphangiogenesis after nonvascularized lymph node transplantation: Lymphangiographic findings in mice and minipigs. PLoS One. 18 (12), e0295836(2023).
- Zhang, P. H., et al. Efficient pulmonary lymphatic drainage is necessary for inflammation resolution in ARDS. JCI Insight. 9 (1), e173440(2024).
- Kenney, H. M., et al. Persistent popliteal lymphatic muscle cell coverage defects despite amelioration of arthritis and recovery of popliteal lymphatic vessel function in TNF-TG mice following anti-TNF therapy. Sci Rep. 12 (1), 12751(2022).
הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.
הדפסות חוזרות והרשאות
