כל ההליכים אושרו על ידי ועדת האתיקה לבעלי חיים של Guangzhou Miles Biotechnology Co., Ltd., עם מספר אישור IACUC-MIS2023076. החברה שהוזכרה היא מרכז ניסויים בבעלי חיים; הניסויים שלנו על בעלי חיים מתבצעים כאן ולכן נתונים לבחינה של ועדת האתיקה של המרכז.
בעלי חיים ועיצוב ניסויים
שלושים עכברי BALB/c (זכר, בן 8 שבועות, במשקל 22 ± 2 גרם) נרכשו מסחרית. קריטריוני השראת ואימות מודל: מודל מיוקרדיטיס המושרה על ידי מעכב נקודות ביקורת חיסונית (ICI) הוקם על ידי הזרקה תוך-ורידית של איפילימומאב (5 מ"ג/ק"ג) וניבולומאב (10 מ"ג/ק"ג) במשך שבועיים רצופים. המינון התרחש כל 3 ימים למשך הדוגמנות הכוללת של שבועיים. פרוטוקול זה הוכח בעבר כגורם לפגיעה לבבית חיסונית משמעותית10. ב-24 שעות לאחר ההזרקה הסופית, נאספו דגימות דם דרך הפלקסוס הרטרו-אורביטלי וצונטריפוגה ב-300 x גרם למשך 15 דקות בטמפרטורה של 4°C לבידוד הסרום; בהמשך, רמות cTnT בסרום נמדדו באמצעות ערכת ELISA ייעודית, שכללה שלבים עוקבים של טעינת דגימות, דגירה מנוגדנים מצומדת ל-HRP, שטיפה אוטומטית ותגובת כרומוגן TMB, כאשר צפיפות האופט נמדדה ב-450 ננומטר לחישוב ריכוזים על בסיס עקומת לוגיסטיקה של ארבעה פרמטרים, וריכוז cTnT ≥10 ng/mL נחשב להקמת מודל מוצלחת.
שישה עכברי מודל עם משקל הגוף הקרובים ביותר וריכוז cTnT חולקו באקראי לשתי קבוצות: קבוצת ביקורת וקבוצת טיפול (n=3 לשתיהן, שכפול ביולוגי). קבוצת הביקורת קיבלה זריקות תוך-ורידיות יומיות של מי מלח רגילים במינון של 5 מ"ל/ק"ג. קבוצת הטיפול קיבלה זריקות יומיות תוך-ורידיות של אמולסיית שומן (OOLE) מבוססת שמן זית 5% במינון של 5 מ"ל/ק"ג דרך וריד הזנב למשך 6 ימים (זהו המינון שבו אנו משתמשים לטיפול קליני במוסד שלנו; המינון הוערך לשימוש בעכברים בהתבסס על יחס שטח הגוף). הבדיקות הבאות בוצעו בחלון תצפית של 6 ימים: תפקוד הלב הוערך בבסיס (יום 0) ואחרי הטיפול (יום 6) באמצעות מערכת הדמיה פוטואקוסטית אולטרסאונדית. הדם נאסף דרך הווריד הרטרואורביטלי ביום השישי, וציטוקינים בסרום נמדדו על ידי ELISA. לאחר המתת חסד לבעלי החיים במנת יתר של הרדמה, רקמת הלב הוקפאה במהירות לניתוח חלבון.
בידוד תאי T
העכברים בקבוצת הביקורת הושמתו באמצעות מנת יתר של הרדמה. הטחולים נכרתו באופן אספטי לאחר עיקור פני השטח של 5 דקות באתנול של 75%, וכל רקמות החיבור הוסרו. הטחולים פורקו מכנית באמצעות מסננת תאי 70 מיקרון עם PBS שהושלמה ב-2% FBS ליצירת תלייה חד-תאית. המתלה הזה עבר צנטריפוגה בטמפרטורה של 300 x g., 4°C למשך 5 דקות, והאריתרוציקטים עברו ליזציה עם 1 מ"ל של בופר ACK Lysing למשך 2 דקות בטמפרטורת החדר. תהליך הליזיס הופסק על ידי שטיפה עם PBS. תאי T הועשרו שלילית כדי למנוע הפעלה באמצעות ערכת בידוד תאי T של עכבר. לכל 10 מיליון תאים, נוספו 50 מיקרו-ליטר של קוקטייל סלקציה ודגרו בטמפרטורת החדר למשך 10 דקות. לאחר מכן נוספו 75 מיקרוליטר חרוזי מגנטיות סטרפטווידין לכל 10 מיליון תאים, עם דגירה של 5 דקות. תאים קשורים בחרוזים נשמרו באמצעות מגנט למשך 3 דקות, ותאי T מועשרים (עם טוהר של מעל 94%) נאספו מהסופרנאנט. למיון תת-הקבוצות של CD4⁺ ו-CD8⁺, התאים המועשרים נצבעו בנוגדנים אנטי-CD3ε-PE, אנטי-CD4-APC ואנטי-CD8-FITC במשך 15 דקות בחושך, ואז נשטפו 3 פעמים עם PBS מקורר מראש. המיון בוצע על ציטומטר זרימה באמצעות אסטרטגיית השער הבאה: לימפוציטים (FSC/SSC), לאחר מכן CD3⁺, ואז CD4⁺ או CD8⁺. התאים מוינו במצב טוהר לצינורות איסוף שמולאו מראש ב-200 מיקרוליטר PBS, מה שהניבו תת-קבוצות יעד עם טוהר מעל 98%.
בנייה וטיפול במודל תאי דלקת שריר הלב
תאי ה-HL-1 גודלו במדיום DMEM/F12 שהושלמו ב-10% סרום בקר עוברי (FBS) ו-1% פניצילין-סטרפטומיצין (PS) בתנאים סטנדרטיים (37°C, 5% CO₂). התאים חולקו לשלוש קבוצות: קבוצת ביקורת (לא טופלה), קבוצת המודל (תאי HL-1 שטופלו בתאי T של CD4+/CD8+ במשך 24 שעות), וקבוצת OOLE (קבוצת מודל שטופלה במשותף עם 10% OOLE במשך 24 שעות).
ELISA לזיהוי סרום של חלבונים הקשורים לפגיעות שריר הלב
דגרו 50 מיקרוליטר דגימת סרום בבארות מיקרופלט עשירות בנוגדנים מצופים מראש של הערכה למשך 30 דקות, ואז שטפו שלוש פעמים עם PBST להסרת רכיבים לא קשורים. הוסיפו את תמיסת אבידין המסומנת על ידי חזרת פרוקסידאז (HRP) לדגירה שנייה. שטפו שלוש פעמים שוב עם PBST, מוסיפים 100 מיקרוליטר של תת-3,3',5,5'-טטרמתילבנזידין (TMB) כדי להתחיל את התגובה הצבעונית, ומסיימים את התגובה עם 100 מיקרוליטר של תמיסת עצירה בתוך 30–45 דקות מההתחלה. מדדו את הספיגה (OD) ב-450 ננומטר באמצעות קורא מיקרופלט וכימות את ריכוז האנליט המטרה באמצעות עקומה סטנדרטית שצוירה לפי תקני ייחוס ידועים.
כתם מערבי
רקמות הלב טוחנו באמצעות הומוגניזר רקמות עם חנקן נוזלי. לאחר מכן, דגימות רקמה ותאים עברו ליסציה ב-200 מיקרוליטר של בופר RIPA על קרח למשך 30 דקות. הליזטים עברו צנטריפוגה ב-12,000 x גרם למשך 15 דקות בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס לאיסוף על-טבעי חלבון. ריכוזי החלבון נקבעו באמצעות ערכת בדיקת חלבון BCA. לאחר התאמת ריכוז החלבון ל-5 מיקרוגרם/מיקרוליטר, הדגימות עורבבו עם בופר עומס של 5× ודנוטרציה על ידי חימום ב-95 מעלות צלזיוס למשך 10 דקות. החלבונים הופרדו על ג'לים של SDS-PAGE ב-10% (פעלו ב-100 וולט במשך 90 דקות) ולאחר מכן הועברו לממברנות PVDF באמצעות אלקטרובולטינג חצי-יבש ב-15 וולט למשך 30 דקות. הממברנות נחסמו בחלב דל שומן 5% ואז נבדקו במהלך הלילה בטמפרטורה של 4°C עם נוגדנים ראשוניים (כולל IL-1β, NLRP3, MyD88, NF-κB p65 וטובולין; דילול 1:1,000)2. לאחר שטיפת הממברנות שלוש פעמים במשך 10 דקות כל אחת עם סליין טריס-בופר המכיל 0.1% Tween 20 (TBST), הן הוטמנו עם נוגדנים משניים מצומדים עם פרוקסידאז חזרת (HRP) (דילול של 1:10,000) למשך שעה בטמפרטורת החדר. רצועות החלבון הוצגו על ידי יישום תת-קרקע כימילומינסנציה משופרת (ECL), והאותות נלכדו באמצעות מערכת הדמיית כימילומינסנציה. לבסוף, רמות הביטוי היחסיות נותחו כמותית על ידי נרמול ערכי הצפיפות של רצועות החלבון היעד לבקרת הפנימית של Tubulin באמצעות תוכנת ImageJ.
בדיקת אפופטוזיס תאים באמצעות ציטומטריית זרימה
תאי ה-HL-1 נשטפו פעמיים עם מלח מפוזר-פוספט (PBS). לצורך דיסוציאציה של תאים, נוספה 1 מ"ל טריפסין ודגרה למשך דקה, ומיד לאחר מכן בוצעה ניטרול עם 2 מ"ל של מדיום תרבית מלא. מתלה התא הוצב בצנטריפוגה ב-250 x גרם למשך 5 דקות בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס, והסופרנטנט נזרק. כדור התאים שנאסף נשטף פעמיים עם PBS קר מאוד והושהה מחדש בבופר קישור של 1x כדי להגיע לצפיפות תאים של 1 x10 6 תאים למ"ל. 100 מיקרוליטר אליקוט של מתלה תא זה הועבר לצינור ציטומטריית זרימה, ולאחר מכן נוספו 5 מיקרוליטר FITC-Annexin V ו-5 מיקרוליטר פרופידיום יודיד (PI). לאחר מערבולת עדינה, התערובת דגרה במשך 15 דקות בטמפרטורת החדר (25 מעלות צלזיוס) בחושך. לבסוף, נוספו 400 מיקרוליטר של בופר קישור 1x לכל צינור, ואפופטוזיס התא נותח לאחר מכן באמצעות ציטומטר זרימה. באסטרטגיית השער, האירועים הוגדרו תחילה על פיזור קדמי (FSC) ופיזור צד (SSC) כדי להוציא פסולת תת-תאית ולבודד את אוכלוסיית תאי HL-1 שלמה. בתוך שער ראשוני זה, תאים אפופטוטיים נמדדו באמצעות ניתוח רבעים, כאשר תאים אפופטוטיים מוקדמים הוגדרו כ-FITC-Annexin V⁺/PI⁻ ותאי אפופטוטיה מאוחרים שהוגדרו כ-FITC-Annexin V⁺/PI⁺.
ניתוח סטטיסטי
כל ניסוי בוצע בשלושה עותקים, והניתוח הסטטיסטי בוצע באמצעות תוכנה סטטיסטית. ההבדלים בין שתי קבוצות נותחו באמצעות מבחן t למדגם בלתי תלוי; הבדלים בין שלוש קבוצות או יותר נותחו באמצעות ANOVA חד-כיווני ואחריו מבחן פוסט-הוק של בונפרוני. הנתונים מבוטאים כממוצע ± שגיאת תקן (SEM). p < 0.05 נחשב מובהק סטטיסטית.