גיוס מטופלים
כל המשתתפים סיפקו הסכמה מדעת בכתב לאחר שהבינו במלואם את תוכן המחקר. ועדת האתיקה של בית החולים Shanghai Pudong New Area People's Hospital בחנה ואישרה פרוטוקול מחקר זה (מס' 2024k007). גודל המדגם חושב באמצעות G*Power: הבדיקה שנבחרה הייתה t-test, והבדיקה הסטטיסטית תוכננה לזיהוי הבדלים בין שני מדגמים בלתי תלויים. עם גודל אפקט של d = 0.5, α = 0.05 ועוצמה של 0.9, חישוב זה הצביע על כך שיש לגייס לפחות 86 נבדקים בכל קבוצה. כדי להביא בחשבון נסיבות בלתי צפויות שעלולות לקרות במהלך הניסוי, גויסו 116 חולים בכל קבוצה. סך של 116 חולים עם IBS-D שביקרו בבית החולים Shanghai Pudong New Area People's Hospital בין יולי 2024 ליולי 2025 נכללו במחקר זה כקבוצת הניסוי. קריטריוני ההכללה היו: (1) IBS-D העונה על קריטריוני האבחנה של Rome IV; (2) קולונוסקופיה המעידה על היעדר נגעים אורגניים ברירית. קריטריוני הש excluded: (1) חולים עם מחלה דלקתית של המעיים (IBD), סרטן המעי הגס והחלחולת וכו'; (2) חולי סוכרת; (3) חולים עם היסטוריה רצנתי של ניתוח בבטן; ו-(4) חולים עם אי-ספיקה חמורה של הלב, הכבד או הכליות. במקביל, 116 מתנדבים בריאים שהתאימו למאפיינים הדמוגרפיים של החולים, כגון גיל ומין, גויסו כקבוצת הביקורת. בקרים בריאים אומתו כבעלי היעדר היסטוריה של מחלות גסטרו-אינטסטינליות כרוניות או תסמינים קליניים תואמים. חמישה מיליליטרים של דם ורידי פריפריאלי נשאבו מכל הנבדקים. לאחר מכן הועבר העל-נוזל למקרר בטמפרטורה נמוכה במיוחד של -80 °C לשימור בהקפאה לפני שלב מיצוי ה-RNA העוקב.
כל משתתף מילא שאלון למשך 10 ימים כדי לתעד את הביטויים הקליניים הבאים: (א) הערכת חומרת הכאב הבטני באמצעות סולם אנלוגי חזותי של 10 נקודות; (ב) תדירות הכאב הבטני במהלך תקופת הסקר (מספר הימים עם כאבים); (ג) תדירות יציאות (המספר המקסימלי של יציאות ליום); (ד) סולם בריסטול (Bristol Faecal Traits Scale) להערכת מאפייני הצואה. מצבם הרגשי של הנבדקים הוערך באמצעות סולם החרדה והדיכאון של בתי חולים (HADS).
תרביות תאים ומידול
תאי Caco-2 גודלו באופן שגרתי במצע Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) המכיל 10% fetal bovine serum (FBS) ו-1% penicillin–streptomycin, בתוך אינקובטור בטמפרטורה של 37 °C ו-5% CO₂. שורת התאים Caco-2 מבצעת דיפרנציאציה ספונטנית לשכבה חד-שכבתיות (monolayer) מקוטבת של תאים עם צומתים הדוקים (tight junctions) ומיקרוויליי, המציגה מאפיינים מורפולוגיים ותפקודיים הדומים לאלו של תאי אפיתל של מעי בוגרים. LPS מעורר תגובה דלקתית ומשבש את הצומתים ההדוקים באפיתל המעי, מה שמעלה את חדירות המעי – תהליך הדומה מאוד למאפיינים הפתולוגיים של IBS-D. יתרה מכך, בהתחשב בכך שתאי Caco-2 שעובדו ב-LPS שימשו באופן נרחב במחקרים קודמים19,20,21 למידול של דלקת ושיבוש של מחסום המעי הקשור ל-IBS, נבחר במחקר זה טיפול של תאי Caco-2 בליפופוליסכריד (LPS) כדי להקים מודל in vitro של IBS-D. כאשר התאים הגיעו לכ-80% התמסכות (confluence), מצע הגידול הוחלף במצע מלא המכיל 5 µg/ml LPS22, והתאים עברו גרייה למשך 24 h. תאים שגודלו באופן שגרתי ללא LPS שימשו כקבוצת הביקורת.
טרנספקציית תאים
כדי לחקור את תפקידיהם של NEAT1 ו-miR-29b-3p בתאי Caco-2, בוצעה טרנספקציה לתאי Caco-2. התאים חולקו לשש קבוצות באופן הבא: 1. קבוצת ביקורת (ללא טיפול); 2. קבוצת LPS; 3. קבוצת LPS + si-NC; 4. קבוצת LPS + si-NEAT1; 5. קבוצת LPS + si-NEAT1 + inhibitor NC; ו-6. קבוצת LPS + si-NEAT1 + miR-29b-3p inhibitor. שני RNA קטנים מפריעים (si-NEAT1) המכוונים ל-NEAT1 תוכננו וסונתזו: si-NEAT1_1 (5′-GCCTTGTAGATGGAGCTTGC-3′) ו-si-NEAT1_2 (5′-GUGAGAAGUUGCUUAGAAAUU-3′). רצף siRNA אקראי שאינו מכוון למטרה (si-NC) שימש כביקורת שלילית. במקביל, סונתזו גם המעכב (inhibitor) של miR-29b-3p והביקורת השלילית שלו. מעכב miR-29b-3p: 5’-AACACUGAUUUCAAAUGGUGCUA-3’. ביקורת שלילית: 5’-CAGUACUUUUGUGUAGUACAA-3’.
תאי Caco-2 נזרעו בלוחות בעלי 24 בארות ועברו טרנספקציה כאשר התרביות הגיעו ל-60–70% התמזגות (confluence), בהתאם לפרוטוקול היצרן. בקצרה, 1.25 µL של siRNA הודללו ב-25 µL של מצע עם סרום מופחת כדי להגיע לריכוז סופי של 50 nM של siRNA. לצורך עיכוב miRNA, 2 µL של מעכב miR-29b-3p או של הבקרה השלילית שלו הודללו ב-25 µL של מצע עם סרום מופחת לריכוז סופי של 100 nM. בנפרד, 1.5 µL של סוכן הטרנספקציה ערבבו עם 25 µL של מצע עם סרום מופחת. לאחר מכן, ה-siRNA המדולל (או המעכב/הבקרה השלילית) ערבב עם סוכן הטרנספקציה המדולל ליצירת קומפלקס הטרנספקציה, אשר הוסף לטיפות לתאים. שישה שעות לאחר הטרנספקציה, תערובת הטרנספקציה הוחלפה במצע מלא טרי, והתאים תוחזקו למשך 48 h נוספות לפני ביצוע בדיקות תפקודיות. יעילות ה-Knockdown או העיכוב אומתה באמצעות RT-qPCR לפני המשך הניסויים.
PCR כמותי בזמן אמת עם שעתוק הפוך (RT-qPCR)
RNA כולל בודד מדגימות סרום ומתאי Caco-2 שהועברו את הטיפולים המצוינים. בקצרה, כל דגימה עברה ליזיס עם 1 mL של ריאגנט למיצוי RNA ושורשרה עם 200 µL של כלורופורם. לאחר צנטריפוגציה ב-12,000 × g למשך 15 דקות ב-4 °C, הועבר הפאזה המימית העליונה לפ tube חדש, ערבוב עם 500 µL של איזופרופנול, ונשמר ב-−20 °C למשך 30 דקות. לאחר מכן, הדגימות עברו צנטריפוגציה ב-12,000 × g למשך 10 דקות ב-4 °C. משקע ה-RNA שהתקבל נשטף פעמיים עם אתנול 75%, יובש באוויר והושעה מחדש ב-20 µL של מים נקיים מ-RNase. תפוקת ה-RNA ודרגת הניקיון נמדדו באמצעות מיקרו-ספקטרופוטומטר, ורק דגימות עם ערכי A260/A280 של 1.8–2.0 שימשו להמשך. ה-RNA עבר תעתוק הפוך ל-cDNA לפי פרוטוקול היצרן. לזיהוי של NEAT1, ZO-1, occludin, claudin-2, ו- GAPDH, נעשה שימוש ב-1 µg של RNA כולל עבור כל תגובת תעתוק הפוך בנפח 20 µL הכוללת 1× RT buffer, 0.5 mM dNTPs, 0.5 µM oligo(dT) primer, 200 U reverse transcriptase, ומים נקיים מ-RNase. התגובה בוצעה ב-37 °C למשך 15 דקות, ולאחריה אינאקטיבציה של האנזים ב-85 °C למשך 5 שניות.
ביצוע PCR כמותי בוצע באמצעות cDNA כתבנית, תוך שימוש במערכת real-time PCR מבוססת SYBR Green. רמות הביטוי של NEAT1, miR-29b-3p, ZO-1, occludin, ו- claudin-2 נמדדו באמצעות פריימרים ספציפיים לגנים. U6 שימש כגן הייחוס עבור miR-29b-3p, בעוד ש-GAPDH שימש לנורמליזציה של NEAT1 ושל גנים הקשורים לצומת מהודק (tight junction). הביטוי היחסי חושב באמצעות שיטת 2−ΔΔCt. רצפי הפריימרים מפורטים ב-טבלה 1.
בדיקת חיוניות תאים
תאי Caco-2 בשלב צמיחה לוגריתמי נזרעו בלוחיות 96-בארים בריכוז של 1 × 104 תאים לבאר. הוקמו קבוצת ביקורת ריקה (המכילה רק את מצע התרבית), קבוצת ביקורת (תאים ללא טיפול) וקבוצה ניסיונית (תאי Caco-2 תחת תנאי טיפול שונים), כאשר בכל קבוצה היו 5–6 בארים ככפילויות. התאים הוקצו לארבע נקודות זמן: 0, 24, 48 ו-72 h. עבור כל נקודת זמן הוכנה לוחית תרבית נפרדת כדי למנוע פתיחה חוזרת של האינקובטור במהלך המדידות. לאחר תקופת התרבית, התווספו 10 µL של תמיסת CCK-8 לכל באר, תוך הקפדה על מניעת היווצרות בועות. לאחר מכן, הוחזרה לוחית התרבית לאינקובטור בטמפרטורה של 37 °C ו-5% CO₂ והודגרה בחושך למשך 2 h. הבליעה של כל באר נמדדה מיד ב-450 nm באמצעות קורא מיקרו-לוחיות. לבסוף, חיוניות התאים בוטאה כאחוזים.
בדיקה לאפופטוזיס של תאים
את רמת האפופטוזיס כימתו באמצעות ציטומטריה של זרימה לאחר צביעה ב-Annexin V-FITC/PI. תאי Caco-2 מכל קבוצת טיפול נאספו ונשטפו פעמיים ב-PBS קר מאוד. הסנטריפוגציה בוצעה ב-300 × g למשך 5 min ב-4 °C. משק התאים הושעה מחדש ב-100 µL של 1× binding buffer, ולאחר מכן נוספו באופן רצף 5 µL של Annexin V-FITC ו-5 µL של PI. לאחר ערבוב עדין, הדגימות דגרו למשך 15 min בטמפרטורת החדר בחשיפה מינימלית לאור. לאחר מכן, נוספו 300 µL של 1× binding buffer, והתסמין עורבב בזהירות לפני העברתו למבחנה של 5 mL עבור ציטומטריה של זרימה. הדגימות נותחו בציטומטריה של זרימה בתוך 1 h.
התנגדות חשמלית טרנס-אפיתליאלית (TEER)
החדירות הוערכה על ידי מדידת ערכי ה-TEER של תאי Caco-223. תאי Caco-2 הוחדרו לתאי Transwell ותורבדו במשך 21 ימים ליצירת שכבה אחת (monolayer) דחוסה. שישה חזרות ביולוגיות עצמאיות בוצעו תחת כל תנאי ניסויי, וכן בוצעו חמש חזרות טכניות תחת כל תנאי. לפני ואחרי הטיפול הניסויי, נמדדו ערכי ה-TEER של כל קבוצה באמצעות מד התנגדות טרנס-ממברנלית, תוך שימוש באלקטרודות שעורסטרו באתנול וויזן עם PBS. בקצרה, המוט הארוך של האלקטרודה הוטבל במצע התרבית הבזולטרלי, והמוט הקצר במצע התרבית האפיקלי, כדי למנוע מגע עם ממברנת המסנן. לאחר התייצבות, נקרא ערך ההתנגדות (Ω), והמדידות חזרו על עצמן עד לקבלת שלוש קריאות עקביות. התנגדותם של מסנני Transwell ריקים (ללא תאים) נמדדה תחת אותם תנאים, וערך זה הופחת מכל הקריאות הניסוייות. TEER (Ω·cm2) = (התנגדות הדגימה – התנגדות הריק) × שטח הממברנה האפקטיבי. הנתונים מוצגים כ: (קבוצה ניסויית/קבוצת ביקורת) × 100%.
בדיקת ELISA (סבסוב חיסוני קשור לאנזים)
העלים של תאי Caco-2 מקבוצות טיפול שונות נאספו לאחר 24 h של תרבית. רמות של ציטוקינים פרו-דלקתיים, הכוללים tumor necrosis factor-alpha (TNF-α), interleukin-6 (IL-6), interleukin-8 (IL-8), ו-interleukin-1β (IL-1β), נמדדו באמצעות ריאגנטים מסחריים ל-ELISA בהתאם להוראות היצרן. הבדיקה בוצעה בקפדנות לפי ההוראות. הדגימות והסטנדרטים הוספו לבארים המצופות מראש בנוגדנים, ולאחר מכן עברו אינקובציה ושטיפה. לאחר מכן, הוסף נוגדן זיהוי ביוטינילי. לאחר אינקובציה ושטיפה נוספות, הוסף streptavidin המסומן ב-horseradish peroxidase. לבסוף, הוסף תסבסב TMB לצורך פיתוח הצבע, והתגובה הופסקה באמצעות תמיסת עצירה. הבליעה של כל באר נמדדה באופן מיידי ב-450 nm באמצעות קורא מיקרופלטה.
וסטרן בלוט (Western blot)
חלבונים בודדו מתאי Caco-2 לאחר הטיפולים המצוינים באמצעות בופר RIPA המכיל מעכבי פרוטאז. רמות החלבון נמדדו באמצעות בדיקת חומצה ביצינכונינית (BCA). עבור כל דגימה, נטענו 30 µg של חלבון לכל נתיב, הופרדו על ג'לים של 10% SDS-PAGE, והועברו לממברנות PVDF. הממברנות נחסמו ב-5% חלב דל שומן למשך שעה אחת בטמפרטורת החדר ולאחר מכן דגרו למשך לילה ב-4 °C עם נוגדנים נגד ZO-1 (1:1,000), occludin (1:500), claudin-2 (1:1,000) ו-GAPDH (1:5,000). לאחר שטיפה, דגרו את הממברנות עם נוגדנים שניים המשולבים עם HRP למשך שעה אחת בטמפרטורת החדר. פסים זוהו באמצעות כימילומינצנציה מוגברת (ECL), ועוצמת הפסים נותחה באמצעות ImageJ. GAPDH שימש כשליטת טעינה.
בדיקת דואל-לוסיפראז (DLR)
אתרי הקישור הפוטנציאליים של miR-29b-3p לרצף ה-NEAT1 נחזו באמצעות מאגר הנתונים ENCORI (https://rnasysu.com/encori/). לאחר מכן, מקטעי NEAT1 המכילים אתרי קישור מסוג wild-type (WT) או מוטנטים (MUT) שובטו אל תוך וקטור הדגימה pmirGLO. הפלסמיד הרקומיננטי שהוכן הועבר בטרנספקציה משותפת (co-transfected) לתאים יחד עם mimics של miR-29b-3p (Sense: 5’-UAGCACCAUUUGAAAUCAGUGUU-3’; Antisense: 5’-CACUGAUUUCAAAUGGUGCUAUU-3’) או מעכבים (inhibitors) והביקורות השליליות המתאימות להם (mimic NC, Sense: 5’-UUCUCCGAACGUGUCACGUTT-3’; Antisense: 5’-ACGUGACACGUUCGGAGAATT-3’). ארבעים ושמונה שעות לאחר הטרנספקציה, התאים נאספו, ופעילות הלוסיפרז של גחליליות (firefly luciferase) ושל רנילה (renilla luciferase) נקבעה באמצעות ריאגנט לגילוי לוסיפרז כפול (dual luciferase detection reagent). פעילות הלוסיפרז של רנילה שימשה כרפרנס פנימי לצורך סטנדרטיזציה.
בדיקת אימונו-שיקוע של RNA (RIP)
עבור בדיקת ה-RIP, תאי Caco-2 נאספו, נשטפו ב-PBS, והודגרו על קרח למשך 15 min ב-200 µL של RIP lysis buffer בתוספת מעכבי פרוטאז ו-RNase. ליזאטים של התאים סובבו בצנטריפוגה ב-16,000 × g למשך 10 min ב-4 °C, ו-10 µL מכל עליון נשמרו כביקורת קלט (input control). עבור אימונופרסיפיטציה, 40 µL של חרוזי Protein A/G מגנטיים סובבו יחד עם 5 µg של נוגדן anti-Ago2 או IgG רגיל ב-200 µL של RIP wash buffer למשך 30 min בטמפרטורת החדר. לאחר שלושה שטיפות עם 500 µL של RIP wash buffer, 100 µL מתליון החרוזים שולבו עם 100 µL של ליזאט, ה Bring לנפח סופי של 1 mL באמצעות RIP wash buffer, והודגרו למשך לילה ב-4 °C תחת סיבוב. לאחר מכן, החרוזים נשטפו חמש פעמים עם 500 µL של RIP wash buffer והושעו מחדש ב-150 µL מאותו באפר. עיכול החלבונים בוצע על ידי הוספת 15 µL של proteinase K (20 mg/mL) ו-15 µL של 10% SDS, ולאחריהם הדגרה ב-55 °C למשך 30 min עם ניעור. העליון נאסף, ו-RNA בודד באמצעות ריאגנט מיצוי והושקע למשך לילה. העשרה של NEAT1 ו-miR-29b-3p נבדקה לאחר מכן באמצעות RT-qPCR.
ניתוח לוקליזציה תת-תאית
תאי Caco-2 הופרדו לפרקציות גרעיניות וציטופלזמיות באמצעות ריאגנט להפרדת גרעין וציטופלזמה זמין מסחרית, בהתאם להוראות היצרן. RNA כולל הופק משני רכיבים אלו, והפצתו של NEAT1 בגרעין ובציטופלזמה נבדקה באמצעות RT-qPCR. כיול בוצע באמצעות U6 (בעיקר גרעיני) ו-mRNA של GAPDH (בעיקר ציטופלזמי) כאינדיקטורים ליעילות ההפרדה.
ניתוח סטטיסטי
עבור דגימות סרום קליניות, ניתוח עוצמה (t-test, d = 0.5, α = 0.05, power = 0.9) הצביע על כך שנדרש מינימום של 86 נבדקים לקבוצה. כדי להביא בחשבון נסיבות בלתי צפויות שעלולות להתרחש במהלך הניסוי, גויסו 116 חולים בכל קבוצה כדי לזהות הבדלים משמעותיים מבחינה קלינית. נורמליות הנתונים עבור משתנים רציפים הוערכה באמצעות מבחן Shapiro-Wilk. מכיוון שכל הנתונים הרציפים היו בעלי התפלגות נורמלית (P > 0.05), הוחלו ניתוחים פרמטריים. משתנים קטגוריאליים נותחו באמצעות מבחן chi-square. ניסויים מבוססי תאים כללו שש חזרות ביולוגיות בלתי תלויות, עם חמש חזרות טכניות עבור כל חזרה ביולוגית. הנתונים מוצגים כממוצע ± SD. השוואות בין שתי קבוצות של משתנים רציפים בוצעו באמצעות Student’s t-test, בעוד שהשוואות בין קבוצות מרובות נותחו באמצעות one-way ANOVA ולאחריו מבחן Tukey’s post hoc. מובהקות סטטיסטית הוגדרה כ-P < 0.05.