ניתוח כמותי תלת-ממדי לא הרסני של רצועות חניכיים שנותרו על פרמולרים אנושיים שנלקחו באמצעות סריקה תוך-פית

סיכום

פרוטוקול זה מפרט שיטה דיגיטלית תלת-ממדית לא הרסנית, כמותית, להערכת רצועות חניכיים שנותרו על שיניים שנעקרו. באמצעות תוכנות סריקה תוך-פיות והנדסה הפוכה, הקמנו זרימת עבודה אקס ויבו להערכת חניכיים, שסיפקה בסיס מתודולוגי להשוואת טכניקות חילוץ במחקר פרה-קליני.

תקציר

נטיעת שיניים מכוונת היא טיפול חשוב לשימור שיניים טבעיות עם נגעים אנדודונטיים. הצלחתו תלויה באופן קריטי בחיוניות ובשלמות המבנית של הרצועה החניכית השארית (PDL). שיטות הערכה מסורתיות, כגון חתך היסטולוגי או צילום דו-ממדי, הן או הרסניות או מוגבלות על ידי שגיאות הקרנה. כדי להתמודד עם מגבלות אלו, פרוטוקול זה מציג שיטה לא הרסנית וכמותית להערכת PDL שאריות באמצעות סריקה תוך-אורלית מדויקת מאוד. שיניים שנעקרו צובעו כדי להמחיש את רקמת ה-PDL וסרקו תלת-ממד ליצירת מודלים דיגיטליים באיכות גבוהה. הנתונים נותחו באמצעות תוכנת הנדסה הפוכה, שבה הוגדר אזור עניין, וכיסוי שארית של PDL נמדד באמצעות סף צבע. גישה זו חישבה את שטח הכיסוי התלת-ממדי האמיתי של PDL מבלי לפגוע בדגימה הביולוגית. כדי להעריך את הרגישות והתועלת של פרוטוקול זה, הוא יושם להשוואה בין חילוצים זעיר-פולשניים (MI) באמצעות פריוטומים לבין חילוצי מלקחיים קונבנציונליים. ניתוח דיגיטלי גילה כי שיטת MI שמרה משמעותית על יותר רקמת PDL (61.99%) מאשר השיטה הקונבנציונלית (50.46%). יתרה מזאת, מבחן קיום של עמידות תאים מאוחר יותר אישר את הממצאים הדיגיטליים, והראה פעילות מטבולית גבוהה משמעותית בקבוצת ה-MI. בסופו של דבר, עבודה זו יוצרת תהליך הוכחת היתכנות להערכת PDL כמותית ex vivo , ומספקת בסיס מתודולוגי איתן להשוואת טכניקות חילוץ במחקר פרה-קליני.

מבוא

השתלת שיניים מכוונת מוכרת יותר ויותר כאמצעי טיפול אחרון לשימור שיניים טבעיות שהיו נחשבות לחסרות תקווה. הוא מיועד לניהול נגעים פריאפיאליים מתמשכים, חורים בתעלה בלתי נגישים, או נגעים נספגים נרחבים שאינם ניתנים לניהול ללא ניתוח ^1,2. ההליך הסטנדרטי כולל עקירת השן הפגועה במכוון, לאחר מכן בדיקה ויזואלית חוץ-אוראלית, התערבות טיפולית (כולל כריתת קצה השורש, הכנה ומילוי קצה השורש), ולאחר מכן השתילה מחדש לשקע^{המקורי 1,2}.

נוכחות ושלמות רקמת הרצועה החניכית (PDL) שנותרה על פני השורש הם הגורמים הפרוגנוסטיים הקריטיים ביותר שקובעים את דפוס ההחלמה לאחר השתלת שן ^3,4. מחסום PDL בריא ושלם חיוני להשבת הניידות הפיזיולוגית ולמניעת סיבוכים כגון ספיגת החלפה (אנקילוזיס) או ספיגת שורש דלקתית. עם זאת, הסרת שן מהשקע האלוואולרי, בין אם טראומטית או מכוונת, מפריעה באופן מהותי לחיבור סיבי ה-PDL וחותכת את אספקת הנוירו-וסקולר⁵. כתוצאה מכך, השחזור הביולוגי של ה-PDL הוא קריטי להחלמה חניכית של שיניים שנשתלו מחדש³. מחקרים נרחבים הראו שמקסום החיוניות ונפח רקמת ה-PDL השארית במהלך הליכים קליניים חוץ-אוראליים מהווה גורם פרוגנוסטי קריטי, וחשיבותו להישרדות תפקודית ארוכת טווח של שיניים שנשתלו מחדש מתועדת היטב בספרות ^6,7.

בהינתן שהחילוץ מפריע באופן מהותי להיקשרות PDL, בחירת טכניקת החילוץ משפיעה ישירות על נפח וחיוניות רקמת PDL שנותרה על פני השורש. חילוץ קונבנציונלי עם מלקחיים מפעיל כוחות סיבוב ומשיכה שיכולים לרסק את ה-PDL נגד עצם האלוואולר או לקרוע אותו באמצעות חיכוך. כדי למזער את הטראומה הזו, פותחו שיטות חילוץ זעיר-פולשניות (MI). מחקרים קודמים דיווחו כי שיטות MI יכולות להפחית משמעותית את הטראומה הכירורגית לפריודונטיום של השיניים הפגועות^. טכניקות המשתמשות בפריוטומים לניתוק חיבור ה-PDL, או מערכות חילוץ אנכיות שמונעות כוחות מנוף, פותחו לשימור שארית ה-PDL על פני השורש. לדוגמה, דוחות מקרה תיעדו שיפור בתוצאות קליניות בהשתלת שיניים מכוונת ובאקסטרוזיה כירורגית כאשר מערכות MI שימשו ^9,10. ממצאים אלו מצביעים על כך שמזעור טראומות עקירה עשוי לשפר את שמירת רקמת PDL שנותרה על פני השורש.

עם זאת, למרות הקונצנזוס הקליני לגבי יתרונות ההוצאה האטראומטית, קיימות ראיות ישירות מוגבלות המכימות את היקף הרקמה השארית של PDL שנשמרה בשימוש בשיטות MI בהשוואה לטכניקות קונבנציונליות. פער ידע זה נובע בעיקר מהמגבלות של שיטות הערכה זמינות. מחקרים קיימים עוסקים בעיקר בשיטות הערכה סובייקטיביות או הרסניות להערכת שארית ה-PDL על פני השורש. חתך היסטולוגי נותר התקן לניתוח תאים¹¹, אך הוא הרסני מטבעו, מה שהופך את הדגימה לבלתי שמיעה למחקרים נוספים. חלופה נוספת היא צביעה בשילוב עם צילום דו-ממדי (דו-ממדי) שימשה לאפיון שאריית PDL¹². עם זאת, שיטות אלו אינן מספקות לכמת רקמת ה-PDL השארית של כל פני השורש. צילום דו-ממדי אינו יכול למפות במדויק את שטח הפנים של שורש תלת-ממדי מורכב ומעוקל; הוא מביא בהכרח שגיאות הקרנה ועיוות, מה שמוביל לכימות לא מדויק.

בשנים האחרונות, טכנולוגיית הסריקה הדיגיטלית התוך-אורלית התקדמה משמעותית, ומציעה דיוק גבוה ואיסוף נתונים מהיר. השיטה הדיגיטלית שימשה במחקרים קודמים למדידת טביעות ושינויים ברקמות הרכות, או להערכת שחיקה של שיניים בקרב צעירים^{בני 13}. היישומים אף התרחבו לניתוחים נפחיים מורכבים, כמו הערכת נפיחות פנים בניתוחי פה¹⁴. טכנולוגיות אלו מאפשרות יצירת מודלים תלת-ממדיים (תלת-ממדיים) בעלי דיוק גבוה שניתן לתמרן ולמדוד בתוכנות הנדסה הפוכה, ומציעות פתרון פוטנציאלי לניתוח כמותי ולא-הרסני. עם זאת, עד כה לא נחקר השימוש הפוטנציאלי של סריקה תוך-פית להערכת שארית PDL של שיניים שנעקרו.

המטרה הכוללת של פרוטוקול זה היא להקים זרימת עבודה סטנדרטית, לא הרסנית, המשלבת צביעה ביולוגית עם סריקה תוך-אורלית מדויקת והנדסה הפוכה תלת-ממדית. על ידי יצירת מודלים דיגיטליים באיכות גבוהה עם מפות משטח עם מרקם צבעוני, שיטה זו מאפשרת מדידה אובייקטיבית וניתנת לשחזור של PDL שארית על פני כל משטח השורש. מחקר זה מיישם את תהליך העבודה המוצע להשוואה בין כיסוי PDL שנותר בשתי טכניקות חילוץ, חילוץ MI בסיוע פריוטום לעומת חילוץ מלקחיים, בפרמולורים אנושיים. ישנה השערה ששיטת MI שומרת על חלק גדול יותר מכיסוי שאריתי של PDL מאשר השיטה הקונבנציונלית.

חשוב לציין כי פרוטוקול זה מיועד אך ורק ככלי מחקר אקס ויבו לסביבות מעבדה או פרה-קליניות. ההליך כולל צביעה, ייבוש באוויר, סריקה דיגיטלית וסגמנטציה מבוססת תוכנה, כאשר זמן ניתוח כולל אינו תואם לשימוש תוך כירורגי במהלך השתילה מכוונת, כאשר יש למזער את הזמן החוץ-אוראלי. לכן, שיטה זו מתאימה ל-(i) השוואת יעילות שימור PDL של טכניקות חילוץ שונות בתנאים מבוקרים; (ii) הכשרה וכיול בסביבות חינוכיות; ו-(iii) מחקרי אימות המקשרים בין מדדי כיסוי PDL דיגיטליים לתוצאות ביולוגיות. היישום שלו לשיניים רב-שורשיות עם אנטומיה מורכבת דורשת בדיקה נוספת.

פרוטוקול

פרוטוקול המחקר בוצע בהתאם להנחיות ועדת האתיקה של בית הספר לסטומטולוגיה של אוניברסיטת פקין (PKUSSIRB-202054022).

1. בחירת מטופלים והקצאת קבוצות

1. בחרו מטופלים הזקוקים להוצאת טרומלרים למטרות אורתודונטיות. ודאו שהפרה-טוחנות עומדות בקריטריוני ההכללה ללא עששת או מחלת חניכיים.
2. יש להחריג מטופלים עם לחץ דם גבוה, סוכרת, היסטוריה של עישון, או כאלה מתחת לגיל 16 או מעל 45 שנים.
3. חלק את הפרה-טוחנות באקראי לשתי קבוצות ניסוי: קבוצת הביקורת (עקירה קונבנציונלית) וקבוצת הפולשה הזעירית (MI) (הוצאה בסיוע פריוטום).
4. הקצו באקראי את השיניים מכל קבוצה למסלול ניתוח סריקה תלת-ממדית או למסלול האימות הביולוגי (CCK-8), כדי להבטיח שימוש בדגימות עצמאיות בכל שיטת הערכה.

2. הליכי עקירת שן

1. בצע את כל ההוצאות תחת הרדמה מקומית סטנדרטית.
2. שיטה א': חילוץ קונבנציונלי (קבוצת ביקורת)
   1. בצע הפרדת חניכיים סביב צוואר השן.
   2. מקם את המלקחיים הדנטליים באזור צוואר הרחם של כתר השן.
   3. הפעילו כוחות סיבוב עד שהשן מרופפת. הסר את השן מהשקע האלוואולרי באמצעות המלקחיים.
3. שיטה ב': חילוץ זעיר-פולשני (קבוצת MI)
   1. בצע הפרדת חניכיים.
      זהירות: יש לטפל בפריוטום בזהירות כדי למנוע פגיעה ברקמות רכות או שבירת מכשיר.
   2. הכנס פריוטום למרחב ה-PDL בעומק האפשרי, עד שמגיע לפחות לשני שלישים מאורך השורש.
   3. חותכים את סיבי ה-PDL סביב השורש בהיקף באמצעות הפריוטום. שחרר את השן.
   4. משוך אנכית את השן החוצה מהשקע האלוואולרי באמצעות מלקחיים דנטליים.

3. הכנת דגימה וצביעה

1. מיד לאחר העקירה, שוטפים את השיניים במי מלח סטריליים למשך 10 דקות להסרת דם ופסולת.
   אזהרה: טולואידין כחול הוא חומר כימיקל מסוכן. ללבוש ציוד מגן אישי מתאים (כפפות, משקפי מקד) בעת הטיפול.
2. צבעו את פני השורש על ידי טבילה בתמיסת טולואידין כחולה של 0.1% (מוכנה בתמיסת מלח עם בופר פוספט, PBS) למשך 40 דקות כדי לראות את רקמת ה-PDL.
3. שטוף עם תמיסת מלח במשך 10 דקות כדי להסיר את תמיסת הצבע וייבש בעדינות את המשטח עם מזרק תלת-כיווני כדי להסיר לחות עודפת.
   הערה: משטח השורש צפוי להציג צבע כחול-סגול אחיד, בעוד שהמלט החשוף יישאר לא מוכתם וייראה בז' בהיר.

4. 3D סריקה דיגיטלית

1. כיילן את הסורק הדיגיטלי התוך-פה לפי הוראות היצרן כדי להבטיח דיוק של 0.02 מ"מ.
2. אבטח את כתר השן באמצעות מלקחיים המוסטטיים כדי למנוע חסימת המבט על פני השורש.
3. סרוק את כל משטח השורש בתנאי סריקה סטנדרטיים. בצע סריקה משלימה של הכתר להשלמת המודל התלת-ממדי.
4. השתמש בתוכנה הקניינית של הסורק לייצא את נתוני הסריקה הדיגיטלית כקובץ אובייקט תלת-ממדי ברזולוציה גבוהה (OBJ) וחבילת נתונים נלווית; תמונת הטקסטורה נשמרת בפורמט JPG.
   הערה: התצוגה המקדימה של הסריקה החיה חייבת להציג רשת רציפה בצפיפות גבוהה, ללא חורים או ארטיפקטים על פני השורש. תמונת המרקם אמורה להבחין בבירור בין האזורים המוכתמים בכחול לבין פני השורש הלא מוכתמים.

5. 3D שחזור מודל וניתוח כמותי

1. עיבוד מוקדם של תמונה
   1. כיול סף
      1. ייבא את מפת הטקסטורה של JPG לתוכנת עריכת תמונות. המור את התמונה לגווני אפור של 8 ביט.
      2. פתח את כלי הסף (תמונה > Adjust > Threshold) ובדוק את ההיסטוגרמה כדי לרשום את ערך הגווני האפור המינימלי שתופס את כל פיקסלי PDL המוכתמים בכחול. קבעו את סף הגווני האפור המינימלי באמצעות שלושה צופים עצמאיים.
   2. ייבא את מפת הטקסטורה המקורית של JPG לתוכנת עריכת תמונות. נווט לבחירת טווח צבעים >. בחר במצב צללים והגדר טווח ל-65 וסבילות ל-20% (מכויל מנתוני סף 5.1.1).
      הערה: ודאו שכל אזורי ה-PDL המוצבעים בכחול נבחרו במלואם ושלא כלול שום משטח שורש לא צבוע בכלל.
   3. העתק את האזורים הנבחרים, המוכתמים בכחול, והדבק אותם לשכבה לבנה חדשה ליצירת מסכה בינארית (כחול ל-PDL, לבן לשורש חשוף). שמור את תמונת הטקסטורה המעובדת כדי להחליף את קובץ JPG המקורי.
2. מדידה כמותית
   1. ייבא את המודל התלת-ממדי המעובד לתוכנת הנדסה הפוכה.
   2. השתמשו בפוליגונים > חיתוך כדי הגדרת אזור העניין (ROI) ולהוציא רקמות חניכיים ופריאפיאליות. קבע את הגבול העליון של ה-ROI בעומק של 2 מ"מ מתחת לצומת הצמנטואמייל (CEJ). החריג את ה-3 מ"מ האפיקלי מהניתוח.
   3. בחר את "האזורים הכחולים המשופרים" בתוך ה-ROI. לאחר הבחירה, רקמת ה-PDL שנותרה מודגשת באדום.
   4. עברו לניתוח > חישוב > שטח חישוב כדי לחשב את שטח הפנים הכולל של התשואה על ההשקעה ושטח הפנים של האזורים הכחולים (PDL שארי).
   5. חשב את אחוז כיסוי PDL באמצעות משוואה 1:
      כיסוי PDL (%) = (שטח PDL שארי/שטח כולל של ROI) x 100
3. ויזואליזציה
   1. צלם תמונות של ארבעת משטחי השורש (בוקלי, לשוניים, מזיאליים ודיסטליים) בניצב לציר השן להערכה ויזואלית מפורטת להערכה חזותית.

6. אימות ביולוגי (בדיקת קשיאות תאים)

הערה: סעיף זה מתאר את שלבי האימות שבוצעו על תת-קבוצה של דגימות (n = 8 לכל קבוצה) כדי לאמת את הניתוח הדיגיטלי.

1. מיד לאחר העקירה, מניחים את השיניים בצינור צנטריפוגה סטרילי המכיל מדיום תרבית מחומם מראש (37 מעלות צלזיוס).
2. העברו דגימות למעבדה במקרר בטמפרטורה של 4°C תוך שעה. השתמשו במדיום Modified Eagle של Dulbecco, בתוספת 10% סרום בקר עוברי, 100 U/mL פניצילין ו-100 מיקרוגרם/מ"ל סטרפטומיצין לצורך הובלת דגימה ובדיקות חיוניות תאים.
3. שטוף את השיניים במי מלח סטריליים עם בופר פוספט (PBS) בארון בטיחות ביולוגית מיד עם ההגעה.
4. גרדו בזהירות את רקמת ה-PDL מהשליש האמצעי של השורש (ROI מוגדר על ידי גלאי חניכיים מדורג מדורג) באמצעות להב סקלפל סטרילי בטמפרטורת החדר בתוך 10 דקות מההגעה כדי למקסם את חיוניות התא.
5. עכל את הרקמה שנאספה עם 0.25% טריפסין-EDTA למשך 30 דקות. צנטריפוגה את תליית התא בטמפרטורה של 120 × גרם למשך 5 דקות בטמפרטורת החדר (22–25 מעלות צלזיוס) כדי לקבל את המשקע המכיל תאים.
   הערה: לאחר הצנטריפוגה, אמור להיווצר כדור לבן שניתן להבחין בו בתחתית הצינור. אם לא נצפה כדור, יש לצנטריפוג מחדש את הדגימה ב-120 × גרם למשך דקה נוספת.
6. החזירו את המשקע לתערובת של 600 מיקרוליטר Cell Counting Kit-8 (CCK-8) ותמיסה ביחס 1:10 (v/v), שהוכנה לפי הוראות היצרן.
7. עליקוט את המתלה הזה ב-200 מיקרוליטר לבאר ללוח עם 96 בארות (3 שכפולים טכניים לכל דגימה). דגרו את הצלחת בטמפרטורה של 37°C באינקובטור לחות עם 5% CO₂ למשך 3 שעות.
8. העבר 50 מיקרו-ליטר מהסופרנטנט מכל באר ללוח חדש עם 96 בארות.
9. מדדו את הספיגה (צפיפות אופטית, OD) ב-450 ננומטר באמצעות קורא מיקרופלט. רשום את ערכי ה-OD הממוצעים להשוואה סטטיסטית.
   זהירות: (i) לאסוף תמיסת צביעת כחול טולואידין ולשטוף פסולת כפסולת כימית מסוכנת ולהיפטר ממנה בהתאם להנחיות הבטיחות הכימית המוסדיות; (ii) לטפל ברקמת PDL, סכינים משומשים ופסולת תרביות תאים כפסולת ביולוגית מסוכנת (רמת בטיחות ביולוגית 1) ולשרוף או אוטוקלבה בהתאם לפרוטוקולי בטיחות ביולוגית מוסדיים; (iii) להשליך ציוד מגן אישי (כפפות, קצות פיפטה, מגבות נייר) במיכלים מיועדים לביוסכנה ביולוגית.

7. ניתוח סטטיסטי ואימות מתודולוגי

1. איסוף נתונים: איסוף הנתונים הכמותיים, כולל שטח הפנים הכולל של השורש (מ"^{מ 2}), שטח הצבועה הכולל (מ"^{מ 2}) מהניתוח התלת-ממדי, אחוז כיסוי PDL (אחוז), וערכי ה-OD מהבדיקה הביולוגית.
2. בדיקת נורמליות: הערכת התפלגות הנתונים לנורמליות באמצעות מבחן שפירו-וילק.
3. השוואת קבוצות:
   1. השווה את כיסוי PDL וערכי OD בין קבוצות MI וקבוצת הביקורת.
   2. השתמש במבחן t סטודנט לא מזווג עבור נתונים מבוזרים רגילים או במבחן Mann-Whitney U עבור נתונים שאינם מבוזרים נורמלית.
   3. חשב את גודל האפקט (d של כהן) כדי לקבוע את גודל ההפרש.
4. ניתוח עמידות מתודולוגית:
   1. בצע ניתוח רגרסיה ליניארית עם "שטח הפנים של השורש" כמשתנה בלתי תלוי ו"כיסוי PDL" כמשתנה התלוי.
   2. חשב את מקדם המתאם של פירסון (r) כדי להעריך אם שיטת המדידה מוטה לפי גודל השן. קורלציה לא מובהקת (P > 0.05) מצביעה על עמידות.
5. ניתוח אמינות:
   1. יצר גרפים של כינור בשילוב עם גרפים קופסה כדי להמחיש את ההסתברות, הצפיפות ומאפייני ההתפלגות של הנתונים.
   2. השווה את צורת וריכוז התפלגות הנתונים בין הקבוצות.
6. בדיקות אמינות תוך-צופה ובין צופים:
   1. בחרו באקראי 16 דגימות מתוך מערך הנתונים הכולל (8 לכל קבוצה) להערכת אמינות.
   2. לצורך חזרתיות תוך-צופה, יש לחזור על כל הליך הסגמנטציה והמדידה על אותם 16 דגימות במרווחי זמן של שבוע, לסך הכל שני ניסויים.
   3. לצורך הסכמה בין צופים, לספק הכשרה סטנדרטית לשני משקיפים עצמאיים נוספים על פרוטוקול הסגמנטציה.
   4. כל שלושת הצופים יבצעו באופן עצמאי הגדרת ROI, סף צבע וחישוב שטח על אותם 16 דגימות.
   5. חשב מקדם קורלציה תוך-מחלקתי ICC(A,1) עם רווחי ביטחון של 95% כדי לכמת התאמה מוחלטת הן בהשוואות תוך-צופה והן בהשוואות בין צופים. ה-ICC הדוח מעריך >0.90 כמצוין, 0.75–0.90 כטוב, 0.50–0.75 כבינוניים, ו-<0.50 כגרוע.
   6. בצע ניתוח בלנד-אלטמן עבור כל ההשוואות הזוגיות. חשב את ההפרש הממוצע (הטיה) ואת גבולות ההתאמה של 95% (הפרש ממוצע +/- 1.96 SD). תוצאה של מבחן t זוגי לא משמעותי (P > 0.05) מצביעה על הטיה שיטתית זניחה בלבד.
7. תוכנה: בצע את כל הניתוחים הסטטיסטיים באמצעות תוכנה מתאימה. נתייחס ל-P < 0.05 כמובהק סטטיסטית.

תוצאות

תהליך הניסוי שהוקם במחקר זה הדגים בהצלחה פרוטוקול לא הרסני להערכה כמותית של PDL שנותר על שיניים שנעקרו. כפי שמתואר בעיצוב הניסוי (איור 1), הפרוטוקול שילב פרוצדורות חילוץ קליניות עם רכישה דיגיטלית ואימות ביולוגי. יישום סריקה דיגיטלית תוך-פה, ואחריה הנדסה הפוכה תלת-ממדית, אפשרו שחזור מדויק של פני השורש (איור 2). המודלים הדיגיטליים הבחינו ביעילות בין רקמת ה-PDL המוצבעת לבין משטח השורש החשוף בהתבסס על סף צבע, כאשר התשואה כוללת שינוי...

דיון

ההצלחה של השתילה מחדש מכוונת תלויה באופן קריטי בשימור תאי PDL בריאים על פני השורש. בעוד ששיטות חילוץ MI הומלצו קלינית להפחתת טראומה ^8,9,10, כמת התועלת הביולוגית שלהן על רקמת PDL שנותרה אתגר בשל היעדר כלי הערכה אובייקטיביים. מחקר זה קבע פרוטוקול ניתוח דיגיטלי תלת-ממדי לא הרסני להוכחת מושג לכמת רקמת PDL שאריתית. ממצאים אלו תומכים בהשערה ששיטת ה-MI מספקת שימור משמעותי יותר של רקמת PDL שנותרה על פני...

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה

שם	חברה	מספר קטלוג	הערות
96-well plate	Servicbio	CCP-96H	פלטת רב-בארות לתרבית תאים ומדידת ספיגה
Biosafety cabinet	Thermo Fisher Scientific	1300 Series4 A2	ארון בטיחות ביולוגי מסווג II לנהלים סטריליים
Cell Counting Kit-8 (CCK-8) solution	MedChemExpress	HY-K0301	חומר ריאגנט לבדיקת חיוניות תאים
Centrifuge	Ustc Zonkia Zcientific Instruments	SC-3610	צנטריפוגה מעבדתית למשקע תאים
Culture medium	Gibco	DMEM 11965	מדיום בסיסי לתחבורה ודגירה של תאים
Dental forceps	Jinzhong Surgical instruments	K0F130/K0F100	מכשיר תיקון שיניים רגיל
Fetal bovine serum	Anhui Kangyuan Biotechnology Co., Ltd	KY-01003S	תוסף סרום עגלי בקר למדיום תרבית
Graduated periodontal probe	Jinzhong Surgical instruments	K6F040	עזר לגירוד PDL מהשליש האמצעי של השורש
Hemostatic forceps	Jinzhong Surgical instruments	J31130	כלי ניתוחי המשמש לאבטחת השן במהלך סריקה
Humidified incubator	Thermo Fisher Scientific	Forma	דגירה לתרבית תאים הנשמרת ב-37°C עם 5% CO2
Image editing software	Adobe Systems Inc.	Adobe Photoshop CC 2018	תוכנה לבחירת צבעים
Image editing software	Wayne Rasband, National Institutes of Health	ImageJ2 v2.14.0	תוכנה לסף צבע
Intraoral digital scanner	Aidite (Qinhuangdao) Technology Co., Ltd.	Aidite Cameo	סורק אופטי לרכישת מודל תלת-ממדי דיגיטלי
Local anesthesia	Produits Dentaires Pierre Rolland	Primacaine Articaine	חומר הרדמה דנטלי (למשל, ארטיקיין או לידקאין)
Microplate reader	Biotek	Elx808	ספקטרופוטומטר למדידת OD ב-450 nm
Penicillin/Streptomycin	Gibco	15070063	תוסף אנטיביוטי למדיום תרבית
Periotome	Carl Martin	LS529PT	מכשיר תיקון חדיר מינימלי
Reverse engineering software	Geomagic Inc.	Geomagic Studio 2013	תוכנת מודל תלת-ממדי לחישוב שטח פנים
Sterile centrifuge tube	Servicbio	EP-1500-J	צינור פלסטי לאיסוף ועיבוד דגימות
Sterile phosphate-buffered saline (PBS)	Gibco	10010	מאגר שטיפה לדגימות ביולוגיות
Sterile scalpel blade	Jiayuan Medical Devices	Sterile Scalpel Blade	להב סקלפל סטרילי לגירוד רקמת PDL
Sterile sline	Servicbio	G4702-500ML	תמיסת מלח לשטיפת שיניים שחולצו
Toluidine blue	General laboratory supplier	Toluidine blue (0.1% solution)	צבע ביולוגי לויזואליזציה של רצועת חניכיים
Trypsin	Gibco	25200056	ריאגנט אנזימטי לעיכול רקמות