כל הפרוצדורות בבעלי חיים בוצעו בהתאם להנחיות המוסדיות לטיפול בבעלי חיים למעבדה ושימוש בהם, ואושרו על ידי ועדת אתיקה לבעלי חיים של Anhui University of Chinese Medicine (מספר אישור AHUCM-rabbits-2023195). הרכיבים, הכימיקלים, התוכנות והכלים ששימשו בפרוטוקול זה מפורטים ב- טבלת חומרים.
1. בעלי ניסוי וחלוקה לקבוצות
חמישים ארנבים זכרים בריאים בוגרים מסוג New Zealand White (בגיל 6 חודשים, במשקל 2.0–2.5 kg) הושגו מחוות הגידול Laifu במחוז Nanjing Pukou (רישיון ייצור בעלי חיים מס': SCXK (Su) 2024-0007). כל בעלי החיים עברו תקופת הסתגלות והזנה של שבוע אחד לפני הניסוי. הברך הימנית הוקצתה להערכת הנפיחות והברך השמאלית לאיסוף רקמת סחוס כהסכמה פרוצדורלית עקבית, ולא על בסיס היפותזה ניסויית ספציפית. לאחר ההסתגלות, הארנבים חולקו אקראית לחמש קבוצות (n = 10 לכל קבוצה): קבוצת ביקורת, שלא עברה הליך יצירת מודל או טיפול; קבוצת מודל KOA, שבה הושרה KOA באמצעות שיטת Videman המעודכנת; קבוצת celecoxib, שבה הוחל טיפול תרופתי 6 שבועות לאחר יצירת המודל; קבוצת acupotomy, שבה הוחל טיפול ב-acupotomy 6 שבועות לאחר יצירת המודל; וקבוצת sham acupotomy, שבה הוחל דקר סיכה ללא חיתוך או שחרור 6 שבועות לאחר יצירת המודל.
2. הקמת מודל ה-KOA
כל השפנפנים, למעט אלו בקבוצת הביקורת, עברו את פרוצדורת Videman המעודכנת להשראת KOA. בעלי החיים היו בצום במשך 12 h לפני הניתוח. הרדמה הושרה על ידי מתן תוך-ורידי של 3% pentobarbital sodium במינון של 30 mg/kg דרך וריד האוזן השולי. לאחר הכנה שגרתית של אזור הניתוח, חיטוי וכיסוי סטרילי, בוצע חתך אורך לאורך ההיבט המדיאלי של מפרק הברך. הרצועה הקולטרלית המדיאלית והרצועה הצולבת הקדמית נכרתו בזה אחר זה, והמניסקוס המדיאלי הוסר לחלוטין. לאחר מכן, החתך נסגר בשכבות.
כדי להפחית את הסיכון לזיהום לאחר הניתוח, ניתן פניצילין בהזרקה תוך-שרירית במינון של 40,000 U/kg/day במשך 3 ימים רצופים. לאחר הניתוח, הוחזרו השפנפנים לכלוביהם ואפשרו להם תנועה ללא הגבלה ללא קיבוע של המפרק.
3. טיפול ב-sham acupotomy
ששה שבועות לאחר יצירת מודל ה-KOA, ארנבים בקבוצת ה-sham acupotomy עברו את אותם הליכי מישוש וסימון נקודות שבוצעו בטיפול ה-acupotomy הפעיל. מחט acupotomy סטרילית חד-פעמית במידות 0.35 mm × 25 mm הוכנסה בניצב דרך העור בכל נקודה מסומנת עד להגעה לרקמה התת-עורית. לא בוצעו פעולות חיתוך, שחרור, מניפולציה רוחבית או כל תמרון שחרור מכני אחר. המחט נשלפה מיד לאחר ההחדרה ללא מניפולציה של הרקמה. הטיפול ה-sham ניתן פעם בשבוע במשך 4 שבועות רצופים.
4. טיפול באקופוטומיה (Acupotomy)
ששה שבועות לאחר הmodellization של KOA, ארנבונים מקבוצת האקופוטומיה קובעו על שולחן טיפולים. הרקמות הפרי-מפרקיות סביב הברך הפגועה נבחנו במישוש, במיוחד סביב הפיקה ובמרחבי המפרק המדיאליים והלטרליים, כדי לזהות מבנים דמויי חוט או קשריות קשות. ארבע עד שש נקודות טיפול נבחרו על סמך ממצאי המישוש וסומנו על העור.
אזור הטיפול נגסו וחומש באמצעות הליכי סטריליזציה שגרתיים. מחט אקופוטומי (acupotomy) סטרילית חד-פעמית במידה של 0.35 mm × 25 mm הוכנסה לאט ובאופן מאונך בכל אחת מהנקודות המסומנות עד להגעה לפני השטח של העצם. הפרוצדורה בוצעה בהתאם לטכניקת האקופוטומי בת ארבעה שלבים. תחילה בוצע שחרור אורכי, ולאחריו הפרדה רוחבית. כאשר נתקל פיתול (nodule) קשה, הוא נחתך עד לתחושת שחרור מובחנת שהורגשה דרך מחט-הסכין. לאחר הפרוצדורה, המחט הוצאה, וכל נקודת הכנסה נלחצה קצרות עם גזה סטרילית וכוסתה בחבישה דביקה. הטיפול ניתן פעם בשבוע במשך 4 שבועות רצופים.
5. טיפול תרופתי
6 שבועות לאחר יצירת מודל ה-KOA, ארנבות בקבוצת ה-celecoxib קיבלו תרחיף celecoxib באמצעות הזנה דרך הפה (oral gavage) במינון של 24 mg/kg פעם ביום למשך 4 שבועות רצופים. התרחיף הומס מדי יום במי מלח פיזיולוגיים. פרטי הספק והקטלוג מופיעים בטבלת החומרים.
6. הערכת נפיחות מפרק הברך
בסוף תקופת ההתערבות, כ-10 שבועות לאחר יצירת מודל ה-KOA, נערכה הערכה של נפיחות מפרק הברך. חוט משי רך נכרך סביב האזור הנפוח ביותר של מפרק הברך הימני, בדרך כלל בגובה מישור השוק (tibial plateau). החוט הוסר ונמדד בעזרת סרגל לדיוק של מילימטר אחד, והאורך שנרשם הוגדר כהיקף הברך.
את יחס הנפיחות היחסי חישבו באמצעות המשוואה הבאה:

7. איסוף דגימות
בסיום תקופת ההתערבות, הארנבים הורדמו באמצעות מתן פניטוברביטול נתרן 3% במינון של 30 mg/kg לווריד השולי של האוזן. מפרק הברך השמאלי נפתח באמצעות להב סקלפל מס' 23 כדי לחשוף את המשטחים המפרקיים של רמת השוקה (tibial plateau) והקונדילים הפמוראליים. רקמת סחוס מפרקי נאספה מאזורים אלו.
כל דגימת סחוס חולקה לשני חלקים. חלק אחד קובע ב-4% paraformaldehyde לצורך בדיקה היסטופתולוגית. החלק השני הוכנס למבחנות קריו-גניות, הוקפא במהירות בחנקן נוזלי ונשמר ב-−80 °C עד לביצוע האנליזות המולקולריות. מיד לאחר השלמת כל הליכי איסוף הרקמות, השפנפנים הומתו באמצעות אמבוליה של אוויר על ידי הזרקה תוורידית מהירה של אוויר דרך וריד האוזן השולי.
צביעה היסטולוגית ודירוג לפי שיטות Mankin ו-Moran בוצעו באמצעות דגימות סחוס מכל 10 השפנפנים בכל קבוצה (n = 10). תמונות מייצגות של צביעות hematoxylin and eosin ו-Safranin O–Fast Green נבחרו משלושה שפנפנים שנבחרו באופן אקראי לכל קבוצה. אימונוהיסטוכימיה ו-Western blotting בוצעו באמצעות דגימות משלושה שפנפנים שנבחרו באופן אקראי לכל קבוצה (n = 3). תגובת שרשרת פולימראז עם שעתוק הפוך כמותי (Quantitative reverse transcription polymerase chain reaction) ובדיקת ELISA (enzyme-linked immunosorbent assay) בוצעו באמצעות דגימות משישה שפנפנים שנבחרו באופן אקראי לכל קבוצה (n = 6). כל בחירות תתי-הקבוצות בוצעו באופן אקראי ללא ידע מוקדם על השיוך לקבוצות.
8. צביעת המטוקסילין ואוזין
רקמת סחוס שקובעה ב-4% paraformaldehyde עברה דקלציפיקציה בתמיסת 10% ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) ב-pH 7.4 למשך 4–6 שבועות. תמיסת הדקלציפיקציה הוחלפה מדי 3 ימים. לאחר שאישור הדקלציפיקציה התקבל באמצעות חדירת מחט, הרקמה עברה דהידרטציה בסדרת אתנול מדורגת של 70%, 80%, 90%, 95%, ו-100%, הבהרה ב-xylene וטמיעה בפרפין. הרקמה הטמיעה נחתכה בעובי של 5 µm באמצעות מיקרוטום, והחתכים הועלו על עלויות זכוכית.
לצביעה ב-hematoxylin and eosin, חוממו החתכים ב-60 °C למשך 60 min, עברו דה-פראפיניזציה ב-xylene בשלוש החלפות של 5 min כל אחת, ועברו רהידרציה רצופה ב-ethanol בריכוזים של 100%, 95%, 80%, ו-70%, ולאחר מכן במים מזוקקים. החתכים נצבעו ב-hematoxylin למשך 5 min, נשטפו תחת מי ברז זורמים למשך 10 min, עברו דיפרנציאציה ב-1% hydrochloric acid שהומס ב-70% ethanol למשך 2–3 s, ונשטפו במים מזוקקים. לאחר מכן נצבעו החתכים ב-eosin למשך 2 min, נשטפו במים מזוקקים, עברו דהידרציה דרך ethanol בריכוזים של 70%, 80%, 90%, 95%, ו-100%, עברו הבהרה (clearing) ב-xylene, ונקבעו (mounted) עם שרף ניטרלי. מורפולוגיית הסחוס נבחנה, ותמונות מייצגות הושגו באמצעות מיקרוסקופ אור.
9. צביעה ב-Safranin O–Fast Green
חתכים של סחוס הטמעים בפרפין עברו דה-פרפיניזציה והידרציה מחדש כפי שמתואר בסעיף 8. החתכים נצבעו ב-Weigert iron hematoxylin למשך 5 min ונשטפו במים מזוקקים. לאחר מכן, החתכים נצבעו בתמיסת Fast Green בריכוז 0.05% למשך 3 min, נשטפו קצרות בחומצה אצטית 1% למשך 10–15 s, ונצבעו בתמיסת Safranin O בריכוז 0.1% למשך 5 min.
לאחר הצביעה, החתכים הובאו לייבוש מהיר באתנול 95% ו-100%, עברו לשקיפות ב-xylene, ונקבעו עם שרף ניטרלי. החתכים הצבועים נבחנו באמצעות מיקרוסקופ אור. עוצמת הצביעה ב-Safranin O, המשקפת את תכולת הפרוטאוגליקנים, נותחה באופן חצי-כמותי באמצעות תוכנה לניתוח תמונות.
10. דירוג היסטולוגי
שני פתולוגים, שהיו עיוורים להקצאות של הקבוצות הניסוייות, העריכו באופן עצמאי את החתכים הצבועים באמצעות מערכות הדירוג של Mankin ו-Moran כדי להעריך את מידת הניוון של הסחוס. לפני ההערכה, לכל החתכים הוקצו קודי זיהוי אקראיים. הקצאות הטיפולים לא נחשפו לפתולוגים עד להשלמת כל הדירוגים23.
11. ספיחה חיסונית תלוית אנזים (ELISA)
רקמת סחוס קפואה נשקלה, עורבבה עם phosphate-buffered saline ב-pH 7.4, ועברה הומוגניזציה יסודית על קרח. ההומוגנאט סובב בצנטריפוגה ב-3,000 × g למשך 20 דקות ב-4 °C, והתוף נאסף לצורך אנליזה. ריכוזי interleukin-1β (IL-1β), tumor necrosis factor-α (TNF-α), ו-interleukin-6 (IL-6) בתוף הרקמה נמדדו באמצעות ערכות ELISA ספציפיות לארנב בהתאם להוראות היצרן.
12. תגובת שרשרת פולימראז עם שעתוק הפוך כמותי
RNA כולל הופק מרקמת סחוס באמצעות שיטה המבוססת על פנול-כלורופורם. בקצרה, הרקמה עברה ליזיס באמצעות ריאגנט להפקת RNA, והוסף כלורופורם כדי להפריד בין הפאזה המימית לפאזה האורגנית. הפאזה המימית נאספה, וה-RNA הושקע באמצעות isopropanol, נשטף ב-75% ethanol, יובש באוויר והומס במים שעובדו ב-diethyl pyrocarbonate. ריכוז ה-RNA והטוהר שלו נמדדו באמצעות ספקטרופוטומטר.
לפני השעתוק ההפוך, הוסר DNA גנומי שארי באמצעות ריאגנט לסילוק DNA גנומי. לאחר מכן סונטז DNA משלים באמצעות ערכה לשעתוק הפוך לפי הוראות היצרן. תגובת שרשרת פולימראז כמותית (Quantitative polymerase chain reaction) בוצעה באמצעות שיטת זיהוי מבוססת SYBR Green במערכת PCR בזמן אמת. תנאי המחזור היו כדלקמן: דנטורציה ראשונית ב-95 °C למשך 1 min, ולאחריה 40 מחזורים של דנטורציה ב-95 °C למשך 20 s וקישור והארכה ב-60 °C למשך 1 min. ניתוח עקומת דיסוציאציה בוצע כדי להעריך את ספציפיות ההגברה.
נמדדו רמות הביטוי של matrix metalloproteinase-3 (MMP-3), matrix metalloproteinase-13 (MMP-13), SRY-box transcription factor 9 (SOX9), aggrecan, RIC8A ו-circPDE4B. β-actin שימש כגן הייחוס הפנימי. הביטוי היחסי חושב באמצעות השיטה. רצפי הפריימרים מופיעים ב-טבלה 1.
13. אנליזת Western blot
רקמת סחוס לוויסה בבופר radioimmunoprecipitation assay בתוספת phenylmethylsulfonyl fluoride. הליזט סובב בצנטריפוגה ב-12,000 × g למשך 15 min ב-4 °C, והתוף נאסף כפרק החלבון הכולל. ריכוז החלבון נקבע באמצעות בדיקת bicinchoninic acid.
כמויות שוות של חלבון (30 µg לכל נתיב) הופרדו באמצעות אלקטרופורזה של ג'ל פוליאקרילאמיד עם סודיום דודציל סולפט (SDS-PAGE) בריכוז 10% והועברו לממברנות polyvinylidene fluoride שהופעלו מראש במתנול. ההעברה בוצעה בזרם של 300 mA בטמפרטורה של 4 °C. זמני ההעברה היו כדלקמן: aggrecan (250 kDa) למשך 90 min; MMP-3 (60 kDa), RIC8A (59 kDa), SOX9 (56 kDa), ו-MMP-13 (52 kDa) למשך 50 min; ו-p38 MAPK (41 kDa) ו-GAPDH (36 kDa) למשך 40 min. הממברנות נחסמו עם 5% חלב רזה ללא שומן ב-Tris-buffered saline המכיל Tween 20 למשך 2 h בטמפרטורת החדר. לאחר מכן, הממברנות דגרו למשך הלילה ב-4 °C עם נוגדנים ראשוניים נגד MMP-3 (1:2,000), MMP-13 (1:1,000), SOX9 (1:1,000), aggrecan (1:1,000), RIC8A (1:1,500), p38 MAPK מפספר (1:1,000), ו-p38 MAPK כולל (1:2,000). GAPDH (1:2,000) שימש כביקורת טעינה. לאחר שלושה שטיפות ב-Tris-buffered saline המכיל Tween 20 (10 min כל אחת), הממברנות דגרו עם נוגדנים שניוניים המשורשרים ל-horseradish peroxidase (1:20,000) למשך 1.2 h בטמפרטורת החדר. לאחר שלוש שטיפות נוספות, פסי החלבון הודגמו באמצעות מצע chemiluminescence מוגבר ותועדו באמצעות מערכת לתיעוד ג'לים. עוצמת הפסים נמדדה כמותית באמצעות תוכנת ImageJ ונורמלה ל-GAPDH.
14. אימונוהיסטוכימיה
חתכים של סחוס המוטמעים בפרפין עברו דפרפיניזציה ודהידרציה באמצעות סדרה מדורגת של אתנול (שלושה סבבי החלפה של xylene, 5 min כל אחד; ולאחריהם אתנול בריכוזי 100%, 95% ו-80%, 3 min כל אחד). שחזור אנטיגן בוצע על ידי חימום החתכים בבופר EDTA (pH 9.0) בסיר לחץ. הבופר חומם עד לרתיחה, ולאחר הגעה ללחץ, נמשך השחזור למשך 2 min, ולאחר מכן בוצע קירור לטמפרטורת החדר. פעילות פראוקסידאז אנדוגנית נחסמה באמצעות מי חמצן 3% למשך 10 min בטמפרטורת החדר. לאחר שטיפה, קשירה לא ספציפית נחסמה באמצעות סרום עיזים למשך 20 min בטמפרטורת החדר ובחושך.
את החתכים הדגרו עם נוגדנים ראשוניים נגד p38 MAPK מפוספורל (1:800) ונגד nuclear factor kappa B (NF-κB) מפוספורל (1:300) למשך 60 min ב-37 °C. לאחר שלושה שטיפות עם phosphate-buffered saline המכיל Tween 20, הדגרו את החתכים עם נוגדנים משניים מתאימים המצומדים ל-horseradish peroxidase למשך 30 min ב-37 °C. לאחר שלושה שטיפות נוספות, נעשה שימוש ב-diaminobenzidine לפיתוח הצבע (בבקרה תחת מיקרוסקופ), ולאחר מכן בוצעה צביעה נגדית ב-hematoxylin (למשך 2 min), בידול ב-1% hydrochloric acid ב-70% ethanol, והכחלה בתוך תמיסת lithium carbonate (למשך 30 s). לאחר מכן, החתכים עברו דהידרציה, שקיפות, הרכבה ובחינה באמצעות מיקרוסקופ אור. הצביעה הוערכה באמצעות תוכנת ImageJ, וצפיפות אופטית משולבת חושבה לצורך ניתוח חצי-כמותי.
15. ניתוח סטטיסטי
הנתונים מוצגים כממוצע ± SEM. השוואות בין קבוצות מרובות בוצעו באמצעות ניתוח שונות חד-כיווני (one-way analysis of variance) ולאחריו מבחן Tukey post hoc. ערך של P < 0.05 נחשב למשמעותי מבחינה סטטיסטית.