פרוטוקול אופטימלי למודל של היצרות מסתם אבי העורקים בהשראת תיל גלישה בעכברים

Yaoyu Zhang; Jing Zhou; Yanjiani Xu; Shuang Liu; Fangyang Huang; Jialiang Zhang; Mao Chen

doi:10.3791/72218

הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

פרוטוקול אופטימלי למודל של היצרות מסתם אבי העורקים בהשראת תיל גלישה בעכברים

222 צפיות

⸱

DOI:

10.3791/72218

⸱

21 באוגוסט 2026

Yaoyu Zhang^*¹^,²^,³ , Jing Zhou^*¹^,²^,³ , Yanjiani Xu^*¹^,²^,³ , Shuang Liu¹^,²^,³ , Fangyang Huang¹^,²^,³ , Jialiang Zhang¹^,²^,³ , Mao Chen¹^,²^,³

¹Laboratory of Cardiac Structure and Function, Institute of Cardiovascular Diseases, West China Hospital, Sichuan University, ²Department of Cardiology, West China Hospital, Sichuan University, ³Cardiac Structure and Function Research Key Laboratory of Sichuan Province, West China Hospital, Sichuan University

^* These authors contributed equally

במאמר זה

סיכום

פרוטוקול זה מפרט מודל אופטימלי של היצרות מסתם אביאלי המושרה על ידי תיל תומך (guidewire) בעכברי C57BL/6. פלטפורמת תמיכה וסקולרית מותאמת אישית שהודפסה בתלת-ממד מאפשרת שליטה מדויקת בדימום, מה שמוביל לשיעור הישרדות של 95% לאחר 24 שעות (19/20) ושיעור הצלחה כולל של המודל של 90% לאחר 4 שבועות (18/20).

תקציר

היצרות מסתם אביאלי (AVS) היא מחלה קרדיווסקולרית מרכזית עם שכיחות עולה באוכלוסיות מזדקנות, אך המחסור ברקמות מסתמים חולות מגביל משמעותית מחקרים מכניסטיים ופיתוח טיפולי. פרוטוקול זה מבסס ומבצע אופטימיזציה למודל עכברים רב-שחזור של AVS על ידי שיפור שיטת הפגיעה במסתם המושרית על ידי תיל (guidewire) של Honda, באמצעות ניהול מבוקר של דימומים. עכברים זכרים ונקבות מסוג C57BL/6 עוברים פגיעה במסתם האביאלי המושרית על ידי תיל; הפרוערה שופרה באמצעות פלטפורמת תמיכה וסקולרית המודפסת בתלת-ממד, המשיגה שליטה מדויקת בדימום במהלך ההכנסה וההוצאה של התיל. מדדי התוצאה כוללים הישרדות לאחר 24 h, הערכה אקו-קרדיוגרפית לאחר 4 שבועות, ותיקוף היסטופתולוגי. הפרוטוקול האופטימלי משיג שיעור הישרדות של 95% לאחר 24 h (19 מתוך 20 בעלי חיים); בקרב השורדים, 94.7% (18 מתוך 19) עומדים בקריטריון ההצלחה ההמודינמי שהוגדר מראש לאחר 4 שבועות, מהביא לשיעור הצלחה כולל של המודל של 90% (18 מתוך 20 בעלי חיים), כפי שאושר על ידי אקו-קרדיוגרפיה ואנליזה היסטולוגית. מודל סטנדרטי זה מספק פלטפורמה אמינה וניתנת לשחזור לחקר מנגנונים של דגנרציה של המסתם ולהערכת התערבויות טיפוליות פוטנציאליות.

מבוא

מחלות מסתמי הלב נותרות נטל בריאותי משמעותי הן במדינות מפותחות והן במדינות מתפתחות, כאשר השכיחות עולה במקביל להזדקנות האוכלוסייה¹. למרות שהשתלת מסתם אאורטלי דרך קטטר (TAVI) שינתה את הטיפול בסטנוזיס אאורטלי חמור²^,³, המנגנונים התאיים והמולקולריים המניעים את דגנרציית המסתם עדיין אינם מובנים במלואם, ולא קיים טיפול פרמקולוגי מאושר להאטה או להבטלה של התקדמות המחלה⁴^,⁵. מכשול מרכזי במחקר של מחלות מסתמיים הוא הזמינות המוגבלת של רקמה חולה לצורך חקירה⁶^,⁷. קשה להשיג דגימות של מסתם אאורטלי אנושי בכמות מספקת, ומודלים של בעלי חיים המשחזרים באופן מהימן שינויים פתולוגיים במסתם היו נדירים באותה מידה⁸. פער זה הניע מאמצים מתמשכים לפיתוח מודלים של בעלי חיים המשחזרים את המאפיינים ההמודינמיים וההיסטולוגיים של סטנוזיס של המסתם האאורטלי (AVS).

גישות תזונתיות קונבנציונליות, כגון האכלה ממושכת בתזונה עשירה בשומן בעכברי ApoE⁻/⁻, דורשות 20–24 שבועות ומניבות שיעורי הצלחה נמוכים, כאשר רק מיעוט מהבעלי החיים מפתחים פנוטיפ סטנוטי מובהק⁹^,¹⁰^,¹¹^,¹². מודל הפגיעה במסתם המושרה על ידי תיל תג (guidewire), שתואר על ידי Honda et al., טיפל ברבים מהחסרונות הללו על ידי גרימה לפגיעה מכנית בעליכות המסתם דרך גישה לעורק הת carotid¹³. הטכניקה המקורית כוללת דיסקציה של עורק ה-carotid, העברת תיל תג רטרוגרדי למסביב למסתם האאורטלי, שריטות חוזרות של העליכות וסיבוב התיל — דבר המייצר שינויים המודינמיים מהירים תוך ימים ספורים ופנוטיפ סטנוטי יציב עד לשבוע 4¹³^,¹⁴^,¹⁵^,¹⁶. בשל מהירותה היחסית וישירותה, שיטת Honda אומצה באופן נרחב במחקרי מסתמים מהעת האחרונה. עם זאת, נותרו מספר פערים משמעותיים. פרטי הפרוצדורה המלאים לא תועדו באופן מלא בספרות, חסרה סטנדרטיזציה בין מעבדות, ותפקידו של השליטה בדימום — גורם מרכזי לתחלואה פרי-אופרטיבית במודל זה — מעולם לא נבחן באופן שיטתי. חוסר עקביות זה מפחית את השחזוריות ומגביל את היכולת להעברה לקליניקה.

הועלתה ההשערה כי אופטימיזציה שיטתית של השליטה בדימום עשויה לשפר באופן משמעותי את ההישרדות הפרי-אופרטיבית ואת מהימנות המודל. פרוטוקול זה מציג גישה מזוקקת וסטנדרטית המבוססת על שיטת Honda, באמצעות הצגת פלטפורמת תמיכה וסקולרית מותאמת אישית המודפסת בתלת-ממד. המכשיר מאפשר מתיחה לונגיטודית ניתנת לכיוונון של העורק הקרוטידי, ובכך מספק המוסטזיס זמני מלא במהלך הכנסה והוצאה של תיל חוט (guidewire) מבלי למעוך את כלי הדם. באמצעות גישה זו, הפרוטוקול המותאם השיג שיעור הישרדות של 95% למשך 24 h (19 מתוך 20 בעלי חיים); בקרב השורדים, 94.7% (18 מתוך 19) עמדו בקריטריון ההצלחה ההמודינמי שהוגדר מראש לאחר 4 שבועות, מה שהביא לשיעור הצלחה כולל של המודל של 90% (18 מתוך 20 בעלי חיים). תיעוד פרוצדורלי שלב-אחר-שלב מסופק כדי להקל על השחזור במעבדות שונות.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

הערה: כל הפעולות בניסויים בבעלי חיים המתוארות בפרוטוקול זה בוצעו בהתאם למדריך לטיפול בבעלי חיים במעבדה (Guide for the Care and Use of Laboratory Animals) ואושרו על ידי הוועדה המוסדית לטיפול בבעלי חיים ושימוש בהם (IACUC) של בית החולים West China (פרוטוקול מס' 20240311055). לאורך כל הניסוי נעשה שימוש בעכברים זכרים מסוג C57BL/6 (בני 8–10 שבועות; משקל של כ-22–25 g) ובעכברים נקבות מסוג C57BL/6 (בני 8–10 שבועות; משקל של כ-18–20 g). כל החומרים, הריאגנטים, המכשירים, התוכנות והמכשירים המותאמים שנעשה בהם שימוש בפרוטוקול זה, כולל פלטפורמת התמיכה בכלי הדם שהודפסה בתלת-ממד, מפורטים בטבלת החומרים.

1. הכנה טרום-ניתוחית וחתך כירורגי

הרדם את העכבר באמצעות איזופלורן (3% להשראה, 1.5–2% לתחזוקה) המאודה ב-100% חמצן. ודא עומק הרדמה מספק על ידי בדיקת היעדר רפלקסים של נסיגת כף הרגל (צביטה בבהונות).
זהירות: איזופלורן הוא חומר הרדמה נדיף. השתמש בו עם מערכת שאיבה פעילה או באזור מאוורר היטב, לבש ציוד מגן אישי (PPE) מתאים ופעל לפי נהלי הבטיחות המוסדיים.
מרח משחה אופתלמית בשתי העיניים. הנח את העכבר במצב שכיבה על גב (supine) על פלטפורמה כירורגית עם ויסות טמפרטורה השומרת על 37 °C.
הכן את השדה הכירורגי על ידי הסרת שיער מהאזור הצווארי הקדמי באמצעות קרם להסרת שיער כימית.
חטא את העור בשלושה מחזורים לסירוגין של פובידון-יוד (או כלורהקסידין) ואלכוהול 70% (או סליין סטרילי חמים), וסיים במרכיב האנטיספטי.
בצע חדירה תת-עורית של לידוקאין 0.5% לאורך קו החתך המתוכנן לצורך אלגזיה מקומית מוקדמת.
לאחר מכן, בצע חתך עורי אורכי בקו האמצע (בקירוב 1.0–1.5 cm) בחלקו הקדמי של הצוואר, במיקום מעט מימין לקו האמצע של הקנה, באמצעות מיקרו-מספריים.
זהירות: מיקרו-מספריים, מחטים, תלי תנאים (guidewires) וחפצים חדים אחרים עלולים לגרום לפציעה. טפל בהם בזהירות והשלך חפצים חדים משומשים למכלי איסוף מאושרים לחפצים חדים.

2. בידוד כלי הדם והנחת תפרים

תחת מיקרוסקופ סטריאולוגי כירורגי, חשוף את העורק התהומי המשותף הימני (RCCA) באמצעות דיסקציה קהה דרך שכבות הפסציה והשרירים שמעליו. הפר בעדינות את ה-RCCA מהעצב התועה הסמוך וממרקמת החיבור שסביבו, תוך הקפדה להימנע מגירוי מכני של העצב התועה.
הערה: שמור על בלוטות הרוק ועל הרקמות החשופות לחות באמצעות סליין סטרילי חמים לאורך כל ההליך כדי למנוע התייבשות.
בצע ליגציה קבועה לקצה הדיסטלי של ה-RCCA באמצעות תפר משי 6-0 שנקשר כקשר מאובטח שאינו מחליק.
מקם קשר מSurvived (slipknot) רפוי של תפר משי 6-0 סביב המקטע הפרוקסימלי של ה-RCCA, והשאר אותו לא מהודק לשימוש מאוחר יותר במהלך הכנסת תיל ההובלה (guidewire).

3. יישום הפלטפורמה וביצוע ארטריוטומיה

הערה: לפני הניתוח, יש לעקר את הפלטפורמה המודפסת בתלת-ממד באמצעות גז ethylene oxide (EtO), ולאחר מכן לבצע אוורור מספק, ולעקר את כל כלי הניתוח המתכתיים באמצעות אוטוקלאב.

אזהרה: אתילן תחמוצת (Ethylene oxide) הוא רעיל, דליק ומסרטן. יש להשתמש בעיקור ב-EtO רק במתקנים מאושרים, לאפשר אוורור מספק, ולפעול לפי נהלי הטיפול בפסולת של המוסד.

הכנס בזהירות את פלטפורמת התמיכה הווסקולרית המודפסת בתלת-ממד מתחת למקטע המבודד של ה-RCCA, כאשר קודקוד ה-V ההפוך ממוקם ישירות מתחת לכלי הדם.
כוונן לאט את הפלטפורמה כדי להגביר את המתיחה האורכית של ה-RCCA על ידי השחלת התפרים שהוצבו מראש לתוך חריצי צד גבוהים יותר באופן הדרגתי.
הערה: קודקוד ה-V ההפוך תוכנן בזווית של 120° כדי להתאים לעקמומיות של כלי הדם מבלי למעוך את הדופן. הפסק את הגברת המתיחה בנקודה המדויקת שבה פעימות העורקים אינן ניתנות עוד לזיהוי חזותי. נקודת סיום חזותית קריטית זו מבטיחה המוסטזיס זמני ללא פגיעה מוגברת בכלי הדם.
בצע ארטריוטומיה רוחבית קטנה (בערך מחצית מהיקף כלי הדם) במקטע ה-RCCA המיוצב באמצעות מיקרו-מספריים. דימום מינימלי או ללא דימום כלל אמורים להתרחש אם המתיחה הוגדרה נכון.

4. הכנסת תיל תניין ופגיעה במסתם

תחת תצפית מיקרוסקופית, הכניסו את תיל ההובלה (guidewire) (קוטר 0.014 inch / 0.36 mm) אל תוך הלומן העורקי דרך הפרטומיה הרוחבית (transverse arteriotomy) בכיוון רטרוגרדי לעבר שורש האורטה.
הערה: קליבר זה הוא הסטנדרט במודלים מפורסמים של פגיעה באמצעות תיל הובלה, והוא מקارب את קוטר הלומן של ה-RCCA בעכברים (~0.4–0.5 mm), מה שנותן יחס של תיל-כלי דם של כ-0.7–0.9.
זהירות: תיל ההובלה עלול לנקב כלי דם או רקמות סובבות. התקדמו איתו לאט תחת תצפית והשליכו תيلي הובלה משומשים כפסולת חדה או כפסולת כירורגית מזוהמת.
הדקו את קשר המהלקה (slipknot) הפרוקסימלי שהוצב מראש סביב כלי הדם ותיל ההובלה כדי להשיג המוסטזיס מלא באתר ההחדרה. לאחר שהקשר מאובטח, הסירו בזהירות את הפלטפורמה המודפסת בתלת-ממד מתחת לכלי הדם.
הערה: אם מופיע דימום בלתי צפוי במהלך ההחדרה, או אם קוטר תיל ההובלה יוצר חיכוך מופרז, מיקמו מחדש את הפלטפורמה באופן זמני כדי לסייע בהמוסטזיס, או הפחיתו מעט את מתיחת הפלטפורמה כדי לאפשר ללומן של כלי הדם להתרחב לפני ניסיון ההחדרה החוזר.
הקישו את תיל ההובלה בזהירות בכיוון רטרוגרדי דרך ה-RCCA, מעבר לקשת האורטה, ולקראת המסתם האורטלי. תחת הנחיה אקו-קרדיוגרפית בזמן אמת, ודאו שקצה תיל ההובלה חצה את המסתם האורטלי ונכנס לחדר השמאלי.
כאשר קשר המהלקה הפרוקסימלי מהודק לחלוטין לשמירה על המוסטזיס, בצעו את הפגיעה המכנית במסתם על ידי ביצוע 100 תנועות דחיפה-משיכה (הלוך ושוב) דרך המסתם האורטלי, ולאחריהן 100 תנועות סיבוב של תיל ההובלה כנגד עלעות המסתם.
הערה: 100 תנועות דחיפה-משיכה ו-100 תנועות סיבוב נקבעו באמצעות אופטימיזציה נרחבת במעבדה כמספרים המאזנים בצורה הטובה ביותר את זמן הפרוצדורה עם השראה מהימנה של סטנוזיס משמעותית מבחינה המודינמית.

5. הוצאת תיל המנחה וסגירת הפצע

עם השלמת הפגיעה במסתם, הוצאו באיטיות את תיל ההובלה מהכלי.
המירו מיד את קשר ההחלקה הפרוקסימלי לקשר קבוע שאינו מחליק כדי ללגט את ה-RCCA הפרוקסימלי ולמנוע דימום לאחר הפרוצדורה.
סגרו את חיתוך העור באמצעות תפרים קטועים של ניילון 5-0 או סגורי פצעים כירורגיים.
אין להעניק תרופות נוגדות דלקת שאינן סטרואידיות (NSAIDs) לאחר הניתוח. אין להעניק אנטיביוטיקה פרי-אופרטיבית, שכן הפרוצדורה מבוצעת בתנאים אספטיים.
העבירו את החיה לכלוב התאוששות נקי ומחומם ועקבו אחריה באופן רציף עד להשבה מלאה של יכולת התנועה.

6. הערכה אקו-קרדיוגרפית של המודינמיקה התוצקתית של המסתמים

בצעו הערכות אקו-קרדיוגרפיות בכל העכברים ששרדו 4 שבועות לאחר הניתוח כדי להעריך את חומרת ההיצרות של מסתם אבי העורקים.
הסיכו הרדמה על ידי הנחת בעל החיים בתא השראה עם 3% isoflurane ב-100% חמצן. ודאו את עומק ההרדמה על ידי בדיקת אובדן רפלקס נסיגת הכף. הסתרו את דופן החזה הקדמית באמצעות קרם להסרת שיער כימית. מרחו משחה עינית בשתי העיניים כדי למנוע התייבשות של הקרנית.
העבירו את העכבר המורדם לפלטפורמת דימות בוויסות טמפרטורה בתנוחת גב (supine).
קבעו את הכפות לאלקטרודות אקג (ECG) שטח לצורך ניטור רציף של קצב הלב. כווננו את ריכוז ה-isoflurane (בדרך כלל 1.0–1.5%) כדי לשמור על קצב לב פיזיולוגי יציב של 450–550 beats per min.
נקו את דופן החזה הקדמית ומרחו שכבה נדיבה של ג'ל צימוד אקוסטי שחומם מראש.
רכישת דימויי B-mode
1. באמצעות מערכת אולטרסאונד Vevo 3100 עם מתמר MX550D (40 MHz), לחצו על בקר ה-B-Mode כדי להתחיל בדימוי דו-ממדי חי.
2. מקמו את המתמר במיקום פאראסטרנלי שמאלי כדי לקבל מבט פאראסטרנלי לאורך הציר של החדר השמאלי, מסתם אבי העורקים ואבי העורקים העולה. הגדירו באופן אופטימלי את העומק, הרוחב וה-2D gain.
רכישת M-mode ומדידת החדר השמאלי
1. ממבט הציר הארוך הפאראסטרנלי, לחצו על בקר ה-M-Mode. מקמו את קו הדגימה לרוחב החדר השמאלי בגובה השריר הפפילרי.
2. לחצו על Start כדי להתחיל את הרכישה. לאחר שהתקבל עקבה יציבה המקיפה לפחות שלושה מחזורי לב, לחצו על Save.
3. בתוכנת Vevo LAB, השתמשו בכלי ה-LV Trace כדי לשרטט את האנדוקרדיום בסוף הדיאסטולה ובסוף הסיסטולה, ורשמו את הממדים הפנימיים של החדר השמאלי, עובי הדופן הקדמית והאחורית (LVAWd, LVPWd), ומסת החדר השמאלי.
מקמו מחדש והטו את המתמר כדי לרכוש מבט ייעודי של קשת אבי העורקים.
הערה: השגת מבט ספציפי זה של קשת אבי העורקים חיונית למדידות מדויקות של מהירות זרימה חוצת-מסתם, שכן היא מבטיחה יישור אופטימלי של אלומת האולטרסאונד עם כיוון זרימת הדם דרך מסתם אבי העורקים.
הערכת Color Doppler
1. ממבט קשת אבי העורקים, לחצו על בקר ה-Color. מקמו את תיבת הצבע מעל מסתם אבי העורקים ומעל החלק הפרוקסימלי של אבי העורקים העולה.
2. כווננו את סולם הצבע וה-gain כך שהסילון הסיסטולי יוצג בבירור ללא aliasing. לחצו על Start, ולאחר מכן על Save.
מדידת מהירות ב-Pulsed-wave Doppler
1. לחצו על בקר ה-PW Doppler. מקמו את שער נפח-הדגימה בנקודה הצרה ביותר של הסילון (vena contracta), ובצעו תיקון זווית (<60°).
2. לחצו על Start כדי להתחיל את העקבה הספקטרלית; לאחר שהוקלטו לפחות שלושה מחזורי לב, לחצו על Save. בתוכנת Vevo LAB, מדדו את מהירות השיא חוצת-המסתם באמצעות כלי ה-Peak Velocity, תוך חישוב ממוצע של לפחות שלושה מחזורים.

7. עיבוד היסטולוגי וצביעה של שורש האורטה

בעקבות הערכה אקו-קרדיוגרפית, יש לאשר הרדמה עמוקה על ידי וידוא היעדר מוחלט של רפלקס נסיגת כף הרגל. בצעו נתיקה של צווארו (cervical dislocation) כשיטת ההמתה המשנית, בהתאם להנחיות AVMA להמתה של בעלי חיים (מהדורת 2020) ופרוטוקולים מאושרים מוסדית.
זהירות: גופות של בעלי חיים, רקמות שהוצאו וחומרים מזוהמים בדם הם פסולת ביולוגית/בעלי חיים. השליכו אותם בהתאם לתקנות בטיחות ביולוגית ותקנות מתקני בעלי חיים מוסדיים.
בצעו תורקוטומיה (thoracotomy) באמצעות מספרי מיקרו כירורגיים כדי לחשוף את הלב.
החדירו מחט פרפוזיה לקודקוד (apex) של הפרוקי השמאלי ושטפו את מחזור הדם המערכתי בתמיסת פוספט מושבית (PBS) סטרילית קרה. פרפוזיה מוצלחת תתבטא בהבהרה של הכבד והריאות.
הוציאו את הלב השלם ושקיעו אותו ב-4% paraformaldehyde (PFA) בטמפרטורת החדר למשך 24 h לפחות כדי להבטיח קיבוע מלא.
זהירות: Paraformaldehyde הוא רעיל ומגרה. יש לטפל ב-4% PFA תחת מנדף כימי עם ציוד מיגון אישי (PPE) מתאים ולהשליך פסולת PFA כפסולת כימית מסוכנת.
העבירו את הרקמה המקובעת למעבד רקמות אוטומטי לצורך התייבשות רצופית דרך סדרת אתנול מדורגת, ולאחריה הבהרה באמצעות xylene וחדירה של שעוות פראפין ב-65 °C.
זהירות: Xylene הוא דליק ורעיל, ופראפין חם עלול לגרום לכוויות. טפלו ב-xylene תחת מנדף או במעבד מאושר והשליכו פסולת המכילה xylene כפסולת כימית מסוכנת.
טמנו את הלבבות המעובדים בבלוקים של פראפין.
הערה: אוריינטציה נכונה של הלב בזמן הטמינה היא קריטית. מקמו את הלב כך שיאפשר חיתוך רוחבי דרך שורש האביון (aortic root) בגובה שלושת עלולות השסתום.
באמצעות מיקרוטום סיבובי, גזרו חיתוכים רצופים ברוחב 4–5 µm דרך מישור השסתום האאורטלי, תוך הבטחה שכל שלוש העלולות נכללות. העבירו את החיתוכים לשקופיות זכוכית ושמרו בטמפרטורת החדר.
בצעו צביעת Hematoxylin and Eosin (H&E) על שקופיות נבחרות כדי להעריך מורפולוגיה של הרקמה, רמיodeling מבני ועובי של עלולות השסתום.
בצעו צביעת Von Kossa על חיתוכים רצופים סמוכים כדי לזהות ולכמת הסמנה קלקית (dystrophic calcification), המזוהה כמשקעי מינרלים בצבע חום כהה עד שחור בתוך עלולות השסתום.

8. הליך ניתוח דמה (Sham)

הערה: סעיף זה מתאר את הליך בקרת השם (Sham). עכברי השם עוברים את אותה הרדמה, הכנת עור, חשיפת כלי דם, ארטריוטומיה והחדרת תיל תני guiding wire רטרוגרדית כפי שנעשה בקבוצת פגיעת התיל באורטה (AWI); תיל התני מוקדם עד לרמה הסופרא-וולבולרית (מעל השסתום) אך אינו עובר דרך מסתם האורטה, ולא מבוצעת פגיעה מכנית במסתם.

הרדימו את העכבר והכינו את שטח הניתוח כפי שמתואר בשלבים 1.1 עד 1.5.
תחת תצפית במיקרוסקופ סטריאו, חשפו את ה-RCCA באמצעות דיסקציה קהה כפי שמתואר בשלב 2.1.
בצעו ליגציה קבועה לקצה הדיסטלי של ה-RCCA באמצעות תפר משי 6-0 והניחו קשר מתיחה (slipknot) רופף פרוקסימלית (כפי שמוסבר בשלבים 2.2–2.3).
בצעו ארטריוטומיה רוחבית והחדירו את תיל ההובלה (guidewire) כפי שמתואר בשלבים 3.1–4.2.
הובילו את תיל ההובלה בכיוון רטרוגרדי עד לרמה הסופראוולבולרית של אבי העורקים העולה תחת הנחיה של אקו-קרדיוגרפיה, תוך אישור שקצה תיל ההובלה לא חוצה את המסתם האאורטלי.
הערה: אל תבצעו את תנועות הדחיפה-משיכה או תנועות הסיבוב הגורמות לפגיעה במסתם המתוארות בשלב 4.4. שלפו את תיל ההובלה ובצעו מיד ליגציה ל-RCCA הפרוקסימלי כפי שמתואר בשלבים 5.1–5.2.
סגרו את חתך העור באמצעות תפרי ניילון 5-0 מקוטעים או סגורי פצעים.
הערה: בדומה לקבוצת ה-AWI, אלגזיה תוך-ניתוחית ניתנת על ידי חלחול מקומי של לידוקאין (שלב 1.5). העבירו את בעל החיים לכלוב התאוששות מחומם ועקבו אחריו עד להשבה מלאה של יכולת הניידות.
הכפיפו עכברי Sham למעקב לאחר ניתוח, להערכה אקו-קרדיוגרפית לאחר 4 שבועות ולעיבוד היסטולוגי זהים לאלו של קבוצת ה-AWI.

9. ניתוח סטטיסטי ותכנון המחקר

במהלך המחקר, 20 עכברים (10 זכרים, 10 נקבות) הוכפפו להליך AWI, ו-6 עכברי C57BL/6 (3 זכרים, 3 נקבות) הוכפפו להליך Sham.
מדדו את מהירות השיא התראסוולבולרית (הקריטריון המגדיר את הצלחת המודל) בכל החיות ששרדו (19 AWI, 6 Sham).
נתחו מדדים אקו-לבביים והיסטולוגיים מפורטים בתת-קבוצה מוגדרת מראש ומאוזנת מבחינת מין של 6 עכברי AWI (3 זכרים, 3 נקבות).
ודאו שכל המדידות האקו-לבביות וההיסטולוגיות מבוצעות על ידי חוקרים שאינם מודעים להקצאת הקבוצות (blinded).
בחנו את נורמליות הנתונים באמצעות מבחן Shapiro-Wilk לפני ביצוע בדיקות פרמטריות. השוו בין שתי קבוצות בלתי תלויות (AWI לעומת Sham) באמצעות מבחן t של Student דו-זנבי למדגמים בלתי זוגיים.
נתחו והציגו את נתוני ההישרדות באמצעות שיטת Kaplan-Meier.
בצעו את כל הניתוחים בתוכנת GraphPad Prism. הציגו את הנתונים כממוצע ± SEM, כאשר p < 0.05 נחשב למשמעותי סטטיסטית.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

פיתוח פלטפורמה מודפסת בתלת-ממד לבקרת דימומים

כדי לטפל בדימום פרי-אופרטיבי – מקור התחלואה והתמותה העיקרי במודל AVS קונבנציונלי המושרה על ידי תיל חוט (guidewire) – תוכננה פלטפורמת תמיכה וסקולרית בהדפסת תלת-ממד (איור 1הפלטפורמה יוצרה באמצעות הדפסת סטריאוליתוגרפיה (SLA) משרף פוטו-פולימר ביו-תואם (עומד בתקני USP Class VI / ISO 10993), בעובי מבני של 1.07 מ"מ. לאחר ההדפסה, החלקים נשטפו באיזופרופיל אלכוהול להסרת שרף שלא עבר פילמור, ועברו פילמור משלים תחת ...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

פרוטוקול זה מספק תיאור מפורט של מודל בעלי חיים יציב ובטוח של היצרות מסוע (aortic stenosis). מאפיין של גישה זו הוא פלטפורמה עזר המקלה על החדרת תיל תניד (guidewire) לעורק התריס השיתופי (common carotid artery). הפלטפורמה מיוצרת באמצעות הדפסת סטריאוליתוגרפיה (SLA) משרף פוטופולימר תואם ביולוגית (עובי מבני של 1.07 mm) וכוללת משטח קודקודי בצורת V הפוכה עם זווית קודקוד של 120°; קובץ התכנון המלא זמין באופן חופשי כקובץ .stp משלים. התקן זה מבטיח כניסה חלקה של התיל התניד, שולט באופן אובייקטיבי על איבוד דם פרי-אופרטיבי, ובכך שומר על ...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

המחברים מצהירים כי אין להם ניגודי עניינים פיננסיים או קונפליקטים של אינטרסים.

תודות

עבודה זו נתמכה על ידי הפרויקט הלאומי המרכזי למדע וטכנולוגיה למחלות כרוניות לא מדבקות (2026ZD0554300); הקרן הלאומית למדעים טבעיים של סין (U23A20395, 82170375, 82500455); הקרן הלאומית למדעים טבעיים של מחוז סיצ'ואן (2026NSFSC0552); קרנות המחקר הבסיסיות לאוניברסיטאות מרכזיות; פרויקטים של מדע וטכנולוגיה של האזור האוטונומי טיבט, סין (XZ202501ZY0120); ופרויקט '1.3·5' של בית החולים ווסט צ'יינה, אוניברסיטת סיצ'ואן (ZYGD23021, 23HXFH009). המחברים מודים ל-Qipu Feng (מרכז לניסויים בבעלי חיים, בית החולים ווסט צ'יינה, אוניברסיטת סיצ'ואן) על הסיוע באולטרסאונד של בעלי חיים קטנים.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שם	חברה	מספר קטלוג	הערות
פלטפורמת תמיכה כלי דם מודפסת בתלת-ממד	הכנה מותאמת אישית	N/A	פלטפורמת תמיכה כלי דם מותאמת אישית מודפסת בתלת-ממד; קובץ CAD משלים מסופק בפורמט .stp.
4% Paraformaldehyde	Servicebio	G1101-3ML	קיבוע רקמות
חוט תפירה ניילון 5-0	Jinhuan Medical	F503	סגירת העור באמצעות תפריים מקוטעים
חוט תפירה משי 6-0	Jinhuan Medical	RC411	ליגציה קבועה של ה-RCCA הדיסטלי וקשר החלקה פרוקסימלי
ג'ל צימוד אקוסטי (מחומם מראש)	Keppler	KL-250	אקו-קרדיוגרפיה
שרף פוטו-פולימר תואם ביולוגית	Formlabs	RS-F2-BMCL-01	חומר הדפסת SLA ששימש לייצור פלטפורמת התמיכה לכלי דם מותאמת אישית מודפסת בתלת-ממד.
עכברי C57BL/6 (8–10 שבועות; זכרים 22–25 g, נקבות 18–20 g)	GemPharmatech	C57BL/6	שני המינים שימשו לאורך כל הניסוי; השוכנו בתנאים סטנדרטיים
גז אתילן אוקסיד	מתקן סטריליזציה מוסדי	N/A	סטריליזציה של פלטפורמת התמיכה לכלי דם מותאמת אישית מודפסת בתלת-ממד.
FreeCAD	FreeCAD Project Association	1.1.1	ויזואליזציית CAD ויצירת שרטוט מבני תלת-ממדי מקובץ ה-.stp.
GraphPad Prism	GraphPad Software	9.0	ניתוח סטטיסטי והצגת נתונים בגרפים
חוט מדריך (Guidewire), קוטר 0.014-inch	Boston Scientific	H749393071900	פגיעה מכנית במסתם האאורטלי
ערכת צביעה של Hematoxylin and Eosin (H&E)	Beyotime	C0105S	מורפולוגיה ועובי של עלה המסתם
Isoflurane	RWD Life Science	R510-22-2	3% להשראה; 1.5–2% לתחזוקה ב-100% O₂
Lidocaine	Shijiazhuang Pharmaceutical Group	H14024045	חלחול מקומי מניעתי באתר החיתוך (0.5%, שלב 1.5)
מספרי מיקרו-כירורגיה	RWD Life Science	F11022-11	חיתוך עור, ארטריוטומיה, תורקוטומיה
מתמר MX550D (40 MHz)	FUJIFILM VisualSonics	MX550D	אקו-קרדיוגרפיה
קרם להסרת שיער Nair	Nair	255 g	להסרת שיער מהצוואר הקדמי ומדופן החזה
סלקציית פוספט (PBS)	Servicebio	G4202-100ML	פרפוזיה
מיקרוטום סיבובי	Leica Biosystems	RM2125 RTS	חיתוך סדרתי בעובי 4–5 µm
מיקרוסקופ סטריאוסקופי (כירורגי)	Olympus	SZX7	בידוד כלי דם ומיקרו-כירורגיה
מערכת אולטרסאונד ברזולוציה גבוהה Vevo 3100	FUJIFILM VisualSonics	Vevo 3100	אקו-קרדיוגרפיה
ערכת צביעה של Von Kossa	Servicebio	G1043-20ML	גילוי הסתיידות דיסטרופית
Xylene	Nanjing Chemical Reagent Co., Ltd.	C0430530209	הבהרה של רקמות במהלך עיבוד פראפין.

מקורות

Otto CM, Newby DE, Hillis GS. Calcific aortic stenosis: a review. JAMA. 2024;332(23):2014–2026.
Vincent F, et al. Transcatheter aortic valve replacement in bicuspid aortic valve stenosis. Circulation. 2021;143(10):1043–1061.
Kraler S, et al. Calcific aortic valve disease: from molecular and cellular mechanisms to medical therapy. Eur Heart J. 2021;43(7):683–697.
Blaser MC, Bäck M, Lüscher TF, Aikawa E. Calcific aortic stenosis: omics-based target discovery and therapy development. Eur Heart J. 2025;46(7):620–634.
Lindman BR, et al. Calcific aortic stenosis. Nat Rev Dis Primers. 2016;2(1):16006.
Yu Chen H, et al. Dyslipidemia, inflammation, calcification, and adiposity in aortic stenosis: a genome-wide study. Eur Heart J. 2023;44(21):1927–1939.
Peeters FECM, et al. Calcific aortic valve stenosis: hard disease in the heart: a biomolecular approach towards diagnosis and treatment. Eur Heart J. 2018;39(28):2618–2624.
Cai D, Saint L, Markley J, Chen SY. Novel humanized aortic valve calcification model. Circ Res. 2025;136(12):1632–1635.
Rattazzi M, et al. Calcification of advanced atherosclerotic lesions in the innominate arteries of ApoE-deficient mice: potential role of chondrocyte-like cells. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2005;25(7):1420–1425.
Aikawa E, et al. Arterial and aortic valve calcification is abolished by elastolytic cathepsin S deficiency in chronic renal disease. Circulation. 2009;119(13):1785–1794.
Hjortnaes J, et al. Arterial and aortic valve calcification inversely correlates with osteoporotic bone remodeling: a role for inflammation. Eur Heart J. 2010;31(16):1975–1984.
Aikawa E, et al. Osteogenesis associates with inflammation in early-stage atherosclerosis evaluated by molecular imaging in vivo. Circulation. 2007;116(24):2841–2850.
Honda S, et al. A novel mouse model of aortic valve stenosis induced by direct wire injury. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2014;34(2):270-278. doi:10.1161/ATVBAHA.113.302610.
Zhu Z, et al. Models for calcific aortic valve disease in vivo and in vitro. Cell Regen. 2024;13:6.
Zhong G, et al. Activation of Piezo1 promotes osteogenic differentiation of aortic valve interstitial cells through YAP-dependent glutaminolysis. Sci Adv. 2023;9(22):eadg0478.
Li S, et al. Targeted inhibition of PTPN22 is a novel approach to alleviate osteogenic responses in aortic valve interstitial cells and aortic valve lesions in mice. BMC Med. 2023;21(1):252.
Niepmann ST, et al. The graded murine wire-induced aortic valve stenosis model mimics the human functional and morphological disease phenotype. Clin Res Cardiol. 2019;108(8):847–856.
Qian N, et al. A novel mouse model of calcific aortic valve stenosis. Anim Models Exp Med. 2024;7(4):523–532.
Iqbal F, et al. Sortilin enhances fibrosis and calcification in aortic valve disease by inducing interstitial cell heterogeneity. Eur Heart J. 2023;44(10):885–898.
Billig H, et al. Aortic valve stenosis and osteoporosis: insights from a mouse model. BMC Cardiovasc Disord. 2025;25(1):562.
Artiach G, et al. Omega-3 polyunsaturated fatty acids reduce aortic valve disease via the resolvin E1-ChemR23 axis. Circulation. 2020;142(8):776–789.
Clayton JA, Collins FS. NIH to balance sex in cell and animal studies. Nature. 2014;509(7500):282–283.
Li B, et al. IGF1-mediated mesenchymal-endothelial transition as a potential regulatory target in calcific aortic valve disease. BMC Med. 2025;23(1):600.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

מודל פגיעה באמצעות תיל הובלה מודל עכבת מסתם אביאלטי בעכברים בקרת דימום פלטפורמת תמיכה כלי דם הערכה אקו-לבית תיקוף היסטופתולוגי דגנרציה של מסתם התערבויות טיפוליות אופטימיזציה של מודל