פרוטוקול המחקר בבעלי חיים אושר על ידי ועדת האתיקה המוסדית של בית החולים Nanjing Drum Tower (מספר אישור: 2025AE1065, 26 בספטמבר 2025) ובוצע בהתאם להנחיות המפורטות ב-Guidelines for the Care and Use of Laboratory Animals (מהדורה שמינית), שפורסמו על ידי המכונים הלאומיים לבריאות של ארצות הברית.
בעלי חיים
במחקר זה נעשה שימוש ב-30 עכברים זכרים בני 5 שבועות מגזע C57BL/6J. לאחר שבוע אחד של האכלה להסתגלות, כל העכברים שהו עם גישה למזון ומים תחת מחזור יום-לילה של 12 שעות לסירוגין, בטמפרטורה של 22°C ± 2°C ובלחות של 40%–60%. כדי לבסס את מודל העכברים ל-DCM, נעשה שימוש ב-HFD בשילוב עם מינון נמוך של STZ (איור 1A). ארבעה שבועות לאחר תחילת ההאכלה בתזונה עתירת שומן (HFD; 60% שומן, 20% חלבון ו-20% פחמימות), העכברים הושמתו מצום במהלך הלילה ולאחר מכן קיבלו streptozotocin (STZ; 8 mg/mL מומס בבופר ציטראט, pH 4.5) באמצעות הזרקה תוך-פריטוניאלית במינון של 35 mg/kg/day למשך שלושה ימים רצופים. עכברי קבוצת הביקורת נאכלו בתזונה רגילה (10% שומן, 20% חלבון ו-70% פחמימות) וקיבלו נפחים שוויים של בופר ציטראט. לאחר 15 שבועות נוספים של תחזוקה על תזונה עתירת שומן, עכברים שעמדו בשני הקריטריונים, רמת גלוקוז אקראית בדם של ≥13.3 mmol/L ושבר פליטה של החדר השמאלי (LVEF) של <55%, הוגדרו כמודלים של DCM שהבססו בהצלחה. עכברי DCM מאומתים אלו מספרו והוקצו באופן אקראי לקבוצות ה-DCM וה-DCM + Lac-Phe באמצעות טבלת מספרים אקראיים. כחצי מהעכברים לא פיתחו את המודל; בעלי חיים אלו הומתו בהומניוטיות בהתאם לדרישות האתיקה לבעלי חיים. בקצרה, העכברים חולקו לשלוש קבוצות: ביקורת (Control), DCM, ו-DCM + Lac-Phe (n = 10 לכל קבוצה). כל 10 העכברים בכל קבוצה עברו אקו-קרדיוגרפיה, מדידת משקל גוף ו-OGTT. לאחר תקופת טיפול של 28 ימים, נאספו הלבבות לניתוחים המשכיים. היו 10 עכברים בכל קבוצה. מתוכם, שלושה עכברים לכל קבוצה שימשו לריצוף טרנסקריפטום, שלושה שימשו למיקרוסקופיית אלקטרונים חודרת (TEM) וצביעה היסטולוגית, ושלושה שימשו לניתוח ביטוי חלבונים. העכבר הנותר בכל קבוצה נשמר כגיבוי. לאחר ביסוס מוצלח של מודל ה-DCM, Lac-Phe הומס בתמיסת סליין נורמלית לריכוז סופי של 10 mg/mL. עכברים בקבוצת ה-DCM + Lac-Phe קיבלו Lac-Phe בהזרקה תוך-פריטוניאלית במינון של 50 mg/kg/day בנפח הזרקה של 5 mL/kg, פעם ביום למשך 28 ימים רצופים. עכברים בקבוצות הביקורת וה-DCM קיבלו נפח שווה של סליין נורמלית כביקורת נשא (vehicle control).

איור 1Lac-Phe משפר את התפקוד הלבבי ואת השחזור הפתולוגי בעכברים עם קרדיומיופתיה סוכרתית. (A) תרשים של מודל עכברים ל-DCM המושרה על ידי HFD/STZ ופרוטוקול הטיפול ב-Lac-Phe. (B) משקלי גוף של עכברים בקבוצות הביקורת (Control), ה-DCM וה-DCM + Lac-Phe במהלך תקופת הטיפול שנערכה במשך 4 שבועות; n = 10 לכל קבוצה. (C) בדיקת סבילות גלוקוז תוך-השקעה (OGTT) בקבוצות המצוינות; n = 10 לכל קבוצה. (D) תמונות אקו-קרדיוגרפיות מייצגות בשבועות 0, 2 ו-4 לטיפול. (E,F) כימות של מקדם הפליטה של החדר השמאלי (LVEF) (E) וקיצור פראקציונלי (FS) (F); n = 10 לכל קבוצה. (G) צביעת המטוקסילין ואאוזין (H&E) מייצגת&חתכי לב שצבעו ב-E. סרגל קנה מידה = 1 מ"מ. (H,I) צביעה מייצגת של חתכי לב בשיטת Masson’s trichrome (H) וכימות של השטח הפיברוטי (I); n = 3 לכל קבוצה. סרגל קנה מידה = 50 μm(J,K) צביעה נציגה של לב באמצעות לקטין גלוטנין מדגנים (WGA) בחתכי לב (J) וכימות של שטח יחסי של קרדיומיוציטים (K); n = 3 לקבוצה. סרגל קנה מידה = 20 μmהנתונים מוצגים כממוצע ± סטיית תקן P < 0.05, **P < 0.001. אנא לחצו כאן כדי לצפות בגרסה מורחבת של איור זה.
תפקוד לבבי
לאחר הרדמה באמצעות שאיפת isoflurane, נקבעו העכברים במצב שכיבה על גבם על פלטפורמה בעלת בקרת טמפרטורה (37°C). מימדי החדר השמאלי ומהירות זרימת הדם במסתם המיטרלי במהלך הדיאסטולה והסיסטולה נמדדו באמצעות מכשיר אקו-לב מצויד במתמר 40 MHz, שעל סמך נתוניו חושבו LVEF ושיעור הקיצור (FS). עבור כל עכבר נאספו שלושה מחזורי לב רצופים.
טיפול בתאים
תאי H9c2 תורגלו במצע Dulbecco’s modified Eagle’s המועשר ב-10% fetal bovine serum ו-1% penicillin–streptomycin בטמפרטורה של 37°C באטמוספירה לחה המכילה 5% CO₂. התאים הועברו למצע חדש (passaged) כל 2–3 ימים עם הגעה ל-70%–80% confluence. לצורך הניסויים, התאים נזרעו בצלחות של 10 cm ולאחר מכן חולקו לשלוש קבוצות: ביקורת (Control), גלוקוז גבוה/חומצה פלמיטית (HG/PA), ו-HG/PA + Lac-Phe. תאים בקבוצות HG/PA ו-HG/PA + Lac-Phe נחשפו תחילה ל-0.25 mM חומצה פלמיטית ו-50 mM גלוקוז למשך 24 h. לאחר מכן, תאים בקבוצת HG/PA + Lac-Phe טופלו ב-10 μg/mL Lac-Phe למשך 24 h נוספות תוך שמירה על החשיפה ל-HG/PA; תאים בקבוצת HG/PA קיבלו נפח שווה של PBS תחת אותם תנאי HG/PA. בניסויי עיכוב p-AMPK, הוספו 10 μM AMPK-IN-3 (המומס ב-DMSO) בו-זמנית עם Lac-Phe למשך 24 h, וקבוצות הביקורת התואמות קיבלו נפח שווה של DMSO. בניסויי atorvastatin, תאי H9c2 תחת תנאי HG/PA טופלו ב-10 μM atorvastatin למשך 24 h, לבדו או בשילוב עם 10 μg/mL Lac-Phe.
צביעה היסטולוגית
לאחר 28 ימים של מתן Lac-Phe, הוצאו לבבות העכברים וקובאו בשיטת טבילה ב-4% paraformaldehyde (pH 7.4) למשך 24 h. רקמות לב קבועות נטמנו בפרפין ונחתכו לפרוסות בעובי 6-μm. נחתכי הרקמה נצבעו ב-hematoxylin and eosin, wheat germ agglutinin ו-Masson’s trichrome. כל תהליכי הצביעה בוצעו בהתאם להנחיות היצרן. דימות של השקף כולו (Whole-slide imaging) בוצע בהגדלה של 20× באמצעות מיקרוסקופ שדה בהיר (brightfield) ברזולוציה גבוהה המצויד במערכת מצלמה דיגיטלית.
ניתוח Western blot
ריכוז החלבון נקבע באמצעות בדיקת Bradford. ליזאטים של רקמות הופרדו ב-SDS-PAGE על ג'לים של 10% (w/v) acrylamide והועברו אלקטרופורטית לממברנות polyvinylidene difluoride. אתרי קישור לא ספציפיים נחסמו באמצעות 5% bovine serum albumin למשך 2 h בטמפרטורת החדר. לאחר מכן, הממברנות הובאו לאינקובציה למשך לילה ב-4°C עם נוגדנים ראשוניים (בדילול של 1:1,000), ולאחריהם ששה שטיפות עם TBST (5 min כל אחת) על שייקר. לאחר מכן, הממברנות הובאו לאינקובציה עם נוגדנים משניים המצומדים ל-horseradish peroxidase (בדילול של 1:5,000) למשך 2 h בטמפרטורת החדר, ואחריהם שש שטיפות נוספות עם TBST (5 min כל אחת). פסי החלבון הודגמו באמצעות ערכה של רכיב chemiluminescence משופר. כימות תוצאות ה-western blot בוצע באמצעות ניתוח דנסיתומטרי בתוכנת ImageJ. כל הנוגדנים ששימשו במחקר זה מופיעים ב-טבלת החומרים.
טרנסקריפטומיקה
RNA כולל בודד מרקמות לב של עכברי C57BL/6J באמצעות TRIzol Reagent וערכות RNeasy mini. איכות ה-RNA הוערכה באמצעות 2100 bioanalyzer, אשר הדגימה רמת טוהר ושלמות גבוהה של ה-RNA. ספריות RNA-seq הוכנו בהתאם לערכה VAHTS Universal V10 RNA-seq Library Prep Kit ורצף באמצעות מערכת Illumina NovaSeq 6000 (קריאה בודדת, 150 bp). גנים המבטאים ביטוי Differentially expressed זוהו באמצעות DESeq2, עם ערך מותאם P ערך < 0.05 ולוגריתם מוחלט₂ שינוי שכיפות (fold change) > 1 נחשב למשמעותי מבחינה סטטיסטית. ניתוח העשרה של אונטולוגיית גנים (GO) בוצע עבור גנים בעלי ביטוי דיפרנציאלי, והמשמעות של העשרת גנים בעלי ביטוי דיפרנציאלי במונחי GO חושבה באמצעות אלגוריתם ההתפלגות ההיפרגאומטרית.
צביעת Oil Red O וצביעת שומנים ב-LD540
רקמת לב הוטמעה בתרכובת OCT ולאחר מכן נחתכה לחתיכות בעובי 10-μm. החתיכות הקפואות הגיעו לשיווי משקל בטמפרטורת החדר למשך 30 דקות וקובעו עם 4% פאראפורמאלדהיד למשך 10 דקות. לאחר שטיפה ב-PBS, הונחו החתיכות באיזופרופנול 60% למשך 15 שניות וכוסו בתמיסת עבודה של Oil Red O למשך 30 דקות. לאחר מכן טיפלו בחתיכות באיזופרופנול 60% למשך 15 שניות ושטפו אותן שלוש פעמים ב-PBS. לצורך צביעת ליפידים ב-LD540, תאי H9c2 נשטפו ב-PBS וקובעו עם 4% פאראפורמאלדהיד למשך 10 דקות בטמפרטורת החדר. לאחר מכן הדגירו את התאים עם 10 μM LD540 למשך 30 דקות בטמפרטורת החדר.
מיקרוסקופיית אלקטרונים בשידור (TEM)
רקמות לב טריות של עכבר נחתכו לחתיכות של 1–2 mm3, קובעו במקבע למיקרוסקופ אלקטרונים ב-4°C למשך 4 שעות, לאחר מכן נשטפו במים מזוקקים פעמיים הושקעו בתמיסות אתנול בריכוזים עולים. הדגימות נטמנו, נחתכו לסינתיות ולאחר מכן נבחנו תחת מיקרוסקופ אלקטרונים חודר (TEM).
תכולת כולסט角色ול כולל (TC)
רמות כולסטרול כולל (TC) בדגימות סרום ובתאי H9c2 נמדדו באמצעות ערכת Amplex Red Cholesterol and Cholesteryl Ester Assay Kit בהתאם להוראות היצרן.
מבחן עמידות לסוכר (OGTT)
העכברים הורגזו למשך 14 h (משעה 19:00 עד 9:00) וקיבלו גלוקוז בבליעה (תמיסת אם של 20%, במינון של 2 g/kg). רמות הגלוקוז בדם נקבעו באמצעות דם שנאסף מווריד הזנב בנקודות הזמן 0, 15, 30, 60 ו-120 min לאחר מתן הגלוקוז.
מדידה באמצעות ערכה לספירת תאים-8 (CCK-8)
נעשה שימוש ב-CCK-8 למדידת חיות התאים. תאי H9c2 נזרעו לפלטות של 96 בארות בצפיפות ראשונית של 3 × 104 תאים/באר. לאחר טיפול בריכוזים שונים של Lac-Phe תחת תנאי HG/PA למשך 24 h, הוספו 10 μL מרכיב הערכה ל-100 μL של מצע גידול בכל באר, ולאחר מכן בוצעה אינקובציה ב-37°C למשך 4 h. הבליעה נמדדה ב-450 nm באמצעות קורא מיקרופלט רב-מצבים (multimode microplate reader) כדי לקבל את ערך הצפיפות האופטית (OD).
סימולציית עגינה מולקולרית (Molecular docking)
מבני הגביש של Lac-Phe ו-AMPKα1 הורדו מ-PubChem26. תהליך העגינה המולקולרית (molecular docking) בוצע באמצעות CB-DOCK227.
ניתוח סטטיסטי
כל המדידות האקו-קרדיוגרפיות, הצביעות ההיסטולוגיות והכימותים של התמונות בוצעו על ידי חוקרים שלא היו מודעים להקצאה לקבוצות. כל ניתוחי הנתונים בוצעו באמצעות Prism ו-SPSS 20.0. כל ניסוי חזר לפחות שלוש פעמים, והנתונים מוצגים כממוצע ± סטיית תקנית. הומוגניות השונות נבדקה באמצעות מבחן Levene. נורמליות אוששה על ידי בדיקה גרפית של השאריות. השוואות בין קבוצות מרובות בוצעו באמצעות ניתוח שונות חד-כיווני (one-way analysis of variance), ולאחריו מבחן post hoc של Tukey להשוואות זוגיות. עבור נתוני OGTT, נעשה שימוש ב-ANOVA דו-כיווני למדידות חוזרות (two-way repeated-measures ANOVA), כאשר הקבוצה שימשה כגורם בין-נבדקים והזמן כגורם תוך-נבדקים, ולאחריו מבחן post hoc של Bonferroni. P < 0.05 נחשב למשמעותי סטטיסטית.