הנתונים מ-GSE100927 נותחו כסט נתונים משני, נגיש לציבור ובלתי מזהה. לא גויסו משתתפים, לא נאספו דגימות אנושיות חדשות, ולא נעשה שימוש במזהים אישיים ישירים; לפיכך, לא נדרשו אישור נוסף מוועדה לאתיקה מוסדית (IRB) או הסכמה מדעת. ניסויי התאים השתמשו אך ורק בקו תאי מקפגים של מקרופאגים מבוסס, ולא כללו בעלי חיים חיים, רקמות ראשוניות מבעלי חיים, משתתפים אנושיים או חומרים אנושיים ראשוניים; לפיכך, אישור אתי מוסדי לבני אדם או לבעלי חיים לא היה רלוונטי.
זיהוי תרכובים ביו-אקטיביים ומטרות של HQT
הגישה למסד הנתונים ולפלטפורמת הניתוח של Pharmacological Systems of Traditional Chinese Medicine (TCMSP), PubMed, China National Knowledge Infrastructure (CNKI) ומסדי הנתונים של UniProt בוצעה באמצעות הגרסאות שהיו זמינות ב-16 ביולי, 2026. חיפוש אחר Scutellaria baicalensis Georgi, Paeonia lactiflora Pall., Glycyrrhiza uralensis Fisch. ו-Ziziphus jujuba Mill. בוצע בנפרד במסד הנתונים TCMSP באמצעות שמם הלטיני, האנגלי והשם הרפואי הסיני שלהם. תרכובות עם זמינות ביולוגית経 orally (OB) של ≥30% וערך דמיות-תרופה (DL) של ≥0.18 נשמרו. תרכובות כפולות שזוהו ביותר מחומר בוטני אחד מוזגו באמצעות שם התרכובת ומזהה ה-TCMSP המתאים.
חיפוש ב-PubMed בוצע באמצעות המונחים (“Huangqin Tang” OR “Huang-Qin-Tang” OR “Huang Qin Tang”) AND (constituent OR compound OR ingredient OR phytochemical OR target), וחיפוש ב-CNKI בוצע באמצעות “Huangqin Tang” AND (“chemical constituents” OR “active ingredients” OR “pharmacological targets”). נסקרו מאמרים שפורסמו עד ל-16 בדצמבר 2025. תרכובות או מטרות נכללו רק כאשר הקשר שלהן ל-HQT או לאחד מארבעת רכיבי הצמחים שלו דווח באופן מפורש. סקירות שחסרה בהן ראיה ראשונית ניתנת למעקב, תרכובות לא מזוהות ומטרות שנחזו ללא תמיכה ניסויית או תמיכה ממאגרי נתונים הוצאו מהסקירה.
מיפוי מטרות החלבון בוצע באמצעות כלי מיפוי המזהים (identifier-mapping tool) במאגר הנתונים UniProt, כאשר האורגניזם הוגבל ל-Homo sapiens (מזהה taxon 9606). סמלי גנים אנושיים מאושרים נשמרו, בעוד שערכים שלא מופו או ערכים כפולים הוסרו. רשימת הקשרים הייחודית (deduplicated) בין התרכובות למטרות יובאה לתוכנת הוויזואליזציה של רשתות Cytoscape (גרסה 3.7.2), שם נבנתה רשת הקשרים בין תרכובות ה-HQT למטרותיהן.
זיהוי וניתוח ביואינפורמטי של מטרות הקשורות ל-AS
הגישה למסדי הנתונים GeneCards, Online Mendelian Inheritance in Man (OMIM), Comparative Toxicogenomics Database (CTD) ו-Gene Expression Omnibus (GEO) בוצעה באמצעות הגרסאות שהיו זמינות ב-16 ביולי 2026. המונח “atherosclerosis” שימש לחיפוש ב-GeneCards, OMIM ו-CTD. גנים שנשלפו מ-GeneCards עם Relevance Score של ≥1.163, המקביל לציון החציוני של כל הרשומות שנשלפו, נשמרו. רק גנים עם קשר תיעודי ישיר ל-AS מ-OMIM ומ-CTD נכללו.
מטריצת הסדרות GSE100927, קובץ הערות הדגימות וקובץ הערות הפלטפורמה GPL17077 הורדו מ-GEO. כל 104 דגימות העורקים ההיקפיים האנושיים סווגו כ-AS או כביקורת (Control) בהתאם למטא-נתוני הפנוטיפ של המאגר, ולא הוצאו דגימות על בסיס מיקום העורק.
ניתוחי ביואינפורמטיקה בוצעו באמצעות תוכנת הסטטיסטיקה R (גרסה 4.3.2) עם חבילת limma (גרסה 3.58.1), חבילת ggplot2 (גרסה 3.4.4), חבילת ComplexHeatmap (גרסה 2.18.0), חבילת clusterProfiler (גרסה 4.10.1), וחבילת org.Hs.eg.db (גרסה 3.18.0). פרובים אנוטרו באמצעות קובץ האנוטציה של פלטפורמת GPL17077, ופרובים ללא סמלי גנים מאושרים הוסרו. עבור מספר פרובים הממופים לאותו גן, חושב ממוצע באמצעות פונקציית avereps. טרנספורמציית log2(x + 1) הוחלה רק כאשר האחוזון ה-99 עלה על 100; אחרת, הערכים הלוגריתמיים שסופקו נשמרו. המערכים נורמלו בשיטת quantile.
הדגימות קודדו כ-“Control” ו-“AS”, ומטריצת עיצוב ללא נקודת חיתוך (no-intercept design matrix) נוצרה באמצעות model.matrix(~0 + group). מודלים לינאריים הותאמו באמצעות הפונקציות lmFit, makeContrasts, contrasts.fit, ו-eBayes. כל הגנים חולצו באמצעות topTable(number = Inf, adjust.method = “BH”). גנים בעלי ביטוי דיפרנציאלי הוגדרו כאלו עם ערך מוחלט של log2 fold change הגבוה מ-1 וערך p נומינלי של <0.05, בעוד שערכי p מתוקננים לפי שיטת Benjamini–Hochberg נשמרו בפלט המלא.
תרשימי געש (Volcano plots) הופקו באמצעות ערכי log2 fold-change וערכי −log₁₀ של p nominal. מפות חום (Heatmaps) נבנו לאחר סטנדרטיזציית z-score לפי שורות של הגנים שנבחרו. הגדרות עיבוד מקדמיים והדמיה זהות הוחלו על כל הדגימות.
גנים שהתקבלו מ-GeneCards, OMIM, CTD ו-GEO עברו סטנדרטיזציה באמצעות מאגר הנתונים UniProt. מזהי הגנים הומרו לסמלי גנים מאושרים באותיות רישיות, ורשומות ריקות, לא ממופות וכפולות הוסרו מכל מקור נתונים. מטרות הקונצנזוס הקשורות ל-AS הוגדרו כגנים שזוהו לפחות בשניים מארבעת מקורות הנתונים. פונקציית ה-intersect() ב-R שימשה לזיהוי גנים משותפים עם קבוצת מטרות ה-HQT הסטנדרטית.
מטרות ה-HQT-AS החופפות הוגשו למסד הנתונים STRING (גרסה 12.0), בגישה מה-16 בדצמבר 2025. הניתוח הוגבל ל-Homo sapiens, ציון האינטראקציה המינימלי נקבע ל-0.700, כל ערוצי הראיות נשמרו, ולא נוספו אינטראקטורים של מעטפת ראשונה או שנייה. טבלת האינטראקציות יוצאה ויובאה ל-Cytoscape כרשת לא מכוונת. לולאות עצמיות וקשתות כפולות הוסרו, וערכי מרכזיות של דרגה (degree), בינאיות (betweenness) וקירבה (closeness) חושבו באמצעות התוסף CentiScaPe (גרסה 2.2). גנים מרכזיים (Hub genes) הוגדרו כאלה שכל שלושת מדדי המרכזיות שלהם עלו מהממוצעים המתאימים של הרשת.
סמלי גנים מאושרים הומרו למזהי Entrez באמצעות הפונקציה bitr. מזהים שלא מופו ומזהים כפולים הוסרו, וכל הגנים שמופו בהצלחה במערך הנתונים המבואר שימשו כרקע. ניתוח העשרה של Gene Ontology עבור כל האונטולוגיות בוצע באמצעות enrichGO (ont = “ALL”), וניתוח העשרה של מסלולים מתוך ה-Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes בוצע באמצעות enrichKEGG (organism = “hsa”). הוחל תיקון Benjamini–Hochberg, ומונחים מועשרים עם ערך p מתוקנן של <0.05 נשמרו.
הסקריפטים המלאים לעיבוד מקדים, ביטוי דיפרנציאלי, ויזואליזציה והעשרה סופקו כ-TCMSP analysis.R ו-Transcriptome analysis.R. בהתבסס על תוצאות ניתוח הרשת ועל ראיות שפורסמו, paeoniflorin (PF), liquiritin, baicalin, wogonoside ו-glycyrrhizic acid זוהו כמרכיבים העיקריים של HQT20. PF נבחר כתרכובת מייצגת בשל תפקידיו המדווחים בבקרת מטבוליזם של ליפידים ואיתות של AMP-activated protein kinase.
הכנת תמצית ה-HQT
שילוב של S. baicalensis Georgi, P. lactiflora Pall., G. uralensis Fisch., ו- Z. jujuba Mill. מאומתים בוצע ביחס משקל יבש של 3:2:2:3. הוסף מים דה-יוניים ביחס של 1:10 (משקל/נפח), והתערובת חוממה תחת רפלקס למשך 1 h. התמצית סוננה בעודה חמה, והמשקע חולץ פעם שנייה עם מים דה-יוניים ביחס של 1:8 (משקל/נפח) למשך 1 h, כפי שתואר בעבר19. התסננים אוחדו, רוכזו תחת לחץ מופחת בטמפרטורה של 60°C, ויובשו בוואקום עד למשקל קבוע; ניצול החילוץ היה 36.34% . התמצית המיובשת הומסה במים סטריליים בריכוז של 1 g/mL, סוננה דרך ממבנה של 0.22 µm, חולקה לאליקוואוטים ונשמרה ב-−20°C עד לשימוש. ריכוזים ניסיוניים בוטאו כמיקרוגרמים של תמצית מיובשת למיליליטר של מצע גידול.
תרבית תאים, טרנספקציה וטיפול
מקרופאגים עכבריים מסוג RAW264.7 תורגדו במצע Dulbecco's modified Eagle עם ריכוז גלוקוז גבוה, בתוספת 10% fetal bovine serum, 100 U/mL penicillin ו-100 µg/mL streptomycin, בטמפרטורה של 37°C באינקובטור לח עם 5% CO2. התאים הועברו לתרביות חדשות (subcultured) כאשר הגיעו לכ-80% התמסרות (confluence), ונעשה שימוש אך ורק בתאים שבין מעברים (passages) 5 ל-20 לאחר ההפשרה. זהות שורת התאים אומתה מול תעודת המאגר, ומאפייני המורפולוגיה, ההיצמדות והצמיחה של התאים נוטרו באופן שגרתי. נעשה שימוש אך ורק בתרביות שהיו שליליות למיקופלסמה. תרביות שהראו זיהום, צמיחה חריגה, ואקולציה משמעותית, ששריים נרחבים, התנתקות בולטת או התפלגות תאים לא אחידה הושלו.
לצורך השתקה של AMPKα1, תאים נזרעו בריכוז של 2 × 105 תאים לבאר ב-2 mL של מצע גידול בלוחות של 6 בארות, ועברו טרנספקציה כאשר הגיעו למסף של 50%–60% confluence. סך של 100 pmol של si-AMPKα1 או siRNA שאינו מכוון למטרה (non-targeting) דולל ב-125 µL של מצע עם סרום מופחת, בעוד ש-5 µL של ריאגנט טרנספקציה מבוסס ליפידים דוללו בנפרד ב-125 µL של מצע עם סרום מופחת. לאחר דגירה של 15 min בטמפרטורת החדר, שני התמיסות אוחדו והוספו בטיפות לתאים כדי להגיע לריכוז סופי של siRNA של 50 nM. רצפי ה-si-AMPKα1 היו כדלקמן: sense, 5′-CCCATCTTATAGTTCAACCAT-3′, ו-antisense, 5′-ATGGTTGAACTATAAGATGGG-3′. מצע הגידול הוחלף לאחר 6 h, והדגירה נמשכה למשך 48 h בסך הכל לפני הטיפול ב-ox-LDL וב-PF. השתקת (knockdown) ה-AMPKα1 אומתה באמצעות qRT-PCR ו-western blotting, ורק ניסויים שהראו הפחתה משמעותית ביחס לקבוצת ה-siRNA ששימשה כביקורת שלילית נכללו בניתוחים הבאים.
PF, dorsomorphin ו-BAY 11-7082 הוכנו ב-dimethyl sulfoxide (DMSO), בעוד ש-HQT הוכן במים סטריליים. ריכוז ה-DMSO הסופי נשמר ברמה של ≤0.1% בכל קבוצות הטיפול, והנושאי (vehicle) המתאים הוסף לקבוצות הביקורת.
לצורך סריקת ריכוזים, התאים טופלו במשך 24 h ב-PF בריכוזים של 0, 1, 5, 10, 20 או 40 µM, או ב-HQT בריכוזים של 0, 12.5, 25, 50, 100 או 200 µg/mL. לאחר מכן נבחנו חיוניות התאים והפספורילציה של AMPK. על בסיס תוצאות אלו, נבחרו 20 µM PF ו-100 µg/mL HQT עבור כל הניסויים הבאים.
להשוואה בין PF ל-HQT, קבוצות הטיפול כללו קבוצת ביקורת, קבוצת 50 µg/mL ox-LDL, קבוצת ox-LDL בתוספת 20 µM PF, וקבוצת ox-LDL בתוספת 100 µg/mL HQT. כל הקבוצות דוגרו למשך 24 h. לצורך עיכוב פרמקולוגי של AMPK, קבוצת ה-ox-LDL פלוס PF קיבלה טיפול מקדים של 10 µM dorsomorphin למשך 1 h לפני הטיפול המשולב למשך 24 h21,22.
עבור עיכוב גנטי של AMPK, תאים הועברו טרנספקציה עם si-NC או si-AMPKα1 למשך 48 h ולאחר מכן שויכו לקבוצות הבקרה (Control), ox-LDL, PF, או si-AMPK בתוספת PF. קבוצות ה-PF וה-si-AMPK בתוספת PF קיבלו 50 µg/mL ox-LDL יחד עם 20 µM PF למשך 24 h. קבוצת ה-ox-LDL קיבלה ox-LDL בלבד, בעוד שקבוצת הבקרה קיבלה את הנושא (vehicle) המתאים.
כדי להעריך את המעורבות של שפילול NF-κB, קבוצת טיפול נוספת קיבלה טיפול מקדים ב-10 µM BAY 11-7082 למשך 1 h לפני חשיפה ל-50 µg/mL ox-LDL למשך 24 h23,24,25. לאחר מכן נקבעו ביטוי ABCA1, הפרת כולסטרול, הצטברות ליפידים והפרופורציות של מקרופאגים CD86⁺ ו-CD206⁺.
אלא אם צוין אחרת, התאים נזרעו 12–16 שעות לפני הטיפול, ושלוש בארות חזרות שימשו לכל קבוצת טיפול. כל בדיקה בוצעה באמצעות שלוש הכנות של תאים שגודלו באופן עצמאי בימים שונים (n = 3), למעט סריקת חיוניות התאים, שהורכבה מחמישה ניסויים עצמאיים עם חמש בארות חזרות טכניות לכל ריכוז. חזרות טכניות, מדידות כפולות ושדות מיקרוסקופיים מרובים חושבו כממוצע באופן היררכי כדי להשיג ערך יחיד עבור כל ניסוי עצמאי.
רק תרביות שהיו קשורות באופן אחיד והגיעו למעמדות של כ-60%–80%, או 50%–60% עבור ניסויי טרנספקציה, שימשו לטיפול. חומרים, תוכנות וציוד חיוניים מפורטים בנספח ה- טבלת חומרים.
בדיקת חיות תאים ו-PCR כמותי בזמן אמת
תאי RAW264.7 נזרעו בריכוז של 5 × 103 תאים לבאר בלוחיות 96-בארים והושארו להיצמד למשך לילה. התאים טופלו במשך 24 h בריכוזי PF ו-HQT המתוארים בסעיף 4. חיוניות התאים נקבעה על ידי החלפת מצע התרבית ב-100 µL של תמיסת עבודה לבדיקת חיוניות תאים, ולאחר מכן אינקובציה למשך 2 h ב-37°C בחשיכה. הבליעה נמדדה ב-450 nm.
נכללו בארות ריקות עם ריאגנטים בלבד, וערכי הבליעה שלהן הופחרו מכל המדידות. חושב ממוצע של ערכי הבליעה מחמש בארות שחזרו טכנית עבור כל ריכוז. חיות התאים חושבה כ-(בליעה של קבוצת הטיפול/בליעה של קבוצת הביקורת) × 100, כאשר ביקורת ללא טיפול הוגדרה כ-100%. בוצעו חמישה ניסויים עצמאיים.
RNA כולל הופק באמצעות ריאגנט להפקת RNA על בסיס פנול–גואנידיניום, ורק דגימות עם ערכי A260/A280 שבין 1.8 ל-2.0 שימשו למחקר. מיקרוגרם אחד של RNA כולל עבר תעתוק הפוך, וכל תגובת qPCR (quantitative PCR) בנפח של 20 µL הכילה 10 µL של 2× SYBR Green master mix, 0.4 µL של פריימרים קדמיים ואחוריים בריכוז 10 µM כל אחד, 2 µL של cDNA ו-7.2 µL של מים נקיים מנוקליאזות.
ביצוע PCR כמותי בוצע ב-95°C למשך 30 s, ולאחריו 40 מחזורים של 95°C למשך 10 s ו-60°C למשך 30 s. לאחר מכן בוצע ניתוח עקומת התכה מ-65°C עד 95°C. רצפי הפריימרים היו כדלקמן: Prkaa1 forward, 5′-ACCAGAAGCGGTGCCGGAAAGCTGG-3′; Prkaa1 reverse, 5′-TGTAGTCGGTTTATGCAGCAACGAG-3′; Gapdh forward, 5′-CGACTTCAACAGCAACTCCCACTCTTCC-3′; ו-Gapdh reverse, 5′-TGGGTGGTCCAGGGTTTCTTACTCCTT-3′.
כל דגימה נותחה בשלוש חזרות טכניות, ונכללו בקרות ללא תבנית (no-template controls). זוגות פריימרים התקבלו רק כאשר נצפה שיא התכה בודד ולא זוהה הגברה בבקרות ללא התבנית. ביטוי יחסי של Prkaa1 חושב באמצעות שיטת 2−ΔΔCt כאשר Gapdh שימש כגן הייחוס, והביטוי בקבוצת ה-si-NC נורמל ל-1.
מדידה של הצטברות ליפידים, רמות ATP והפרשת כולסטרול
לצביעה ב-Oil Red O, זרעו תאי RAW264.7 בריכוז של 5 × 104 תאים לבאר ב-500 µL של מצע גידול בלוחות של 24 בארות. לאחר הטיפול, שטפו את התאים פעמיים עם 500 µL של phosphate-buffered saline (PBS), קיבעו אותם עם 500 µL של פורמלין 10% בניטרול בופר למשך 20 min, שטפו שנית פעמיים עם PBS, שטפו פעם אחת עם 500 µL של isopropanol 60%, וצבעו עם 500 µL של תמיסת עבודה של Oil Red O שהוכנה טרי למשך 15 min בטמפרטורת החדר. שטפו את התאים הצבועים במים מזוקקים עד שהרקע היה נקי. נדגמו חמישה שדות מיקרוסקופיים מכל באר כפי שמתואר בסעיף 8, והשטח החיובי ל-Oil Red O חושב כשטח החיובי חלקי שטח השדה הכולל × 100 באמצעות סף צבע קבוע. תוצאות הצביעה התקבלו רק כאשר התאי הבקרה הראו צביעה מינימלית, התאים שטופלו ב-ox-LDL הראו טיפות ליפידים תו-תאיות נפרדות, והרקע החוץ-תאי נשאר נקי. דגימות שהראו משקעים מפוזרים, צביעה לא אחידה או התנתקות נרחבת של תאים נפסלו ותהליך הצביעה חזר על עצמו.
למדידת ATP, תאים נזרעו בריכוז של 5 × 105 תאים לבאר ב-2 mL של מצע גידול בפלטות 6 בארות. לאחר הטיפול, התאים נשטפו פעמיים ב-1 mL של PBS קר (בטמפרטורת קרח), לובו באמצעות 200 µL של ATP assay lysis buffer, וסובבו בצנטריפוגה במהירות של 12,000 × g למשך 5 min ב-4°C. מנת עבודה של 10 µL מהעליון (supernatant) ערבבה עם 100 µL של ATP detection reagent, ונמדדה כימילומינצנציה. ריכוזי ה-ATP חושבו על סמך עקומת סטנדרט. כל ליזט נמדד בשכפול (duplicate), ושלוש בארות חזרות נותחו בכל אחד משלושה ניסויים עצמאיים.
לניתוח פליטת כולסטרול (cholesterol efflux), תאים נזרעו בריכוז של 5 × 104 מספר תאים לבאר ב- 500 µL של תוצר תרבית בלוחיות 24 בארות. לאחר הטיפול, התאים נטענו ב- 1 µg/mL NBD-cholesterol למשך 24 שעות, נשטפו שלוש פעמים עם 500 µL של PBS, והודגרו למשך 4 שעות ב- 500 µL של מצע ללא סרום המכיל או 10 µg/mL אפוליפרוטאין A-I או 50 µg/mL ליפופרוטאין בעל דחיסות גבוהה. ת上עלונות תרבית נאספו ועברו צנטריפוגציה במהירות של 1,000 × ג במשך 5 דקות. התאים נשטפו פעמיים עם PBS ולוחו אותם באמצעות 200 µL של באפר ליזיס (lysis buffer). פלואורסצנציה בתלייה ובליזאטים נמדדה בשכפולים באורכי גל של עירור ופליטה של 485 ו-535 ננומטר, בהתאמה. ערכי פלואורסצנציה שהתקבלו מבארים ללא NBD-cholesterol הופחתו, ואפליקס (efflux) של כולסטרול חושב כפלוורסצנציה של התלייה חלקי סכום הפלואורסצנציה של התלייה והליזאט. × 100 עבור כל מקבל כולסטרול.
מדידה של ציטוקינים דלקתיים, פוטנציאל ממברנת המיטוכונדריה, מיני חמצן רהאקטיביים ואפופטוזיס
עבור בדיקת ELISA (enzyme-linked immunosorbent assay), תאי RAW264.7 נזרעו בריכוז של 5 × 105 תאים לבאר ב-2 mL של מצע גידול בלוחות של 6 בארות. לאחר 24 שעות של טיפול, נאספו העלונות של התרבית, סובבו בצנטריפוגה ב-1,000 × g למשך 10 דקות ב-4°C, ונותחו באופן מיידי או חולקו לאליקוטס ואוחסנו ב-−80°C עד לניתוח. הושמטו מחזורי הקפאה והפשרה חוזרים. ריכוזי TNF-α, IL-6 ו-IL-1β של עכבר נמדדו באמצעות ערכות sandwich ELISA. כל الريאגנטים הובאו לטמפרטורת החדר לפני השימוש. תמיסות סטנדרט, בלאנקים ודגימות הועמסו בשכפולים בנפח של 100 µL לבאר. הבארות נשטפו חמש פעמים עם 300 µL של בופר שטיפה לאחר כל דגירה של נוגדנים. פיתוח הצבע הושג באמצעות סובסטרט tetramethylbenzidine, התגובה הופסקה בהתאם להוראות היצרן, והבליעה נמדדה ב-450 nm. ריכוזי הציטוקינים חושבו מעקומות סטנדרט לוגיסטיות בעלות ארבעה פרמטרים והובעו כ-pg/mL. מדידות עם מקדמי וריאציה בשכפולים הגבוהים מ-15% בוצעו שוב, ודגימות שחרגו מטווח הבדיקה דוללו לפני ניתוח חוזר.
לצורך ניתוח הפוטנציאל של הממברנה המיטוכונדריאלית, זרעו תאים בריכוז של 5 × 104 תאים לבאר ב-500 µL של מצע גידול בלוחות 24 באריים. לאחר הטיפול, נשטפו התאים פעמיים והודגרו עם 500 µL של תמיסת עבודה JC-1 למשך 20 דקות ב-37°C בחושך. לאחר מכן נשטפו התאים פעמיים עם בופר צביעה, ונרכשו נתוני פלואורסצנציה של אגרגטים אדומים ומונומרים ירוקים משדות מיקרוסקופיים זהים באורכי גל של עירור/פליטה של 525/590 nm ו-490/530 nm, בהתאמה. לאחר מכן חושב היחס בין הפלואורסצנציה הירוקה לאדומה בניכוי הרקע.
לניתוח מיני חמצן רבטיביים (ROS) תוך-תאיים, תאים נזרעו בריכוז של 5 × 104 תאים לבאר בלוחות 24-בארים. לאחר הטיפול, התאים נשטפו פעמיים במצע ללא סרום ודגרו עם 10 µL של 2′,7′-dichlorodihydrofluorescein diacetate המדולל ב-200 µL של מצע תרבית למשך 2 h בטמפרטורה של 37°C בחשיכה. הלוחות נועדו בעדינות כל 5 min במהלך הדגירה. לאחר מכן, התאים נשטפו שלוש פעמים, והפלואורסצנציה נמדדה באורכי גל של עירור ופליטה של 488 ו-525 nm, בהתאמה.
לניתוח אפופטוזיס, תאים נזרעו בריכוז של 5 × 104 תאים לבאר בלוחיות 24 בארות. לאחר הטיפול, התאים נשטפו פעמיים, קובעו עם 4% paraformaldehyde למשך 20 min, נשטפו שלוש פעמים, ועברו פרמיביליזציה עם 0.1% Triton X-100 ב-PBS למשך 10 min. הוספנו סך הכל 250 µL מתערובת תגובה של terminal deoxynucleotidyl transferase dUTP nick-end labeling (TUNEL), והתאים דגרו למשך 60 min ב-37°C בתא חשוך ולח. לאחר שלושה שטיפות, הגרעינים נצבעו בצביעה נגדית ב-4′,6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) למשך 5 min. בכל ניסוי נכללה ביקורת שלילית ללא terminal deoxynucleotidyl transferase.
פוטנציאל ממברנה מיטוכונדריאלי שנשמר התבטא בעיקר בפלורסצנציה אדומה נקודתית של JC-1, בעוד שדפולריזציה של הממברנה התבטאה בעלייה בפלורסצנציה ירוקה דיפוזית. תמונות של ROS התקבלו רק כאשר הפלורסצנציה הירוקה הייתה תאית (intracellular) וללא משקעים או רוויית אות. צביעת אפופטוזיס התקבלה רק כאשר הפלורסצנציה האדומה הייתה בעיקרה גרעינית, ובקרת השמטת האנזים הראתה אות רקע מינימלי.
רכישת תמונה ואנליזה כמותית
תמונות בשדה בהיר ובפלואורסצנציה נרכשו באמצעות מיקרוסקופ פלואורסצנציה הפוך המצויד במצלמה דיגיטלית ובעדשה אובייקטיבית 20×. חמישה שדות שאינם חופפים נאספו מכל באר, כולל שדה מרכזי אחד וארבעה שדות פריפריים. אזורים הכילים שריטות, קצוות של בארות, שכבות תאים שהסתלקו או פסולת גדולה הוצאו מהניתוח לפני חשיפת זהות הטיפולים. הגדרות חשיפה והגבר (gain) אוטומטיות בוטלו. עוצמת התאורה, זמן החשיפה, ההגבר, העדשה האובייקטיבית וממדי התמונה נקבעו באמצעות בארות ביקורת (Control) ובארות ox-LDL מייצגות, כדי להבטיח שסיגנל הפלואורסצנציה החזק ביותר יישאר ללא רוויה. הגדרות רכישת תמונה זהות נשמרו עבור כל קבוצות הטיפול בתוך כל ניסוי עצמאי. ערוצי פלואורסצנציה אדום וירוק מזווגים נרכשו ללא מיקום מחדש של בסיס המיקרוסקופ. תמונות שלא עברו התאמה נותחו באמצעות תוכנת ניתוח התמונות ImageJ, כאשר החוקר נשאר מסווג (blinded) להקצאת הטיפולים. סיגנל רקע מאזור ללא תאים הופחת, וספי תמונה נקבעו באמצעות תמונות ביקורת (Control) ו-ox-LDL מייצגות. אותם ספים הוחלו לאורך כל ניסוי. רק התאמות אחידות לכל התמונה הוחלו לצורך הצגת הדמויות. תוצאות JC-1 הובעו כיחס פלואורסצנציה של ירוק לאדום. סיגנלים של מיני חמצן רבתיים (Reactive oxygen species) ואפופטוזיס הובעו כממוצע פלואורסצנציה בניכוי רקע, מנורמל לשטח המנותח, כאשר ערך הממוצע של קבוצת הביקורת (Control) נורמל ל-1 לצורך ניתוחים יחסיים. חמישה שדות מיקרוסקופיים שוררו כדי לקבל ערך אחד לכל באר, והערכים משלוש בארות שוררו כדי להפיק ערך אחד לכל ניסוי עצמאי.
ניתוח Western Blot
תאי RAW264.7 נזרעו בריכוז של 5 × 105 תאים לבאר ב-2 mL של מצע גידול בלוחות 6-בארים, ומכל באר הוכנה דגימה אחת של ליזט חלבון. לצורך מיצוי חלבון מהתא השלם, התאים נשטפו פעמיים ב-PBS קר, עברו ליזה במשך 30 דקות על קרח באמצעות בופר radioimmunoprecipitation assay (RIPA) המועשר במעכבי פרוטאז ופוספטאז, וסובבו בצנטריפוגה במהירות של 12,000 × g למשך 15 דקות ב-4°C. לצורך מיצוי חלבון גרעיני, התאים הושעו בבופר המכיל 10 mM HEPES, 10 mM KCl, 1.5 mM MgCl2, 0.5 mM dithiothreitol ומעכבי פרוטאז/פוספטאז, והודגרו על קרח למשך 15 דקות. דטרגנט לא-יוני נוסף עד לריכוז סופי של 0.5%, ולאחר מכן בוצע ערבוב קצר ב-vortex וצנטריפוגה במהירות של 700 × g למשך 5 דקות ב-4°C. המשקע הגרעיני מופק במשך 30 דקות על קרח עם ערבוב לסירוגין בבופר המכיל 20 mM HEPES, 420 mM NaCl, 1.5 mM MgCl2, 0.2 mM EDTA, 25% glycerol, 0.5 mM dithiothreitol ומעכבי פרוטאז/פוספטאז. התמצית עברה לאחר מכן צנטריפוגה במהירות של 14,000 × g למשך 15 דקות ב-4°C.
ריכוזי החלבון נקבעו באמצעות בדיקת חומצה ביצינכונינית (bicinchoninic acid assay). כמויות שוות של חלבון (25–30 µg) הועמסו לכל נתיב, חוממו ב-95°C למשך 5 min, הופרדו על ג'לי sodium dodecyl sulfate–polyacrylamide בריכוז של 8%–12%, והועברו לממברנות polyvinylidene fluoride של 0.45 µm במתח של 100 V למשך 90 min בתנאי קירור. ממברנות המכילות חלבונים כוללים נחסמו עם 5% חלב דל שומן, בעוד שממברנות המכילות חלבונים זפוספורפוסף נחסמו עם 5% bovine serum albumin שהוכן ב-Tris-buffered saline המכיל polysorbate 20 למשך 1 h. הממברנות דגרו למשך הלילה ב-4°C עם נוגדנים ראשוניים נגד AMPK, phosphorylated AMPK, BAX, BCL-2, caspase-3, ABCA1, p65, phosphorylated p65, LXRα, IκB-α, phosphorylated IκB-α, ו-histone H3 בדילול של 1:1,000, למעט histone H3, ששימש בדילול של 1:2,000. נוגדנים ל-GAPDH ו-β-actin שימשו בדילול של 1:5,000. לאחר דגירת הנוגדנים הראשוניים, הממברנות נשטפו שלוש פעמים למשך 10 min כל פעם ודגרו למשך 1 h עם נוגדנים משניים מסוג goat anti-rabbit או goat anti-mouse המצומדים ל-horseradish peroxidase בדילול של 1:5,000. לאחר שטיפה נוספת, פסי החלבון זוהו באמצעות ריאגנט לגילוי chemiluminescence מוגבר. נבחר זמן החשיפה הקצר ביותר המניב פסים שאינם רוויים עבור כל חלבוני המטרה, והגדרות חשיפה ורכישת תמונה זהות נשמרו עבור כל הקבוצות על אותה ממברנה.
נפחי פסי החלבון נמדדו באמצעות תוכנת ניתוח התמונות ImageJ לאחר חיסור רקע מקומי. רמות ה-Total AMPK, ABCA1, BAX, BCL-2, caspase-3, IκB-α, ו-phosphorylated IκB-α נורמלו ל-GAPDH או β-actin. חושבו היחסים בין phosphorylated AMPK ל-total AMPK ובין phosphorylated p65 ל-total p65. רמות ה-Nuclear LXRα, p65, ו-phosphorylated p65 נורמלו ל-histone H3, והערך הממוצע של קבוצת ה-Control או ה-si-NC בכל ניסוי עצמאי נורמל ל-1. בניתוח נכללו רק בלוטים שהראו פסים מובחנים במשקלים המולקולריים הצפויים, רקע נמוך, אותות שאינם רוויים ובקרות טעינה דומות. ממברנות שהראו נתיבים מעוותים, מעבר חלבון לא שלם, רקע מוגבר או רוויית אות עובדו מחדש או הוצאו מהניתוח. שלושה ניסויים עצמאיים בוצעו באמצעות ליזטים של חלבונים שהוכנו בנפרד.
בדיקת הסטה תרמית של חלבונים בתא (Cell Thermal Shift Assay)
תאי RAW264.7 נזרעו בריכוז של 3 × 106 תאים ב-10 mL של מצע גידול בצלחות תרבית של 100 mm ודגרו למשך לילה. התאים נאספו, נשטפו פעמיים ב-PBS קר מאוד, עברו ליזיס במשך 30 min על קרח ב-PBS המכיל 0.4% NP-40 ומעכבי פרוטאז/פוספטאז, וסובבו בצנטריפוגה ב-20,000 × g למשך 20 min ב-4°C. ריכוז החלבון בליזאטים המזוקקים הותאם ל-2 mg/mL. נפחים שווים של ליזאט מזוקק דגרו עם 20 µM PF או עם 0.1% DMSO למשך 1 h בטמפרטורת החדר. כל דגימה חולקה לאליקוויטות של 50 µL וחוממה למשך 3 min ב-37°C, 41°C, 45°C, 49°C, 53°C, 57°C, 61°C, 65°C, 69°C, או 73°C. הדגימות קוררו מיד ב-4°C למשך 3 min וסובבו בצנטריפוגה ב-20,000 × g למשך 20 min ב-4°C. נפחים שווים של העלונות המסיסות נותחו באמצעות western blotting לזיהוי AMPK ו-AMPK זירחון. האות שהתקבל בכל טמפרטורה נורמל לאות המקביל ב-37°C, שהוגדר כ-100%. שפע החלבון המסיס שורטט כפונקציה של הטמפרטורה, והבדיקה המלאה חזרה שלוש פעמים תוך שימוש בתאים שגודלו באופן עצמאי. בניתוח נכללו רק ניסויים שהראו פס ייחוס ניתן לזיהוי ב-37°C, אובדן הדרגתי של AMPK מסיס עם עליית הטמפרטורה, והיעדר עיוות משמעותי של הנתיבים או עליות חריגות בחלבון המסיס בטמפרטורות הגבוהות ביותר.
ניתוח באמצעות ציטומטריית זרימה
תאי RAW264.7 נזרעו בריכוז של 5 × 105 תאים לבאר ב-2 mL של מצע גידול בלוחות 6-בארים. לאחר הטיפול, התאים נשטפו פעמיים ב-PBS קר (בטמפרטורת קרח) והופרדו בעדינות באמצעות גרד תאים (cell scraper) ב-PBS המכיל 2% fetal bovine serum ו-2 mM EDTA. תגלי התאים סובבו בצנטריפוגה במהירות של 400 × g למשך 5 min ב-4°C, נשטפו פעמיים ב-PBS, וריכוזם הותאם לכ-1 × 106 תאים לדגימה. התאים נצבעו בצבע חיוניות (viability dye) בעל תגובתיות לאמינים הניתן לקיבוע למשך 20 min בטמפרטורת החדר בחשיכה. לאחר השטיפה, קולטני Fc נחסמו באמצעות נוגדן anti-mouse CD16/32 למשך 15 min ב-4°C. נוגדנים מצומדים לפלואורוכרומים נגד CD45, CD11b, F4/80, CD86 ו-CD206 הוספו בכמות של 5 µL לכל נוגדן עבור כל 1 × 106 תאים, והתאים דגרו למשך 30 min ב-4°C בחשיכה.
בעקבות צביעה בנוגדנים, התאים נשטפו פעמיים, הושעו מחדש ב-300 µL של חוצץ צביעה, ונבדקו באמצעות ציטומטריה של זרימה. עבור כל דגימה נרכשו לפחות 50,000 אירועים סה"כ, ובכל מקום שניתן, לפחות 20,000 אירועים חיוניים של CD45⁺CD11b⁺F4/80⁺. נכללו בבדיקה בקרות ללא צביעה, בקרות פיצוי לצביעה בודדת, ובקרות fluorescence-minus-one עבור CD86 ו-CD206. אותה מטריצת פיצוי הוחלה על כל קבוצות הטיפול בתוך כל ניסוי. פסולת (debris) הוצאה על בסיס מאפייני פיזור קדמי (forward-scatter) ופיזור צדי (side-scatter), וצמדי תאים (doublets) הוצאו באמצעות השוואה בין שטח הפיזור הקדמי לגובה הפיזור הקדמי. תאים שליליים לצבע חיוניות זוהו, תאי CD45⁺ סומנו ב-gate, ומקרופאגים הוגדרו כתאים מסוג CD11b⁺F4/80⁺. תאים מסוג CD86⁺ ו-CD206⁺ נספרו בתוך ה-gate של המקרופאגים באמצעות ספי שנקבעו על פי בקרות ה-fluorescence-minus-one המתאימות. אותה היררכיית gating הוחלה על כל הדגימות. תרחיף תאים צבוע אחד הוכן מכל אחת משלוש בארות חוזרות, והאחוזים שהתקבלו משלוש הבארות חושבו כממוצע כדי להפיק ערך אחד עבור כל ניסוי עצמאי. הניסוי חזר על עצמו שלוש פעמים תוך שימוש בתאים שגודלו באופן עצמאי.
בטיחות וסילוק פסולת
כל הלימודי תרביות תאים, הטיפול ב-ox-LDL ועיבוד של חומרים ממקור תאי בוצעו במCaba בטיחות ביולוגית Class II בהתאם לנהלי בטיחות ביולוגית ברמה 2 (BSL-2). במהלך כל הפעולות נעשה שימוש בחלוקי מעבדה, כפפות והגנה על העיניים. משטחי העבודה והציוד חוטרו לאחר השימוש. בפורמלהיד ופראפורמלהיד נעשה טיפול בזהירות הראויה בשל רעילותם ופוטנציאל מסרטן. מקבעים, תמיסות Oil Red O, תמיסות המכילות DMSO ותמיסות צביעה פלורסצנטיות טופלו תוך שימוש בציוד הגנה אישי מתאים ואוורור נאות. מקבעים, תמיסות צביעה, תמיסות המכילות DMSO ומצעי תרבית המכילים ox-LDL נאספו בנפרד והושלכו כפסולת כימית מסוכנת בהתאם לנהלי המוסד. מצעי תרבית המכילים תאים, חומרים מתכלים מזוהמים ודגימות לציטומטריה של זרימה טופלו כפסולת ביולוגית. פסולת ביולוגית נוזלית חוטרה באמצעות 10% sodium hypochlorite שהוכנה טרי למשך 30 min לפחות, ופסולת ביולוגית מוצקה עברה עיקור באוטוקלאב לפני השלכתה, בהתאם לנהלי הבטיחות הביולוגית של המוסד.
ניתוח סטטיסטי
כל הניתוחים הסטטיסטיים בוצעו באמצעות תוכנת הסטטיסטיקה GraphPad Prism (גרסה 10.1.2). הנתונים מוצגים כממוצע ± סטיית תקן. הערך n מייצג את מספר הניסויים העצמאיים ולא את מספר בארות החזרות הטכניות, מדידות המכשיר או שדות מיקרוסקופיות. עבור כל הניתוחים הסטטיסטיים נעשה שימוש בערכים ממוצעים היררכיים שהתקבלו מכל ניסוי עצמאי, כפי שתואר בסעיפים הקודמים. השוואות בין שתי קבוצות בוצעו באמצעות מבחן t של Student דו-זנבי למדגמים בלתי תלויים. השוואות בין שלוש קבוצות או יותר בוצעו באמצעות ניתוח שונות חד-כיווני (one-way ANOVA), ולאחריו מבחן השוואות מרובות של Tukey. כל המבחנים הסטטיסטיים היו דו-צדדיים, וערך p <0.05 נחשב למשמעותי מבחינה סטטיסטית.