$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
הסרת חלבונים לא מקופלים בתא מווסתת בעיקר על ידי מערכת היוביקוויטין-פרוטאזום התאית, שבה החלבון מזוהה ומתויג לראשונה על ידי יוביקוויטין, חלבון רגולטורי קטן, ומועבר לפרוטאזום, קומפלקס מולטי-חלבוני, להידרוליזה ופינוי.
פגיעה בפעילות מערכת היוביקוויטין-פרוטאוזום, תופעה שכיחה במחלות נוירודגנרטיביות, עלולה לגרום לחלבונים לא מקופלים להצטבר בתוך התאים, וליצור אגרגטים של חלבונים בלתי מסיסים עם השפעות ציטוטוקסיות.
כדי לדמיין ולכמת צבירת חלבונים במבחנה, השג תרחיף של תאי יונקים מותמרים - המבטאים חלבון מוטנטי בעל תווית פלואורסצנטית המאמץ קונפורמציה לא מקופלת עם שאריות הידרופוביות חשופות - במדיה מתאימה.
פיפטה מגדילה את הריכוזים של מעכב פרוטאזום לבארות של צלחת שחורה מרובת בארות כדי למזער את הקרינה ברקע במהלך ההדמיה. זרע את תרחיף תאי היונקים לבארות. דגירה כדי לאפשר לתאים להיצמד לתחתית הצלחת ולהתרבות.
ברגע שנכנס פנימה, מעכב הפרוטאזום נקשר לאתרים הפרוטאוליטיים של הפרוטאזום וחוסם את פעילותו, מה שגורם לחלבונים המוטנטיים המתבטאים להצטבר, אשר לאחר מכן מתקשרים באמצעות השאריות ההידרופוביות החשופות שלהם ויוצרים אגרגטים ציטופלזמיים, מה שמוביל בסופו של דבר למוות של תאים.
הוסף צבע קושר DNA פלואורסצנטי כדי לצבוע את גרעיני התא. דמיינו את הצלחת. אגרגטי החלבון המוטנטיים הפלואורסצנטיים נראים מפוזרים בתוך הציטופלזמה הלא מוכתמת.
בארות המכילות ריכוזים גבוהים יותר של מעכבי פרוטאזום מציגות מספרים מצטברים גבוהים יותר של חלבון לספירת תאים מאשר בארות עם ריכוזי מעכבי פרוטאזום נמוכים יותר.
להעברת התרכובת, על צלחת פוליפרופילן לאחסון של 384 בארות, הוסף דילולים סדרתיים של תרכובות לפי סדרת הדילול הסטנדרטית של 1 עד 3. לאחר מכן, באמצעות מטפל בנוזלים המצויד בראש נימי 384, פזרו 0.25 מיקרוליטר של מעכבי פרוטאזום על צלחות בדיקה שחורות ריקות עם תחתית שטוחה של 384 בארות. לאחר מכן, זרע 1.5 x 104 תאים על צלחות אלה. דגירה בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס ו-5% פחמן דו חמצני למשך 24 שעות.
לפני הדמיית קו התאים המטופל במעכבי פרוטאזום, יש להוסיף 10 מיקרוליטר של DMEM מחומם מראש עם תמיסת צביעה ולדגור בטמפרטורת החדר למשך 10 דקות.
לאחר הצביעה, הפעל את תוכנת ההפעלה האוטומטית של המיקרוסקופ על ידי בחירה בכרטיסייה "מיקרוסקופ". ראשית, בחר בכרטיסייה "תצורה", ולאחר מכן, בחר יעד פי 20 ואת סוג הצלחת הנכון.
כדי לאפשר מיקוד נכון עם סוגי צלחות שונים, ודא ש"הצווארון" מוגדר לערך הנכון במטרה.
לאחר מכן, בחר 'חשיפה 1', הגדר את גובה המיקוד ל-'0 מיקרומטר', ולאחר מכן בחר 'פוקוס'. לאחר המיקוד, חשוף את מצלמה 1.
כדי לייעל את מישור החשיפה, כוונן את גובה המיקוד ולחץ על "קח גובה". שנה את זמני החשיפה בעוצמת הלייזר לעוצמת פיקסלים מקסימלית של כ-3,000 וחסוך בפרמטרי חשיפה.
בחר בכרטיסייה "הגדרת ניסוי". צור פריסה ופריסת משנה. לאחר מכן, גרור ושחרר את הפריסה, החשיפה, תמונת ההתייחסות, קובץ ההטיה ופריסת המשנה הרלוונטיים. לאחר מכן, שמור את הניסוי.
לבסוף, בחר בכרטיסייה "ניסוי אוטומטי" ורכוש תמונות. לתמונות דו-ערוציות, בחר תחילה באלגוריתם התוכנה כדי לפלח את האובייקטים העיקריים, כגון גרעינים, ציטוזול ואגרגטים.