May 23rd, 2012
סרט הווידאו הזה מדגים נהלים ואפיון של איים הלבלב אדם באמצעות hematoxylin ו eosin (H & E) ו אימונוהיסטוכימיה (IHC). סעיפים הלבלב מן הראש, הגוף, באזורים הזנב מוכתמות על ידי שני H & E ו-IHC לקבוע הרכב האנדוקרינית איון (אינסולין, גלוקגון, והלבלב פוליפפטיד), שכפול תאים (Ki67), וכן מחלחל דלקתיות (H & E, CD3). האזור אונקלי הוא מקומי באמצעות IHC של הלבלב פוליפפטיד.
המטרה הכוללת של הליך זה היא לאפיין לולאות לבלב אנושיות באמצעות צביעת המטין ואאוזין ואימונוהיסטוכימיה. זה מושג על ידי יצירת חתכים סדרתיים מדגימת לבלב המוטמעת בגוש פרפין. לאחר מכן החלקים מונחים על שקופיות בכיוון המקורי שלהם.
חלק מהשקופיות מוכתמות בהמטין ואואין בעוד ששאר השקופיות מוכתמות על ידי אימונוהיסטוכימיה, השלב האחרון הוא לסרוק את השקופיות המוכתמות ולארגן אותן לפי אותיות גדולות. בסופו של דבר, ניתן להעלות את התמונות הללו למאגר פתולוגיה מקוון, שם ניתן לצפות בהן על ידי חוקרים אחרים בתחום. היתרון העיקרי של טכניקה זו על פני השיטות הקיימות הוא שהשקופיות מוכתמות בסדרות תוך שמירה על כיוונן המקורי.
ידגימו את ההליך לינדה סניידר, טכנולוגית היסטו, אמילי מונטגומרי, מדענית ביולוגית, וטיפאני היפו, טכנאית מעבדה במעבדה שלי. כדי להתחיל, הגדר את אמבט המים והמיקרוטום בהתאם לנהלים הסטנדרטיים למיקרוטומיה של פרפין. התווית הבאה שקופיות טעונות חיובית עם מספר המקרה, אזור הלבלב ומספר השקופית.
לאחר שהכל מוכן, הניחו את גוש הפרפין בצ'אק המיקרוטום עם תווית הקסטה בצד שמאל. לאחר הליכי מיקרוטומיה רגילים, חתכו את הבלוק עד שהרקמה נחשפת באופן אחיד. לאחר שנתקלים ברקמה באופן שווה, צור סרט של חתכים סדרתיים בעובי של כארבעה מיקרון.
יש צורך בשלושה עד שישה חלקים בהתאם למספר הכתמים הראשוניים הנדרשים. לאחר מכן, הפרד את חלקי הסרט. הרם כל חלק לפי הסדר והנח אותו על שקופית.
רשום את מספר הקטע בעיפרון. אם מקטע אינו שמיש, דלג על מספר זה והמשך למספר את המקטעים בסדר מדויק. הקפד לשמור על אותו כיוון בשקופית כפי שנמצא בקלטת, כאשר תווית השקופית מכוונת שמאלה.
לאחר מכן, הניחו את השקופיות במתלה שקופיות ותנו להן להתייבש למשך הלילה. בטמפרטורת החדר יש לאטום מחדש את פני גוש הפרפין בשכבה דקה של פרפין כדי לשמר את הרקמה ולאחסן אותה בטמפרטורת החדר או במינוס 20 מעלות צלזיוס. חזור על הליך זה עבור הדגימה הבאה.
חשוב לשמור על המספור עבור חתכים סדרתיים בכל רמה כפי שניתן לראות לעיל עבור צביעת h ו-e. הנח את השקופית הראשונה מכל בלוק במתלה שקופיות, ולאחר מכן הנח את המתלה במגש הראשון של הצביעה האוטומטית. בחר את תוכנית ה- HE הסטנדרטית והתחל בתהליך הצביעה.
בסיום הצביעה, הסר את השקופיות מהמכתים האוטומטי והנח אותן במכסה המנוע להחלקת כיסוי. הנח פתק כיסוי על כל שקופית בטכניקות סטנדרטיות. לבסוף, סמן את השקופיות בתווית מודפסת ואפשר להן להתייבש היטב במכסה המנוע.
התחל בהגדרת הצביעה האוטומטית והכנת כל הריאגנטים הדרושים. בחר בתוכנית Daco לכתמים כפולים. הזן את מספר השקופיות ואת הטיפול שכל אחת תקבל.
טען את כל הריאגנטים לתוך הצביעה האוטומטית בהתאם להמלצות היצרן. לאחר מכן, הכינו TBST וציטראט, חוצצים, נוגדנים וריאגנטים אחרים הנדרשים להליך. חלקו את השקופיות על ידי הנחתן בקסילן למשך חמש דקות.
אל תאפשר לשקופיות להתייבש מכיוון שהדבר יגרום לכתמי רקע ונקבוביות מוגזמים בזמן שהשקופיות אינן מעודכנות. יוצקים חוצץ ציטראט לסיר אידוי לחימום מראש לפני השימוש. לאחר מכן, שלח את שקופיות ה-depa לסדרה של שטיפות אתנול.
שוטפים את המגלשות בפעם האחרונה במים נטולי יונים. מוסיפים את השקופיות למאגר הציטראט שחומם מראש ומניחים להן לאדות למשך 30 דקות. לאחר תקופה זו, העבירו מיד את המגלשות לאמבט מים בטמפרטורת החדר עד שיתקררו לחלוטין.
לאחר הקירור, העבירו את השקופיות למדפי Dayco auto Stainer, תוך הקפדה על שמירה על הרצף הנכון. לבסוף, הפעל את תוכנית הצביעה הכפולה שנטענה קודם לכן לאחר השלמת תוכנית הצביעה הכפולה. הסר את השקופיות מהמכתים האוטומטיים ותן להן להתייבש לפחות שעה לפני ההתייבשות.
כדי להמשיך את ההתייבשות, העבירו אותם ל-80% אתנול למשך דקה אחת. המשיכו לייבש את המגלשות על ידי השרייתן באתנול 95% ולאחר מכן 100% לסיים. לבסוף, טבלו והחזיקו את השקופיות בקסילן למשך דקה אחת.
הרכיב מיד את השקופיות עם החלקות כיסוי באמצעות חותם cyto להשלמת ההליך. הדפס תוויות המכילות את פרטי המארז, כולל מספר העוגב והבלוק, סוג הכתם והתאריך. הנח תווית על כל שקופית כדי לסרוק את שקופיות הכתמים.
הנח אותם על מגש סורק ופעל לפי הנהלים הסטנדרטיים. אחסן בארכיון את שקופיות הכתמים בטמפרטורת החדר ואת כל השקופיות הלא מוכתמות שנותרו במינוס 20 מעלות צלזיוס לשימוש עתידי. לבסוף, ארגן את התמונות המוכתמות לפי התורם וסוג הרקמה שנראה.
הנה דוגמה ל-KI 67 בתוספת צביעת אינסולין ברמות הגדלה נמוכות וגבוהות כאחד. תמונות של חלקי הלבלב המוכתמים מוגשות למאגר פתולוגי מקוון היוצר בנק ביולוגי וירטואלי. באמצעות מסד נתונים זה, חוקרים יכולים לגשת במהירות למידע הדרוש למחקר ולסוכרת מסוג 1.
לאחר צפייה בסרטון זה, עליכם להבין היטב כיצד להכין ולהכתים שקופיות באיכות גבוהה מהלבלב האנושי.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
סרטון זה מדגים נהלים לאופיינות איי הלבלב האנושיים באמצעות צביעת המטוקסילין ואאוזין (H&E) ואימונוהיסטוכימיה (IHC). הטכניקה מאפשרת הערכה של הרכב האנדוקריני של האיים, שכפול תאים והסתננויות דלקתיות.
Standardized histopathology workflows for human pancreatic islets enable reproducible endocrine cell characterization, supporting target validation in diabetes research. By preserving serial section orientation and generating digitized whole-slide images, the method facilitates cross-functional data sharing and biobanking for mechanistic de-risking of islet-targeted therapies. This approach enhances predictive confidence in preclinical models by providing quantifiable, spatially resolved data on islet composition, replication, and immune infiltrates.
The method integrates into the discovery continuum from early target validation through preclinical assessment by enabling serial sectioning, standardized staining, and digital biobanking of human pancreatic tissue.