5 בדצמבר 2012
שיטה חדשה זו מאפשרת הקלטה התאית סימולטני של motoneuron אחת מבוגר עכבר והמדידה של הכח הנוצר על ידי סיבי השריר שלה. החקירה בשילוב של תכונות החשמליות ומכאניות של יחידות מוטוריות בבעלי חיים רגילים ועבר שינוי הגנטי היא פריצת דרך בחקר מערכת התוקפת.
המטרה הכללית של הליך זה היא ללמוד את התכונות האלקטרופיזיולוגיות והמכווצות של יחידה מוטורית בודדת בעכבר, באמצעות ביצוע הקלטות תוך-תאיות של נוירונים מוטוריים in vivo. זאת מושג תחילה על ידי חשיפת חוט השדרה והשריר הרלוונטי, ולאחר מכן באמצעות חיבור של מתמר כוח לגיד השריר.
בשלב הבא, מעבדה את הנוירון המוטורי באמצעות אלקטרודה תוך-תאית, ובכך גורמים להתכווצות של היחידה המוטורית המוקלטת. בסופו של דבר, ניתן לאפיין את התכונות האלקטרופיזיולוגיות של הנוירון המוטורי במקביל לתכונות ההתכווצות של היחידה המוטורית שלו. הדגמה חזותית של טכניקה זו היא קריטית, שכן שלבי המיקרו-כירורגיה קשים מאוד ללמידה בשל גודלו הקטן של בעל החיים.
כדי להתחיל בפרוצדורה, הרדימו עכבר על ידי הזרקת pentobarbital sodium או תערובת של ketamine ו-xylazine באופן תוך-פעריטוני. ודאו כי העכבר אינו מגיב לרפלקס צביטה באצבעות. לאחר מכן, בצעו חתך מעל הקנה באמצעות מספריים קהים והסיטו את העור לשני הצדדים.
לאחר מכן, קרעו את בלוטת הרוק באמצעות פינצטה קהה. כדי לחשוף שני שרירים דקים המכסים את הקנה, הפרידו בין שני השרירים כדי לחשוף את הקנה. השתמשו בפינצטת Dumont 7.
השחילו שני חוטים של תפר משי aut בעובי 4 מתחת לקנה הנשימה. לאחר מכן, בצעו חתך רוחבי בקנה הנשימה בין שתי טבעות סחוס. אך היזהרו שלא לנתק את קנה הנשימה באופן מלא.
כעת, הכניסו את הצינור הקנה (tracheal tube) אל תוך הקנה. קבעו את שני צדי פתח ההחדרה על ידי קשירת התפרים מעליו. לאחר מכן, חברו את צינור הקנה למנשם לעכברים ולמד-פחמן (capnograph).
לאחר מכן, חברו את המנשם למקור חמצן נקי באמצעות שק תאימות (compliance bag). כוון את פרמטרי המנשם כך שהעכבר לא יילחם נגד ההנשמה המלאכותית, ושהלחץ החלקי של הפחמן הדו-חמצני בסוף הנשיפה (end tidal carbon dioxide partial pressure) יהיה יציב בין 4% ל-5%. בשלב זה, חשפו את הוריד הג'וגולרי (jugular vein) בצד אחד של הצוואר באמצעות טכניקות של דיסקציה קהה.
הוריד הג'וגולרי (jugular vein) מתפצל לשני גזעים עיקריים, וריד הפנים הקדמי והאחורי. הפר carefully את הווריד מרקמת החיבור הסובבת אותו. לאחר מכן, השחל שני חוטים של תפר משי (silk suture) במידה 6 מתחת לווריד, והרחק אותם זה מזה ככל האפשר לאורך הווריד.
בשלב הבא, מקמו תפס כלי דם קטן בצד הפרוקסימלי של הווריד וקשרו את הצד הדיסטלי של הווריד. באמצעות מספרי איריס עדינים מאוד, בצעו חתך רוחבי קטן בווריד. היו זהירים מאוד שלא לחתוך את הווריד באופן מלא.
לאחר מכן, הכניסו קטטר French 1 שמולא מראש לתוך הפתח עד לתליב כלי הדם המחזיק את הווריד ואת הקטטר יחד. הסירו בזהירות את תליב כלי הדם. לאחר מכן, דחפו את הקטטר מספר מילימטרים נוספים לתוך הווריד. קבעו את הקטטר על ידי קשירתו באמצעות התפרים משני צידי נקודת ההחדרה.
בשלב הבא, חברו את אחד הקתטרים למזרק או למזרק חשמלי להזרקת מנות משלימות של חומרי הרדמה כגון פנטובארביטל נתרן או קטמין קסילזין. חזרו על הפעולה עבור וריד נוסף וחברו את הקתטר השני למזרק חשמלי להזרקה תוך-ורידית איטית של תמיסת גלוקוז 4% המכילה 1% נתרן ביקרבונט ו-14% פלסמון. לבסוף, סגרו את עור הצוואר באמצעות תפרים.
לאחר מכן, החזירו את העכבר למצב שכיבה על הבטן. כעת בצעו חתך מהחלק העליון של הירך ועד לגיד אכילס. הפרידו את העור מהשרירים שמתחתיו והקפידו לא לפגוע בכלי הדם.
בשלב הבא, זהו את השפה הקדמית של שריר ה-biceps femoris, הנראית כקו לבן העובר לאורך הירך. לאחר מכן, פתח בזהירות לאורך הקו מהברך ועד לעצם הירך. הפרד את השרירים כדי לחשוף את עצב ה-sciatic שמתחת לשריר ה-biceps femoris.
בצעו דיסקציה זהירה של ה-biceps femoris והסירו אותו. כדי לחשוף את העצב הסיאטיקה (sciatic nerve) ואת שרירי ה-triceps surae, זהו את העצב הטיביאלי (tibial nerve) בין העצב הפרוניאלי המשותף (common peroneal nerve) לבין העצב הסוראלי (sural nerve). מבין הענפים השונים של העצב הטיביאלי, זהו את הענפים המעצבבים את ה-triceps surae מבין הענפים העמוקים יותר.
בעזרת חוט משי OTT בעובי שמונה, קשרו את כל ענפי העצב הטביאלי יחד, תוך השארת הענפים המעצבבים את שריר ה-tricep surae שלמים. גזרו את העצב הטביאלי במרחק הרב ככל האפשר מהקשר. זהו את החוליות T 13 ו-L 1, כאשר T 13 היא החוליה האחרונה שאליה מחוברות צלעות.
לאחר מכן, קבעו את עמוד השדרה באמצעות תפסני חוליות Cunningham עבור השפיכה משני צדי T 13 ו-L 1. היזהרו לא לדחוס את השפיכה, אך הפילו מתח קל על הציר האורכי. ודאו שעמוד השדרה מקובע היטב על ידי לחיצה עדינה כלפי מטה באמצעות פינצטה.
באמצעות פינצטות עדינות, הסר את զקיקי העמוד השדרה ולאחר מכן את הלמינות מעל T 13 ו-L one כדי לחשוף את חוט השדרה. לאחר מכן, הנח אמבט פלסטיק בהתאמה אישית כדי להקיף את חוט השדרה. לאחר מכן, קבע את האמבט במקומו באמצעות חוט משי במידה four aught.
לבסוף, ודאו שהאמבטיה אטומה למים על ידי איטמה עם חומר איטום quick cast. לאחר שה-quick cast התייבש, הסירו את הכותנה המכסה את חבל השדרה ומלאו את האמבטיה בשמן מינרלי. השתמשו במלחץ חולרי נוסף כדי לסגור זקיף של אזור הש publicaciones (sacral region).
על מנת לתמוך באזור הגב של בעל החיים, השתמש בתפס שלישי כדי לקבע את הגפה האחורית הימנית ואת הקרסול בכפיפה של 90 מעלות בברך, כאשר הגפה כפופה ב-90 מעלות בברך ובקרסול. הסר את הגזה המכסה את אזור הגפה האחורית. בצע דיסקציה לגיד אכילס מהרקמה שסביבו.
נתקו את השריר התלת-ראשי מהרקמות הסובבות ככל האפשר באמצעות מחט הובלה. השהילו תפר משי במידה 6-0 אל תוך גיד אכילס וצרו קשר משולש מסביב לגיד. לאחר מכן, מקמו את חיישן הכוח (force transducer) קרוב לקשר.
לאחר מכן, חברו את הגיד למתמר הכוח באמצעות חוט משי, וחתכו את החלק הדיסטלי של הגיד. לאחר מכן, הכניסו שני תרחילי פלדה אל חלל התת-פשיה של שרירי ה-triceps surae. תרחילים אלו מחוברים למגבר AC חוץ-תאי.
להקלטת EMG, הניחו את עצב ה-triceps surae על הקתודה של אלקטרודת וו (hook electrode), כאשר האנודה נוגעת בשריר סמוך. לאחר מכן, גרו את עצב ה-triceps surae באמצעות פולס מרובע של 50 microsecond בעוצמה עולה ובתדר נמוך, עד להשגת אמפליטודת התכווצות (twitch amplitude) מקסימלית. לאחר מכן, גרו את עצב ה-triceps surae באמצעות פולס מרובע של 50 microsecond בעוצמה עולה ובתדר נמוך, עד להשגת אמפליטודת התכווצות מקסימלית.
איורים אלו מדגימים כיצד לזהות נוירון מוטורי מקבוצת השריר התלת-ראשי (tricep suryi). לאחר חדירה ב cường độ גירוי נמוך, ניתן להבחין ב-EPSP מונוסינפטי רק בעצימות גבוהה יותר. ה-EPSP עשוי להיות גדול מספיק כדי לעורר ספייק אורתוטרופי בעצימות גירוי גבוהה עוד יותר, בהתאם לחוק "הכל או כלום".
ספייק אנטידרומי מופיע עם לטנציה קצרה יותר מאשר ה-EPSP המונוסינפטי. אם מוזרם זרם מספיק דרך המיקרו-אלקטרודה כדי לעורר ספייק, ניתן להקליט פעילות EMG בשריר לאחר השהיה קצרה, שלאחריה תתרחש התכווצות שריר.
לאחר זיהוי הנוירון המוטורי, ניתן לאפיין את תכונותיו האלקטרופיזיולוגיות. לדוגמה, איור זה ממחיש כיצד ניתן למדוד את התנגדות הקלט באמצעות פולסים של זרם בהיפר-פולריזציה ודפולריזציה, ואת שרטוט השינויים בפוטנציאל ממברנה לעומת כמות הזרם המוזרק. ניתן ללמוד גם על התכונות התכווציות של היחידה המוטורית באמצעות פרוטוקולי גרייה שונים.
לדוגמה, ניתן להפיק את קשר הכוח-תדר באמצעות הזרקת פולסים קצרים של זרם בתדרים שונים לנוירון המוטורי. ניתן להוסיף לאחר מכן את כוח המצב היציב (steady state) אל מול תדר פולסי הזרם כדי לחשוף עקומת כוח-תדר סיגמואידית. לאחר רכישת מיומנות בניתוח, ניתן לבצע חלק מטכניקה זו בתוך שלוש שעות במידה והדבר בוצע כהלכה.
צפו בתמליל המלא וקבלו גישה לאלפי סרטונים מדעיים
שיטה זו מאפשרת הקלטה תוך-תאית סימולטנית של נוירון מוטורי בודד בעכבר בוגר ומדידה של הכוח המופק על ידי סיבי השריר שלו. חקירה משולבת זו מהווה התקדמות משמעותית בלימוד המערכת הנוירו-שרירית.
טכניקה זו מאפשרת בחינה ישירה של הקשר התפקודי בין האלקטרופיזיולוגיה של נוירונים מוטוריים לבין תפוקת הכוח של היחידה המוטורית בעכברים בוגרים, ובכך מספקת מערכת רלוונטית פיזיולוגית לתיקוף יעדים במחקר נוירו-שרירי. על ידי קישור הפעילות העצבית לתפקוד מכני, היא תומכת בהפחתת סיכונים מכניסטית של היפותזות טיפוליות הנוגעות למעגלים מוטוריים בעמוד השדרה. גישה זו בעלת ערך ניבוי להערכת השפעת תרכובות על שלמות היחידה המוטורית במודלים של מחלה.
השיטה משתלבת בתהליכי עבודה של שלבי הגילוי המוקדמים על ידי אספקת מדדים תפקודיים המגשרים בין מודולציה של מטרות עצביות לבין תוצאה פיזיולוגית, ובכך היא תומכת בקבלת החלטות בנוגע לזיהוי מובילים (leads).