Name: Endotracheal אינטובציה בעכברים דרך ישיר laryngoscopy באמצעות אוטוסקופ (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-04-05T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 58 s
Description: למד אינטובציה אנדוטרכאלית בעכברים באמצעות לרינגוסקופיה ישירה עם אוטוסקופ. טכניקה זו מהירה, ללא דימום וללא טראומה, מתאימה למדידות חוזרות בניסויים כרוניים ומספקת חלופה אמינה לטרכאוסטומיה.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

גרנט הצטיינות מהמחלקה לענייני ותיקים ומענק T32-HL098062 מNHLBI של המכונים הלאומיים לבריאות נתמכת על עבודה זו. ברצוננו להודות לעצתו של רנדולף H. הייסטינגס, MD, Ph.D. בהכרת תודה והייעוץ ותמיכה של היחידה לרפואת הווטרינרית של מערכת בריאות VA סן דייגו.

1. הכנת בעלי החיים <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השג עכברים, כי הם מבוגרים יותר מגיל 8 שבועות ויותר מ 20 g (יכולים להיות מחוברים לצינורות עכברים קטנים יותר על ידי מומחה). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הרדמה <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הזרק עכברים עם 20 מ&quot;ג / קילוגרם, כל אחת, של קטמין ו xylazine intraperitoneally כpreanesthetic. (מינון זה אינו מספיק על מנת להרדים את העכבר באופן מלא, אך מאפשר העברה בטוחה, לאחר אינטובציה, להנשמה מלאכותית.) עם זאת, התאמה של המינונים עשויה להיות נחוצה על פי תגובת ההרדמה בהתייעצות עם הווטרינר המוסדי.) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לגרום הרדמה בעכברים עם .3.5% isoflurane / חמצן בתא אינדוקציה ל90-120 שניות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שים לב לקצב הנשימה בזהירות. זה צריך להאט בהדרגה כדי לא פחות מ 45 פעימות לדקה. </li></ol></li></ol> 2. הכנה לאינטובציה <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר את העכבר מתא האינדוקציה ועורפו בחוזקה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שימוש במלקחיים בסדר מרופדים לגנטly להאריך את הלשון מהפה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשמור על סיומת של הלשון על ידי החזקת הלשון בין שתי אצבעות והפעלת כוח עדין. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> משוך את העכבר על ספקולום של Otoscope בתנועה אנכית. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תראה דרך העיניים של Otoscope תוך scruffing בחוזקה ולמשוך את העכבר בעדינות על ידי הלשון ועורפו. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חפש בזהירות את מיתרי קול. הם צריכים להיות גלויים לעין בשלב זה. Aditus laryngis (המבנה של הפתח בגרון) צריך להיראות יחסית לבן. לא צריך להיות תנועה של מיתרים עם כל נשימה. אם המיתרים לא זזים או הם דמיינו בצורה גרועה, לסובב את החיה מעט ובעדינות hyperextend הצוואר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> עם היד הדומיננטית, להחזיק 20 G, 1 בקטטר, באורך 1 סנטימטר של צינורות PE10 הרחבת דרך קצה הצנתר, כמו עיפרון והכנס אותה לצד השני של המשקפת. צינורות PE משמש כstylet או פתילון. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כוון את Tubi PE10ng (stylet) דרך מיתרי קול ולקדם 20 קטטר G (הטובוס) מעל צינורות PE עד הרכזת הוא ברמה של השן החותכת התחתונה. הסר stylet זה במהירות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בעדינות לקחת את בעלי החיים משל ספקולום ולאמת את מיקום הצינור על ידי הצבת את החיה על מאוורר מכאני עם 2% isoflurane הרציף כדי לשמור על הרדמה כללית לאורך כל הניסוי. דמיינו אוויר שפג תוקפם (בועות) עובר מלכודת PEEP כדי לאשר אינטובציה. למרות אינטובציה הוושט עלולה לגרום לכמה בועות, זה לא יהיה בולט או עקבי עם אינטובציה endotracheal כ. כמו כן, הקפד על מעקב לחץ אוויר לסטיות שליליות (איור 1). אלה מאשרים מיקום נכון של הצינור. לחלופין, הנח כמות קטנה של מים לצינורות עירוי ולחבר אותו לצינור ET. אימות תנועה מהעכבר עם נשימה 2. במקרה של אינטובציה הוושט, עמ &#39;התחקות ressure תגלה לחצים ואין סטיות שליליות גבוהים יותר באופן משמעותי. למרות CO סוף הגאות 2 יהיה מועיל, מבחינה טכנית זה יהיה קשה מאוד בהתחשב בכמויות קטנות של גאות ושפל (~ μl 200) והציוד לעשות את זה יהיה מאוד יקר. הטכניקות פשוטות שתוארו מספיקות באופן מלא והרבה פחות יקר. אם ההרדמה isoflurane אינה זמינה, ניתן לבצע את כל ההליכים באמצעות קטמין 80-120 מ&quot;ג / קילוגרם בשיתוף עם xylazine 10-20 מ&quot;ג / קילוגרם להרדמה כללית. </li></ol> 3. טכניקה אלטרנטיבית: ישיר laryngoscopy עם טכניקת Otoscope משמשת בקלות למטרות אחרות, בעיקר להחדרה ישירה של חומרי לימוד לריאות. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לגרום הרדמה בבעלי החיים עם isoflurane לבד להליך זה ב.3.5% ל90-120 שניות בחדר האינדוקציה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> עורף החיה בחוזקה בבסיס הגולגולת ולהאריך את הלשון בעדינותעם מלקחיים בסדר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מחזיק את הלשון בעדינות, מושך את בעלי החיים ישר בספקולום (ללא שינוי) עד שהחיה לא יכולה להיות משך למעלה עוד יותר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ניתן דמיינו את מיתרי הקול בתדירות הגבוהה ביותר על ידי טכניקה זו בלבד, אלא לסובב את בעלי החיים ומורחבים היפר הצוואר כדי להביא אותם לתצוגה מלאה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לקדם את פיפטה ג&#39;ל טעינה המכילה instillate למייתרי הקול ולהחדיר את הנוזל. בגלל ספקולום עושה חותם עם hypopharynx העכבר יהיה לשאוב כל נוזל שיורית שלא עובר את המיתרים. זה מאומת בקלות על ידי rhonchorous נשמע את העכבר עכשיו עושה כאשר נשימה עד שהנוזל מופץ באופן מלא בתוך הריאות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לחלופין, להתחבר לצינורות PE10 מזרק 0.5 מיליליטר מכיל 50 μl של נוזל עם בולוס אוויר מאחורי נוזלי. לקדם את צינורות PE בזהירות דרך מיתרי קול ל0.5 סנטימטר ולפרוק את התוכן אל תוך דרכי הנשימה באיטיות. עם זאת, מדי פעם טראומה לדרך הנשימה התחתונה מתרחשת uלשיר בטכניקה זו ללא אספקה ​​טובה יותר של המדגם. </li></ol>

<ol><li>Rockman, H. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Segregation+of+atrial-specific+and+inducible+expression+of+an+atrial+natriuretic+factor+transgene+in+an+in+vivo+murine+model+of+cardiac+hypertrophy%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Segregation of atrial-specific and inducible expression of an atrial natriuretic factor transgene in an in vivo murine model of cardiac hypertrophy.</a> Proc. natl. Acad. Sci. U.S.A. 88, 8277-8281 (1991).</li>
<li>Watanabe, A., Hashimoto, Y., Ochiai, E., Sato, A., Kamei, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+method+for+confirming+correct+endotracheal+intubation+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Lab.+Anim%22%5BJournal%5D)">A simple method for confirming correct endotracheal intubation in mice.</a> Lab. Anim. 43, 399-401 (2009).</li>
<li>Orebaugh, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Succinylcholine%3A+adverse+effects+and+alternatives+in+emergency+medicine%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Emerg.+Med%22%5BJournal%5D)">Succinylcholine: adverse effects and alternatives in emergency medicine.</a> Am. J. Emerg. Med. 17, 715-721 (1999).</li>
<li>Hastings, R. H., Summers-Torres, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+Laryngoscopy+in+Mice%5BTitle%5D)+AND+%22Contemp.+Lab.+Anim.+Sci%22%5BJournal%5D)">Direct Laryngoscopy in Mice.</a> Contemp. Lab. Anim. Sci. 38, 33-35 (1999).</li>
<li>Berul, C. I., Aronovitz, M. J., Wang, P. J., Mendelsohn, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+cardiac+electrophysiology+studies+in+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">In vivo cardiac electrophysiology studies in the mouse.</a> Circulation. 94, 2641-2648 (1996).</li>
<li>Ewart, S. L., Gavett, S. H., Margolick, J., Wills-Karp, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cyclosporin+A+attenuates+genetic+airway+hyperresponsiveness+in+mice+but+not+through+inhibition+of+CD4%2B+or+CD8%2B+T+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Respir.+Cell+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Cyclosporin A attenuates genetic airway hyperresponsiveness in mice but not through inhibition of CD4+ or CD8+ T cells.</a> Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 14, 627-634 (1996).</li>
<li>Ewart, S. L., Mitzner, W., DiSilvestre, D. A., Meyers, D. A., Levitt, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Airway+hyperresponsiveness+to+acetylcholine%3A+segregation+analysis+and+evidence+for+linkage+to+murine+chromosome+6%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Respir.+Cell+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Airway hyperresponsiveness to acetylcholine: segregation analysis and evidence for linkage to murine chromosome 6.</a> Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 14, 487-495 (1996).</li>
<li>Spoelstra, E. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+and+simple+method+for+endotracheal+intubation+of+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Lab%22%5BJournal%5D)">A novel and simple method for endotracheal intubation of mice.</a> Lab. 41, 128-135 (2007).</li>
<li>Boll, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-speed+single-breath-hold+micro-computed+tomography+of+thoracic+and+abdominal+structures+in+mice+using+a+simplified+method+for+intubation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Comput.+Assist.+Tomogr%22%5BJournal%5D)">High-speed single-breath-hold micro-computed tomography of thoracic and abdominal structures in mice using a simplified method for intubation.</a> J. Comput. Assist. Tomogr. 34, 783-790 (2010).</li>
<li>Brown, R. H., Walters, D. M., Greenberg, R. S., Mitzner, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+method+of+endotracheal+intubation+and+pulmonary+functional+assessment+for+repeated+studies+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Appl.+Physiol%22%5BJournal%5D)">A method of endotracheal intubation and pulmonary functional assessment for repeated studies in mice.</a> J. Appl. Physiol. 87, 2362-2365 (1999).</li>
<li>Vergari, A., Polito, A., Musumeci, M., Palazzesi, S., Marano, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Video-assisted+orotracheal+intubation+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Lab.+Anim%22%5BJournal%5D)">Video-assisted orotracheal intubation in mice.</a> Lab. Anim. 37, 204-206 (2003).</li>
<li>Vergari, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+method+of+orotracheal+intubation+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Eur.+Rev.+Med.+Pharmacol.+Sci%22%5BJournal%5D)">A new method of orotracheal intubation in mice.</a> Eur. Rev. Med. Pharmacol. Sci. 8, 103-106 (2004).</li>
<li>Hamacher, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microscopic+wire+guide-based+orotracheal+mouse+intubation%3A+description%2C+evaluation+and+comparison+with+transillumination%5BTitle%5D)+AND+%22Lab.+Anim%22%5BJournal%5D)">Microscopic wire guide-based orotracheal mouse intubation: description, evaluation and comparison with transillumination.</a> Lab. Anim. 42, 222-230 (2008).</li>
<li>Rivera, B., Miller, S., Brown, E., Price, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+method+for+endotracheal+intubation+of+mice+and+rats+used+in+imaging+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Cont.+Top.+Lab.+Anim.+Sci%22%5BJournal%5D)">A novel method for endotracheal intubation of mice and rats used in imaging studies.</a> Cont. Top. Lab. Anim. Sci. 44, 52-55 (2005).</li>
<li>MacDonald, K. D., Chang, H. Y., Mitzner, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+improved+simple+method+of+mouse+lung+intubation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Appl.+Physiol%22%5BJournal%5D)">An improved simple method of mouse lung intubation.</a> J. Appl. Physiol. 106, 984-987 (2009).</li>
<li>De Vleeschauwer, S. pI., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Repeated+invasive+lung+function+measurements+in+intubated+mice%3A+an+approach+for+longitudinal+lung+research%5BTitle%5D)+AND+%22Lab.+Anim%22%5BJournal%5D)">Repeated invasive lung function measurements in intubated mice: an approach for longitudinal lung research.</a> Lab. Anim. 45, 81-89 (2011).</li>
<li>Zhao, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+technique+for+retrograde+intubation+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Lab.+Anim%22%5BJournal%5D)">A technique for retrograde intubation in mice.</a> Lab. Anim. 35, 39-42 (2006).</li>
<li>Singer, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Left-sided+mouse+intubation%3A+description+and+evaluation%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Lung+Res%22%5BJournal%5D)">Left-sided mouse intubation: description and evaluation.</a> Exp. Lung Res. 36, 25-30 (2010).</li>
</ol>

החוקרים מצהירים כי אין להם אינטרסים כלכליים מתחרים.

בדו&quot;ח זה אנו מתארים טכניקה פשוטה ואמינה לצנרר עכברים שהוא לא טראומטי וניתן להשתמש בם שוב ושוב באותה החיה. טכניקה זו יכולה להיות מושלמת עם מעבדה פשוטה או ציוד רפואי שניתן לרכוש תמורת סכום צנוע. הטכניקה של laryngoscopy הישיר, שפורסמה לראשונה בהייסטינגס ועמיתי 4, יכולה גם לשמש למגוון מטרות, אלא בעיקר כדי לספק במדויק חומרי מבחן לדרך הנשימה התחתונה. מצאנו בטכניקה זו עדיפה על אלו שדווחו על ידי חוקרים אחרים עד כה בגלל קלות, מהירות, פשטות, אמינות, הוצאות נמוכות, ופוטנציאל ...

עכבר המעבדה החליף כמעט את כל המינים כמודל יונקים העיקריים של ביולוגיה וpathobiology. עכבר המעבדה הוא מיני היונקים הקטנים ביותר, כי הוכח באופן ברור ונרחב כדי להיות בעל ערך כמודל למחלה אנושית והוכיח לא יסולא בפז בהתקדמות של ההבנה של ביולוגיה ומחלות האנושיות שלנו. זמן ההריון הקצר והעלות נמוכה באופן משמעותי אפשר פיתוח ומחקר של עכברי null ומהונדסים ככלי שבשגרה במחקר ביו. עם זאת, גודלו של עכבר המעבדה הממוצע (20-25 גר &#39;) הגביל את המחקר שלהם במחקרים המבוססים מבחינה פיזיולוגית או בניתוח, וכתוצאה מכך, כמה חוקרים ללמוד מיני יונקים גדולים יותר. מכשול לשימוש בעכברים במחקרים אלה הוא הקושי שנתקל עם טכניקות אינטובציה שתאפשר מדידות פיסיולוגיות או פרוצדורות כירורגיות נרחבות בהרדמה עמוקה. ההנשמה 1 שמשה כte סטנדרטיchnique במקום אינטובציה בגלל קלות רבה יותר של ביצוע טכניקה זו ומיומנות צנועה הנדרשת. עם זאת, ההנשמה היא לא תורם למחקרי ניתוח כרוניים או שחזור; וכך, הוא מוגבל לניסויים חריפים. ההנשמה יכולה להיות גם משתנה בלבול במחקר שבו דלקת או רפלקסים פיסיולוגיים רגישים הן חשובות. המעבדה שלנו ניסתה את רוב הטכניקות שתוארו על ידי חוקרים אחרים ומצאה את מספק עבור מגוון רחב של סיבות. ההנשמה היא טראומטית מדי וגורמת לדימום ודלקת בדרכי הנשימה. הרבה יותר בעייתי הוא שזה לא יכול להיות חוזר ונשנה יתכן. טכניקות פולשנית יחסית רבות הדורשות השקעה צנועה בציוד לא מספיק אמינות. טכניקות אחרות דורשות ציוד יקר שקשה להצדיק מבלי לדעת אם הציוד יעבוד ביישום ספציפי. לפיכך, אנו מבקשים לפתח טכניקה לא טראומטית שלא נדרשת יותר tהאן השקעה צנועה בציוד מיוחד, יכול להתבצע במהירות ובאופן אמין, יכול להיות חוזר ונשנה במודלים כרוניים, ויכול לשמש במספר רב של בעלי חיים. כאן אנו מדווחים טכניקה כזו.

<table><tbody><tr><td>ראש אוטוסקופ הפעלה</td><td>Welch Allyn</td><td>21700</td><td>$188.98</td></tr><tr><td>ידית אוטוסקופ</td><td>Welch Allyn</td><td>71000</td><td>$112.20</td></tr><tr><td>לשימוש חוזר ספקולום</td><td>Welch Allyn</td><td>22002</td><td>$3.98</td></tr><tr><td>מלקחיים עדינים</td><td>Miltex</td><td>18-779</td><td>$107.18</td></tr><tr><td>מעמד מהדק קטן להחזקת אוטוסקופ</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>וופורייזר איזופלורן (מעגל מרובה עם טיפול בגז פסולת ואקום)</td> <td>Summit Medical</td><td></td><td>$3,000</td></tr><tr><td>גמיש (מאוורר לבעלי חיים)</td><td>SCIREQ</td><td></td><td>$35,000</td></tr><tr><td>קטטר תוך ורידי (20 גרם, 1 אינץ')</td><td>BD</td><td>381233</td><td>$9.62</td></tr><tr><td>צינורות פוליאתילן (PE10) (0.011 בתעודת זהות, 0.024 ב-OD) 100 רגל</td><td>אינטרמדיק, קליי-אדמס</td><td>427401</td><td>$115.70</td></tr><tr><td>קטמין 100 מ"ג/מ"ל (10 בקבוק מ"ל)</td> <td>באטלר</td><td>23061</td><td>$10.00</td></tr><tr><td>קסילזין (בקבוק 100 מ"ל)</td><td>Vedco</td><td>24105</td><td>$20.00</td></tr><tr><td>איזופלורן (בקבוק 250 מ"ל)</td><td></td><td></td><td>$15.00</td></tr><tr><td>וקורוניום ברומיד 10 מ"ג/10 מ"ל</td><td>פייזר</td><td>NDC 0069-0094-01</td><td>$15.00</td></tr></tbody></table>

endotracheal אינטובציה בעכברים<em&gt; דרך</em&gt; ישיר laryngoscopy באמצעות אוטוסקופ

Endotracheal Intubation in Mice via Direct Laryngoscopy Using an Otoscope

עכברים, שניהם wildtype ומהונדס, הם המודל של היונקים העיקריים במחקר ביו כרגע. אינטובציה והנשמה מלאכותית נחוצות לניסויים בבעלי חיים שלמים שדורשים ניתוח בהרדמה או מדידות של תפקודי ריאות עמוקות. ההנשמה כבר את התקן לintubating את דרכי הנשימה בעכברים אלה כדי לאפשר אוורור מכאני. אינטובציה orotracheal כבר דיווחה, אך לא נוצלה בהצלחה במחקרים רבים בשל הקושי הטכני משמעותי או דרישה לציוד מיוחד ויקר מאוד. כאן אנו מדווחים טכניקה של laryngoscopy הישיר באמצעות מצויד עם ספקולום 2.0 מ&quot;מ Otoscope ובאמצעות קטטר לוריד 20 G כמו הטובוס. אנחנו השתמשנו בטכניקה זו בהרחבה ובאמינות לצנרר ולבצע הערכות מדויקות של תפקוד ריאות בעכברים. טכניקה זו הוכיחה בטוחה, ללא מהות אובדן בעלי חיים בידיים מנוסים. יתר על כן, בטכניקה זויכול לשמש למחקרים חוזרים ונשנים של עכברים במודלים כרוניים.

אינטובציה עם הטכניקה הנ&quot;ל היא אמינה ומהירה. המיקום המתאים של הטובוס מאומת בקלות על ידי התבוננות מבעבעת גז שפג תוקפו מאיבר הנשיפה מתחת למים של של מעגל המאוורר (בדרך כלל במלכודת PEEP) וסטיות שליליות על לחץ אוויר התחקות (איור 1). הסטיות השליליות על מעקב לחץ אוויר הן אמינות ביותר. אחרים השתמשו בתנועה של טיפת נוזל קטנה בצינור תוך ורידי המחובר למעגל ההנשמה נשיפת 2. למרות שאנחנו לא השתמשנו בטכניקה זו בהרחבה, זה צריך להיות מספיק כדי לאמת את מיקום צינור. מפ...

אנחנו פיתחנו שיטה פשוטה, אמינה, וזולה יחסית לאינטובציה endotracheal בעכברים באמצעות laryngoscopy הישיר באמצעות אוטוסקופ עם ספקולום 2.0 מ&quot;מ. טכניקה זו היא atraumatic ויכולה לשמש למדידות חוזרות בניסויים כרוניים. אנחנו מוצאים את זה מעולה להנשמה או בעבר דיווח טכניקות נזקקה לניתוח.

Endotracheal אינטובציה בעכברים<em&gt; דרך</em&gt; ישיר laryngoscopy באמצעות אוטוסקופ

Mice, both wildtype and transgenic, are the principal mammalian model in biomedical research currently. Intubation and mechanical ventilation are ...

המטרה הכללית של הליך זה היא לבצע אינטובציה אוראלית מהימנה בעכברים. זאת על ידי מיקום ראשוני וזהיר של בעל החיים המורדמם בכיוון המתאים. לאחר מכן, בעזרת המשקוף של האוטוסקופ, מזהים את מיתרי הקול ומעבירים את צינור האינטובציה לגרון באמצעות סטילט.בשלב הבא, העכבר המונשם מחובר למסייע נשימה (ventilator) כדי לוודא את מיקומו התקין של השפופרת. לחלופין, ניתן להשתמש באוטוסקופ להחדרת חומרים לבדיקה לריאה. בסופו של דבר, ניתן למדוד יחסי לחץ-נפח מדויקים בריאה.היתרונות המרכזיים של טכניקה זו על פני שיטות קיימות, כגון טרכיאוסטומיה, הם שהיא מהירה, חסרת דם, אינה גורמת לטראומה וניתנת לחזרה. הדגמה חזותית של טכניקה זו היא קריטית, שכן את שלבי האינטובציה קשה ללמוד והוראות כתובות בעלות משמעות מועטה ללא ויזואליזציה סימולטנית של האנטומיה ומכניקת האינטובציה. כדי לבצע אינטובציה אנדוטראכאלית באמצעות אוטוסקופ, יש תחילה לאחז בעורף (scruff) של עכבר בן שמונה שבועות תחת הרדמה, ולאחר מכן להשתמש בפינצטה עדינה עם ריפוד כדי להוציא בעדינות את הלשון מהפה.שמרו על המתיחה על ידי החזקת הלשון בין פינצטות והפעלת כוח עדין, ולאחר מכן משכו את העכבר מעלה אל המשקף (speculum) של האוטוסקופ בתנועה אנכית. הביטו דרך העינית של האוטוסקופ תוך המשך החזקה הדוקה של עורף בעל החיים, ומשכו בעדינות את העכבר לאורך כל המשקף של האוטוסקופ באמצעות הלשון והעורף. חפשו בקפידה את מיתרי הקול, שאמורים להיות גלויים בקלות ולהזיז עם כל נשימה את מבנה פתח הגרון.ה-ATUs הלרינגיאליים צריכים להיראות לבנים יחסית. אם המיתרים אינם זזים או שאינם נראים היטב, סובב את בעל החיים מעט והרחב בעדינות את הצוואר בבלימה (hyperextension). לאחר מכן, בעזרת היד הדומיננטית, קח קטטר במידה 20 gauge ובאורך של שפה אחת, המצויד בצינור PE 10 באורך של 1 cm המשתך דרך קצה הקטטר, והחזק אותו כמו עיפרון.לאחר מכן, הכניסו את הקטטר לצד הספקולום. כוונו את צינור ה-PE 10 דרך מיתרי הקול והקידו את הקטטר מעל הצינור עד שהחלק המקשר (hub) יגיע לגובה השן החותכת התחתונה. לאחר מכן, הוציאו את הצינור במהירות.בשלב הבא, העבירו בעדינות את בעל החיים מהספקולום למסייע נשימה מכני (mechanical ventilator), ואמתו את מיקום הצינור באמצעות צפייה בבועות אוויר הנשפות דרך מלכודת ה-peep. עקבו אחר רישום לחץ נתיב האוויר כדי לזהות סטיות שליליות המאשרות את מיקומו התקין של הצינור. במקרה של אינטובציה וסתיקית (esophageal intubation), רישום הלחץ יראה לחצים גבוהים משמעותית וללא סטיות שליליות.לחלופין, ניתן להניח כמות קטנה של מים לתוך קטע של צינור עירוי (IV tubing) ולחבר את הצינור לצינור האינטובציה, תוך אימות תנועת המים הלוך ושוב עם נשימת העכבר. שימוש חלופי בשיטת האוטוסקופ הוא להגשת חומרים לבדיקה לעכבר. השתמש בספקולום כדי להחדיר פיפטה לטעינת ג'ל עד למיתרי הקול והזרם עד 50 µL מהטיפול הרלוונטי.העכבר ישאב את הנוזל דרך מיתרי הקול כפי שיוודא החוקר. קולות נשימה יישמעו עד שהנוזל יתפזר במלואו בריאות. לאחר מתן הטיפול, הוצא בעדינות את הפיפטה והנח את העכבר על משטח חימום.לחלופין, הניחו את בעל החיים בתוך כלוב המונח על שולחן חימום בבקרה טמפרטורית. כאשר בעל החיים התאושש לחלוטין, החזירו אותו לכלובו. אינטובציה באמצעות אוטוסקופ היא מהירה ואמינה.במעקב זה של לחץ דרכי הנשימה, הקו הכחול משקף את לחץ דרכי הנשימה, והקו האדום משקף את מעקב נפח הנשימה של העכבר מיד לאחר האינטובציה. הסטיות השליליות כלפי מטה של עקומת הלחץ מעידות על יצירת לחץ תו-בית חזה שלילי בעכבר על ידי מאמץ נשימתי ספונטני והנחה נכונה של הצינור האנדוטרכאלי. עבור עקומת לחץ-נפח מייצגת זו, העכבר עבר אינטובציה באמצעות קטטר תו-ורידי במידה של 20 gauge כפי שהודגם זה עתה, שומשם ב-pantonium והונשם באופן מכני.העקומות ממחישות כי הקתטר אינו דולף עד ללחץ של 30 centimeters of water ולכן ניתן להשתמש בו לביצוע מדידות מדויקות של קשרי לחץ-נפח בעכבר. באיור זה מוצגת עקומת תגובה למינון מייצגת. בניסוי זה, לבעל החיים בביקורת הייתה תגובה מינימלית למתילכולין עד לריכוז של 25 milligrams per milliliter, בעוד שהעכבר שחוסן וחלה לאלבומין הפגין תגובת-יתר לטיפול.המדידות בוצעו בעכברים שעברו אינטובציה באמצעות קטטר בכיול 20 gauge כפי שהודגם זה עתה, והיו זהות למדידות שבוצעו בעכבר שעבר טרכאוסטומיה באמצעות לרינגוסקופיה ישירה. הולכה כמותית לריאה היא גם אמינה יותר וגם אחידה יותר. לדוגמה, כפי שמוצג בתמונה זו, ניתן להשתמש בטכניקת ההחדרה הישירה כדי להוביל במדויק אנטיגן למסילת הנשימה התחתונה במודל של דלקת אלרגית.לאחר צפייה בסרטון זה, תהיו בעמדה להבין היטב כיצד להשתמש באוטוסקופ לצורך ביצוע אינטובציה לרינגוסקופית ישירה בעכבר.

endotracheal-intubation-mice-via-direct-laryngoscopy-using-an

Research

JoVE Journal

Medicine

רפואה

מדידות חוזרות של הפיזיולוגיה מכרסם הנשימה דגימה של תאים דלקתיים בדרכי האוויר רצויות, אבל בדרך כלל לא ריאלי. כאן אנו מתארים את שיטת הדיר עבור בעל פה intubating עכברים המאפשר מדידות חוזרות של דרכי הנשימה ואת hyperreactivity דגימה של תאים דלקתיים בדרכי האוויר.

הפיך, לא פולשני שיטת ההתנגדות מדידות דרכי הנשימה ואת נוזל שטיפה ברונכואלוואולרית דגימה של עכברים

מאמר זה מתאר שיטת striaghforward ויעילה של intubating עכברים למדידת תפקוד הריאתי או החדרה ריאתי, שמאפשרת לעכברים להתאושש ולהיחקר בתקופות מאוחרות יותר. ההליך כרוך מקור אור סיב אופטי יקר שמאיר ישירות לקנה נשימה.

שיטה פשוטה של ​​אינטובציה ריאות המאוסות

השימוש במודל המחקה את המצב של מחלות ריאה בבני האדם הוא קריטי ללימוד הפתופיזיולוגיה ו / או אטיולוגיה של מחלה מסוימת ולפתח התערבות טיפולית. הנה שיטת אינטובציה intratracheal לא פולשנית שיכול ישירות לספק חומרים אקסוגניים לריאות עכבר מוצגת.

פולשנית Intratracheal אינטובציה ללמוד פתולוגיה והפיזיולוגיה של עכבר ריאות

מאמר זה מציג שיטה מהירה ופשוטה לניהול בליאומיצין ישירות לתוך קנה הנשימה העכבר באמצעות אינטובציה. יתרונות עיקריים של שיטה זו הם כי הוא מאוד לשחזור, קל לשלוט, ואינו דורשים ציוד מיוחד או פעמי החלמה ממושכות.

שיטה משופרת עבור אינטובציה מהירה של קנה הנשימה של עכברים

צנרור אנדוטרכאליות בארנבים הוא מאתגר עקב שלהם באנטומיה יוצא דופן. כאן אנו מציגים טכניקה לצנרור ישירה של קנה הנשימה באמצעות צנתר פוליפרופילן כמדריך. בשיטה זו מנצל אספקה זולה יחסית, דורש הכשרה מינימלית, וזה יכול להתבצע בקלות בכל סביבה קליניים.

צנרור אנדוטרכאליות ארנבים באמצעות צנתר מדריך פוליפרופילן

המטרה של מאמר זה היא לתאר שיטה מעודנת של צנרור העכבר המעבדה. השיטה אינה פולשנית, ולכן אידיאלית למחקרים הדורשים ניטור סדרתי של תפקודי הנשימה ו/או הערכת טיפולים בריאה.

וחזר אורוקנה אל בעכברים

מודל ניתוחי בעכבר ליצירת פגיעה באיסכמיה של הריאה השמאלית (IR) תוך שמירה על אוורור והימנעות מהיפוקסיה.

מודל עכברי של אינטובציה אורוטרכאלית וניתוח איסכמיה ריאה מונשמת

כאן, אנו מציעים פרוטוקול להעברת ליפופוליסכריד תוך טרכאלי (LPS) באמצעות אינטובציה אנדוטרכאלית אורופרכאלית לא פולשנית. שיטה זו ממזערת את הטראומה של ההליך הכירורגי עבור החיה ומעבירה LPS מדויק לקנה הנשימה ולאחר מכן לריאות.

החדרת ליפופוליסכריד תוך טרכאלי לא פולשני בעכברים

פרוטוקול זה מתאר גישת לרינגוסקופיה טרנס-אוראלית סדרתית לעכברים וחולדות המאפשרת הדמיית וידאו מקרוב וללא הפרעה של הגרון במהלך הנשימה והבליעה באמצעות משטר הרדמה אופטימלי וטכניקות מניפולציה אנדוסקופיות מכווננות היטב.

לרינגוסקופיה זעיר פולשנית של עכברים להדמיה מקרוב של תנועת הגרון במהלך נשימה ובליעה

כאן אנו מציגים הליך סטנדרטי לאינטובציה אנדוטרכאלית באמצעות טרכאוטומיה ואחריה בית החזה בחולדות, שמטרתו לשפר את הדיוק והשחזור של יישומים שאינם הישרדותיים הדורשים הנשמה פולשנית וחשיפה של איברי בית החזה במודלים של חולדות in vivo .

אינטובציה אנדוטרכאלית באמצעות טרכאוטומיה ולאחר מכן ניתוחי בית החזה בחולדות ליישומים שאינם הישרדותיים

פרוטוקול זה מציג כיצד מיקום אופטימלי של עכבר והחדרת אוטוסקופ מבוסס מצלמה באופן טרנסאורלי מאפשר הדמיה של הגלוטיס, אינטובציה מהירה עם טראומה מינימלית לרקמות ואספקת נוזלים עקבית לריאות.

מתודולוגיה משופרת לאספקת נוזלים לריאת העכבר: אינטובציה באמצעות אוטוסקופ צרכני

למד אינטובציה אנדוטרכאלית בעכברים באמצעות לרינגוסקופיה ישירה עם אוטוסקופ. טכניקה זו מהירה, ללא דימום וללא טראומה, מתאימה למדידות חוזרות בניסויים כרוניים ומספקת חלופה אמינה לטרכאוסטומיה.

Endotracheal אינטובציה בעכברים

גלה סרטונים נוספים