Name: פרוטוקול עוף עובר חוט שדרת Slice תרבות (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-03-25T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 57 s
Description: חקור פיתוח נוירונים מוטוריים בעמוד השדרה בעזרת שיטת תרבות פרוסות עוברי עוף. הפרוטוקול כולל ניתוח זהיר, הטמעה באגרוז וחיתוך, ומאפשר מעקב אחרי נוירוגנזה תקינה למשך 24 שעות במעבדה.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

ברצוננו להודות ללהתפאר שרון לדיוני תובנה רבים וב Novitch על מתנה מהסוג של הנוגדנים לFoxp1. עבודה זו כממומנת על ידי מלגת לימודים של קרן Wellcome לKCT ומענק פרויקט של קרן Wellcome לSRP (גרנט התייחסות המספר 094399/B/10/Z).

1. הפוך פתרונות נדרשים <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חיץ 1 ז פוספט:. תשקול את 109.4 גרם Na 2 HPO 4 ו 32 גרמו nah 2 PO 4 H 2 0, לערבב ומתמוסס במים לנפח כולל של 1 ליטר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> נאגר מלוח פוספט (PBS): הכן את חיץ פוספט 0.1 מ &#39;, 0.15 מ&#39; NaCl. 100 מ&quot;ל של PBS צריך להספיק לעיבוד של פרוסות מ10 עוברים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Agarose: פתרון לחום PBS סביב 70 המעלות צלזיוס ולהוסיף היתוך agarose טמפרטורה הנמוך המוצק תוך לאט תוך ערבוב מתמיד. הפוך פתרון לריכוז סופי של 4% (w / v) agarose. הפוך מלאי של 50 מ&quot;ל של פתרון זה. השאר את הפתרון הזה בwaterbath שמר על 48 מעלות צלזיוס עד שנדרש. כל פתרון שאינו בשימוש agarose לאחר הניסוי ניתן לאחסן ב 4 ° C למשך מספר שבועות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> פתרון נוגדן בלוק: הוסף עוברי עגל בסרום וטריטון X-100 לconcentr סופיation של% 1 (נ / V) עוברי עגל בסרום, 0.1% (v / v) טריטון X-100 ב PBS. 10 מ&quot;ל של פתרון בלוק יספיק לimmunostaining של 5 מגלשות סעיפי cryostat. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מקבע: הכן 0.75 המ&quot;מ NaOH, 4% (w / v) paraformaldehyde (זהירות). כדי להכין את הכמות הנדרשת של מים מקבע חום עד 70 מעלות צלזיוס, להוסיף NaOH המרוכז לריכוז סופי הנדרש, להוסיף paraformaldehyde ומערבב עד להמסה מלאה. מגניב על קרח עד 4 ° C. 10 מ&quot;ל של הפתרון הזה יספיק ל20 בארות של פרוסות עובר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> פתרון סוכרוז: הכן 10 מ&quot;ל של 30% (w / v) פתרון המכיל סוכרוז פוספט חיץ M 0.1. 10 מ&quot;ל של הפתרון הזה יספיק ל10 בארות של פרוסות עובר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> 70% (v / v) אתנול. לדלל 70 מ&quot;ל של אתנול מוחלט עם 30 מ&quot;ל מים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בינוני תרבות: הכן את הפתרון של 1% תמצית עוף עובר, 1% פניצילין / סטרפטומיצין, 0.35% L-גלוטמין, 0.1% 2-mercaptoethanol, 4% עוף סרום, 2% B27 ותוסף גורם 100 ng / ml ciliaryneurotrophic צמיחה (CNTF) כל דילול במדיום neurobasal; הוכן על קרח והשתמש באותו היום. 10 מ&quot;ל של מדיום התרבות נדרש במשך 20 בארות של פרוסות עובר. </li></ol> 2. הכנה עובר אפרוח <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מקום ביצים מופרות תרנגולות עם הצד הארוך אופקי בנאלצה טיוטת חממה ב38 מעלות צלזיוס עד שהם מפתחים לשלב 15 24. זה בדרך כלל דורש כ 4 ימי דגירה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ביום השני של דגירה, לעקר את קליפת הביצה על ידי ניגוב עם נייר טישו הספוג באתנול 70%. זהירות לנקב את קצו השטוח של קליפת הביצה באמצעות מחט 21 מד מחוברת למזרק 5 מ&quot;ל ולהסיר 5 מ&quot;ל של אלבומין. זה מוריד את העובר מקליפה ולכן העובר אינו נפגע בעת הקליפה נפתחה. להחזיר את הביצים לאינקובטור ודגירתם במשך 2 ימים נוספים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שימוש # 5 המלקחיים דומון הקהה גarefully פירס האמצע העליון של הקליפה ולהסיר סביב 9 סנטימטר 2 של פגז. חותך סביב העובר ומוציא בזהירות את העובר והמקום בHBSS במהלך נתיחה. העוברים צריכים להיות מבוימים על פי המבורגר והמילטון (1992) 15. כל העוברים בשימוש צריכים להיות בקרבת הבמה 24. כל עוברים שמראים כל סימן של חריגות אמורים להיות מושלכים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר את קרום amnion, קרום Chorio-allantoic, הראש, וallantois באמצעות שני דומון # 5 מלקחיים. כסח את העובר כדי להסיר את כל האיברים הפנימיים. כדי לעשות זאת, חתך את קו אמצע הגחון של העובר עם מספריים מבתרים מייקרו, להחזיק את העובר ברחבי אזור תא המטען המקורי עם זוג אחד של מלקחיים, לתפוס את החלק המקורי של הבטן ולב ולמשוך caudally. זה חשוב שזה נעשה בצורה נקיה. אתה אמור להיות מסוגל לראות את העובר באופן ברור somites. חותך את העובר במחצית, רוחבי בין buds.Now הגפיים העליונים והתחתון לקצץ גוף החזיקיר באמצעות מספרי microdissection. </li></ol> 3. הכנה פורס עובר <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר את פתרון agarose מאמבט המים. לחתוך 5 סנטימטר מהתחתית פנויה 3 מיליליטר פלסטיק פסטר פיפטה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בעדינות להסיר את החלק המותני של העובר נותח באמצעות שני מלקחיים לעריסה את העובר של פתרון הנתיחה והמקום בצלחת פטרי יבשה. שימוש פסטר פיפטה, הסר סביב 2 מ&quot;ל של agarose, פיפטה כ 0.5 מ&quot;ל בראש של העובר ולאחר מכן למצוץ את פרוסת העובר לתוך פיפטה. להעביר את העובר וagarose לקליפת עובש פלסטיק משם לדאוג שלא להציג את כל בועות בagarose. בעדינות להוריד את העובר לתחתית agarose בתבנית הפלסטיק עם סעיף החזה פונה כלפי מטה. העובר צריך להיות ממוקם ישר ליהיה באמצעות מחט מד 21. את הפרוסות תכלנה גם חלק מהאיבר מתפתח וחשובה שהאורינטציה של העובר באגרOSE יאפשר זאת. הנח את הסירה על קרח כדי להגדיר את agarose. לדאוג שהעובר לא לשנות את הנטייה בתקופה זו (כ 2 דקות). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> יקה VT1000S vibratome (3 מהירות, תדירות 4, 400 פרוסות עבות מיקרומטר) צריך להיות מוגדר עם קאמרי חיתוך מלא HBSS ומוקף במים קרים כקרח. אז בלוק agarose תקוע לפלטפורמת vibratome עם דבק סופר. בלוק agarose חיתוך בסכין גילוח להשאיר פיסת העובר עם מ&quot;מ של 1-3 agarose המקיף אותו. את הפרוסות הכוללות סעיפי ניצן גפיים עם ectodermal rigde קודקוד ברור נבחרות והפרוסות האלה אז ממוקמות בHBSS. באופן כללי, יש רק 1-2 פרוסות מתאימות לעובר. סור בעדינות את פרוסות agarose סביב הרקמות באמצעות שתי מחטים. זה חיוני כי זה נעשה ביסודיות ובזהירות. </li></ol> 4. פרוסות Embryo culturing <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף 500 מ&quot;ל של תמיסת התרבות (שתואר לעיל) לrequirמספר העורך של בארות של צלחת 24 גם נמוכה במיוחד מצורפת טופלה רקמות תרבות. להעביר את הפרוסות בזהירות מפתרון HBSS לתוך הבאר. באופן כללי, אנחנו מנסים להיות 2-3 פרוסות בכל אחד גם. מניח את הצלחת 24 היטב ברקמות תרבות החממה ב 37 ° C עם 5% CO 2 למשך 24 שעות. </li></ol> 5. חתך את הפרוסות לImmunostaining <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בעקבות תקופת התרבות, להוסיף 500 μl של תיקון unbuffered לכל באר של פרוסות עובר ולהשאיר על קרח למשך 20 דקות. אז הפתרון הכולל הוא הוציא בזהירות ושלוש כביסות PBS מתבצעות, עם מרווחים 5-min. את הפרוסות אז נעזבות בתמיסת סוכרוז ב 4 ° C, עד לכיור הפרוסות, סביב 6 שעות אך ניתן להשאיר למשך זמן ארוך יותר (למשל בלילה). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר את הפרוסות ומספיג off פתרון סוכרוז נוסף ולאזן בסביבת המ&quot;ל 1 אוקטובר לסביבות 5 דקות בטמפרטורה של 20 מעלות צלזיוס הר כל דירת פרוסה באוקטובר מולא לקלף תבנית פלסטיק.לאחר ההרכבה, הנח את התבניות בצורה אנכית בקרח יבש לביסוס. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הר אובניים אוקטובר לcryostat ולאזן את הלוקים ב-24 מעלות צלזיוס במשך 20 דקות סביב. חותך כל פרוסה עם 15 חלקי מ&quot;מ רכובים על שקופיות Superfrost-Plus. שקופיות ניתן לאחסן ב-80 מעלות צלזיוס עד שהם נדרשים. </li></ol> 6. Immunofluorescence <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> פיפטה 1-2 מ&quot;ל של PBS בשקופיות האופקיות הוחזקו בתא humidified עם השקופיות שהועלו מהעומק של החדר (שאנחנו משתמשים 1 או 2 המ&quot;ל pipettes פלסטיק קבוע עם קלטת חיטוי). דגירת הסעיפים בPBS למשך 5 דקות בטמפרטורה של 20 מעלות צלזיוס כדי להסיר אוקטובר העודף הסר את פתרון PBS מהשקופית ולהוסיף 500 מ&quot;ל של פתרון בלוק מעל לקטעים, דגירה במשך 30 דקות בטמפרטורה של 20 מעלות צלזיוס הסר את פתרון הבלוק ולהוסיף 500 מ&quot;ל של נוגדן ראשוני מדולל מייד הוסיף את השקופיות, דגירה על 4 מעלות צלזיוס במשך 18-22 שעות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר פתרון נוגדן ראשוני ומיידh את השקופיות עם 1 מ&quot;ל של PBS למשך 5 דקות, שלוש פעמים בשעת 20 ° C כדי להסיר פתרון נוגדן ראשוני עודף. הוסף 500 מ&quot;ל של נוגדן משני מדולל על המדורים. את השקופיות ואז הם עזבו ב 20 מעלות צלזיוס למשך 30 דקות. אז פתרון הנוגדן המשני יוסר והשקופית שטפה 5 דקות 3 פעמים ב PBS על 20 ° C. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בעקבות שטיפות אלה, להסיר את PBS לשטוף הסופי, הנגיעה בקצה של השקופית כדי להסיר PBS העודף, מוסיף שתי טיפין של vectashield בשקופיות ובעדינות להניח coverslip זכוכית על הסעיפים, והימנעות מהיווצרות בועה. הסר Vectashield העודף על ידי סופג מהקצה את השקופיות לפני ההדמיה. </li></ol> 7. הדמיה <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תמונת סעיפי immunostained. אנו משתמשים במיקרוסקופ ניקון אקליפס E80i פלואורסצנטי מצויד במצלמת Hamammatsu ORCA ER דיגיטלית ו10 X, 20X ו 40 X עדשות אובייקטיביות. </li></ol>

<ol><li>Jessell, T. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuronal+specification+in+the+spinal+cord%3A+Inductive+signals+and+transcriptional+codes%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Genetics%22%5BJournal%5D)">Neuronal specification in the spinal cord: Inductive signals and transcriptional codes.</a> Nature Reviews Genetics. 1 (1), 20-29 (2000).</li>
<li>Landmesser, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Distribution+Of+Motoneurons+Supplying+Chick+Hind+Limb+Muscles%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Physiology-London%22%5BJournal%5D)">Distribution Of Motoneurons Supplying Chick Hind Limb Muscles.</a> Journal of Physiology-London. 284, 371-389 (1978).</li>
<li>Romanes, G. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+motor+pools+of+the+spinal+cord%5BTitle%5D)+AND+%22Progress+in+Brain+Research%22%5BJournal%5D)">The motor pools of the spinal cord.</a> Progress in Brain Research. 11, 93-119 (1964).</li>
<li>Dasen, J. S., De Camilli, A., Wang, B., Tucker, P. W., Jessell, T. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hox+repertoires+for+motor+neuron+diversity+and+connectivity+gated+by+a+single+accessory+factor%2C+FoxP1%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Hox repertoires for motor neuron diversity and connectivity gated by a single accessory factor, FoxP1.</a> Cell. 134 (2), 304-316 (2008).</li>
<li>Rousso, D. L., Gaber, Z. B., Wellik, D., Morrisey, E. E., Novitch, B. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Coordinated+actions+of+the+forkhead+protein+Foxp1+and+Hox+proteins+in+the+columnar+organization+of+spinal+motor+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Coordinated actions of the forkhead protein Foxp1 and Hox proteins in the columnar organization of spinal motor neurons.</a> Neuron. 59 (2), 226-240 (2008).</li>
<li>Tsuchida, T., Ensini, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Topographic+organization+of+embryonic+motor-neurons+defined+by+expression+of+limhomeobox+genes%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Topographic organization of embryonic motor-neurons defined by expression of limhomeobox genes.</a> Cell. 79 (6), 957-970 (1994).</li>
<li>Kania, A., Johnson, R. L., Jessell, T. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Coordinate+roles+for+LIM+homeobox+genes+in+directing+the+dorsoventral+trajectory+of+motor+axons+in+the+vertebrate+limb%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Coordinate roles for LIM homeobox genes in directing the dorsoventral trajectory of motor axons in the vertebrate limb.</a> Cell. 102 (2), 161-173 (2000).</li>
<li>Price, S. R., Garcia, N. V. D., Ranscht, B., Jessell, T. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+motor+neuron+pool+sorting+by+differential+expression+of+type+II+cadherins%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Regulation of motor neuron pool sorting by differential expression of type II cadherins.</a> Cell. 109 (2), 205-216 (2002).</li>
<li>Demireva, E. Y., Shapiro, L. S., Jessell, T. M., Zampieri, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Motor+Neuron+Position+and+Topographic+Order+Imposed+by+%CE%B2-+and+%CE%B3-Catenin+Activities%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Motor Neuron Position and Topographic Order Imposed by β- and γ-Catenin Activities.</a> Cell. 147 (3), 641-652 (2011).</li>
<li>Bello, S. M., Millo, H., Rajebhosale, M., Price, S. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Catenin-Dependent+Cadherin+Function+Drives+Divisional+Segregation+of+Spinal+Motor+Neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Catenin-Dependent Cadherin Function Drives Divisional Segregation of Spinal Motor Neurons.</a> Journal of Neuroscience. 32 (2), 490-505 (2012).</li>
<li>Haase, G., Dessaud, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((GDNF+acts+through+PEA3+to+regulate+cell+body+positioning+and+muscle+innervation+of+specific+motor+neuron+pools%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">GDNF acts through PEA3 to regulate cell body positioning and muscle innervation of specific motor neuron pools.</a> Neuron. 35 (5), 893-905 (2002).</li>
<li>Hotary, K. B., Landmesser, L. T., Tosney, K. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Embryo+slices%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Embryo slices.</a> Methods in Cell Biology. 51 (51), 109-124 (1996).</li>
<li>Hotary, K. B., Tosney, K. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+interactions+that+guide+sensory+and+motor+neurites+identified+in+an+embryo+slice+preparation%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+Biology%22%5BJournal%5D)">Cellular interactions that guide sensory and motor neurites identified in an embryo slice preparation.</a> Developmental Biology. 176 (1), 22-35 (1996).</li>
<li>Krull, C. E., Tosney, K. Embryo slices and strips: Guidance and adhesion assays in the avian embryo. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aKrull%2C+CE+%22Methods+in+Cell+Biology%3A+New+Methods+in+Avian+Embryology%22">Methods in Cell Biology: New Methods in Avian Embryology</a>. Bronner-Fraser, M. 87, 2nd Edition, Elsevier Academic Press Inc. San Diego. 97-113 (2008).</li>
<li>Hamburger, V., Hamilton, H. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+series+of+normal+stages+in+the+development+of+the+chick+embryo.+%28Reprinted+From+Journal+Of+Morphology%2C+Vol.+88%2C+1951%29%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+Dynamics%22%5BJournal%5D)">A series of normal stages in the development of the chick embryo. (Reprinted From Journal Of Morphology, Vol. 88, 1951).</a> Developmental Dynamics. 195 (4), 231-272 (1992).</li>
<li>Rakic, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+century+of+progress+in+corticoneurogenesis%3A+From+silver+impregnation+to+genetic+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Cerebral+Cortex%22%5BJournal%5D)">A century of progress in corticoneurogenesis: From silver impregnation to genetic engineering.</a> Cerebral Cortex. 16, I3-I17 (2006).</li>
<li>Bingham, S. M., Sittaramane, V., Mapp, O., Patil, S., Prince, V. E., Chandrasekhar, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multiple+mechanisms+mediate+motor+neuron+migration+in+the+zebrafish+hindbrain%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Multiple mechanisms mediate motor neuron migration in the zebrafish hindbrain.</a> Dev. Neurobiol. 70 (2), 87-99 (2010).</li>
<li>Brachmann, I., Jakubick, V. C., Shaked, M., Unsicker, K., Tucker, K. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+slice+culture+system+for+the+imaging+of+nerve+development+in+embryonic+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+Dynamics%22%5BJournal%5D)">A simple slice culture system for the imaging of nerve development in embryonic mouse.</a> Developmental Dynamics. 236 (12), 3514-3523 (2007).</li>
<li>Das, R. M., Wilcock, A. C., Swedlow, J. R., Storey, K. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-resolution+Live+Imaging+of+Cell+Behavior+in+the+Developing+Neuroepithelium%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">High-resolution Live Imaging of Cell Behavior in the Developing Neuroepithelium.</a> J. Vis. Exp. (62), e3920(2012).</li>
<li>Barnes, S. H., Price, S. R., Wentzel, C., Guthrie, S. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cadherin-7+and+cadherin-6B+differentially+regulate+the+growth%2C+branching+and+guidance+of+cranial+motor+axons%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Cadherin-7 and cadherin-6B differentially regulate the growth, branching and guidance of cranial motor axons.</a> Development. 137 (5), 805-814 (2010).</li>
</ol>

אף אחד מהמחברים שמתחרה אינטרסים או ניגודי אינטרסים.

הפרוטוקול המתואר כאן מאפשר פרוסת עובר עוף שדגרה ליותר מיום אחד, תוך השמירה על תאי עצב מוטורי בחיים וממשיכים לנדוד בתקופת התרבות. בהבהרת התנאים כדי לשמור על תאי עצב מוטורי בחיים, יש לנו זוהו מספר תכונות עיקריות הנדרשות. נראה כי עד 4% סרום אפרוח הוא קריטי להישרדות של תאי עצב מוטורי והחלפתה עם סרום ממינים שונים אינו נסבל. מעניין, מצא כי הנוכחות של ריכוזים גבוהים יותר של סרום הייתה מזיקה לפרוסות כמו שהם מקודמים צמיחת יתר של הרקמה שמובילה לעיוותי ברוטו בצורת הפרוסה. וחשוב יותר, את נוכחותו של גורם neurotrophic cilliary גם הוכיחה קריטית. זה נשאר אפשרות ברורה כי את הפרוסות ייתכן שתוכלנה להיות מתורבתים לתקופות ארוכות יותר משמעותי מאשר רק 24 שעות, ואולי אפילו מאפשר הדמיה של קלט חושי מביא לחוט השדרה. בנוסף, המבוי הסתוםתנאי ture כאן יכולים להיות יעילים גם לחתוך תרבויות של גזע המוח והמוח התיכון / מוח קטן מתפתח. אולי היתרון הגדול ביותר של הפוטנציאל בשימוש בתנאי התרבות הפרוסות הללו הוא שהם מאפשרים את האפשרות למניפולציה תרופתית של תפקוד חלבון ולצמצם למינימום את הפוטנציאל להשפעות שליליות על המנוחה של העובר, כגון לב. מספר גדול של מעכבים ואגוניסטים של מעברי אותות שונים ניתן להשתמש כדי להעריך את ההגירה של תת סוגים של תאי עצב בעמוד שדרה ושונים, באופן פוטנציאלי, השפעתן של ההיווצרות של מעגלי שדרה מקומיים במהלך התפתחות. בנוסף, חלק מהפרעות גנטיות של ביטוי חלבון, כגון אלה שעושים שימוש בoligonucleotides morpholino siRNAs ו, סובלות מהעובדה שהם יכולים רק להיות הציגו בתחילת פיתוח (בשל מגבלות בהליכי electroporation אובו) ואת ההשפעות רק עברו ל תקופה קצרה של טיםדואר (בדרך כלל יום אחד). תרבות הפרוסה שלנו התחיל בשלבים מאוחר יותר ומעניקה את האפשרות להשתמש בטכנולוגיה זו בהמשך הפיתוח בשלב החיתוך לצפייה בהשפעות שלהם בתקופת התרבות של הפרוסה. פרוטוקול התרבות הפרוסה גם יכול לאפשר ההדמיה של שניהם הנוירון המוטורי בעמוד השדרה, כמו גם הגירת interneuron גב בזמן אמת באמצעות וידאו מיקרוסקופיה זמן לשגות. זאת ניתן להשיג באמצעות מיקרוסקופ לעומת שלב תחת אור לבן או באמצעות השימוש בדימות פלואורסצנטי. אם טכניקת האחרונים היו לשמש אז ההקדמה של תוויות ניאון היא זקוקים. זאת ניתן להשיג גם על ידי הקדמה של צבעי ניאון כגון DiI או דיו או באמצעות תיוג מדרדר מאיבר או מתיוג האנטרוגרד את החדר או בelectroporation אוב של מבנים לנהוג חלבוני ניאון בקבוצת משנה של הנוירונים.

במהלך התפתחות עוברית תקינה, תאים מסוגים רבים ושונים נוצרים אשר חייבת לנדוד מנקודת מוצא שלהם לאן שהם יפעלו בסופו של דבר לאורגניזם הבוגר. בתוך חוט שדרת פיתוח, תאי אב נמצאים באזור חדרית בקו האמצע וליצור הרבה תת סוגים של תאי עצב ותאי גליה postmitotic אשר חייב לנדוד להשתלב מעגלים עצביים פונקציונליים הנדרשים לעיבוד חושי ותפוקות מוטוריות 1. תאי עצב מוטורי בעמוד השדרה ששולטים בהתכווצות של שרירי גפיים נחקרו רב והרבה ידוע של מולקולות ומנגנונים המניעים את היווצרות subclasses השונה שלהם. עם זאת, הרבה פחות ידוע מהמנגנונים שבאמצעותם תאי עצב מוטורי ינדדו, להפריד ולקבל תשומות הסינפטי. זהות תת סוג הנוירון המוטורי היא רכשה במהלך הפיתוח באופן היררכי. תת נוירון מוטורי יכול להיות מסווג באופן כללי אניעמודות Nto שונים, חטיבות וברכות שמוגדרות על ידי תחזיות האקסון שלהם. רכב עמודות אקסונים פרויקט זה, גם אם שרירי מעי או איבר ציריים. חטיבות רכב לחלק את האיבר מקרין הנוירונים מוטוריים של עמודת מנוע לרוחב (LMC) לאלה מקרינים לשרירי גחון או הגבו 2. בתוך החטיבות, צבירי נוירונים מוטוריים מכונים פרויקט ברכות מוטוריות לשרירים בודדים באיבר 2, 3. הנוירונים מנוע איבר מקרין-מוגדרים על ידי הביטוי של גורם שעתוק Foxp1 4, 5, ואילו זהות חטיבה מאופיינת בביטוי של גורמי שעתוק homeodomain Islet-1 (ventrally מקרין) או Lhx-1 (dorsally מקרין) 6. אכן, Lhx-1 ביטוי דרוש לתחזיות הגב המתאימות של מנוע 7 הנוירונים. כל אחד מתת אלה תופסים עמדות שונות בתוך עמוד השדרה; הנוירונים מנוע מקרינים גחון לבוא להתגורר המדיאלי לdorsally projectiהנוירונים מוטוריים ng. התוצאה היא LMC מתבדלת לLMCmedial נקרא כך (LMCm) וחטיבות LMClateral (LMCl). ארגון ברכת אוגדה והמנוע שנרכש בשני שלבים 8. בשלב הראשון, פרדת אוגדה מושגת באמצעות הגירה של תאי עצב מוטורי במאפיין המדיאלי לאופנה לרוחב. תאי LMCl נוצרים לאחר שתאי LMCm וכן LMCl נודד דרך LMCm להשיג עמדת יישובו הסופית. השלב השני לוקח הנוירונים מנוע בתוך חטיבה ומקבצים אותם לברכות מוטוריות נוירון, ככל הנראה דרך מיון הגבה-גחון של תאי העצב המוטורי. בני משפחת cadherin הקלסי catenin התלוי הוכחו להיות קריטי לשני השלבים של 8-10 מוטוריים נוירון ארגון. עם זאת, איך פונקצית cadherin שולטת על תנועת תא הוא הבין היטב. הרכישה של זהויות, ומחלקתיות עמודי ברכה דורשת אותות חיצוניים שהדפוס intrinsiביטוי של גורמי שעתוק ג 11. בנוסף, סביב 50% מכל הנוירונים המנוע למות באמצעות אפופטוזיס במהלך התפתחות תקינה בתהליך שדורש אותות חיצוניים מהאיבר, בעיקר באמצעות תמיכת neurotrophic הישרדות הנוירון מוטורי. לפיכך, מנוע נוירון פיתוח דורש הסביבה המתאימה כדי להישמר על timecourse ארוך יחסית. מסיבה זו, את המעשיות של יצירת תרבויות פרוסות בעמוד שדרה כדי לשמור על הישרדות הנוירון מוטורי דורשות הבהרת תנאי התרבות מתאימות. תרבויות פרוסות עובר הקודמות שמשו כדי לעקוב אחר ההתנהלות הוסיפה extrinsically מטוהר אוכלוסיות עצביות 12-14. עם זאת, לתנאי תרבות הידע שלנו, המסייעים בהישרדות אתר המנוע נוירון והגירה בתוך הפרוסה עצמו לא פורסם. אנחנו שונים מצב תרבות סטנדרטית המאפשר ההישרדות של מטוהר, תאי עצב מוטורי גולגולת ניתקו כדי להקל מ &#39;פיתוח otor נוירון בתוך מערכת תרבות פרוסת עובר. אנחנו גם לנטר את המיקום של תאי העצב המוטורי ששרדו ולהוכיח כי עמדות במידה רבה נורמליות של מנוע נוירון החטיבות נרכשו במהלך תקופת התרבות.

<table border="1" style=";text-align:right;direction:rtl"><tbody><tr><td> ביצים </td><td> הנרי סטיוארט חוות, בריטניה </td><td></td><td> ביצי תרנגולת Fertilised בראון Bovan זהב (חוות הנרי סטיוארט, בבריטניה), שהיה מאוחסן בגיל 14 ° C עד דגירה </td></tr><tr><td> מחט מד 21 </td><td> BD-Microlance-3 </td><td> 304432 </td><td></td></tr><tr><td> 5 מיליליטר מזרק </td><td> BD Plastipak </td><td> 302187 </td><td></td></tr><tr><td> # 5 מלקחי דומון </td><td> Roboz </td><td> RS 5045 </td><td></td></tr><tr><td> מספריים לנתח מייקרו </td><td> Roboz </td><td> RS 5910SC </td><td> (3.5 בישר) </td></tr><tr><td> תבניות עובר הטבעה: לקלף תבניות </td><td> אגר מדעי </td><td> G3764 </td><td> 22 מ&quot;מ בצורת פירמידה עד 12 מ&quot;מ </td></tr><tr><td> סופר דבק </td><td></td><td></td><td> הכח Flex, Loctite </td></tr><tr><td> אתנול </td><td> SIGMA </td><td> 32221 </td&gt; <td></td></tr><tr><td> סודיום פוספט די מימן, מונה מימה </td><td> BDH </td><td> 102454R </td><td></td></tr><tr><td> סודיום פוספט די מונה מימן </td><td> VWR / BDH </td><td> 102494C </td><td></td></tr><tr><td> כלוריד הנתרן </td><td> VWR / BDH </td><td> 27810.295 </td><td></td></tr><tr><td> טמפרטורת התכה הנמוך agarose </td><td> Invitrogen </td><td> 16520 </td><td></td></tr><tr><td> סרום שור עוברי </td><td> Gibco </td><td> 10500-064 </td><td></td></tr><tr><td> טריטון X-100 </td><td> SIGMA </td><td> T8787 </td><td></td></tr><tr><td> נתרן הידרוקסידי </td><td> FLUKA </td><td> 71689 </td><td></td></tr><tr><td> Paraformaldehyde </td><td> VWR / BDH </td><td> 28794.295 </td><td></td></tr><tr><td> pipettes פסטר פלסטיק חד פעמי </td><td> ElKay Precision המעבדה מתכלה </td><td> 127-P503-000 </td><td> 3 נפח Liquipette מ&quot;ל </td></tr><tr><td> תמיסת מלח מאוזנת הנקס (HBSS) </td><td> Gibco </td><td> 14170 </td><td></td></tr><tr><td> סוכרוז </td><td> SIGMA </td><td> S0389 </td><td></td></tr><tr><td> מימן נתרן קרבונט </td><td> SIGMA </td><td> S5761 </td><td></td></tr><tr><td> תמצית עוברי עוף </td><td> Seralabs </td><td> CE650-J </td><td></td></tr><tr><td> פניצילין / סטרפטומיצין פתרון </td><td> Gibco </td><td> 15070 </td><td></td></tr><tr><td> פתרון L-גלוטמין </td><td> Gibco </td><td> 25030 </td><td></td></tr><tr><td> 2-mercaptoethanol </td><td> Gibco </td><td> 21985 </td><td></td></tr><tr><td> סוס סרום </td><td> דרום מעבדות קבוצה </td><td> 9028B </td><td></td></tr><tr><td> תוסף B27 </td><td> Invitrogen </td><td> 17504-044 &lt;/ Td&gt; <td></td></tr><tr><td> בינוני Neurobasal </td><td> Gibco </td><td> חתול ~ 2103 </td><td></td></tr><tr><td> גורם CilliaryNeurotrophic (CNTF) </td><td> R ומערכות D </td><td> 557-NT-010 </td><td></td></tr><tr><td> צ&#39;יק סרום </td><td> SIGMA </td><td> C5405 </td><td></td></tr><tr><td> נוגדנים עיקריים </td><td></td><td></td><td> נרכשו ממחקרים התפתחותית היברידומה בנק, למעט של נוגדנים נגד foxP1, שהיו מתנה מסוג נט Novitch של אוניברסיטת UCLA. דילולי נוגדנים עיקריים היו ארנב נגד FoxP1 (1/32000), עכבר אנטי Lhx1 / 2 (4F2) (1/50), גינאה חזיר אנטי FoxP1 (1/1000). כל הנוגדנים היו מאוחסנים ב 4 ° C. </td></tr><tr><td> נוגדנים משניים </td><td></td><td></td><td> חמור נגד גינאה חזיר (cy3) (1:1000) נרכש מג&#39;קסון Immunoreseach מעבדות בע&quot;מ חמור נגד מאוס (אלקסה פלואוריד 488) (1:1000), Donkey נגד ארנב (אלקסה פלואוריד 594) (1:1000) נרכש מInvitrogen כל הנוגדנים היו מאוחסנים ב 4 ° C. </td></tr><tr><td> צלחת 24 היטב </td><td> קורנינג שחקן משנה </td><td> 3473 </td><td> צלחת מצורפת ultralow 24 גם </td></tr><tr><td> אוקטובר </td><td> הרקמה Tek, סאקורה </td><td> 4583 </td><td> טמפרטורה אופטימלית חיתוך </td></tr><tr><td> Vectashield </td><td> מעבדות וקטור </td><td> H1000 </td><td> בינוני Vectashield ניאון הרכבה </td></tr><tr><td> שקופיות </td><td> Thermo Scientific </td><td></td><td> Superfrost פלוס שקופיות טעונות-חיובי, 25 x 75 x 1.0 מ&quot;מ </td></tr><tr><td> כיסוי זכוכית </td><td> VWR הבינלאומי </td><td> 631-0167 </td><td> מ&quot;מ 25x60 </td></tr><tr><td> כפיית טיוטת חממה: </td><td> חברת חשמל ליון </td><td></td><td> שמר לח על ידי הרמות תמיד מספיקות מים שמוחזקים ב38 ° C הבטחה </td></tr><tr><td> Cryostat </td><td> Brite, Huntingdon, בריטניה </td><td></td><td> -36 ° C </td></tr><tr><td> רקמת תרבות חממה </td><td> ד&quot;ה Autoflow </td><td></td><td> Nuaire 38 מעלות צלזיוס, 5% CO 2 </td></tr><tr><td> Vibratome </td><td> ליקה </td><td></td><td> יקה VT1000-S </td></tr><tr><td> מיקרוסקופ </td><td> ניקון </td><td></td><td> מיקרוסקופ פלואורסצנטי ניקון אקליפס E80i </td></tr><tr><td> מצלמה דיגיטלית </td><td> ניקון </td><td></td><td> ניקון DS5M וHamammatsu ORCA ER </td></tr></tbody></table>

פרוטוקול עוף עובר חוט שדרת slice תרבות

Chicken Embryo Spinal Cord Slice Culture Protocol

תרבויות פרוסות יכולות להקל על המניפולציה של התפתחות עובר והן פרמקולוגית באמצעות מניפולציות גנטיות. במערכת המצומצמת הזאת, תופעות לוואי קטלניות פוטנציאליות עקב יישומי סמים מערכתיים ניתן להתגבר. עם זאת, תנאי התרבות חייבים להבטיח שתמורת ההתפתחות הנורמלית בתוך הסביבה המופחתת של הפרוסה. יש לנו מתמקדים בפיתוח של חוט השדרה, במיוחד זה של תאי עצב מוטורי בעמוד שדרה. אנחנו מגוונים תנאי התרבות של פרוסות עוף עובר שיטתי מהנקודה שבה תאי עצב מוטורי בעמוד השדרה ביותר שנולדו. אנו assayed המספר והסוג של תאי עצב מוטורי ששרדו בתקופת התרבות ואת עמדתו של הנוירונים המנוע בהשוואה לאלה שבגוף חי. מצאנו כי סוג הסרום וגורמי neurotrophic נדרשו בתקופת התרבות והצלחנו לשמור על תאי עצב מוטורי בחיים במשך 24 שעות לפחות ולאפשר הנוירונים המנוע האלה להגר לעמדות מתאימות בחוט שדרה. אנו מציגים תנאים אלה התרבות והמתודולוגיה של הכנת התרבויות הפרוסות העובר באמצעות עוברי עופות מתהפכות משובצות בagarose ופרוסים באמצעות vibratome.

השימוש בפרוסות תרבית לעקוב אחר ההתפתחות של נוירונים interneuron והקרנה היה השפעה רב בהתקדמות ההבנה של הדור של ארגון בתוך 16 הקליפה שלנו. בחוט השדרה, פיתוח הנוירון מוטורי כבר אחרי שימוש בתרביות של עוברים שלמים 17 דג זברה. עם זאת, עמוד שדרת מנוע נוירון הארגון בדג הזברה הוא יחסית פשוט (בשל חוסר רירי גפיים גדולים בדגים). המנגנונים המולקולריים המניעים את היררכיה של ארגון שדרת המנוע נוירון במהלך הפיתוח של בעלי חוליות גבוהים יותר כעת הם הבינו היטב. תנאי תרבות המאפשרים הישרדות הנוירון והגירת גוף תא בתרבויות פרוסות עובר של בעלי חוליות גבוהות יותר כך נדרשים. נכון לעכשיו, תרבויות פרוסות בחוט שדרה של בעלי חוליות גבוהות יותר היו בשימוש בתאי עצב הזרעים ניתק על גבי הפרוסות 12-14, לחקור אקסונים שכותרתו fluorescently בפריפריה של הפרוסה18, או של התנהגות תא אב בהתפתחות עמוד שדרה בתחילת 19. פורס תנאי תרבות למייתרים מאוחר יותר בעמוד שדרה, במיוחד אלה ששומרים על מנוע נוירון פיתוח כרגע חסר. כדי לנסות לעקוב אחרי התפתחות עצבית בעמוד שדרה, במיוחד זה של תאי עצב מוטורי בעמוד שדרה, בדק תנאי תרבות שונים שעשויה לקדם את הישרדות תא עצב מוטורי ורכישת ההזמנה ראשונית בארגון המנוע דרך הגירה רוחבית של תאי העצב. ניסויים ראשוניים באמצעות שלב 18 לשלב 20 פרוסות בעמוד שדרה עובר אפרוח העלו חרס; לא היינו מסוגל לשמור על תאי עצב מוטורי בחיים ליותר מכמה שעות ולא הצליח להדגים את הדור של מספרים משמעותיים של תאי LMCl על פני תקופת התרבות (נתונים אינו מוצג). לכן חקרו תרבויות פרוסות של שלב 24 עוברים, timepoint כאשר רוב הנוירונים LMCm LMCl וכבר נוצרו, אבל כאשר LMCl נוירון הגירה היא עדיין באני שלוnfancy (איור 1 א, ג). הגירה לרוחב זה של נוירונים LMCl היא בעיקר מלאה בשלב 27, סביב 24-36 שעות מאוחר יותר (איור 1 df). הבדיקה שלנו ובכך יכולה להיות פשוטה כדי להיות מסוגל לשמור על תאי העצב בחיים וכדי להקל על הגירתם רוחבית לקרן הבטנית. התחלנו הניסויים שלנו עם תנאי תרבות פשוטים יחסית המכילים רק תמיסת המלח המאוזנת של האנק, עם או בלי עוף או סרום תמצית עובר עוף. בכל המקרה, למרות שהצלחנו לשמור על תאי עצב LMC בפרוסה, מצאו מעט עדויות של נוירונים LMCl מתוחזק (לפחות על ידי ביטוי של Lhx-1). בהמשך, מצא ביטוי הולם של גנים כמו HB9 בחוט השדרה הגבה, מצב שלא מתרחש in vivo (מידע לא מוצג). לפיכך, תנאי התרבות פשוטים אלה אינם מתאימים לחקירה של רכישת ארגון הנוירון מוטורי. כך אנו חפשנו conditio מורכב יותרns ומשמש כבסיס נוסחה שכבר פורסם כדי להקל על ההישרדות של תאי עצב ניתק עוברי עוף גולגולת מוטורית. מצב זה 20 (1% תמצית אפרוח עובר, 1% פן דלקת, 0.35% L-גלוטמין, 0.1% 2-mercaptoethanol, 2% סרום סוס, 2% B27 ותוסף גורם 50 ng / ml ciliaryneurotrophic צמיחה (CNTF) במדיום neurobasal (כאן נקרא גאתרי בינוני) לא להשאיר יותר תאי עצב מוטורי בחיים מאשר התקשורת הפשוטה יותר. בנוסף, הוא לא הביא לביטוי מופרך של גורמי שעתוק בחוט השדרה הגבה. עם זאת, ההישרדות של תאי עצב LMCl הייתה גרועה (איור 1 גי, p). לכן אנו מגוונים מה שאנחנו נחשבים לגורמים מרכזיים במדיום גאתרי, כלומר בעלי החיים ממוצא של הסרום, ריכוז בסרום וריכוז CNTF במדיום. מצאנו כי שינוי הסרום מסוס בסרום לצ&#39;יק סרום ועלייה בריכוז של CNTF מ 50 ng / ml עד 100 ng / ml גדילה במידה ניכר tהוא ההישרדות של תאי LMCl וLMCm וגם אפשר הגירתם לקרן הבטנית מעל שעתי 24 בתנאי התרבות (איור 1 JL, עמ &#39;). המספר הכולל של תאי עצב מוטוריים, היחס לLMCm LMCl ואכן, הנדידה של תאי LMCl לקרן הבטנית הופיע דומה מאוד לקטעים של עוברים שאפשרו לפתח בהאוב ולא בתרבות הפרוסה (איור 1 Ko, עמ &#39;). לפיכך, אנו סבורים כי בהתבסס על גורם שעתוק ביטוי, מספר נייד ואת המיקום של תאי עצב מוטורי, תנאי התרבות הפרוסה לסכם פיתוח נוירון מוטורי רגיל שדרה לפחות במשך שעתי 24. <img alt="איור 1" fo:content-width="2in" fo:src="/files/ftp_upload/50295/50295fig1highres.jpg" src="/files/ftp_upload/50295/50295fig1.jpg" /> איור 1. - ג. מעמדו של הדור של LMC (Foxp1 מכתים בב) וLMCl (Lhx-1 מכתים ב) בשלב 24. ג הוא מיזוג של שני ערוצים. קו האמצע מוצג כקו מקווקו ובפיתוח, V מראה את הכיוון של ציר dorsoventral (D, V) של חוט שדרת ד -. F. . המעמד של LMC (Foxp1 מכתים בד) וLMCl (Lhx-1 מכתים בדואר) ארגון בשלב 27 f הוא המיזוג של שני ערוצים גרם. - אני. Lhx-1 (ז) וFoxp1 (ח) ביטוי בסעיפים של פרוסה בתרבית במדיום שתומך בהישרדות תא מנוע גולגולתי נוירון (בינוני גאתרי, &quot;המדיום הראשוני&quot; ראה התייחסותנו 20). Lhx-1 כבר לא מתבטא בתאי עצב מוטורי, אם כי יש כמה הישרדות של תאי LMC מעידים Foxp1 ביטוי. D, V ב (ז) מראה את הכיוון של ציר dorsoventral (D, V) של חוט השדרה. ML מציג את האורינטציה של ציר mediolateral (M, L) של sj Pinal כבל - אני. תאי LMCl (Lhx-1 בקרן הבטנית בי) וLMC באופן כללי (Foxp1 בk) ניתן להבחין בפרוסות בתרבית במדיום המכיל 4% אפרוח סרום ו100 ng / ml CNTF. שים לב שחלק מתאי LMCl נמצאים בעמדה רוחבית בקרן הבטנית. החץ ב( י) מציג את המיקום הרוחבי של חלק מתאי LMCl. (יב) הוא מיזוג של שני ערוצים מ -. O. מעמדו של ביטוי של Lhx-1 (מ &#39;) וFoxp1 (n) בסעיפים של עובר המשיך באובו בתרבות הפרוסה של העובר מוצג בי - l. (טו) הוא מיזוג של שני ערוצים. P. לכמת את אחוז LMCl (Foxp1 + ve / Lhx1 + VE) לעומת תאי LMC (Foxp1 + ve / Lhx1-ve) תאים הנמצאים בתרבויות פרוסות בתנאים שונים גompared לשלוט עוברים נשמרים באובו (שמייצג 100%). *** מבחן t של הסטודנט מייצג p &lt;0.01. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/50295/50295fig1large.jpg" target="_blank">לחץ כאן לצפייה בדמות גדולה.</a>

תרבויות פרוסות להקל על המניפולציה של התפתחות עובר על ידי גן והפרעות תרופתיות. עם זאת, תנאי התרבות חייבים להבטיח שהתפתחות תקינה יכולה להמשיך בסביבה המופחתת של הפרוסה. אנו מדגימים פרוטוקול המאפשר פיתוח חוט שדרה רגיל להמשיך לפחות 24 שעות.

פרוטוקול עוף עובר חוט שדרת Slice תרבות

Slice cultures can facilitate the manipulation of  embryo development both pharmacologically and through gene manipulations. In  this reduced system, ...

המטרה הכללית של פרוצדורה זו היא לגדל פרוסות של עובר עוף כדי לשמר התפתחות עצבית תקינה, ובמיוחד של נוירונים מוטוריים בעמוד השדרה. דבר זה מושג תחילה על ידי נתיחה של עובר העוף להסרת האיברים הפנימיים. השלב השני הוא הכנה וחיתוך של העובר כשהוא טבול בבלוק אגרקה.בשלב הבא, פרוסת העובר מוסרת בזהירות מהאגרו. השלב האחרון הוא העברת פרוסת העובר לתוך תוצר תרבית, המודגרה במשך 24 שעות ב-37 degrees Celsius. לבסוף, נעשה שימוש במיקרוסקופיית אימונופלואורסצנציה על חתכים דקים של פרוסת העובר כדי להראות את נוכחותם ומיקומם של נוירונים מוטוריים של חוט השדרה לאחר תקופת התרבית.לפיכך, שיטה זו יכולה לסייע במתן מענה לשאלות מפתח בתחום הנוירוביולוגיה ההתפתחותית. לדוגמה, המנגנונים והמולקולות המעורבים בנדידת נוירונים מוטוריים של חוט השדרה. באופן כללי, אנשים שאינם בקיאים בשיטה זו יתקלו בקושי, כיוון שנדרשת זהירות רבה במהלך שלבי הדיסקציה של הפרוטוקול.הניחו 10 ביצים מופריות, כאשר הצד הארוך פונה אופקית, באינקובטור עם זרימת אוויר כפויה בטמפרטורה של 38 °C עד שהן יתפתחו לשלבי hamburger ו-Hamilton stage 24. תהליך זה דורש בדרך כלל כארבעה ימי דגירה. ביום השני של הדגירה, סטריליזו את קליפת הביצה על ידי ניגוב עם נייר סופג טבול ב-70% Ethanol; נקבו בזהירות את הקצה השטוח של קליפת הביצה באמצעות מחט במידה 21 gauge המחוברת למזרק של 5 mL, והוציאו 5 mL של אלבומין.פעולה זו מורידה את העובר הרחק מהקליפה כדי שהעובר לא ייפגע בעת פתיחת הקליפה. החזירו את הביצים לדגירה והדגירו אותן למשך יומיים נוספים. לאחר שחלפו היומיים, השתמשו בפינצטה קהה.בצעו פעולות נוספות. שלב חמישה, השתמשו בפינצטה כדי לנקב בזהירות את החלק העליון ומרכז הקליפה, והסירו שטח של כ-9 סמ"ר מהקליפה. גזרו מסביב לעובר, הוציאו אותו בזהירות והניחו אותו ב-HBSS.עבור נתיחה. כל העוברים שנעשה בהם שימוש צריכים להיות קרובים לשלב 24. יש להשליך כל עובר המראה סימנים כלשהם של חריגה.הנח את הצלחת המכילה את העובר תחת מיקרוסקופ דיסקציה. השתמש בשני פינצטות מסוג dual number five כדי להסיר את קרום השליה (amnion membrane). הסר את קרום הכוריון (chorioallantoic membrane), את השליה (allantois) ואת הראש. לאחר מכן, בצע ריקון של העובר (eviscerate) כדי להסיר את כל האיברים הפנימיים, באמצעות מספרי מיקרו-דיסקציה כדי לגזור את קו האמצע הגחוני של העובר.לאחר מכן, החזיקו את העובר באזור הגו של הקצה הרוסטרלי באמצעות זוג פינצטות. תפסו את החלק הרוסטרלי של מערכת העיכול ואת הלב ומשכו אותם בעדינות. כעת תוכלו לראות את הסומריטים של העובר בבירור.כעת גזמו את דופן הגוף של בית החזה באמצעות מספרי מיקרו-דיסקציה. לאחר מכן, חתכו את העובר לשני חצאים באופן רוחבי בין ניצני הגפיים העליונות לתחתונות. הסירו בעדינות את החצי המותני של העובר המנותח באמצעות שתי פינצטות כדי להוציא את העובר מתמיסת הדיסקציה, והניחו אותו בצלחת פטרי יבשה באמצעות פיפטת פסטור חד-פעמית באורך של כחמישה סנטימטרים.חתכו מהחלק התחתון ושאבו כ-2 milliliters של 4%weight per volume מומס. בעזרת פיפטה של Aros ב-PBS, טפטפו כ-0.5 milliliters של aros מעל העובר ולאחר מכן שאבו את פיסת העובר לתוך הפיפטה. העבירו את העובר ואת ה-aros לתבנית פלסטיק נשלפת ללא הכנסת בועות לתוך ה-aros.הנח בעדינות את העובר לתחתית ה-aros בתוך התבנית הפלסטית, כאשר החלק התורסו פונה כלפי מטה, והשתמש במחט במידה 25 gauge כדי לוודא שהעובר נמצא במנח ישר. ה-aros יכיל גם חלק מהגפה המתפתחת, וחשוב שהעוברים ימוקמו באופן אנכי בתוך ה-aros כדי לאפשר זאת; לצורך כך, הנח את התבנית הפלסטית על קרח למשך כשתי דקות. בעת קיבוע ה-aros, הקפד שהעובר לא ישנה את כיוונו במהלך תקופה זו.הקימו מערך הדומה ל-VT 1000 S כך שהתא יהיה מלא ב-HBSS ומוקף בקרח או במים קרים. השתמשו בדבק מהיר (super glue) כדי לקבע את בלוק ה-agarose לפלטפורמת ה-Vibram, ולאחר מכן גזרו את הבלוק בעזרת להב תער כך שהעובר יישאר מוקף ב-1 עד 3 מילימטרים של agarose.הפעילו את הוibrato והתחילו בחיתוך העובר. הפרוסות הכוללות מקטעים של ניצן הגפה עם רכס אקטודרמלי אפקלי (apical electrodermal ridge) ברור נבחרות ולאחר מכן מועברות לצלוחית עם HBSS. בדרך כלל, ישנן רק אחת עד שתיים פרוסות מתאימות לכל עובר.הסר בעדינות את האגרוז מסביב לפרוסות הרקמה באמצעות שתי מחטים. חיוני לבצע זאת באופן יסודי וזהיר. הוסף 500 microliters של תמיסת תרבית למספר הבארות הדרוש בפלטה של 24 בארות בעלת הידבקות נמוכה מאוד (ultra low attachment) לתרביות רקמה.העבירו בזהירות את הפרוסות מתמיס ה-HBSS אל תוך הבארות, תוך הנחת שתיים או שלוש פרוסות בכל בארה, ולאחר מכן הניחו את פלטת 24 הבארות באינקובטור לתרביות רקמה בטמפרטורה של 37 °C עם 5% carbon dioxide למשך 24 שעות. לאחר תקופת התרבית, הוסיפו 500 µL של מקבע לא מובחן (unbuffered fix) לכל בארה של פרוסות עובריות והשאירו על קרח למשך 20 דקות. לאחר מכן, שאבו בזהירות את כל התמיסה ושטפו שלוש פעמים ב-PBS במרווחים של חמש דקות. לאחר מכן, הוסיפו לבארות 30% sucrose ב-PBS והניחו את הפלטה בטמפרטורה של 4 °C למשך כשש שעות או יותר, עד שהפרוסות שוקעות.לאחר שהפרוסות שקעו, העבירו אותן לצלחת פטרי נקייה בקוטר 10 סנטימטרים וספגו תמיסת סוכרוז עודפת. לאחר מכן, הוסיפו מיליליטר אחד של OCT והמתינו חמש דקות להשגת שיווי משקל בטמפרטורה של 20 degrees Celsius. הצמידו כל פרוסה באופן שטוח לתבנית פלסטיק נשלפת ממולאת ב-OCT, והסירו את הפלסטיק לאחר ההצמדה.הניחו את התבניות בצורה אנכית על קרח יבש כדי להקפיא, הצמידו את בלוקי ה-OCT לקריוסטט והמתינו עד להשגת שיווי משקל של הבלוקים בטמפרטורה של minus 24 degrees Celsius למשך כ-20 דקות. לאחר מכן, חתכו כל פרוסה לחתכים בעובי 15 micron והעבירו אותם לשקופיות super frosts plus. ניתן לאחסן את השקופיות בטמפרטורה של minus 80 degrees Celsius עד למועד השימוש בהן לצביעה אימונופלורסצנטית כפי שמתואר בחלק הטקסטואלי של הפרוטוקול; תמונה זו מציגה את מצב ההיווצרות של העמוד המוטורי הלטרלי (lateral motor column) בשלב 24 לפי hamburger and Hamilton.החלוקה הלטרלית של העמוד המוטורי הלטרלי מוצגת באמצעות צביעת LH X one בלוח השמאלי. העמוד המוטורי הלטרלי מוצג באמצעות צביעה עם Fox P one בלוח המרכזי, והלוח הימני הוא מיזוג של שני הערוצים. קו האמצע מוצג כקו מקווקו, ו-DV מסמן כאן את הציר הדורסלי-ונטרלי.מצב החלוקה הלטרלית של עמודת התנועה הלטרלית מוצג שוב על ידי צביעת LH X one בפאנל השמאלי, ועמודת התנועה הלטרלית על ידי צביעת Fox P one בפאנל האמצעי, כאשר התמונה המאוחדת מופיעה מימין. תמונות אלו מראות התפתחות בשלב 27. תמונות אלו מראות ביטוי של LH X one בשמאלה וביטוי של Fox P one בפאנל האמצעי בחתכים של פרוסה שגודלה בתרבית במדיום התומך בהישרדות של תאי נוירונים מוטוריים קראניאליים מופרדים.LH X one אינו מבוטא יותר בנוירונים מוטוריים, למרות שקיימת הישרדות מסוימת של תאי LMC כפי שמעידה ביטוי של Fox P one. DV מייצג את הכיוון של הציר הגבי-בטני (dorsal ventral) של חוט השדרה, ו-ML מייצג את הכיוון של הציר המדיאלי-לטרלי (media lateral) של העמוד המוטורי הלטרלי (lateral motor column) של חוט השדרה. תאי החלוקה הלטרלית, ששוב נצבעו ל-LH X one בקרן הבטנית (ventral horn) בפאנל השמאלי, וה-LMC באופן כללי שנצבעו ל-Fox P one בפאנל המרכזי, ניתנים לצפייה בחתכים שגודלו במצע המכיל 4% סרום של אפרוח ו-100 nanograms per milliliter CNTF.שימו לב כי חלק מהתאים של החלוקה הלטראלית בעמוד המנועי הלטראלי נמצאים במיקום לטראלי בקרן הוונטרלית, כפי שמתindicated על ידי החץ בפאנל השמאלי. תמונה זו מציגה את מצב הביטוי של LHX1 ו-FoxP1 בחתכים של עובר שנשמר ב-OVO במהלך תרבית הפרוסות של העובר שהוצג קודם לכן. היסטוגרמה זו מציגה את התוצאות מכמתור של אחוז התאים של החלוקה הלטראלית בעמוד המנועי הלטראלי, הנצבעים כחיוביים ל-FOXP1 וחיוביים ל-LHX1, לעומת תאי עמוד מנועי לטראלי, הנצבעים כחיוביים ל-FOXP1 וחיוביים ל-LHX1.נתונים שליליים מוצגים עבור תאים שנמצאו בתרביות פרוסות בתנאים שונים בהשוואה לעוברי ביקורת שנשמרו in ovo, המייצגים 100%; הנתונים נותחו באמצעות מבחן t של Student. שלושה כוכביות מייצגים רמת מובהקות של פחות מ-0.01. בעת ביצוע פרוטוקול זה, חשוב לנקוט זהירות בעת דיסקציה של העובר ובעת הסרת הגרנות מהפרוסות, שכן חשוב לשמור על שלמותם של האקסונים המוטוריים בניצן הגפה.

chicken-embryo-spinal-cord-slice-culture-protocol

Research

JoVE Journal

Neuroscience

מדעי המוח

וידאו זה מדגים תרבות חדש, שיטה שבאמצעותה הם עוברים חומוס בתרבית מחוץ הביצה עד 24 שעות. שיטה זו מאפשרת ללמוד פיתוח מוקדם (פס פרימיטיביים עד 14 סום.), תקופה המקבילה E7-9 בעכבר. יישומים של טכניקה זו כוללים electroporation, ב הכלאה אימונוהיסטוכימיה באתרו.

שיטת לתרבות מוקדם של עוברים צ&#39;יק לשעבר vivo (תרבות חדש)

במאמר זה אנו מציגים שיטה השתלת בתאי גזע האדם לאזורים שונים של מערכת העצבים המרכזית של העובר עוף. זה...

Xenotransplantation בתאי גזע אנושיים לתוך העובר עוף

גזע המוח השמיעתית עוף מורכבת גרעינים אחראי לעיבוד צליל binaural. הכנה אחד פרוסה העטרה שומרת את כל המעגלים, בעוד גישה תרבותית מספק הכנה מיוחדת כדי לחקור את התפתחות מבנה ותפקוד עצבי השמיעה ברמה המולקולרית, התאית הרשת.

הכנה והתרבות של שמיעתית פרוסות עוף גזע המוח

הרקמה העוברית הדמיה בזמן אמת הוא מאתגר לאורך תקופות זמן ארוכות. כאן אנו מציגים assay לניטור שינויים הסלולר משנה הסלולר בחוט השדרה חומוס לתקופות ארוכות עם רזולוציה גבוהה במרחב ובזמן. טכניקה זו יכולה להיות מותאם לאזורים אחרים של מערכת העצבים בעובר המתפתח.

ברזולוציה גבוהה הדמיה חיה של התנהגות התא ב Neuroepithelium פיתוח

שיטה שבאמצעותה ביטוי גנים בצינור העצבי יכול להיות downregulated באופן ספציפי לסוג תא, מעקב מתוארת. אנחנו מדגימים...

בelectroporation אובו של פלסמידים מירנה מבוססים ברכבת התחתית הפיתוח העצבי והערכת פנוטיפים ידי הזרקת DiI בהכנות-ספר פתוח

הסרטון מדגים את ההתחדשות הפונקציונלית של קשרים פרופריוספינליים באמצעות ניסוי מבוסס מערך רב אלקטרודות (MEA). פרוסות חוט השדרה מונחות על MEA ומותר להתמזג. הפרוסות המאוחות מופרדות מכנית על ידי יצירת נגע, מה שגורם לנוירונים פרופריוספינליים לגדול מעל הנגע ולחבר את הפרוסות. הפעילות החשמלית של הפרוסות מוערכת כדי לזהות את התחדשות הקשרים הפונקציונליים.

חקר התחדשות הקשרים הפונקציונליים בין פרוסות חוט השדרה באמצעות מערך מרובה אלקטרודות

מודלים תרבית תאים מספקים שליטה מפורטת על תנאים סביבתיים ובכך מספקים פלטפורמה רבת עוצמה על מנת להבהיר היבטים רבים של ביולוגיה של תא עצבי. אנו מתארים שיטה מהירה, זולה, ואמינה לבודד, לנתק, ותרבות תאי עצב תחושתי מעובר חומוס. פרטים של הכנת המצע וimmunocytochemistry גם מסופקים.

בידוד והתרבות של ניתק עצב סנסורי מאפרוח עוברים

כאן אנו מציגים פרוטוקול המבוסס על פרוסות חוט השדרה בתרבית על מערכים רב-אלקטרודה ללמוד התחדשות פונקציונלית של קשרי propriospinal במבחנה.

חוקר התחדשות פונקציונלית בחוט השדרה שיתוף תרבויות Organotypic גדלו על מערכים רב-אלקטרודה

כאן, אנו מתארים של כרומטין immunoprecipitation (ChIP) ופרוטוקול שבב-seq ספריית הכנה ליצירת פרופילים epigenomic גלובל מדגימות עובריים נמוך-שפע עוף.

כרומטין פרוטוקול Immunoprecipitation (ChIP) עבור דגימות עובריים נמוך-שפע

כאן, אנו מציגים organotypic culturing פרוטוקול לגדול עוף עובריים באיברים במבחנה. באמצעות שיטה זו, התפתחות עובריים עוף רקמות ניתן יהיה ללמוד, תוך שמירה על רמה גבוהה של שליטה על הסביבה תרבות.

שיטת Organotypic תרבות ללמוד על התפתחות עובריים עוף רקמות

כאן אנו מציגים פרוטוקול להשגת פרוסות גזע מוח שמיעתיות שאינן קורונליות של עובר העוף לחקר תכונות טונוטופיות ומסלולים התפתחותיים בתוך פרוסת גזע מוח אחת. פרוסות אלה כוללות מקטעים סגיטליים, אופקיים ואופקיים/רוחביים המקיפים אזורים טונוטופיים גדולים יותר בתוך מישור פרוסה בודד שהמקטעים הקורונליים המסורתיים.

חיתוך גזע המוח השמיעתי של העוף העוברי להערכת שיפועים טונוטופיים ומיקרו-מעגלים

חקור פיתוח נוירונים מוטוריים בעמוד השדרה בעזרת שיטת תרבות פרוסות עוברי עוף. הפרוטוקול כולל ניתוח זהיר, הטמעה באגרוז וחיתוך, ומאפשר מעקב אחרי נוירוגנזה תקינה למשך 24 שעות במעבדה.

פרוטוקול עוף עובר חוט שדרת Slice תרבות

גלה סרטונים נוספים