11 בספטמבר 2013
שיתוף פעולה בין אונקוגן הופעל כמו RAS V12 ומוטציות בגנים קוטביות תא כמו שרבטה, לגרום לצמיחת גידול בדרוזופילה שבו תאים סרטניים גם להציג התנהגויות פולשנית. הנה פרוטוקול פשוט לאינדוקציה והתבוננות בגידולים שפירים ופולשנית מוצג.
המטרה הכוללת של הליך זה היא לגרום לגידולים שפירים ופולשניים בדרוזופילה, ולאחר מכן לדמיין אותם על ידי ניתוח קומפלקס הזחל. זה מתחיל בהתמקמות בין הזנים הרצויים ובידוד צאצאי הזחל, הנושאים את הגידולים הפולשניים או השפירים. השלב הבא הוא לנתח את הזחלים שנבחרו.
לחשוף את הקומפלקס הצפלי על ידי חיתוך שני שליש מהדרך למטה, אבטחתם ולאחר מכן הפיכתם כלפי חוץ. לאחר מכן מנקים את רקמות הגוף והמעיים השומניות, ואז נשברים גם כל העצבים שעדיין מחוברים לחוט העצב הגחוני ולאפידרמיס הזחל. השלב האחרון הוא לדמות את הקומפלקס הצפאלי או לתקן אותו עבור יישומים במורד הזרם.
בסופו של דבר, התוצאות יכולות להראות ש-GFP תייג גידולים פולשניים או שפירים באמצעות מיקרוסקופיה פלואורסצנטית. שיטה זו יכולה לעזור לענות על כמה משאלות המפתח בביולוגיה של הסרטן. לדוגמה, ייתכן שתרצה להבין אילו גנים יכולים לעכב התקדמות של גידולים באורגניזם שלם.
לאחר שהושגו המלאים הגנטיים הנדרשים, הכינו תרבית התחלה של זן הבוחן. הכינו גם תרבית התחלה למלאי שנבדק. הכלאה של 10 בתולות נקבות ממלאי הבוחן עם 10 זכרים מהמלאי שנבדק.
אפשרו לזבובים להזדווג ולהטיל ביצים במשך 24 עד 48 שעות בטמפרטורה של 25 מעלות צלזיוס, ולאחר מכן העבירו אותם לבקבוקון טרי כדי לייצר צאצאים נוספים. עקוב אחר בקבוקוני הצלב לאיתור ביצים וזחלי כוכב ראשון. הגדר צלב חדש.
אם הבקבוקונים שנאספו מראים שקיעת ביצים גרועה. אם הבקבוקונים שנאספו מתחילים להתייבש, הוסיפו רק שלוש עד ארבע טיפות מים מזוקקים כדי לשמור על לחות התרבית. המשיכו לעקוב אחר הבקבוקונים עד לשוטטות.
זחלי כוכב שלישי נוכחים. לאחר מכן המשך בניטור שלהם תחת מיקרוסקופ סטריאו פלואורסצנטי. באמצעות אותו הליך, אסוף זבובים הנושאים גידולים פולשניים באמצעות המלאי הרשום עד יום התרבית החמישי או השישי, זחלי כוכב שלישי נודדים יהיו זמינים מתרביות הגידול השפירות.
עם זאת, הם לא יהיו זמינים עד היום העשירי מתרביות הגידול הפולשניות. כדי לאסוף את זחלי הכוכב השלישי, הרטיבו מכחול דק במים מזוקקים וגרדו אותם מדופן הבקבוקון. מניחים את הזחלים במגלשת שקע עם XPBS קר, ולאחר מכן בעזרת מברשת צבע רטובה.
מגרדים כל חומר מזון מהאפידרמיס שלהם. למשך מספר דקות של קיבוע, הניחו את הזחל על הצלחת בחום של מינוס 20 מעלות צלזיוס למשך 30 דקות. לזמן קיבוע ארוך יותר, הניחו את הזחלים בבקבוקון תרבות עם תנומת זבוב בלבד על שרביט.
חבר את בקבוקון התרבות ותן לו לעמוד במשך 40 דקות. לאחר מכן, העבירו את הזחלים המשותקים למגלשת זכוכית. מוסיפים טיפה של שמן פחמימות הילה בהיר ומכסים את הזחלים בכוס כיסוי.
כעת, התבוננו בזחלים תחת מיקרוסקופ סטריאו פלואורסצנטי. לביטוי GFP, בחר את הזחלים הפלואורסצנטיים הירוקים והמשך בדיסקציה. זחלים שפירים נושאי גידול יזוהרו בירוק באזור הקדמי שבו קיים הקומפלקס הצפלי.
גידולים פולשניים יזוהרו גם בירוק באזור הקדמי של הזחלים בקומפלקס הצפלי. במידת האפשר, הקפד לתעד את הגידולים הפלואורסצנטיים. לכן האפידרמיס השקוף של הזחל מקשה על התבוננות במידת הנדידה של הגידולים, ולכן עלינו לנתח את הגידולים.
התחל בשימוש במלקחיים כדי להעביר זחל טרי עם כל אחד מהגידולים. הקלד לבאר של צלחת דיסקציה המכילה מיליליטר אחד של XPBS קר. החזיקו את הזחלים באמצעות זוג מלקחיים במרחק של כשני שליש מהקצה הקדמי.
שימוש בזוג מלקחיים נוסף מפריד בצורה חכמה את השליש האחורי של הזחלים ומשליך אותו. לאחר מכן הוא שחרר את שני השלישים הקדמיים. כאשר הלחץ בתוך הזחלים משתחרר, תוכנו יזלוג החוצה מחלל הגוף.
בעזרת מלקחיים, הסר את הרקמות שנזלו מחלל הגוף. לאחר מכן, החזיקו את וו הפה של הזחל ודחפו אותו לתוך אפידרמיס הזחל. שימוש בזוג המלקחיים השני הפוך לחלוטין את הזחלים.
כעת בעזרת המלקחיים, בעדינות ובזהירות, הסר את בלוטות הרוק של גוף השומן, המעיים, קומפלקס דיסק הכנף וכל צינורות קנה הנשימה. כעת ניתן לראות את הקומפלקס הצפלי מחובר לוו הפה. חצאי המוח וה-VNC עדיין מחוברים לאפידרמיס הזחל באמצעות עצבים הנובעים מה-VNC.
בעזרת מלקחיים, שברו בעדינות את החיבורים הללו. לאחר מכן הסר את כל עודפי השומן, הגוף או רקמות אחרות כך שהקומפלקס הצפלי ייראה בבירור. מחובר לאפידרמיס הזחל בקרסי הפה.
השאירו את הקומפלקס הצפאלי כפי שהוא להמשך עיבוד לפני ההדמיה. אחרת, כדי לדמיין ישירות את הקומפלקס הצפלי, נתק אותו מהאפידרמיס והנח אותו בטיפה של אמצעי הרכבה מבוססי גליצרול כגון מגן וקטור. באמצעות הפרוטוקול המתואר, הושרו גידולים בעין.
אנין דיסק, גידולים שפירים נותרו ממוקמים בעין אנין דיסק שם הם מושרים. שימו לב שהרקמה המסומנת ב-GFP לא נדדה לאיברים רציפים כמו חוט העצב הגחוני בקומפלקס הצפאלי הנושא גידולים פולשניים מיום 10 של צמיחת יתר של רקמת הגידול. כמו כן, כפי שצוין על ידי החץ האדום, הגידולים פלשו לאיברים רציפים כמו ה-VNC והווים בפה.
לאחר צפייה בסרטון זה, אתה אמור להבין היטב כיצד לגרום גנטית לגידולים שפירים ופולשניים, ולאחר מכן לדמיין אותם על ידי ניתוח הקומפלקס הצפאלי בתוך גסטרו.
צפו בתמליל המלא וקבלו גישה לאלפי סרטונים מדעיים
מאמר זה מציג פרוטוקול להשראה ולצפייה בגידולים שפירים ופולשניים ב-Drosophila, תוך התמקדות בשיתוף הפעולה בין אונקוגנים מופעלים לבין מוטציות בגנים של קוטביות תאית. ההליך כולל דיסקציה של המכלול הצפלי (cephalic complex) של הזחל כדי להמחיש את מאפייני הגידול.
פרוטוקול זה מאפשר הפחתת סיכונים מכניסטית של נתיבי פלישה של גידולים על ידי מידול התקדמות משפירה לזדונית במערכת ניתנת לתפעול גנטי. הוא תומך בתיקוף מטרות באמצעות חקירה תפקודית של אינטראקציות בין גנים אונקוגניים לגני קוטביות. גישה זו מספקת ביטחון חיזוי לצורך תיעדוף של מודיפיירים גנטיים של התנהגות הגידול בשלבי הגילוי המוקדמים.
השיטה משתלבת ברצף הגילוי, מבדיקת השערות על מטרות ועד לזיהוי מובילים (leads), על ידי אספקת פלטפורמה ניתנת להרחבה לגנומיקה תפקודית בביולוגיה של גידולים.