Name: איתור ליקויים בChoroidal כלי דם במודל של עכברים של ניוון מקולרי הקשור בגיל בזמן הקורס Indocyanine הירוק אנגיוגרפיה (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-02-19T15:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 24 s
Description: למדו לאתר ליקויים בכלי הדם הכלורואידליים במודלי עכברים של ניוון מקולרי קשור בגיל באמצעות אנגיוגרפיית Indocyanine Green. שיטה זו מאפשרת דימות איכותי של הכלורואיד לאורך זמן.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

עבודה זו נתמכה על ידי מענק NIH 1R01EY022901, פיתוח פרס קריירה ממחקר למניעת עיוורון (RPB), קרן CMReeves &amp; MA ריבס, א &#39;מטילדה זיגלר קרן לעיוור, אבירי טמפלרים עיניים קרן, ומענק בלתי מוגבל למחלקה רפואת עיניים באוניברסיטת יוטה מRPB. אנו מודים Balamurali Ambati לקבלת סיוע טכני בשיטה רב מערכת Spectralis ההדמיה וטאו ז&#39;אנג לדיונים והערות על כתב היד.

1. הכנת מכשירים <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ההליך מבוצע בהליך חדר במתקן בעלי חיים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לובש מסכות, כובעי שיער, שמלות כירורגית, רגל כיסויים סטריליים, וכפפות לפני תחילת הניסוי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מחממים מים בכוס ל~ 40 ° C על פלטה חמה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הנח כרית כחולה סטרילי על גבי כרית חימום שישמש מאוחר יותר כדי לשמור על טמפרטורת הגוף של העכבר במהלך הדמיה. הפעל את כרית החימום. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן את מערכת ההדמיה: <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר את מכסה האבק ולהפעיל את הלייזר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להוציא את עדשת 55 ° ולהעלות אותו על גבי המכונה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> פתח את תוכנת הדמיה מהמחשב וקלט את המידע של העכבר להדמיה מתחת לסדין של חולה חדש (למשל גנוטיפ, גיל, וכו &#39;.). תחת &quot;סוג ההתקן&quot;, בחר מצב אינפרא אדום (IR). </li></ol></li></ol> הערה: זה כבר דווח כי o השימושf עדשה אספריים כפולה חיצונית יכולה לשפר את איכות תמונת 17-20 אם כי אין לנו בעיה בקבלת תמונות באיכות גבוהה על ידי IV-ICGA ללא שימוש בעדשות חיצוניות (ראה תוצאות נציג, איורים 1-4). 2. הזרקה לוריד זנב של ICGA <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להתרחב עיני עכבר עם 1% פתרון עיני Tropicamide ולהמתין 5 דקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשקול את העכבר כדי לקבוע את הסכום של הרדמה (65-100/10-20/1-3 מ&quot;ג / קילוגרם קטמין / Xylazine / acepromazine) לפי צורך. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אחזר מזרק 1 מ&quot;ל סטרילי יחד עם מחט G 32. הזרק את העכבר intraperitoneally עם ההרדמה (13 מ&quot;ג / מיליליטר קטמין, 2.6 מ&quot;ג / מיליליטר Xylazine, 0.3 מ&quot;ג / מיליליטר acepromazine בסטרילי PBS). חכה עד שהעכבר הוא בהרדמה מלאה (~ 5 דקות). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את זנב העכבר ל40 מים חמים C ° לגרום vasodilatation של הווריד. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אחזר מזרק 1 מיליליטר עם מחט G 32. למשוך את הסכום הרצוי של ICG, בדרך כלל 50 μl של מ&quot;ג / מיליליטר ICG 1, שהוא סטרילי מסונן עם מסנן מזרק 0.2 מיקרומטר לתוך צינור סטרילי, לעכבר 25 g (2 מ&quot;ג / קילוגרם). היזהר שלא להציג את כל אוויר לתוך המזרק. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> נגב את הזנב עם ספוגית אלכוהול כדי לחטא את האזור להיות מוזרקים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> החזק את הזנב ביד אחת, כך שוריד הזנב לרוחב הוא כלפי מעלה. עם השיפוע של המחט פונה כלפי מעלה, להזריק את המחט ~ 2 מ&quot;מ לתוך הווריד בזווית מינימאלית. היזהר שלא לחורר את הווריד. צייר את הבוכנה מעט ולחפש עקבות של זרימת דם לרכזת המחט, אשר מצביעה על כך שהמחט הוכנסה בהצלחה לווריד. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאט לאט להזריק ICG לווריד. לא צריך להיות התנגדות מינימאלית כאשר הזרקה. הסר את המחט ולהחיל ספוגית אלכוהול ישירות לאתר הזרקה ל~ 5-10 שניות כדי לעצור את דימום. העכבר הוא אז מוכן הדמיה. על מנת לתפוס את השלב המוקדם (0-4 דקות לאחר הזרקה), זה הוא essential לתמונה את העכבר במהירות. </li></ol> הערה: עיני עכבר יכולות לקבל בקלות יבשה ויכולות לפתח קטרקט תחת הרדמה. זה חשוב לשמור על העיניים לחות על ידי יישום סטרילי PBS במהלך ההליך. נגב את PBS העודף עם מקלון צמר גפן סטרילי לפני הקלטת ICGA. מעבדות אחרות השתמשו בעדשות מגע כדי למנוע התייבשות של 17-20 הקרנית. 3. אנגיוגרפיה ICG <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להתחיל לקחת תמונות 30-40 שניות לאחר הזרקת ICG, המאפשרת לכידתו של השלב המוקדם של מילוי כורוידאלית עד תפוצה רשתית וכורוידאלית נמצאות בבהירות מקסימלית (0-4 דק &#39;). כלי הדם ברשתית הוא מדמיין הטוב ביותר במוקד ~ 35-45 דיופטריות וכלי דם כורוידאלית היא דמיינו ב10-15 דיופטריות. הערה: במהלך הבדיקה הראשונה של מודל חיה, מומלץ ללכוד תמונות מכל הזוויות (האף, זמני, הגב וגחון) לזהות את כל abno האפשריrmalities בכלי הדם. במהלך השלב המוקדם, שני עורקים כורוידאלית בינוניים וגדולים וורידים הם דמיינו היטב. במודל של בעלי החיים המשמשים בפרוטוקול זה, נגעים כורוידאלית (למשל polypoidal dilations) עשויים להתחיל להופיע 1 דקות לתוך השלב מוקדם. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הגדר את מיקוד תמונה על כלי הדם. שליטה על בהירות ולהתמקד באמצעות מודול הבקרה וידית פוקוס, בהתאמה. ערכים אלה הם מתכווננת דיגיטלית ונשמרים בקלות קבועה. שמור על המרחק מהעין העכבר כדי קבוע עדשת מצלמה כדי להבטיח איכות תמונה היא שחזור תוך שימוש בטכניקה הבאה. הערה: מאחר והמכשיר יכול רק תמונה חלק של העין האחורית, אנחנו מנסים לשמור את הפוקוס, בהירות, ואת המרחק בין עדשת המצלמה ואת העין העכבר קבועה כפי שתמונת העין כולה האחורית מזוויות שונות. המפתח לכך הוא כדי ליישר את הארה בצורת העיגול הנפלטת על ידי ICG דרך עין עם השדה של view של המצלמה. המטרה זו מושגת על ידי הפיכת משמאל לימין, התאמות למעלה ולמטה, וב- and-out של מיקום המצלמה עד שיש את התמונה כולה אין אזורים כהים. כאשר הארה ואת שדה הראיה של המצלמה הן בשורה, המרחק מהעין לעדשה יהיה לשעתק לסדרה הבאה של תמונות, כמו גם במרחק אופטימלי להדמיה באיכות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ברגע שכלי הדם הוא בפוקוס, ללכוד את מסגרות תמונה על ידי לחיצה על הכפתור השחור העגול במודול הרכישה. גם הכפתור העגול השחור יכול לשמש כדי להפחית או לשפר את האות של ICG לאיכות תמונה הטובה ביותר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לקבוע את הזווית האופטימלית תצוגה ועומק התמקדות לנגעים כורוידאלית תמונה. זה חשוב כדי לשמור על העמדה של העין, עומק ההתמקדות, והגדרות מכשיר אחרות שנקבעו לICGA זמן כמובן כולו. התמונות נשמרות על ידי לחיצה על לחצן לרכוש בפנל מסך מגע של מודול הרכישה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לרכוש תמונות בשלב ביניים ב6-15 ירכתי דקותהזרקה אה. הערה: שני כורוידאלית וכלי רשתית נעשים פחות ברורים. כלי דם Choroidal מופיע הקרינה מפוזרת כ. נגעי Choroidal מציגים hyperfluorescence לצוץ בניגוד לדהייה סביב הקרינה רקע נורמלית. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לרכוש תמונות בשלב מאוחר ב17-25 דקות לאחר הזרקה. הערה: Hyperfluorescence נמוג. שני כלי כורוידאלית ורשתית הם כבר לא נראים לעין. ראש עצב הראייה הופך לשחור. יש נגעים כורוידאלית Hyperfluorescent ניגוד מקסימאלי עם רקע הדהיה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר שסיים את הרכישה של תמונות, להחיל ג&#39;ל עיני סיכה ברור לעיני עכבר ולעזוב את העכבר על כרית חימום להתאוששות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להחזיר עכברים לכלובים והאזור מחזיק. יצוא תמונות כקובצי TIFF או JPEG לניתוח נוסף. </li></ol> הערה: התזמון של כל שלב אינו מוחלט. מצאנו כי העיתוי של eaשלב ch עשוי להשתנות בהתאם לכמות של ICG המוזרק. יותר ICG נוטה להאריך כל שלב. הדרך הטובה ביותר להגדיר את השלב היא על פי התכונות העיקריות של כל שלב המפורט לעיל.

<ol><li>Duane, T. D., Tasman, W., Jaeger, E. A. Chapter 4a, Indocyanine Green Angiography. Duane's clinical ophthalmology on CD-ROM. , Lippincott Williams & Wilkins. Philadelphia. (2002).</li>
<li>Alfaro, D. V. Age-related macular degeneration : a comprehensive textbook. , Lippincott Williams & Wilkins. (2006).</li>
<li>Yannuzzi, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Indocyanine+green+angiography%3A+a+perspective+on+use+in+the+clinical+setting%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Indocyanine green angiography: a perspective on use in the clinical setting.</a> Am. J. Ophthalmol. 151, 745-751 (2011).</li>
<li>Destro, M., Puliafito, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Indocyanine+green+videoangiography+of+choroidal+neovascularization%5BTitle%5D)+AND+%22Ophthalmology%22%5BJournal%5D)">Indocyanine green videoangiography of choroidal neovascularization.</a> Ophthalmology. 96, 846-853 (1989).</li>
<li>Scheider, A., Schroedel, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+resolution+indocyanine+green+angiography+with+a+scanning+laser+ophthalmoscope%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">High resolution indocyanine green angiography with a scanning laser ophthalmoscope.</a> Am. J. Ophthalmol. 108, 458-459 (1989).</li>
<li>Guyer, D. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Digital+indocyanine-green+angiography+in+chorioretinal+disorders%5BTitle%5D)+AND+%22Ophthalmology%22%5BJournal%5D)">Digital indocyanine-green angiography in chorioretinal disorders.</a> Ophthalmology. 99, 287-291 (1992).</li>
<li>Yannuzzi, L. A., Slakter, J. S., Sorenson, J. A., Guyer, D. R., Orlock, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Digital+indocyanine+green+videoangiography+and+choroidal+neovascularization%5BTitle%5D)+AND+%22Retina%22%5BJournal%5D)">Digital indocyanine green videoangiography and choroidal neovascularization.</a> Retina. 12, 191-223 (1992).</li>
<li>Regillo, C. D., Benson, W. E., Maguire, J. I., Annesley, W. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Indocyanine+green+angiography+and+occult+choroidal+neovascularization%5BTitle%5D)+AND+%22Ophthalmology%22%5BJournal%5D)">Indocyanine green angiography and occult choroidal neovascularization.</a> Ophthalmology. 101, 280-288 (1994).</li>
<li>Scheider, A., Kaboth, A., Neuhauser, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detection+of+subretinal+neovascular+membranes+with+indocyanine+green+and+an+infrared+scanning+laser+ophthalmoscope%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Detection of subretinal neovascular membranes with indocyanine green and an infrared scanning laser ophthalmoscope.</a> Am. J. Ophthalmol. 113, 45-51 (1992).</li>
<li>Kuck, H., Inhoffen, W., Schneider, U., Kreissig, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diagnosis+of+occult+subretinal+neovascularization+in+age-related+macular+degeneration+by+infrared+scanning+laser+videoangiography%5BTitle%5D)+AND+%22Retina%22%5BJournal%5D)">Diagnosis of occult subretinal neovascularization in age-related macular degeneration by infrared scanning laser videoangiography.</a> Retina. 13, 36-39 (1993).</li>
<li>Imamura, Y., Engelbert, M., Iida, T., Freund, K. B., Yannuzzi, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polypoidal+choroidal+vasculopathy%3A+a+review%5BTitle%5D)+AND+%22Surv.+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Polypoidal choroidal vasculopathy: a review.</a> Surv. Ophthalmol. 55, 501-515 (2010).</li>
<li>Ciardella, A. P., Donsoff, I. M., Yannuzzi, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polypoidal+choroidal+vasculopathy%5BTitle%5D)+AND+%22Ophthalmol.+Clin.+N.+Am%22%5BJournal%5D)">Polypoidal choroidal vasculopathy.</a> Ophthalmol. Clin. N. Am. 15, 537-554 (2002).</li>
<li>Spaide, R. F., Yannuzzi, L. A., Slakter, J. S., Sorenson, J., Orlach, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Indocyanine+green+videoangiography+of+idiopathic+polypoidal+choroidal+vasculopathy%5BTitle%5D)+AND+%22Retina%22%5BJournal%5D)">Indocyanine green videoangiography of idiopathic polypoidal choroidal vasculopathy.</a> Retina. 15, 100-110 (1995).</li>
<li>Coppens, G., Spielberg, L., Leys, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polypoidal+choroidal+vasculopathy%2C+diagnosis+and+management%5BTitle%5D)+AND+%22Bull.+Soc.+belge+d%27Ophtalmol.%22%5BJournal%5D)">Polypoidal choroidal vasculopathy, diagnosis and management.</a> Bull. Soc. belge d'Ophtalmol.. , 39-44 (2011).</li>
<li>Tsujikawa, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pigment+epithelial+detachment+in+polypoidal+choroidal+vasculopathy%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Pigment epithelial detachment in polypoidal choroidal vasculopathy.</a> Am. J. Ophthalmol. 143, 102-111 (2007).</li>
<li>Jones, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Increased+expression+of+multifunctional+serine+protease%2C+HTRA1%2C+in+retinal+pigment+epithelium+induces+polypoidal+choroidal+vasculopathy+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Increased expression of multifunctional serine protease, HTRA1, in retinal pigment epithelium induces polypoidal choroidal vasculopathy in mice.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 108, 14578-14583 (2011).</li>
<li>Alex, A. F., Heiduschka, P., Eter, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Retinal+fundus+imaging+in+mouse+models+of+retinal+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Retinal fundus imaging in mouse models of retinal diseases.</a> Methods Mol. Biol. 935, 41-67 (2013).</li>
<li>Seeliger, M. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+confocal+imaging+of+the+retina+in+animal+models+using+scanning+laser+ophthalmoscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Vision+Res%22%5BJournal%5D)">In vivo confocal imaging of the retina in animal models using scanning laser ophthalmoscopy.</a> Vision Res. 45, 3512-3519 (2005).</li>
<li>Fischer, M. D., Zhour, A., Kernstock, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phenotyping+of+mouse+models+with+OCT%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Phenotyping of mouse models with OCT.</a> Methods Mol. Biol. 935, 79-85 (2013).</li>
<li>Jian, Y., Zawadzki, R. J., Sarunic, M. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adaptive+optics+optical+coherence+tomography+for+in+vivo+mouse+retinal+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomed.+Opt%22%5BJournal%5D)">Adaptive optics optical coherence tomography for in vivo mouse retinal imaging.</a> J. Biomed. Opt. 18, 56007 (2013).</li>
<li>Ciardella, A. P., Donsoff, I. M., Huang, S. J., Costa, D. L., Yannuzzi, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polypoidal+choroidal+vasculopathy%5BTitle%5D)+AND+%22Surv.+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Polypoidal choroidal vasculopathy.</a> Surv. Ophthalmol. 49, 25-37 (2004).</li>
<li>Sasahara, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polypoidal+choroidal+vasculopathy+with+choroidal+vascular+hyperpermeability%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Polypoidal choroidal vasculopathy with choroidal vascular hyperpermeability.</a> Am. J. Ophthalmol. 142, 601-607 (2006).</li>
<li>Silva, R. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polypoidal+choroidal+vasculopathy+and+photodynamic+therapy+with+verteporfin%5BTitle%5D)+AND+%22Graefes+Arch.+Clin.+Exp.+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Polypoidal choroidal vasculopathy and photodynamic therapy with verteporfin.</a> Graefes Arch. Clin. Exp. Ophthalmol. 243, 973-979 (2005).</li>
<li>Yannuzzi, L. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polypoidal+choroidal+vasculopathy+masquerading+as+central+serous+chorioretinopathy%5BTitle%5D)+AND+%22Ophthalmology%22%5BJournal%5D)">Polypoidal choroidal vasculopathy masquerading as central serous chorioretinopathy.</a> Ophthalmology. 107, 767-777 (2000).</li>
<li>Janssen, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Abnormal+vessel+formation+in+the+choroid+of+mice+lacking+tissue+inhibitor+of+metalloprotease-3%5BTitle%5D)+AND+%22Invest.+Ophthalmol.+Vis.+Sci%22%5BJournal%5D)">Abnormal vessel formation in the choroid of mice lacking tissue inhibitor of metalloprotease-3.</a> Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 49, 2812-2822 (2008).</li>
<li>Ding, X., Patel, M., Chan, C. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+pathology+of+age-related+macular+degeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Prog.+Retin.+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">Molecular pathology of age-related macular degeneration.</a> Prog. Retin. Eye Res. 28, 1-18 (2009).</li>
<li>Grossniklaus, H. E., Kang, S. J., Berglin, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+models+of+choroidal+and+retinal+neovascularization%5BTitle%5D)+AND+%22Prog.+Retin.+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">Animal models of choroidal and retinal neovascularization.</a> Prog. Retin. Eye Res. 29, 500-519 (2010).</li>
<li>Pennesi, M. E., Neuringer, M., Courtney, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+models+of+age+related+macular+degeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Aspects+Med%22%5BJournal%5D)">Animal models of age related macular degeneration.</a> Mol. Aspects Med. 33, 487-509 (2012).</li>
<li>Elizabeth Rakoczy, P., Yu, M. J., Nusinowitz, S., Chang, B., Heckenlively, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+models+of+age-related+macular+degeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">Mouse models of age-related macular degeneration.</a> Exp. Eye Res. 82, 741-752 (2006).</li>
</ol>

פותחי עתיד הוא ממציא של שני פטנטים בהמתנה שהם רלוונטיים למודל עכבר AMD משמש בעבודה זו. SK, ZB, ומתכוונן אין לי מה לחשוף.

במחקר זה, שהדגמנו את השימוש בICGA לנגעים כורוידאלית תמונה בעכברים הטרנסגניים HTRA1. המאפיינים של תחילת, האמצע ושלבים מאוחרים של ICGA במודל של העכברים שלנו להתאים את מהלך הזמן גם במחקרים בבני אדם 1. זה חשוב לעשות השוואות טובות יותר בין פנוטיפים פתולוגיה וחיה אנושיים, אשר לא יסולא בפז למחקר על מנגנוני pathophysiological ואסטרטגיות טיפול בבעיות הקשורות לדמה עין, כגון AMD. אנו בוצעו לראשונה ICGA בעכברים על...

אנגיוגרפיה הירוקה Indocyanine (ICGA) היא בדיקת אבחון לבעיות של תמונה הקשורים לכלי דם בעין. ספקטרום הספיגה של ICG נע 790-805 ננומטר בעוד ספקטרום הפליטה נע 770-880 ננומטר עם פליטת השיא ב835 1 ננומטר. זה שונה מהצבע האחר הפופולרי, והעמסת נתרן, קשת שנופל בטווח הנראה לעין. ספקטרום האינפרה אדום מאפשר ICG לחדור דרך אפיתל הפיגמנט ברשתית (RPE), נוזל serosanguineous, ולפליטות שומנים בדם, כל מה שיכול בקלות לחסום את ההדמיה על ידי צנתור והעמסת המבוסס נתרן והעמסת (FA). ICG הוא בכלי הדם וכתוצאה מכך פחות extravasation מאוגד חלבון 98%, המאפשר הדמיה משופרת של כלי כורוידאלית ונגעים כורוידאלית 1,2. ICGA היא כמעט הברירה היחידה כדי לחזות בכלי דם כורוידאלית, שהוא אחורי לרשתית. איור 1 מציג ההשוואה של ICGA וFA בכלי דם הדמיה בעיני עכבר. FA יכול bדואר משמש לתמונה גם ברשתית כלי דם, אך לא בכלי הדם כורוידאלית. לעומת זאת, ICGA יכול לשמש לתמונת שני רשתית וכלי דם כורוידאלית. ICGA מתבצע עם מערכות ברזולוציה גבוהה הדמיה דיגיטלית או אומטלמוסקופ לייזר סריקה (SLO) יחד עם מצלמות וידאו אינפרא אדום רגישות, שאנו נשתמש במחקר זה. במרפאת, ICGA כבר המליץ ​​באבחון מספר הפרעות chorioretinal מעורב כלי הדם כורוידאלית כולל polypoidal Choroidal vasculopathy (PCV), רשתית Angiomatous למניעת הפצת נשק (RAP), פסי angioid, ניוון מקולרי vitelliform, chorioretinopathy הצפק המרכזי, כלי דם כורוידאלית, רשתית דימום macroaneurysms arteriolar, גידולים כורוידאלית, וצורות מסוימות של אובאיטיס אחורי 1,3. השילוב של ICGA עם FA והאופטי קוהרנטיות טומוגרפיה (אוקטובר) מספק כלים רבי עוצמה לרופאים באבחון והניהול של קולרים הקשור לגיל exudativeקולרים (AMD) 4-10. ICGA שימושי במיוחד לאבחון מצבים מעורבים דמית העין. למעשה, ICGA נחשב את תקן הזהב לאבחון PCV, וריאנט של יפליט AMD 11-13. PCV מאופיין על ידי רשת של הסתעפות כלי עם dilations polypoidal מסוף בכלי הדם כורוידאלית 11-13. PCV קשור לעתים קרובות עם פלוגות serosanguineous חוזרות ונשנות של הרשתית ורשתית עם דליפה ודימום מרכיבי polypoidal 11,14,15. לאחרונה דיווחו הדור של מודל החיה PCV תחילה על ידי transgenically להביע HTRA1 האנושי, פרוטאז סרין רב תפקודי, באפיתל הפיגמנט ברשתית עכבר (הרשתית) 16. הראינו כי HTRA1 המוגבר מושרה תכונות אופייניות של PCV, למשל נגעי polypoidal. כאן אנו מדגימים את השימוש בICGA זמן כמובן על ידי הזרקה לוריד זנב במחקר AMD שימוש במודל עכבר HTRA1 שלנו. הנתונים שלנו מראים כיIV-ICGA עדיף על ה-IP (או תת עורית (SC))-ICGA שכרגע נמצאים בשימוש בתחום 17,18 לאפיון נגעים בדמה העין. הצהרה על מחקר בבעלי חיים ניסויים בבעלי חיים בוצעו על פי פרוטוקולים שאושרו על ידי טיפול בבעלי חיים המוסדי ועדת שימוש (IACUC), ובוצעו בהתאם להצהרת ארוו לשימוש בבעלים חיים ברפואת עיניים וחזון מחקר.

<table><tbody><tr><td>מערכת הדמיה רב-מודאלית ספקטרליס</td><td>היידלברג הנדסה, גרמניה</td><td>SPECTRALIS HRA+OCT</td><td></td></tr><tr><td>תמיסת עיניים טרופיקמיד (1%)</td><td>Bausch & Lomb</td><td>NDC 24208-585-64</td><td>להרחבת אישונים</td></tr><tr><td>GenTeal Gel</td><td>Genteal</td><td>NDC 58768-791-15</td><td>&nbsp; ג'ל עיניים שקוף&nbsp;</td></tr><tr><td>קטמין</td><td>Vedco Inc</td><td>NDC 50989-996-06</td><td></td></tr><tr><td>Xylazine</td><td>Lloyd Laboratories</td><td>NADA 139-236</td><td></td></tr><tr><td>Acepromazine</td><td>Vedco Inc</td><td>NDC 50989-160-11</td><td></td></tr><tr><td>32-G מחט</td><td>Steriject</td><td>PRE-32013</td><td></td></tr><tr><td>מזרק 1 מ"ל</td><td>BD</td><td>309659</td><td></td></tr><tr><td>אינדוציאנין ירוק</td><td>Pfaltz & באואר</td><td>I01250</td><td></td></tr></tbody></table>

איתור ליקויים בchoroidal כלי דם במודל של עכברים של ניוון מקולרי הקשור בגיל בזמן הקורס indocyanine הירוק אנגיוגרפיה

Detecting Abnormalities in Choroidal Vasculature in a Mouse Model of Age-related Macular Degeneration by Time-course Indocyanine Green Angiography

Indocyanine הירוק אנגיוגרפיה (או ICGA) היא טכניקה המבוצעת על ידי רופאי עיניים לאבחון מומים בכלי הדם של רשתית וכורוידאלית של מחלות עיניים שונות, כגון ניוון הקשורה לגיל (AMD). ICGA שימושי במיוחד לתמונת כלי הדם כורוידאלית האחוריים של העין בשל יכולתה לחדור דרך שכבת פיגמנט עם ספקטרום האינפרה אדום שלה. כמובן זמן ICGA ניתן לחלק לתחילה, אמצע ושלבים מאוחרים. שלושה השלבים לספק מידע רב ערך על הפתולוגיה של בעיות עיניים. למרות ICGA זמן כמובן על ידי תוך ורידי (IV) הזרקה היא בשימוש נרחב במרפאת לאבחון והניהול של בעיות דמית העין, ICGA ידי זריקת intraperitoneal (IP) הוא נפוץ במחקר בבעלי חיים. כאן אנו מדגימים את הטכניקה כדי להשיג תמונות ICGA זמן כמובן ברזולוציה גבוהה בעכברים על ידי הזרקה לוריד זנב וophthalmoscopy סריקת לייזר confocal. אנחנו השתמשנו בטכניקה זו לתמונה כורוידאלית leהוא קונה במודל של עכברים של ניוון מקולרי הקשור לגיל. למרות שזה הרבה יותר קל להציג את ICG לכלי דם העכבר על ידי ה-IP, הנתונים שלנו מצביעים על כך שקשה להשיג תמונות כמובן הזמן לשעתק ICGA ידי ה-IP-ICGA. לעומת זאת, ICGA באמצעות הזרקה לוריד זנב מספק תמונות באיכות גבוהה ICGA זמן קורס דומות למחקרים בבני אדם. בנוסף, הראינו כי ICGA שבוצע על עכברי בקן נותן תמונות ברורות יותר של כלי כורוידאלית מזה שבוצע על עכברי פיגמנט. אנו מציעים כי IV-ICGA זמן כמובן צריך להיות מקובל במחקר AMD מבוסס על מודלים של בעלי חיים.

ביצענו כמובן זמן ICGA בעכברים הטרנסגניים HTRA1 והמלטת WT שליטה, אשר שניהם על רקע CD1. רקע CD1 בקן נבחר כדי להקל על אנגיוגרפיה הירוקה indocyanine הדמיה (ICGA) (ראה דיון). חלק מהפרצה כמו dilations החלה להופיע בשלב מוקדם בעכבר HTRA1 (איור 2, חץ אדום מציין את התרחבות בקצה של כלי ועיגול אדום מציין נגע polypoidal סוג אשכול). כלי Choroidal נראה בבירור בשני עכברי HTRA1 WT ובמהלך זה מוקדם מילוי בשלב של צבע ICG. בשלב ביניים, נגעי hyperfluorescent בשלב המוקדם הפכו ברורים יות...

Indocyanine הירוק אנגיוגרפיה (או ICGA) המבוצעת על ידי הזרקה לוריד זנב מספקת תמונות כמובן זמן ICGA באיכות גבוהה כדי לאפיין חריגות בדמו עין עכבר.

איתור ליקויים בChoroidal כלי דם במודל של עכברים של ניוון מקולרי הקשור בגיל בזמן הקורס Indocyanine הירוק אנגיוגרפיה

Indocyanine Green&#160;Angiography (or ICGA) is a technique performed by ophthalmologists to diagnose abnormalities of the choroidal and retinal ...

המטרה הכללית של הליך זה היא לזהות חריגות בכלי הדם של הכורואיד במודלים של עכברים עם דגנרציה מקולרית תלוית גיל, באמצעות דימות של זרימה בתוך כלי הדם (endo in green) ומיפוי גאוגרפי לאורך זמן. מטרה זו מושגת תחילה על ידי הכנת בעלי החיים והחומר להזרקה. השלב השני הוא ביצוע הזרקות לווריד הזנב של incy in green.לאחר מכן נרכשות תמונות של העין בשלבים המוקדמים, האמצעיים והמאוחרים של ה-incy באנגיוגרפיה ירוקה, אשר מיוצאות ומנותחות לאחר מכן. בסופו של דבר, מעקב זמני של incy באנגיוגרפיה ירוקה עשוי לשמש כהליך סטנדרטי לאפיון סוגים שונים של נגעים ברשתית העמוקה (choroid) בניוון מקולרי תלוי גיל. מודלים של עכברים.היתרון המרכזי של טכניקה זו, בהשוואה לשיטות הקיימות שלנו, כגון הזרקה תוך-פערית (intraperitoneal) של endo signin green, הוא שהיא מספקת תמונות איכותיות של מהלך הזמן, הדומות למחקרים בבני אדם. כדי להתחיל את הפרוצדורה, התלבשו בלבוש המתאים לעבודה עם בעלי חיים. הדבר כולל לבישת חלוקי ניתוח, כיסויי רגליים סטריליים, כובעי רשת לכיסוי השיער, מסכות פנים וכפפות. לאחר מכן, הכינו את משטח החימום שבו ייעשה שימוש במהלך הדמיון על ידי הפעלת המערכת, קביעת הטמפרטורה ל-37 °C וכיסויו במשטח כחול סטרילי.בשלב הבא, הדליקו פלטה מחממת וחממו כלי זכוכית (beaker) עם מים ל-40 °C. הכינו את מערכת ההדמיה לפני ההזרקה לווריד הזנב על ידי חימום מוקדם של הלייזר והרכבת עדשה של 55 מעלות על המכשור. לאחר מכן, פתחו את תוכנת ההדמיה והזינו את פרטי הזיהוי של העכבר לצורך הדמיה תחת דף מטופל חדש.תחת סוג המכשיר (device type), בחרו במצב אינפרא-אדום (infrared mode). לאחר הגדרת מערכת ההדמיה, הרחיבו את אישוניו של העכבר באמצעות תמיסה רפואית לעין של 1% tropic IDE, והמתינו חמש דקות. במהלך זמן זה, שקלו את העכבר כדי לקבוע את כמות ההרדמה הנדרשת.לאחר מכן, מזריקו תערובת של ketamine, xylazine ו-acepromazine באופן תוך-peritoneal כפי שמתואר בפרוטוקול הטקסט המצורף. המתינו כחמש דקות עד שהעכבר יהיה תחת הרדמה מלאה. במקום למרוח משחה לעיניים על עיני העכבר המורדם, גרסו PBS סטרילי על העיניים מדי שתי דקות או השתמשו בעדשות מגע ייעודיות כדי למנוע מהן להתייבש ולהפתח לקטרק.לאחר ההרדמה, יש להטביל את זנב העכבר במים בטמפרטורה של 40 degrees Celsius למשך 20 עד 30 שניות כדי להרחיב את וריד הזנב. לאחר מכן, השתמש במזרק של one milliliter המצויד במחט בעובי 32 gauge כדי לשאוב two microliters לגרם משקל גוף של תמיסת indocyanine green בריכוז one milligram per milliliter. הקפד לא להחדיר בועות אוויר למזרק.בשלב הבא, החזיקו את הזנב ביד אחת כך שוריד הזנב הצדי פונה כלפי מעלה, ונגבו את הזנב בעזרת תמיסות אלכוהול כדי לעקר את אזור ההזרקה. לאחר מכן, הכניסו את המחט למרחק של כשני מילימטרים לתוך הווריד בזווית מינימלית, כאשר חריץ המחט פונה כלפי מעלה. משכו מעט את בוכנת המזרק ובדקו אם נראה זרימת דם אל בסיס המחט, דבר המעיד על כך שהמחט הוכנסה בהצלחה לווריד.לאחר מכן, הזרק באיטיות את תמיסתו של ה-indocyanine green. בעת ההזרקה הבאה, צריכה להיות התנגדות מינימלית. הוצא את המחט והחלף מקלון אלכוהול ישירות על אתר ההזרקה למשך חמישה עד 10 שניות כדי לעצור כל דימום.העכבר מוכן כעת להדמיה לאחר הזרקה לווריד הזנב. העבירו במהירות את העכבר למערכת ההדמיה שהוכנה מראש כדי לצלם תמונות במהלך השלב המוקדם של מילוי הכורואיד (choroidal filling). ראשית, הגדירו את התמונה ומקדמו את הפוקוס על כלי הדם הרלוונטיים.כוון את המוקד בין 35 ל-45 דיופטר עבור כלי הדם ברשתית ובין 10 ל-15 דיופטר עבור כלי הדם במעטפת הרשתית (choroid). לאחר מכן, בקר את הבהירות באמצעות מודול הבקרה, התאם דיגיטלית את ערכי המיקוד והבהירות, וברגע שנקבעו, שמור עליהם קבועים עבור סוג צילום זה. כמו כן, שמור על מרחק קבוע בין עין העכבר למצלמה.על מנת להבטיח איכות תמונה הניתנת לשחזור, בצעו סריקה ראשונית על ידי דימוי של כל החלק האחורי של העין מזוויות שונות. התחילו בהתאמה של הלומנסנס בצורת עיגול הנפלט על ידי צבע האינדוציאנין גרין (indocyanine green) לשדה הראייה של המצלמה.כדי להשיג זאת, בצעו תנועות מימין לשמאל, למעלה ולמטה, ופנימה והחוצה. כוונו את מיקום המצלמה עד שכל התמונה תהיה במיקוד וללא אזורים חשוכים. רשמו את הגדרות המכשיר האופטימליות לצורך חזרות על הפרוצדורה.ברגע שהכלי הדם נמצאים במיקוד, צלמו את פרמי התמונה על ידי לחיצה על הכפתור השחור העגול במודול הרכישה. ניתן להשתמש בכפתור זה גם כדי להפחית או להגביר את אות ה-indoc והירוק לקבלת איכות התמונה המיטבית. כדי לבחון אזור נגעי ספציפי על סמך תוצאות הסריקה הקודמות, הגדירו את מערכת ההדמיה תוך שימוש בזווית האופטימלית ובהגדרות המכשיר שנקבעו מראש.שמרו על זווית צפייה קבועה של העין, עומק מיקוד והגדרות מכשיר אחרות לאורך כל התהליך. שמרו את התמונות על ידי לחיצה על כפתור הרכישה (acquire) בפאנל מסך המגע של מודול הרכישה. המשיכו לרכוש תמונות בשלב המוקדם עד שהסירקולציה הרשתית והכורואידית יגיעו לבהירות מקסימלית.פעולה זו עשויה להימשך עד ארבע דקות. לאחר מכן, המשיכו ברכישת תמונות בשלב הביניים, בין שש ל-15 דקות לאחר ההזרקה. כפי שניתן לראות כאן, כלי הדם הכורואידליים הופכים לפחות מובחנים בשלב זה ונראים כפלואורסצנציה דיפוזית.בנוסף, נגעים כורואידליים המפגינים היפרופלורסנציה מופיעים לאחר מכן; רכשו תמונות בשלב המאוחר, 17 עד 25 דקות לאחר ההזרקה. בשלב זה, ההיפרופלורסנציה דועכת והכלי הדם אינם נראים עוד. כמו כן, ראש עצב הראייה הופך לשחור והנגעים הכורואידליים מגיעים לניגודיות מרבית מול הרקע הדועך.לאחר סיום רכישת התמונות, יש למרוח חומר סיכה שקוף מסוג IGEL על עיני העכברים ולהשאיר את העכבר על פד חימום להחלמה. ברגע שהם יחזרו לתנועה חלקית, החזירו את העכברים לכלובים ולשטח השמירה שלהם. לבסוף, ייצאו את כל התמונות כקבצי תמונה או קבצי וידאו לצורך ניתוח המשך.מוצגת כאן השוואה בין אנגיוגרפיה פלואורסצאינית המבוססת על נתרן פלואורסצאין לבין אנגיוגרפיה ב-indocyanine green בדימות של כלי הדם ברשתית ובכרויה של עכבר. בעוד שניתן לראות את כלי הדם ברשתית באמצעות FA ו-ICGA כאחד, ניתן לראות את כלי הדם בכרויה רק באמצעות ICGA. להלן תמונות של כלי הדם בכרויה שצולמו לאחר הזרקה לווריד הזנב של indocyanine green בעכבר מסוג wild type.לא נמצאו הרחבות או נגעים באף אחד משלבי ההדמיה בעכבר טרנסגני HT A one. עם זאת, both הרחבות ונגעים פוליפואידליים מסוג צבר נמצאו בשלב המוקדם, ומספר נגעים נוספים הופיעו בשלב הבינוני והפכו ברורים יותר בשלב המאוחר. כדי להשוות בין הזרקה לווריד הזנב להזרקה תוך-פערית (intraperitoneal) של indocyanine green מבחינת איכות ההדמיה, בוצעו הדמיות לעכברים טרנסגניים נוספים מסוג HRA one לאחר הזרקה IP. כלי הדם הכורואידליים אינם נראים ברובם חמש דקות לאחר ההזרקה בשני העכברים, ואינם נראים בכלל לאחר יותר מ-12 דקות בעכבר.בפאנלים התחתונים, בנוסף לשורש של פיגמנט ההזרקה, צבע הפיגמנט משפיע גם הוא על איכות התמונות. כאן הושוו עכבר עם פיגמנט ועכבר אלבינו באמצעות מהלך זמן של הזרקה תוך-ורידלית (IV) בירוק, גיאוגרפיה. לעכבר האלבינו היו תמונות חדות הרבה יותר של כלי דם כורואידיים גדולים וקטנים כאחד בשלבים המוקדמים והבינוניים, והוא יהווה רקע רבייה טוב למחקרים נוספים בתחום זה לאחר פיתוחו.טכניקה זו סללה את הדרך עבור חוקרים בתחום מחקר הראייה לבחון פתולוגיות של הכורואיד במודלים של עכברים.

detecting-abnormalities-choroidal-vasculature-mouse-model-age-related

Research

JoVE Journal

Medicine

רפואה

הפעלת המיקרוגלים וmicrogliosis הן תגובות מפתח לניוון של מערכת עצבים כרוניות. כאן, אנו מציגים שיטות לin vivo, הדמיה לטווח הארוך של תאים ברשתית microglial CX3CR1-GFP + על ידי ophthalmoscopy confocal, ולסף וmorphometric מנתח לזהות ולכמת ההפעלה שלהם. אנו עוקבים אחר שינויי microglial בגלאוקומה הקשורות לגיל שלבים מוקדמים.

בVivo הדינמיקה של רשתית microglial הפעלה במהלך מוחיה: Confocal Ophthalmoscopic הדמיה וMorphometry הסלולרי בעכבר גלאוקומה

פרוטוקול זה מתאר איך ברזולוציה גבוהה טכניקות הדמיה כגון טומוגרפיה אופטית קוהרנטית בתחום ספקטרלי, סריקת לייזר ophthalmoscopy יכול להיות מנוצל מכרסמים קטנים, באמצעות מערכת פלטפורמה אופטלמולוגיות הדמיה, כדי לקבל מידע על עובי רשתית, microglial תא הפצה, בהתאמה.

אין ויוו הדמיה של עכברים כתב Cx3cr1gfp/gfp עם תחומים הספקטרום טומוגרפיה אופטית קוהרנטית, סריקת לייזר Ophthalmoscopy

כאן, אנו מציגים את התועלת של האורך ויוו הדמיה מעקב אחר שינויים מורפולוגיים של לייזר המושרה neovascularization כורוידאלית בעכברים.

אין ויוו הדמיה עם מודאלים מרובים וניתוח של עכבר לייזר המושרה חיבור כורוידאלית דגם

כאן, אנו מתארים את השימוש בטומוגרפיית קוהרנטיות אופטית בתחום ספקטרלי (SD-OCT) כדי לדמיין מבנים ברשתית ובעין in vivo במודלים של ניוון רשתית, גלאוקומה, רטינופתיה סוכרתית וקוצר ראייה.

הערכות מבניות In vivo של מחלות עיניים במודלים של מכרסמים באמצעות טומוגרפיה קוהרנטית אופטית

פרוטוקול זה מציג בדיקה נבטי choroid, מודל vivo לשעבר של התפשטות מיקרוווסקולרית. בדיקה זו יכולה לשמש כדי להעריך מסלולים המעורבים בהתרבות כלי מיקרו choroidal ולהעריך טיפולים תרופתיים באמצעות סוג פראי רקמת עכבר מהונדסים גנטית.

אקס ויוו צ'רויד נבט א-סאי של אנגיוגנזה מיקרו-וסקולרית עינית

פרוטוקול זה מתאר שיטה מפורטת להכנה וצביעה אימונופלואורסצנטית של תושבות שטוחות רשתית של עכברים וניתוח. השימוש באנגיוגרפיה פלואורסצנטית פונדוס (FFA) עבור גורי עכברים ועיבוד תמונה מתוארים בפירוט גם כן.

ניטור צמיחה דינמית של כלי רשתית במודל עכבר רטינופתיה המושרה על ידי חמצן

כאן אנו מתארים טכניקת הדמיה in vivo באמצעות טומוגרפיה קוהרנטית אופטית כדי להקל על האבחון והמדידה הכמותית של רטינופתיה בעכברים.

יישום טומוגרפיה של קוהרנטיות אופטית למודל עכבר של רטינופתיה

כאן אנו מציגים שלושה פרוטוקולי ניתוח נתונים עבור אנגיוגרפיה פלואורסצנטית (FA) וטומוגרפיה של קוהרנטיות אופטית (OCT) במחקר של חסימת ורידים ברשתית (RVO).

In vivo קריאות פגיעה בכלי דם ברשתית העכבר כדי לקדם את יכולת השחזור

נכון לעכשיו, אנגיוגרפיה פלואורסצאין (FA) היא השיטה המועדפת לזיהוי דפוסי דליפה במודלים של בעלי חיים של ניאו-וסקולריזציה כורואידית (CNV). עם זאת, FA אינו מספק מידע על מורפולוגיה של כלי הדם. פרוטוקול זה מתאר את השימוש באנגיוגרפיה ירוקה אינדוציאנינית (ICGA) כדי לאפיין סוגים שונים של נגעים של CNV המושרה בלייזר במודלים של עכברים.

אפיון מורפולוגיה וסקולרית של ניוון מקולרי נאו-וסקולרי הקשור לגיל על ידי אינדוציאנין אנגיוגרפיה ירוקה

כדי להבין את המנגנונים המולקולריים של אתנול הנזק הנגרמת התפתחותית, פיתחנו מודל של דג הזברה חשיפה אתנול בוחנים את פיזיים, שינויים הסלולר, וגנטיים המתרחשות לאחר החשיפה...

הערכת שינויים teratogenic במודל דג הזברה של חשיפה אלכוהול עוברית

למדו לאתר ליקויים בכלי הדם הכלורואידליים במודלי עכברים של ניוון מקולרי קשור בגיל באמצעות אנגיוגרפיית Indocyanine Green. שיטה זו מאפשרת דימות איכותי של הכלורואיד לאורך זמן.

איתור ליקויים בChoroidal כלי דם במודל של עכברים של ניוון מקולרי הקשור בגיל בזמן הקורס Indocyanine הירוק אנגיוגרפיה

גלה סרטונים נוספים