Name: פרופיל של מיקרו RNA המוסדר אסטרוגן בתאי סרטן השד (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-02-21T14:30:00.000+00:00
Duration: 16 min 24 s
Description: חקור פרופיל של מיקרו RNA המוסדר אסטרוגן בתאי סרטן השד באמצעות מערכי מיקרופלואידיים ו-QPCR. שיטה זו מאפשרת לזהות תבניות ביטוי גנומיות ולהבין את תפקיד האסטרוגן בסרטן השד.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

אנו מודים לד&quot;ר Xiaolian גאו, אוניברסיטת יוסטון, למתן ייעוץ לפלטפורמת microarray LC מדעי מירנה, ד&quot;ר קארין Edvardsson, מכון קרולינסקה, שוודיה, וד&quot;ר Eylem איידוגדו, אוניברסיטת יוסטון, לשיתוף המומחיות של מירנה . מחקר שפורסם בפרסום זה נתמכה על ידי המכון הלאומי לסרטן של המכון הלאומי לבריאות במספר פרס R01CA172437. התוכן הוא באחריות בלעדית של הכותבים ולא בהכרח מייצג את הדעות הרשמיות של המכון הלאומי לבריאות. עבודה זו נתמכה גם על ידי מענקים מהקרן מתעוררים טקסס הטכנולוגיה, על פי הסכם שלא. 300-9-1958.

<ol><li>Katchy, A., Edvardsson, K., Aydogdu, E., Williams, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Estradiol-activated+estrogen+receptor+alpha+does+not+regulate+mature+microRNAs+in+T47D+breast+cancer+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Steroid+Biochem.+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Estradiol-activated estrogen receptor alpha does not regulate mature microRNAs in T47D breast cancer cells.</a> J. Steroid Biochem. Mol Biol. 128 (3-5), 145-153 (2012).</li>
<li>Bartel, D. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MicroRNAs%3A+genomics%2C+biogenesis%2C+mechanism%2C+and+function%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">MicroRNAs: genomics, biogenesis, mechanism, and function.</a> Cell. 116 (2), 281-297 (2004).</li>
<li>Wickramasinghe, N. S., Manavalan, T. T., Dougherty, S. M., Riggs, K. A., Li, Y., Klinge, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Estradiol+downregulates+miR-21+expression+and+increases+miR-21+target+gene+expression+in+MCF-7+breast+cancer+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">Estradiol downregulates miR-21 expression and increases miR-21 target gene expression in MCF-7 breast cancer cells.</a> Nucleic Acids Res. 37 (8), 2584-2595 (2009).</li>
<li>Bhat-Nakshatri, P., Wang, G., Collins, N. R., Thomson, M. J., Geistlinger, T. R., Carroll, J. S., Brown, M., Hammond, S., Srour, E. F., Liu, Y., Nakshatri, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Estradiol-regulated+microRNAs+control+estradiol+response+in+breast+cancer+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">Estradiol-regulated microRNAs control estradiol response in breast cancer cells.</a> Nucleic Acids Res. 37 (14), 4850-4861 (2009).</li>
<li>Klinge, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((miRNAs+and+estrogen+action%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Endocrinol.+Metab%22%5BJournal%5D)">miRNAs and estrogen action.</a> Trends Endocrinol. Metab. 23 (5), 223-233 (2012).</li>
<li>Gupta, A., Caffrey, E., Callagy, G., Gupta, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oestrogen-dependent+regulation+of+miRNA+biogenesis%3A+many+ways+to+skin+the+cat%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem.+Soc.+Trans%22%5BJournal%5D)">Oestrogen-dependent regulation of miRNA biogenesis: many ways to skin the cat.</a> Biochem. Soc. Trans. 40 (4), 752-758 (2012).</li>
<li>Kao, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+profiling+of+breast+cancer+cell+lines+defines+relevant+tumor+models+and+provides+a+resource+for+cancer+gene+discovery%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Molecular profiling of breast cancer cell lines defines relevant tumor models and provides a resource for cancer gene discovery.</a> PLoS One. 4 (7), e6146(2009).</li>
<li>Lacroix, M., Leclercq, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Relevance+of+breast+cancer+cell+lines+as+models+for+breast+tumours%3A+an+update%5BTitle%5D)+AND+%22Breast+Cancer+Res.+Treat%22%5BJournal%5D)">Relevance of breast cancer cell lines as models for breast tumours: an update.</a> Breast Cancer Res. Treat. 83 (3), 249-289 (2004).</li>
<li>Ross, D. T., Perou, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+comparison+of+gene+expression+signatures+from+breast+tumors+and+breast+tissue+derived+cell+lines%5BTitle%5D)+AND+%22Dis.+Markers%22%5BJournal%5D)">A comparison of gene expression signatures from breast tumors and breast tissue derived cell lines.</a> Dis. Markers. 17 (2), 99-109 (2001).</li>
<li>Neve, R. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+collection+of+breast+cancer+cell+lines+for+the+study+of+functionally+distinct+cancer+subtypes%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Cell%22%5BJournal%5D)">A collection of breast cancer cell lines for the study of functionally distinct cancer subtypes.</a> Cancer Cell. 10 (6), 515-527 (2006).</li>
<li>Baker, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MicroRNA+profiling%3A+separating+signal+from+noise%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Methods%22%5BJournal%5D)">MicroRNA profiling: separating signal from noise.</a> Nat. Methods. 7 (9), 687-692 (2010).</li>
<li>Ye, J., Coulouris, G., Zaretskaya, I., Cutcutache, I., Rozen, S., Madden, T. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Primer-BLAST%3A+a+tool+to+design+target-specific+primers+for+polymerase+chain+reaction%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Bioinformatics%22%5BJournal%5D)">Primer-BLAST: a tool to design target-specific primers for polymerase chain reaction.</a> BMC Bioinformatics. 13, 134(2012).</li>
<li>Zhou, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MicroRNA+profiling+using+microParaflo+microfluidic+array+technology%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">MicroRNA profiling using microParaflo microfluidic array technology.</a> Methods Mol. Biol. 822, 153-182 (2012).</li>
<li>Griffiths-Jones, S., Grocock, R. J., van Dongen, S., Bateman, A., Enright, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((miRBase%3A+microRNA+sequences%2C+targets+and+gene+nomenclature%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">miRBase: microRNA sequences, targets and gene nomenclature.</a> Nucleic Acids Res. 34, 140-144 (2006).</li>
<li>Chen, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Real-time+quantification+of+microRNAs+by+stem-loop+RT-PCR%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">Real-time quantification of microRNAs by stem-loop RT-PCR.</a> Nucleic Acids Res. 33 (20), e179(2005).</li>
<li>Ruedl, C., Cappelletti, V., Coradini, D., Granata, G., Di Fronzo, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Influence+of+culture+conditions+on+the+estrogenic+cell+growth+stimulation+of+human+breast+cancer+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Steroid+Biochem.+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Influence of culture conditions on the estrogenic cell growth stimulation of human breast cancer cells.</a> J. Steroid Biochem. Mol. Biol. 37 (2), 195-200 (1990).</li>
<li>Kim, Y. K., Yeo, J., Kim, B., Ha, M., Kim, V. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Short+structured+RNAs+with+low+GC+content+are+selectively+lost+during+extraction+from+a+small+number+of+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Cell%22%5BJournal%5D)">Short structured RNAs with low GC content are selectively lost during extraction from a small number of cells.</a> Mol. Cell. 46 (6), 893-895 (2012).</li>
<li>Williams, C., Edvardsson, K., Lewandowski, S. A., Strom, A., Gustafsson, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+genome-wide+study+of+the+repressive+effects+of+estrogen+receptor+beta+on+estrogen+receptor+alpha+signaling+in+breast+cancer+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Oncogene%22%5BJournal%5D)">A genome-wide study of the repressive effects of estrogen receptor beta on estrogen receptor alpha signaling in breast cancer cells.</a> Oncogene. 27 (7), 1019-1032 (2008).</li>
<li>Yu, Y. T., Maroney, P. A., Darzynkiwicz, E., Nilsen, T. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((U6+snRNA+function+in+nuclear+pre-mRNA+splicing%3A+a+phosphorothioate+interference+analysis+of+the+U6+phosphate+backbone%5BTitle%5D)+AND+%22RNA%22%5BJournal%5D)">U6 snRNA function in nuclear pre-mRNA splicing: a phosphorothioate interference analysis of the U6 phosphate backbone.</a> RNA. 1 (1), 46-54 (1995).</li>
<li>Wesierska-Gadek, J., Schreiner, T., Maurer, M., Waringer, A., Ranftler, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phenol+red+in+the+culture+medium+strongly+affects+the+susceptibility+of+human+MCF-7+cells+to+roscovitine%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Mol.+Biol.+Lett%22%5BJournal%5D)">Phenol red in the culture medium strongly affects the susceptibility of human MCF-7 cells to roscovitine.</a> Cell Mol. Biol. Lett. 12 (2), 280-293 (2007).</li>
<li>Welshons, W. V., Wolf, M. F., Murphy, C. S., Jordan, V. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Estrogenic+activity+of+phenol+red%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Cell.+Endocrinol%22%5BJournal%5D)">Estrogenic activity of phenol red.</a> Mol. Cell. Endocrinol. 57 (3), 169-178 (1988).</li>
<li>Benes, V., Castoldi, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+profiling+of+microRNA+using+real-time+quantitative+PCR%2C+how+to+use+it+and+what+is+available%5BTitle%5D)+AND+%22Methods%22%5BJournal%5D)">Expression profiling of microRNA using real-time quantitative PCR, how to use it and what is available.</a> Methods. 50 (4), 244-249 (2010).</li>
<li>Git, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Systematic+comparison+of+microarray+profiling%2C+real-time+PCR%2C+and+next-generation+sequencing+technologies+for+measuring+differential+microRNA+expression%5BTitle%5D)+AND+%22RNA%22%5BJournal%5D)">Systematic comparison of microarray profiling, real-time PCR, and next-generation sequencing technologies for measuring differential microRNA expression.</a> RNA. 16 (5), 991-1006 (2010).</li>
<li>Schmittgen, T. D., Jiang, J., Liu, Q., Yang, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+high-throughput+method+to+monitor+the+expression+of+microRNA+precursors%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">A high-throughput method to monitor the expression of microRNA precursors.</a> Nucleic Acids Res. 32 (4), e43(2004).</li>
<li>Setiawan, A. N., Lokman, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+use+of+reference+gene+selection+programs+to+study+the+silvering+transformation+in+a+freshwater+eel+Anguilla+australis%3A+a+cautionary+tale%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">The use of reference gene selection programs to study the silvering transformation in a freshwater eel Anguilla australis: a cautionary tale.</a> BMC Mol. Biol. 11, 75(2010).</li>
<li>Yuan, J. S., Reed, A., Chen, F., Stewart, C. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Statistical+analysis+of+real-time+PCR+data%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Bioinform%22%5BJournal%5D)">Statistical analysis of real-time PCR data.</a> BMC Bioinform. 7, 85(2006).</li>
</ol>

יש המחברים אין לחשוף.

קביעת המנגנון לויסות הורמונלי של מירנה בתאי סרטן השד יכולה לספק פלטפורמה להבנת מחלה זו והוא יכול לספק טיפול פוטנציאלי לסרטן השד. Culturing תאים אלה כדי לספק את התנאים אופטימליים לפעולת הורמון הוא חשוב מאוד. הנה, בפרוטוקול שמבטיח כי ההורמון של עניין (אסטרוגן) לא נכלל לפני הטיפול ושמינון אופטימלי של E2 שימש לזמן מתאים במהלך הטיפול שתואר. השפעות גורם הורמונלי וצמיחה אחרות הוחזקו לכל הפחות על ידי הורדה הדרגתית של הרמות בסרום ובאמצעות DCC-FBS, שהוא FBS שהופשט מרוב ההורמונים שלה, ציטוקינים וגורמי גדילה. תקשורת האדומה ללא פנול שימשה נוסף כדי למזער את השפעות nonhormonal אחרות, בהתחשב בכך שפנול אדום כבר דווח כי פעילות אסטרוגנית ומשפיע על פונקציות מסוימות בשורות תאי 20,21. זמן חשיפה של התאים להורמון הוא בעל חשיבות רבה. לרגולציה הקשורים לאסטרוגן של גנים, זה כבר הראה בעבר כי 24 hrexposure לייצר תגובה משמעותית של גנים המטרה ישירים בתאי סרטן שד 1,18. מאז miRNAs מתועתק על ידי RNA פולימראז II, כמו mRNAs, מתקבל על הדעת שמדוברת בנקודת זמן מתאימה כדי לזהות רגולציה ישירה גם של miRNAs. זה עדיין לא נקבע אם וכיצד miRNAs אלה משפיע על הביטוי של מטרות ER הידועים אלה בתאי סרטן השד. פרופיל ביטוי מירנה יכול להיות מאתגר בגלל גודלו הקטן יחסית של מירנה, העובדה שניתן למצוא את רצף מירנה בוגר גם בפרי מירנה וטרום מירנה, ובגלל ההטרוגניות בתוכן GC 22. טכניקות אפיון כמה וכימיה של להיות מועסקים על מנת להתגבר על קושי זה. בין אלה גישות שונות של microarray וניתוח qPCR (איור 2) הן. למרות microarray מקובל לאנאלי הגנום כולויסיס, הוא יכול לספק נגטיבים שווא וקיים הבדלים בין הפלטפורמות הזמינות, החל הכימיה לטכנולוגיית הדפסת 23. גם תהליך הנורמליזציה מציג אתגר בניתוח יחסית מעט גנים מירנה, שנספרים באלפים בהשוואה לעשרות אלפי תעתיקי mRNA. qPCR, לעומת זאת, הוא רגיש יותר, והוא טוב יותר מיושם כאשר פחות גנים הם להילקח בחשבון. עם זאת, כאשר היא מבוצעת ב384 גם צלחות גדולות, עם לשכפל טכני אחת בלבד לכל צלחת, צלחות מרובות צריכים להיות מנותחות עבור כל דגימה שהופך את הניתוח יקר. כמו כן, בידיים שלנו, רבות תוצאות שליליות יותר שווא התקבלו באמצעות ניתוח DLP-LDA לעומת microarray. בהתחשב בכך את רצף מירנה בוגר נמצא בפרי, מירנה והרצפים טרום מירנה, זה עניין להבדיל בין תעתיקים אלה באמצעות טכניקות PCR 24. בדיקות DLP זמינות גם ל- miRNAs מראש, וspיכולים גם להיות מתוכננים פריימרים ecific להוציא בוגר או מבשר שונים גרסאות באמצעות טכנולוגיית qPCR צבע Cyanine. qPCR הוא תקן זהב עבור אימות ביטוי ההפרש מפרופיל תוצאות. היעילות של qPCR, לעומת זאת, תלויה במספר פרמטרים הכוללים מיצוי RNA, שלמות RNA (איכות), סינתזת cDNA, עיצוב פריימר, שיטת זיהוי (כימיה), וגן ההתייחסות לנורמליזציה נתונים 1,22,25. האפשרויות לעיצוב פריימר לניתוח מירנה היא מוגבלות מאוד, שכן אורך רצף מירנה הקצר אינו נותן מקום להרבה עיצוב פריימר חלופי, ורק אחד פריימר ניתן טיפח ברצף קצר זה. לפיכך, הצורך במניפולציות חלופיות כפי שמודגמות באיור 2. משכפל טכני חשוב כדי לאמת את חוסנו של שיטת ההגברה והתהליך המועסק. משכפל ביולוגי נדרש לייצוג של variatio הביולוגי הכלליn, לרבות תגובה משתנה ליגנד טיפול, וכדי להראות שתופעות ראו בתא הן לשחזור. בהתבסס על הניסיון שלנו, שינויים בביטוי מירנה בין תרביות תאים יכולים להתרחש. בדרך כלל ההבדלים האלה הם פחות מ פי 1.3, והממוצע של ערכים וSD המתאימים מזהה את הווריאציה הטבעית וטכנולוגית. וריאציה זו יכולה לנבוע מגורמים שונים, כולל, צפיפות תאים והעובדה שפונקציות תא יכולים להשתנות מקטע לקטע. כדי לזהות ביטויים סטטיסטיים משמעותיים כתוצאה מטיפול ליגנד, משמעות מקובלת היא כאשר p-הערך הוא פחות מ 0.05. הנה, כבר בשימוש על מבחן t של סטודנט על משכפל הביולוגי וטכני באמצעות ההפצה שני זנב ופרמטרים שונות שאינם שווים שני מדגם. פרמטרים מבחן t אחרים קיימים, והבחירה תלויה בהתקנה הניסיונית 26. פרוטוקול מפורט בהערכת תקנות ההורמונלית של הבוגר miRNA בתאי סרטן שד כבר סיפק. וטכנולוגיות חשובות כימיה באפיון ואימות של ביטויי מירנה אלה הוסברו באופן ברור. הטכנולוגיה שנבחרה למחקרים של מירנה בתאי סרטן השד תלויה בסופו של דבר מה בדיוק נחקר.

אסטרוגן הוא הורמון חשוב במהלך התפתחות בלוטת החלב. אסטרוגן גם ממלא תפקידים חשובים בפיתוח, תחזוקה, סיכון, וטיפול בסרטן השד 1. אסטרוגן מפעיל הפונקציה שלה על ידי קשירה לחדרי מיון, שהם גורמי שעתוק ולהסדיר גנים המטרה ספציפיים. של שתי גרסאות קולט, ERα הוא חיוני לשגשוג תלוי באסטרוגן בתאי סרטן השד. רוב מקרי סרטן השד הם ERα חיוביים ותלוי באסטרוגן לצמיחה. זה הפך את איתות אסטרוגן וERα יעד לטיפול בסרטן השד חיובי הורמון לקולטן. הבנת המנגנון הבסיסי של ERα חשובה כדי לשפר את תוצאות טיפול, להתגבר על התנגדות לטיפול, ולהבין כיצד מתפתח סרטן השד. miRNAs ממלא תפקידים קריטיים בפונקציות תא בשל ההשפעה הגדולה שלהם בויסות הגנים לאחר תעתיק. miRNAs קצר 19-24 נוקלאוטידים, אחד תקוע, Noncoding RNAs אשר עיבד לראשונה על ידי RNA פולימראז II לתעתיקי מירנה ראשוניים (פרי מירנה). הם מעובדים בגרעין על ידי Drosha למבשר-miRNAs קצר סיכה (טרום מירנה) ומעובד לאחר מכן על ידי דייסר ומופרד לגדילים יחיד ליצירת miRNAs הבוגרת בציטופלסמה. MiRNAs הבוגרת חד גדילים מועברות לחלבוני argonaute ליצירת מורכב RISC. לאחר מכן, miRNAs יכול להכליא אזורי 3&#39;-מתורגמים (3&#39;-UTR) של mRNA יעד, מה שמוביל לרגולציה לאחר תעתיק על ידי חסימת תרגום או משפיל את ה-mRNA היעד 2. בשל התפקיד החשוב שגם אסטרוגן וmiRNAs לשחק בהתקדמות גידול, זיהוי miRNAs קשורים איתות אסטרוגן נורמלית או שיבש הוא חשוב על מנת לשפר את ההבנה של ההתפתחות שלנו ולשפר את הטיפול בסרטן השד. אמנם יש הבנה טובה של איך ERα מסדיר גנים המקודדים חלבונים, ההארכהופרטים של noncoding תקנות RNA נשארים להיחקר ביסודיות. מחקרים ראשוניים במטרה להבהיר הרגולציה ERα של מירנה בשורות תאי סרטן השד הניבו תוצאות סותרות, גם כאשר באותו קו התא כבר ניתח 3-6. זה עשוי להיות תוצאה של טיפולים שונים, וריאציות ביולוגיות, השימוש בטכניקות שונות, והעובדה שהגודל הקטן של miRNAs לגרום להם מאתגר לנתח. כאן, פרוטוקול השולט לוריאציות וחפצי שיטה מתואר. כדי לזהות איזה miRNAs מוסדר על ידי אסטרוגן, פרופיל של מודל סרטן שד מוגדר היטב של פעילות ERα הוא צעד ראשון. שורות תאים כמה כבר נוצרו מגידולים אנושיים ERα החיובי לסרטן השד, התלויים באסטרוגן הדומה לרוב מקרי סרטן השד קליניים. המאפיינים המולקולריים של שתי שורות תאים אלה, T47D וMCF7, כולל הביטוי של ERα והמטרה במורד הזרם שלו,קולטן הורמון פרוגסטרון (PR), חוסר הביטוי של הקולטן HER2 הקרום, יחד עם ביטוי של גנים בידול אסטרוגן להגיב וluminal-אפיתל, לגרום להם מתאים כמודלים לתת luminal של גידולים בשד 7-10. 17β-אסטרדיול (E2) הוא הצורה הדומיננטית של אסטרוגן, והריכוזים ונקודתי זמן להפעלת תעתיק אופטימלי של ERα היו מאופיינים במחקרים רבים. בטיפול זה פרוטוקול 10 ננומטר E2 ל24 שעות משמש וT47D וMCF7 כמודלים לפעילות ERα בתאי סרטן השד 1. בנוסף, תקנות מירנה תלוית זמן ניתן לנתח באופן ספציפי במרווח של למשל 1-72 שעות זמן. שנית, יש מירנה ניתוח אתגרים נפרדים, בין שאר בשל הגדלים שלהם קצרים. miRNAs אינם נשמרים גם בסך הכל הכנת RNA כאשר thiocyanate-phenol/chloroform/isopropanol משקעי RNA הרגילים guanidinium מבוצעים, או כאשר stpurifications עמודת andard משמשות. אמצעי זהירות מיוחדת יש לנקוט כדי לשמור או להעשיר עבור החלק הקטן יותר של RNAs. על ידי הגדלת נפח isopropanol, הורדת הטמפרטורה לפני צנטריפוגה (-80 ° C), והשמטת הכביסה ב70% אתנול, התמך של miRNAs יכול להיות משופר במשקעים. לחלופין, ניתן להשתמש בעמודות ספציפיות ומאגרים להכנה איכותית וחזקה של רנ&quot;א הכל המכיל מירנה. גם לניתוח עצמו, הגדלים שלהם קצרים ליצור אתגרים. להקרנת מירנה הגנום כולו, יש שלוש מירנה המשותפת פרופיל טכניקות לבחירה: microarrays, qPCR, והדור הבא של רצף. כל טכניקה יכולה להתבצע באמצעות פלטפורמות שונות מרובות, והכנות מדגם שונות נדרשות, כל אחד עם סיכונים שונים של החדרת חפצים. בmicroarray מירנה, שקופיות הוא הבחין או מסונתז עם אלפי oligonucleotides. oligonucleotides אלה משמשות כמו בדיקות, וכל אחד מהחלליתים נועד להכליא רצף מירנה בפרט. הכנת המדגם עבור microarrays, כפי שבוצעה במחקר זה, מעשירה ראשונה לmiRNAs ולאחר מכן מציגה תיוג Cy5 וCy3 על miRNAs. Microarray נותן את ההזדמנות כדי לבחון את רמות הביטוי היחסית של מספר רב של גנים בו זמנית, הוא מהיר ומתאים להקרנה של מספר הגדול של דגימות, אבל רק יכול לנתח רצפי הווה על microarray ולמשל לא לזהות שינויים בבלתי ידוע או שעבר מוטציה miRNAs. ניתוח microarray כפי שבוצע בפרוטוקול זה דורש גם כמויות גדולות יחסית, כ -5 מיקרוגרם, של רנ&quot;א הכל לדגימה לצורך הניתוח. פרופיל הצפיפות נמוכה qPCR מירנה דורש פחות חומר (700 ng / מדגם ולשכפל), ומאפשר לאיתור והכימות של miRNAs. רמות תמליל ניתן לקבוע, והכמות יכולה להיות סכום מוחלט או סכום יחסי. ניתוח qPCR דורש ראשון המרה של מירנה לתוך cDNA, כאן על ידי שימוש בכרךפריימר לכל מירנה הספציפית הבטחת הניתוח רק מתבגר מירנה. זה יוצר תבנית ארוכה יותר שיכול להיות מוגברות ניצול פריימר קדימה מירנה הספציפית ופריימר הפוכה אוניברסלית משלימה את רצף הכרך, ויכול נמל הכללת בדיקה כפול תווית לייחוד. qPCR ניתן להשתמש בתבנית בצפיפות נמוכה שבו מאות miRNAs ניתן לאתרם במקביל תוך שימוש באחת או כמה צלחות 384 גם עם זוגות פריימר בודדים בכל הטוב 11. הדור הבא של רצף, לעומת זאת, הוא רק של טכניקות אלה המאפשרים הגילוי של רומן, miRNAs מוטציה או עריכה, כפי שיכול להיות רצף כל RNAs במדגם 11. טכניקה זו, עם זאת, דורשת שלבים מרובים להעשיר RNAs הקטן ולייצר ספריית RNA קטנה באמצעות מספר צעדים של ligations מקשר וpurifications עם סיכונים משופרים הבאים של ויסות רמות הביטוי היחסית שלהם בין דגימות. זה גם דורש bioinformati המשמעותיניתוח cs. בהתחשב בטכניקות השונות לפרופיל מירנה, הטכניקה המתאימה ביותר תלויה ביישומים. Microarrays הם מתאים ביותר כאשר חומר הוא יחסית בשפע והעניין הוא להגדיר ביטוי ההפרש של miRNAs כבר ידוע. מערכי qPCR בצפיפות נמוכה הם מתאימים ביותר כאשר כמות מוגבלת של מדגם היא זמינה ורגישות גבוהה של miRNAs הביע נמוך נדרש. רצף הוא מתאים ביותר כאשר הניתוח של miRNAs ידוע, שעבר מוטציה או isoforms שונה של מירנה נדרש. במסגרת המחקר של miRNAs מוסדר אסטרוגן בסרטן השד, נמצאים בשימוש בשני קווי תאי מודל, T47D וMCF7, שבו כמויות גדולות של RNA זמינות. שורת תאים כל אחד מהם נותחה בתרביות תאים משוכפלים באמצעות קטעים שונים, כל אחד בחזרות טכניות של טיפול. זה מאפשר לגילוי חזק של reproducibly, miRNAs המוסדר ERα. רמות ביטוי מירנה יחסית הושוו באמצעות שני microarray ומירנהבדיקות כפולה תווית - מערכי צפיפות נמוכה (DLP-LDA) ותוקפות את התוצאות עם qPCR הספציפי באמצעות שני לצבוע Cyanine וכימיה של DLP. תקנות מירנה נותחו לאחר מכן עוד זמן סדרה בלהגדיר הרגולציה המדויקת שלהם לאורך זמן, אשר יכול לעזור להבדיל וריאציות אקראיות או היממה מתקנות מושרה אסטרוגן, ומצביע על השפעות עיקריות מהשפעות משניות. השוואות Bioinformatical עם לימודים מחייבים הכרומטין של ERα יכולות לקדם את הסיוע בבידול של ראשוני לעומת השפעות משניות. Assay הביא להערכה אמינה של תקנות מירנה שבו ניתן להקים כי לאחר תעתיקים מקודדי חלבוני טיפול E2 24 שעות הוסדרו בקלות אך miRNAs הבוגרת לא הושפעה 1. עם זאת, לא מן הנמנע כי miRNAs מוסדרים בזמן נקודות מאוחר יותר, כפי שמודגם בניתוח סדרת הזמן של miRNAs שנבחר 1. הפרטים צריכים להיחקר עוד יותר והפרוטוקול המובא כאן מספק Robusדרך לא ללמוד ויסות הורמונלי של miRNAs הבוגר בשורות תאי סרטן השד.

<table><tbody><tr><td>DMEM</td><td>Life Technologies</td><td>11885092</td><td></td></tr><tr><td>F12</td><td>Life Technologies</td><td>11765054</td><td></td></tr><tr><td>FBS</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F0926-500ML</td><td></td></tr><tr><td>פניצילין סטרפטומיצין</td><td>Life Technologies</td><td>15140122</td><td></td></tr><tr><td>פנול ללא אדום DMEM&nbsp;</td><td>Life Technologies</td><td>11054020</td><td></td></tr><tr><td>מים טהורים</td><td>במיוחד EMD Millipore</td><td>ציוד</td><td></td>ספציפי</tr><tr><td>DCC-FBS</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F6765-500ML</td><td></td></tr><tr><td>100x L-גלוטמין</td><td>Life Technologies</td><td>25030081</td><td></td></tr><tr><td>טבליות PBS</td><td>Medicago, כימיקלים מדויקים</td><td>מדויקים (BF092051-100), Medicago (09-9400-100)</td><td></td></tr><tr><td>17&beta;- אסטרדיול</td><td>סיגמא-אולדריץ'</td><td>E2758</td><td></td></tr><tr><td>ICI 182,780&nbsp;</td>קווי תאי <td>Sigma-Aldrich</td><td>I4409</td><td></td></tr><tr><td>אתנול</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E7023-600ML</td><td></td></tr><tr><td>T47D או MCF7 אוסף</td><td>תרביות מסוג אמריקאי (ATCC)</td> <td>T47D (ATCC HTB-133) ו-MCF7 (ATCC HTB-22)</td><td></td></tr> <tr><td>בקבוק T-75&nbsp;</td><td>VWR International LLC</td><td>BD353136 (מכסה מאוורר)</td><td></td></tr><tr><td>Trypsin-EDTA</td><td>Life Technologies</td><td>25300062</td><td></td></tr><tr><td>פיפט סרולוגי</td><td>VWR International LLC</td><td>53300. עבור 5 מ"ל (53300-421)</td><td></td></tr><tr><td>תא ספירת תאים רוזנת</td><td>Life Technologies</td><td>C10228</td><td></td></tr><tr><td>Countess Automated Cell</td><td>Counter Life Technologies</td><td>C10227</td><td></td></tr><tr><td>לוחות 100 מ"מ&nbsp;</td><td>VWR International LLC</td><td>25382-166</td><td></td></tr><tr><td>תמיסת גואנידיניום תיוציאנט-פנול (TRizol)</td><td>Life Technologies</td><td>15596026</td><td></td></tr><tr><td>מגרד תאי גומי&nbsp;</td><td>VWR International LLC</td><td>82050-470</td><td></td></tr><tr><td>שיטת גואנידיניום תיוציאנט-פנול-כלורופורם (miRNeasy Mini Kit/Trizol)</td><td>Qiagen</td><td>217004</td><td></td></tr> ללא <tr><td>Rnase, DNase I&nbsp; ערכת (פירוק DNA)</td><td>Qiagen</td><td>79254</td><td></td></tr><tr><td>מים ללא RNase (מים ללא נוקלאז)</td><td>Thermoscientific</td><td>SH30538.02</td><td></td></tr><tr><td>Nanodrop 1000 ספקטרופוטומטר&nbsp;</td><td>Thermoscientific</td><td>ND-1000</td><td></td></tr><tr><td>Agilent RNA 6000 ערכת בדיקת ננו</td><td>Agilent</td><td>5067-1512</td><td></td></tr><tr><td>Agilent 2100 Bioanalyzer</td><td>Agilent</td><td>G2938C ולתוכנה (G2946)</td><td></td></tr><tr><td>כל הפריימרים (למעט פריימרים של TaqMan)</td><td>טכנולוגיות DNA משולבות</td><td>ספציפיות לכל הזמנה עבור כל גן/miRNA</td><td></td></tr><tr><td>מאגר גדיל ראשון, DTT, dNTPs, כתב עילי III (ערכת סינתזה cDNA Superscript III)&nbsp;</td><td>Life Technologies</td><td>18080085</td><td></td></tr><tr><td>MicroAmp לוח תגובה מהיר של 96 בארות&nbsp;</td><td>Life Technologies</td><td>4346906</td><td></td></tr><tr><td>דבק אופטי מהיר מכסה Life</td><td>Technologies</td><td>4311971</td><td></td></tr><tr><td>2x SYBR ירוק PCR מאסטר תערובת (צבע ציאנין)</td> <td>Life Technologies</td><td>4385612</td><td></td></tr><tr><td>7500 מערכת PCR מהירה בזמן אמת ותוכנה</td><td>Life Technologies</td><td>4351106</td><td></td></tr><tr><td>&mu; טכנולוגיית שבב מיקרופלואידית Paraflo&nbsp;</td><td>LCSciences</td><td>MRA-1001 ו-AS-2001 (לניתוח תוצאות)</td><td></td></tr><tr><td>DLP-LDA (TLDA) בדיקת בריכות מגה-פלקס (פריימרים Rt / סט בריכות אנושיות)</td><td>Life Technologies</td><td>4400928</td><td></td></tr><tr><td>בדיקות עם תווית כפולה (TaqMan) ערכת miRNA RT&nbsp;</td><td>Life Technologies</td><td>4366596</td><td></td></tr><tr><td>GeneAmp PCR System 9700 thermocycler</td><td>Life Technologies</td><td>4310899</td><td></td></tr><tr><td>Dual Labeled Probes (TaqMan) 2x Universal PCR Master Mix-No AmpErase UNG</td><td>Life Technologies</td><td>4324018</td><td></td></tr><tr><td>7900HT מערכת PCR מהירה בזמן אמת</td><td>Life Technologies 4329001</td><td></td><td></td></tr><tr><td>תוכנות מנהל SDS ו-RQ</td> Life <td>Technologies</td><td></td><td></td>4444202</tr><tr><td>NCode miRNA סינתזת cDNA גדיל ראשון וערכת qRT-PCR</td><td>טכנולוגיות חיים</td><td>MIRC-50</td><td></td></tr><tr><td>10x DPL (TaqMan) RT פריימרים</td> טכנולוגיות <td>חיים</td><td>ספציפיות לכל miRNA</td><td></td></tr><tr><td>20x DPL (TaqMan) פריימר בדיקה בזמן אמת&nbsp;</td><td>טכנולוגיות חיים ספציפיות</td><td>לכל miRNA</td><td></td></tr></tbody></table>

פרופיל של מיקרו rna המוסדר אסטרוגן בתאי סרטן השד

Profiling of Estrogen-regulated MicroRNAs in Breast Cancer Cells

אסטרוגן ממלא תפקידים חיוניים בהתפתחות בלוטת החלב והתקדמות סרטן השד. זה מתווך את תפקודו באמצעות קשירה והפעלה קולטני אסטרוגן (ERS), ERα, וERβ. ERα לעתים קרובות שהוגברו בסרטן השד ומניע את ההתפשטות של תאי סרטן השד. המיונים לתפקד כגורמי שעתוק ולווסת את ביטוי הגנים. ואילו ההסדרה של ERα של גנים המקודדים חלבונים היא מבוססת היטב, הפיקוח עליה של noncoding microRNA (מירנה) הוא נחקר פחות. miRNAs לשחק תפקיד מרכזי בוויסות לאחר התעתיק של גנים, התרגום המעכב שלהם או משפיל את ה-mRNA שלהם. miRNAs יכול לתפקד כאונקוגנים או מדכאי גידול וגם מבטיחים סמנים ביולוגיים. בין מבחני מירנה הזמינים, microarray ותגובה הכמותית בזמן אמת שרשרת פולימרז (qPCR) נעשה שימוש נרחב כדי לזהות ולכמת רמות מירנה. לזהות miRNAs מוסדר על ידי איתות לאסטרוגן בסרטן השד, הביטוי EIR בשורות תאי סרטן שד ERα חיוביות הושווה לפני ואחרי אסטרוגן הפעלה באמצעות שני microarrays μParaflo-microfluidic והכפול תווית בדיקות נמוכות מערכי צפיפות. תוצאות אומתו באמצעות מבחני qPCR ספציפיים, החלת שני תווית כימיה מבוססת בדיקות מבוססות צבע Cyanine וכפול. יתר על כן, assay נקודת הזמן היה בשימוש כדי לזהות תקנות לאורך זמן. יתרונות של גישת assay מירנה השתמשה במחקר זה הוא שהוא מאפשר הקרנה מהירה של תקנות הבוגרת מירנה בדגימות רבות, גם עם כמויות מדגם מוגבלות. הפריסה, לרבות התנאים הספציפיים לתרבית תאים והטיפול באסטרוגן, משכפל ביולוגי וטכני, והקרנה בקנה מידה גדולה ואחרי אישורים מעמיקים תוך שימוש בטכניקות שונות, מבטיח זיהוי חזק של תקנות מירנה, ומבטל תוצאות חיוביות שגויות וממצאים אחרים. עם זאת, miRNAs מוטציה או לא ידוע, או תקנות בleve התמליל הראשוני והמקדיםl, לא יזוהה. השיטה המוצגת כאן מייצגת חקירה יסודית של הרגולציה מירנה בתיווך אסטרוגן.

סקירה של הגישה מוצגת באיור 1 והשוואה של ההכנות מדגם השונות ושינויי חומצות גרעין הנדרשים לכל טכניקה היא מדמיין באיור 2. המצב והסביבה של התאים לפני טיפול עם הורמון חשוב בקביעת ההשפעות בפועל של ההורמון 16. חלקם בינוני וסרום מכילים גורמי גדילה שעשויה להשפיע על תוצאות, ולכן תאי סרום המורעב כדי להבטיח שכל השפעות הורמונליות צומצמו למינימום. לפיכך, בעת טיפול עם E2, יש ודאות יותר כי ההשפעות שנצפו קשורות-E2. גורם חשוב הוא confluency של תאים, אשר משפיע על קשר בין תאים והתנהגויות כגון איתות תאי תאים והתרבות. תאים הורשו להיות מחוברות 80% (איור 3 א) וכן מצורף כדי לאפשר צמיחה ולמנוע אובדן של תאים במהלך ch כביסה ואמצעי התקשורת הבאAnge. התנאים במהלך חילוץ ואחסון RNA חשובים לאיכות של RNA וניתוח שלאחר מכן. ידועים גם כי מספר התאים, שיטת החילוץ, ותוכן GC של מירנה יכולים להשפיע על התפוקה והאיכות של שניהם mRNAs וmiRNAs 17. לפיכך, יש צורך לבצע מיצוי RNA בתנאי RNase חינם וכדי לבדוק את האיכות של RNA לפני שתמשיך עם ניסויים. לאחר חילוץ, כימות של RNA מספקת מידע על הריכוז של RNA הכולל (המכיל גם mRNAs וmiRNAs), המאפשר תצפית של תשואה. הוא גם מספק ייצוג גרפי של תוצאות כפי שניתן לראות באיור 3 ב, וזה מאפשר לתצפית של טוהר המדגם (בדרך כלל מצויינים על ידי שיא אחד, פנל עליון). תשואה ירודה של RNA הייתי לייצר שום קליטה ספציפית ב260 ננומטר (איור 3B, פנל תחתון). כדי לקבוע אם ה-RNA הוא באיכות גבוהה, RNAיושרה נמדדה. מספר שלמות RNA (רין) של בין 9-10 מבטיח כי RNA הוא לא מושפל והוא באיכות אופטימלית. כמו כן, הייצוג הגרפי של RNA יש לשים לב, ו18S ו28S rRNA צריך פסגות כפי שמוצג באיור 4 (פנל באמצע). השוואה עם הסולם (איור 4, פנל עליון) מזהה את הגודל של הפסגות. RNA מושפל יהיה פסגות פחות ברורות וכמות היחסית מופחתת של 18S ו28S rRNA (איור 4, פנל תחתון). חלק קטן של RNA הקטן נוסף יכול להיות מובטח באמצעות Agilent RNA הקטן קיט. מומלץ לאמת את תגובת אסטרוגן לאחר טיפול, תחת תנאי ניסוי שצוינו, לפני שתמשיך להקרנת מירנה. ניתן לבצע qPCR בגן יעד ER ידוע כגון PS2 או SPINK4 18, תוך שימוש בתבנית cDNA. גנים כאלה הם בדרך כלל שהוגברו בתוך 1-24 שעות לאחר טיפול E2. ברגע שהאיכות של RNA והתגובה לאסטרוגןכבר העריך, ניסוי יכול להמשיך להתנהל. Microarray הוא עדיין טכניקה המשמשת באופן נרחב להקרנה בקנה מידה גדולה לביטוי מירנה בתאים. לדוגמא, microarray מירנה ששימש בעבר כלול 894 miRNAs בוגרת ו50 בקרות בדיקות ייחודיות ברביעיית 1. הכלאות בוצעו בכפילויות עם הליך החלפת צבע. תוצאות microarray מירנה בדרך כלל מיוצגות בצורה גרפית על ידי מפות חום. איור 5A מציג מפת חום, המייצג את הנתונים מהשוואת microarray מירנה בין הרכב והדגימות טופלו E2. אדום מצביע על כך שמירנה היא שהוגברו במדגם שטופל-E2 (ביטוי גבוה יותר), ואילו הירוק הצביעה downregulation של מירנה (ביטוי נמוך יותר). בחירת מירנה בדרך כלל תלויה במשמעות שלהם בביטוי, ובדרך כלל p-value פחות מ 0.05 נחשבת משמעותי. MiRNAs שמסומנים לבוא לידי ביטוי באופן דיפרנציאלי צריך להיות תוקף נוסף wה-i qPCR, כדי להבדיל אותם מתוצאות חיוביות שגויות. מערך DLP-LDA, לעומת זאת, משתמש בשיטה מבוססת qPCR למסך עבור miRNAs המוסדר בפורמט 384 גם. בדרך כלל שתי צלחות 384 גם (כרטיסים) מסופקות, בריכות וברכה ב &#39;מכיל בדרך כלל מאופיין יותר ויותר הביע מאוד miRNAs מאשר ב&#39; הבריכה ברמה היחסית של כל מירנה נקבעת על ידי qPCR, שבו הוא ניתח למירנה היטב (איור 5). ערך Ct גבוה יותר מצביע על ביטוי פחותים מירנה. בדומה microarray מירנה, תוצאות שהושגו מDLP-LDA צריכים להיות תוקף נוסף כדי להבטיח דיוק. ניתן לבצע אימותים באמצעות qPCR. הנה, שתי שיטות זיהוי qPCR מתוארות כדי למנוע הטיה שיטה ולאפשר לאישור וחקירה של תקנות מירנה יסודיים. הכימיה זיהוי מבוסס צבע Cyanine עובדת שונה מאשר DLP שפרופיל DLP-LDA מבוסס על, והוא מתאים לאישורמטרות ation. זה יכול להיות פחות ספציפי כפי שהוא מזהה את כל גדילי הדנ&quot;א הכפול המוגבר, אבל ההומוגניות של המדגם ניתן להעריך על ידי ביצוע ניתוח היתוך עקום. איור 6 א (משמאל פנל) מציג את ניתוח היתוך העקום של מירנה, ו שיא אחיד מוגדר וברור שניתן לראות. פסגות מרובות יהיו ציינו אם פריימר הוא כמויות ספציפיות או משמעותיות של פריימר-dimer הוא נוצר (איור 6 א, פנל מימין). מבחני DLP מירנה לעומת זאת, הוא יותר ספציפיים כהגברה בלבד של היעד מירנה מזוהה. חלקות הגברה של כל יעד מירנה ניתן לצפות, כפי שהודגמה באיור 6. האפשרות לשליטה להתרחשות של מוצרי הגברה מרובים באמצעות הניתוח עקום התכה היא, עם זאת, אינו זמינה עם הכימיה הזאת ולצבוע Cyanine qPCR הוא פחות יקר. יכולים לפעמים נוצרו מבחני צבע Cyanine וDLP qPCR תוצאות שונות במקצת. עבור שני מבחני qPCR, השוואה לrefeגן לורנס נדרש כדי לקבוע את הביטוי היחסי של גנים בין שתי דגימות. גן ההתייחסות, המכונה גם גן משק, צריך להיות גן שהביטוי שלו הוא לא השתנה, והוא בא לידי ביטוי ברמות דומות לגן של עניין. דוגמא של גן התייחסות מתאים בשורות תאי סרטן השד אלה היא ARHGDIA, התמ&quot;ג-דיסוציאציה מונעי Rho שמתפקד תהליכי חילוף התמ&quot;ג / GTP של חלבוני Rho. כפי שנצפה באיור 6C (למעלה), ברמת ה-mRNA של ARHGDIA אינה משתנית בין הרכב לבין הדגימות שטופלה יגנד. יכול לשמש גם 18S rRNA, אם כי הביטוי הגבוה שלה דורש 1:500 דילול נפרד של מניית cDNA ולכן פחות מתאים. לניתוח מירנה, יש עדיין ויכוח על גן התייחסות מוגדרת היטב. עד כה, snRNA U6 הוא גן התייחסות שמקובל לניתוח מירנה. U6 snRNA הוא RNA ~ הארוך 110 נוקלאוטיד, noncoding הקטן הגרעיני המתפקדים בSPL מראש mRNA הגרעיניהדובדבן 19. כפי שנצפה באיור 6C (בחלק תחתון), רמות ביטוי U6 הן בערך אותו הדבר בכל הדגימות שמוצגים, ובכך מאפשרות לחישובים של הרמות המשתנה של מירנה. ייצוג גרפי של תוצאת מירנה qPCR להשוואה בין כלי הרכב והתאים שטופלו-E2, כי כבר מנורמל U6 ההתייחסות ניתן לראות באיור 6 ד. זה ממחיש מירנה, שאותרו כnonregulated לאחר טיפול E2 24 שעות, אבל שמטפח אתרים מחייב הכרומטין ER הקרובים למיקומו הגנומי, וניתוח סדרת הזמן זיהה רגולציה משמעותית 72 שעות לאחר טיפול. <img alt="איור 1" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51285/51285fig1highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51285/51285fig1.jpg" /> איור 1. סקירה של הגישה מועסקות לצורך זיהוי של רגולציה הורמונלית של מירנה בתאי סרטן השד. </strאונג&gt; תהליך מתחיל בתרבית תאים וטיפול, ואחריו בקנה מידה גדול מירנה פרופיל לזהות miRNAs אולי הביע באופן דיפרנציאלי, ומסתיים עם אימותי qRT-PCR של תוצאות מערך. <img alt="איור 2" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51285/51285fig2highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51285/51285fig2.jpg" /> איור 2. השוואה בין התכשירים השונים מדגם ומניפולציות חומצות גרעין לכל טכניקת זיהוי מירנה. () Microarray מירנה בשיטת טכנולוגית μParaflo כולל העשרה, poly-עוקב וסימון קשירה. (ב) הכנת מדגם טכנולוגיית DLP ושיטת זיהוי כוללים פריימר סינתזת cDNA כרך המשתרע לאחר שלב denaturation ומספק שבר כבר מחסה הכנת מדגם טכנולוגיית צבע Cyanine לאחור תחל ורצף בדיקה. (C)ושיטה לגילוי כולל עוקב פולי, וסינתזת cDNA עם פריימרים אוליגו-DT כולל רצף אוניברסלי 5 &#39;. <img alt="איור 3" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51285/51285fig3highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51285/51285fig3.jpg" /> איור 3. תרבית תאים ומיצוי RNA. (א) בתאים בתרבית כדי להמחיש 80% confluency צורך לפני טיפול עם ליגנד. (ב) ייצוג גרפי של ריכוז RNA ובטהרה לאחר חילוץ. שיא כל אלו מהווה מדגם ותהליך חילוץ מוצלח מניב RNA הטהור (פנל עליון). RNA חילוץ גרוע לא מראה שיא ספיגה ברור ב260 ננומטר (פנל תחתון). <img alt="איור 4" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51285/51285fig4highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51285/51285fig4.jpg" /> איור 4. &amp; #160; בקרת איכות RNA תוצאות מניתוח שלמות RNA מראה ייצוג גרפי לסולם (למעלה), RNA באיכות טובה (באמצע) ומדגם RNA מושפל (תחתון).. <img alt="איור 5" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51285/51285fig5highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51285/51285fig5.jpg" /> איור 5. איור של תוצאות פרופיל מירנה. (א) ייצוג מפת החום של תוצאות microarray מירנה לmiRNAs הביע באופן דיפרנציאלי. miR-A, B, C הם שהוגברו בטופל מדגם E2 כפי שצוין באדום, ואילו miR-D, E, F, G הם downregulated במדגם שטופל ב-E2 כפי שצוין בירוק. חלקות הגברה (ב) לכל מירנה מתוצאות DLP-LDA. מירנה זוהתה הם מוגברים כפי שצוינו על ידי גידול בשווי Rn. <img alt="איור 6" fo:content-width="5in" fo: src = &quot;/ files/ftp_upload/51285/51285fig6highres.jpg&quot; src = &quot;/ files/ftp_upload/51285/51285fig6.jpg&quot; /&gt; איור 6. ניתוח qPCR של תקנות מירנה. () ניתוח התכה עקום למירנה נותח באמצעות זיהוי צבע Cyanine, מראה ההומוגניות של כל נבדקו הדגימות (משמאל) וההגברה של שברים מרובים (מימין). חלקות (ב &#39;) הגברה עבור כל דגימה עבור מירנה. זה יכול להיות גם מצבע Cyanine או DLP שיטות זיהוי. (ג) ייצוג גרף עמודות של גנים מתאימים התייחסות לmRNA ניתוח ARHGDIA (למעלה) ולU6 מירנה ניתוח snRNA (תחתון), לא מראים ביטוי ההפרש משמעותי בין דגימות. (D) תוצאות מירנה qPCR כדי להמחיש השוואה של רמות ביטוי היחסית של miR-135a מעל כמובן זמן. איור 6 ד &#39;הודפסה מחדש מKatchy et al. 1 באישור Elsevier. ערכים הם בדרך כלל הממוצע של exper הנפרדiments (כפילויות ביולוגיות) ± SD. מבחן t של הסטודנט משמש כדי להדגים משמעות: * p &lt;0.05.

מולקולרי איתות דרך גם אסטרוגן ומייקרו RNA הם קריטיים בהתפתחות סרטן השד וצמיחה. אסטרוגן מפעיל את קולטני האסטרוגן, שהם גורמי שעתוק. גורמי שעתוק רבים יכולים לווסת את הביטוי של מיקרו RNA, והוא יכול להיות צדודית מיקרו RNA מוסדר אסטרוגן תוך שימוש בטכניקות שונות בקנה מידה גדולה.

פרופיל של מיקרו RNA המוסדר אסטרוגן בתאי סרטן השד

Estrogen plays vital roles in mammary gland development and breast cancer progression. It mediates its function by binding to and activating the estrogen ...

המטרה הכללית של הליך זה היא להגדיר microRNAs שקולטני אסטרוגן עשויים לווסת. דבר זה מושג תחילה על ידי הכנת התאים לתגובת אסטרוגן מקסימלית באמצעות תרבית עד להסמיכות (confluence) אופטימלית וריקון של פעילות אסטרוגנית. השלב השני הוא השראת פעילות שעתוק של קולטני האסטרוגן על ידי טיפול ב-estradiol למספר נקודות הזמן הנדרשות.נכללו בקרות מתאימות לצורך השוואות. לאחר מכן, ה-RNA, כולל אוכלוסיית ה-micro RNA, מופק ומומר ל-CD NA הידוע כמאוסן על ידי אסטרוגן. גנים מטרה נמדדים לאחר מכן באמצעות QPCR כדי לאשש את הצלחתו של פרוטוקול הטיפול.השלב הסופי הוא קביעת דפוס הביטוי של micro RNA ברחבי הגנום באמצעות טכנולוגיות סריקה רחבות היקף. לבסוף, מבוצע ניתוח אישור באמצעות QPCR. שיטה זו יכולה לסייע במתן תשובות לשאלות מפתח בתחום סרטן השד, כגון האם וכיצד एस्ट्रוגן משפיע על ביטוי micro RNA.למרות ששיטה זו יכולה לספק תובנות לגבי סרטן השד, ניתן ליישמה גם על מערכות אחרות, כגון סוגי סרטן או סוגי תאים אחרים המבטאים את קולטן האסטרוגן אלפא או את bitter. תאי ה-MC seven ששימשו במחקר זה הוכנו חמישה ימים לפני הטיפול במנדף סטרילי. הסר את המצע מהבקבוק מסוג T 75 באמצעות פיפטת פסטור סטרילית המחוברת לוואקום.שטפו בעדינות את התאים ההצמידים פעמיים ב-PBS ונתקו את התאים באמצעות טריפסין. ספרו את התאים באמצעות סופר תאים בהתאם לפרוטוקול היצרן. סמנו שש צלחות של 100 מיליליטר והוסיפו 10 מיליליטר של מצע לכל צלחת.זריעו כ-2 מיליון תאים לכל צלחת ופזרו את התאים על ידי סיבוב עדין של הצלחת. דגרו את התאים למשך 24 עד 48 שעות בטמפרטורה של 37°C וב-5% CO2 עד שהתאים יגיעו למסף של כ-80%confluent. לאחר יומיים עד ארבעה ימים, הוציאו את התאים מדגירה של 37°C ובחנו אותם תחת מיקרוסקופ כדי לוודא שהם נמצאים במסף של כ-80%confluent.צפיפות התאים (confluency) היא גורם חשוב מכיוון שהיא משפיעה על מגע בין תאים ועל התנהגויות כגון איתות בין-תאי ופרוליפרציה. שטפו את התאים פעמיים ב-PBS ולאחר מכן הוסיפו את המצע המתאים עם 5%FBS שעבר סינון כדי להסיר תרכובות אסטרוגניות. FBS שעובד עם פחם ומצופה בדקסטראן (D-C-C-F-B-S); דגרו את התאים למשך 24 שעות ב-37 °C ו-5%CO2. ביום למחרת.שטפו את התאים פעמיים עם PBS והוסיפו את מצע ה-0.5%D-C-C-F-B-S המתאים; הדגירו את התאים למשך 48 שעות נוספות ביום הטיפול. הכינו את הריאגנטים לטיפול בתאים במבחנה קונית של 50 milliliter. ראשית, הוסיפו 30 milliliters של מצע 0.5%D-C-C-F-B-S המתאים, ולאחר מכן שלושה microliters של תמיסת סטוק של E two ligand בריכוז 0.1 millimolar; שטפו את התאים פעמיים עם PBS.יש לוודא שמוסר כמה שיותר PBS. ערבבו בעדינות את תכולת כל מבחנה והוסיפו 10 milliliters לתאים בכל צלחת. צריכה להיות ליגנד אחת לכל צלחת.דגרו את התאים בטמפרטורה של 37 °C וב-5% CO2 למשך פרק זמן נבחר שבין 0 ל-72 שעות. החליפו את המצע לפי הצורך לאחר השלמת הטיפול למשך פרק הזמן הרצוי. הוציאו את הצלחות מהאינקובטור והעבירו אותן למנדף.מכיוון שנוהל זה משתמש בתמיסת גואנידין תיוציאנט פנול רעילה, יש להשתמש בציוד מגן אישי מתאים, ולשטוף את התאים פעמיים ב-PBS. לאחר מכן, הוסף מיליליטר אחד עד שניים של תמיסת גואנידין תיוציאנט פנול לתאים בכל צלחת. ודא שנפח התאים אינו עולה על 10% מנפח תמיסת הגואנידין תיוציאנט פנול ושהצלחת מכוסה בתמיסה.השאירו את התאים למשך דקה אחת. לאחר מכן, השתמשו במגרדת גומי כדי לגרד את התאים והעבירו אותם למבחנת מיקרו-צנטריפוגה. ניתן לאחסן את התאים בתמיסה זו בטמפרטורה של 80°C- למשך שבועות.מיצוי RNA באיכות גבוהה הוא קריטי להצלחת הליך זה. לכן, את השלבים הבאים יש לבצע בתנאים נקיים מ-RNA. כדי למצות RNA כולל מכל טיפול, ערבבו את תערובת התאים ב-vortex למשך דקה אחת וסובבו בcenterY במהירות.הוסיפו 200 µL של כלורופורם לכל 1 mL של תמיסת גואנידין תיאוציאנאט-פנול. ערבבו ב-Vortex למשך 15 שניות והדגרימו למשך שתיים עד שלוש דקות בטמפרטורת החדר. סבבו בצנטריפוגה במהירות של 11,000 RPM ובטמפרטורה של 4 °C למשך 15 דקות. העבירו את הפאזה המימית העליונה למבחנת מיקרו-צנטריפוגה חדשה.הוסיפו 1.5 נפחים של 100% ethanol וערבבו באמצעות פיפוט. העבירו את התמיסה לעמודת ספין (spin column) וטהרו את ה-RNA באמצעות טיהור בעמודת ספין ל-micro RNA, ולאחר מכן בצעו פירוק DNase לפי פרוטוקול היצרן. לאחר מכן, המיסו את ה-RNA ב-60 microliters של RNAse free water; השתמשו ב-one to two microliters של RNA לצורך כימות ואנליזת איכות, ואת יתרת ה-RNA שמרו בטמפרטורה של minus 80 degrees Celsius.לאחר אישור שהטיפול בתאים הוביל לוויסות של מטרות ידועות התגובות לאסטרוגן, כגון mRNA, נבצע פרופילינג של micro RNA באמצעות שילוב של micropower flow microfluidic, מערכים של microarrays וגששים בעלי סימון כפול, מערכים בצפיפות נמוכה או D-L-P-L-D-A. כדי לבצע פרופילינג של micro RNA באמצעות D-L-P-L-D-A, הוצא את פלטות ה-D-L-P-L-D-A מהמקרר והשאר אותן בטמפרטורת החדר בזמן הרצת תגובת השעתוק ההפוך ליצירת cDNA מדגימות ה-RNA. כאשר פלטות ה-D-L-P-L-D-A יגיעו לטמפרטורת החדר, טען 100 µL של cDNA המעורב עם גששני הסימון הכפול ו-PCR master mix לתוך כל אחד משמונת פתחי המילוי של הפלטה.סבבו את פלטות המערך בצנטריפוגה. פתחו לזמן קצר את מערכת ה-Q-R-T-P-C-R ובדקו שהבלוק מיועד לפלטה של 384 בארות. הגדירו את הרצה.באמצעות תוכנת ה-SDS, בחרו באפשרות של כימות יחסי (relative quantification). בחרו את מספר הבאר ואת סוג המערך, והזינו תיאורי דגימות כדי להגדיר את הבארים. הפעילו את המערך תוך שימוש בתנאי המעגלים התרמיים כברירת המחדל.עם סיום ההרצה, שמרו את התוצאות, ייצאו אותן ל-Microsoft Excel ושמרו אותן לצורך ניתוח נוסף. שיטה אחת לאישור הבקרה של ה-micro RNA היא באמצעות אנליזת cyanide D-Q-P-C-R. השלב הראשון הוא תכנון פריימרים לרצף של ה-micro RNA הבוגר, כאשר את רצף הפריימר הקדמי (forward primer) ניתן להשיג מ-mirbase.org.המיר את כל ה-UES ל-ts next, הכן את ה-CD NA, והנח מיקרוגרם אחד של total RNA ושפופרת צנטריפוגה של 1.5 מיליליטר. כלול ביקורת שלילית עם מים במקום total RNA. פעל לפי ההוראות ל-poly A tailing ו-first strand CD nna.סינתזה של micro RNA מסינתזת גדיל ראשון של cDNA של micro RNA ופרוטוקול Q-R-T-P-C-R. יש לדלל את ה-cDNA שהתקבל ביחס של 1:10 במים מטוהרים ולשמור בטמפרטורה של minus 20 degrees Celsius. השג פלטת תגובה של 96 בארות.הכינו תערובת מאסטר ל-A-Q-P-C-R. עבור כל באר של micro R-N-A-Q-P-C-R מאסטר, הוסיפו שני picaMoles מכל אחד מהפריימר הספציפי קדמה (forward primer) ומהפריימר האוניברסלי. הוסיפו חמישה µL של תערובת מאסטר 2X-Q-P-C-R ומים מזוקקים.חלקו את התערובת לאליקוטיים לכל באער. לבסוף, הוסיפו 16 nanograms של poly a CD NA לכל דגימה והוסיפו בקרות שליליות. נפח התגובה הסופי צריך להיות 10 microliters לבאער. ודאו כי קיימות שלוש באערים לכל דגימה עבור כל micro RNA לצורך חזרות טכניות, וכן עבור הבקרות השליליות.בנוסף, כללו גן ייחוס אחד או מספר גנים, בדרך כלל U6 snRNA ו/או miRNA שאינו משתנה, בתוכנת המערכת של ה-Q-R-T-P-C-R. הגדירו את ה-reporter ואת המטרה. הזינו את נפח התגובה. בחרו בשיטת ה-comparative threshold cycle והגדירו את בארות הדגימה.הריצו את הפלטות באמצעות הגדרות ברירת המחדל של ההרצה. ודאו שבוצע ניתוח עקומת התכה (melting curve analysis) עבור כל הרצות הצבע הכחול-ציאן בסיום ההרצה. שמרו את התוצאות וייצאו את כל הנתונים, כולל ערכי ה-CT, ל-Microsoft Excel.מיצוי יעיל של RNA באיכות גבוהה מהדגימות הוא גורם חשוב להצלחת מחקר זה. לאחר המיצוי, ריכוזי ה-RNA נמדדים באמצעות ספקטרופוטומטר, כפי שמוצג בתוצאה מייצגת זו. כל שיא המוצג בפאנל העליון מייצג דגימה ותהליך מיצוי מוצלח שהניב RNA טהור.לעומת זאת, RNA שחולץ באופן לקוי, כפי שמוצג בפאנל התחתון, אינו מראה שיא בליעה ברור ב-260 nanometers. לצורך בקרת איכות של ה-RNA, נמדדה שלמות ה-RNA והתוצאות הושוו לסולם RNA (RNA ladder). בבדיקה של דגימת RNA באיכות טובה, צריכים להופיע שיאים עבור 18 s ו-28 S-R-R-N-A, כפי שמוצג כאן.דגימת RNA מעובדת (degraded) תציג פיקים פחות ברורים וכמות יחסית מופחתת של 18 s ו-28 S-R-R-N-A, כפי שמוצג כאן. ניתן לבצע ניתוח של אוכלוסיית ה-micro RNA באופן נפרד. תוצאות ה-micro RNA microarray מהשוואה בין דגימת ביקורת (vehicle) לבין דגימות שעובדו עם E two מוצגות גרפית באמצעות מפת חום (heat map) זו.Mere a, mere B ו-mere C נמצאים בביטוי מוגבר (upregulated) בשני הדגימות שעברו טיפול E, כפי שמסומן באדום, בעוד ש-mere D, mere e, mere F ו-mere G נמצאים בביטוי מופחת (downregulated) בשני הדגימות שעברו טיפול E, כפי שמסומן בירוק. בחירת ה-micro RNA תלויה במובהקות ובביטוי שלהם. ערך P נמוך מ-0.05 נחשב בדרך כלל למובהק ויש לבחור בו לצורך תיקוף נוסף באמצעות QPCR.מערכי צפיפות נמוכה של גשושים בעלי סימון כפול משתמשים בשיטה המבוססת על A-Q-P-C-R לסריקה של microRNAs מווסתים. בפורמט של 384 בארות מוצגים כאן גרפי הגברה עבור micro RNA מתוצאות ה-D-L-P-L-D-A. הגברה של microRNAs המבוטאים מודגשת על ידי ערכי RN עולים.ניתן לבצע תיקופים באמצעות שתי שיטות גילוי ב-QPCR כדי למנוע הטיות שיטתיות ולאפשר אישור ובדיקה מעמיקים של ויסות micro NA. השיטה הראשונה משתמשת בגילוי באמצעות צבע סיאנין כדי לנתח את עקומת ההמסה של micro RNA כביקורת לספציפיות ההגברה. הגברה של הפgment המיועד תביא לשיא אחיד ומוגדר בבירור, כפי שמוצג בפנל השמאלי.ניתן יהיה להבחין במספר שיאים אם הפריימר אינו ספציפי או אם נוצרו כמויות ספציפיות של דימר-פריימר, כפי שמוצג בפאנל הימני. במקרה כזה, לא ניתן להשתמש בנתונים לצורך ניתוח ביטוי. השיטה השנייה, ניתוח QPCR עם גששים בעלי סימון כפול, היא ספציפית יותר שכן מזוהה רק הגברה של ה-micro RNA המטרה בגרפי ההגברה של כל מטרה.ניתן להבחין ב-Micro RNA כפי שמוצג כאן עבור שני בדיקות ה-QPCR. נדרשת השוואה לגן ייחוס כדי לקבוע את הביטוי היחסי של גנים בין שתי דגימות. דוגמה לגן ייחוס מתאים בקווי תאים אלו של סרטן השד היא A-R-H-G-D-I-A-A RO GDP dissociation inhibitor.כפי שנראה בדמות זו, רמת ה-mRNA של A-R-H-G-D-I-A אינה משתנה בין הדגימות שקיבלו veículo לבין הדגימות שטופלו בליגנד. גן ייחוס המקובל באופן נרחב לאנליזת micro RNA הוא U six snrp, RNA. זהו RNA גרעיני קטן שאינו מקודד, באורך של כ-110 נוקלאוטידים, המתפקד ב-nuclear prem.כפי שניתן לראות באיור זה, רמות הביטוי של U6 דומות בערך בכל הדגימות המוצגות, ובכך הן מאפשרות חישוב של הרמות המשתנות של microRNA. איור סופי זה מציג ייצוג גרפי של תוצאות microRNA-qPCR מתאי שקיבלו vehicle ותאי שקיבלו טיפול ב-E2, תוך השוואה של רמות ביטוי יחסיות של microRNA ספציפי, miR-135a, לאורך סדרת זמנים. microRNA זה זוהה כבלתי מווסת עד 24 שעות לאחר הטיפול ב-E2, אך ווסת באופן מובהק 72 שעות לאחר הטיפול, בעקבות נוהל זה.ניתן לבצע שיטות אחרות, כגון שיקוע חיסוני של כרומטין (chromatin immunoprecipitation) של קולטן ה-SDR N, כדי לענות על שאלות נוספות, כמו האם ה-microRNA מווסת באופן ישיר על ידי הקולטן באמצעות קישור לאזורי כרומטין רגולטוריים מסוג CIS. לאחר צפייה בסרטון זה, צריכה להיות לכם הבנה טובה של האופן שבו ניתן לנתח את הוויסות של microRNAs המתווך על ידי אסטרוגן בצורה מהימנה. חשוב מאוד לבצע את הבקרות השונות ואת חזרתיות השלבים כפי שפורטו בפרוטוקול זה, כדי לוודא שאתם מזהים ויסותים אמיתיים ולא וריאציות ביולוגיות או טכניות.

profiling-of-estrogen-regulated-micrornas-in-breast-cancer-cells

Research

JoVE Journal

Medicine

רפואה

ספריית מזהה היעד הוא פלסמיד מבוסס, הגנום כולו אוסף של cDNA משובטים לשמש לזיהוי מטרות מירנה. כאן אנו מדגימים את השימוש והיישום.

הגנום כולו מסך עבור מטרות מירנה שימוש יעד המשימה ספריית מזהה

פולימראז כמותי זמן אמת תגובת שרשרת (QPCR) היא שיטה מהירה רגישה כדי לחקור את רמות הביטוי של microRNA שונים (מירנה) מולקולות דגימות הגידול. שימוש בביטוי זה השיטה של ​​מאות מולקולות שונות מירנה יכול להיות מוגבר, לכמת אותה ולנתח אותה מהתבנית cDNA אותו.

MicroRNA איתור גידולים הערמונית ב כמותי בזמן אמת PCR (QPCR)

כאן אנו מתארים פרוטוקול פשוט לניתוחי ביטוי microRNA (miRNA) ברקמות קליניות של סרטן ערמונית קפוא (FFPE) או סרטן ערמונית קפוא טרי (PCa) המשתמשות ב-PCR כמותי בזמן אמת (RT-PCR) והכלאה באתרה (ISH).

ניתוח ביטוי מירנה ברקמות קליניות בסרטן הערמונית

שילוב נתונים מניסויי ריצוף גנומי וניסויים מטבולומיים הוא אתגר.  במאמר זה אנו מדווחים, לראשונה, על ייצור, ניתוח ואינטגרציה של נתוני טרנסקריפטום, ציסטרום ומטבולום מתאי סרטן השד שטופלו באסטרדיול.

ביולוגית מערכות ויסות חילוף חומרים על ידי איתות קולטן אסטרוגן לסרטן השד

כאן אנו מציגים פרוטוקול לאיתור ביטוי miRNA בדגימות חולות סרטן השד באמצעות הכלאה של miRNA באתר.

ניתוח Clinicopathological ביטוי מירנה שד רקמות סרטן על ידי שימוש מירנה<em&gt; באתרו</em&gt; כלאה

נוזל המרה הוא מקור יקר לשלפוחיות חוץ-תאיות/אקסוזומים המכילים סמנים ביולוגיים בעלי פוטנציאל חשוב. פרוטוקול זה מייצג שיטה חזקה לבידוד אקסוזומים ממרה אנושית לניתוחים נוספים כולל פרופיל miRNA.

בידוד Profiling של MicroRNA המכיל Exosomes מן האדם מר

כאן אנו מתארים שיטה להערכת ביטוי ריאות miRNAs זה הם חזו להסדיר גנים דלקתיים שימוש בעכברים נחשפים האוזון או סינון אוויר בשלבים שונים של ייחום.

ריאות microRNA פרופיל לרוחב ייחום בעכברים החשופים אוזון

miRNA הרפוי יש פוטנציאל משמעותי בוויסות התקדמות סרטן. המודגמות כאן גישות אנליטיות משמשים לצורך זיהוי הפעילות של טיפול miRNA קומבינטורית להפסקת מחזור התא, אנגיוגנזה.

ניתוח של miRNA קומבינטורית טיפולים כדי להסדיר מחזור התא, אנגיוגנזה

פרוטוקול זה משתמש ב-החללית מבוסס בזמן אמת בתגובת שרשרת פולימראז (PCR), שיטת sulforhodamine B (SRB), 3 ' אזורים לא מתורגמים (3 ' UTR) שיבוט, ושיטת לוציפראז לאמת את הגנים היעד של miRNA עניין ולהבין את הפונקציות של Mirna.

פרוטוקול מחוץ לגופית להערכת רמות מיקרוארנה, פונקציות, וגנים היעד הקשורים בתאי הגידול

הפרוטוקול מתאר בדיקת הכלאה אימונופלואורסצנטית טנדם עם רקמה משובצת פרפין קבועה בפורמלין כדי לזהות ולכמת מיקרו-RNA וחלבונים מרובים בו זמנית.

הגברה וזיהוי של מיקרו-RNA באמצעות הכלאה נעולה של חומצת גרעין-באתרה כשיטת זיהוי וכימות חדשה

חקור פרופיל של מיקרו RNA המוסדר אסטרוגן בתאי סרטן השד באמצעות מערכי מיקרופלואידיים ו-QPCR. שיטה זו מאפשרת לזהות תבניות ביטוי גנומיות ולהבין את תפקיד האסטרוגן בסרטן השד.

פרופיל של מיקרו RNA המוסדר אסטרוגן בתאי סרטן השד

גלה סרטונים נוספים